• Tidak ada hasil yang ditemukan

SIMPULAN DAN SARAN

Simpulan

Kultivasi mikroalga spesies Nannochloropsis sp. dengan penambahan limbah POME dapat meningkatkan pertumbuhan sel, peningkatan kadar lemak, karbohidrat, dan protein Nannochloropsis sp. Kultivasi yang memiliki pengaruh terhadap pertumbuhan sel Nannochloropsis sp. dan peningkatan kadar lemak Nannochloropsis sp. tertinggi terjadi pada perlakuan penambahan POME 10%, sedangkan peningkatan karbohidrat dan protein terjadi pada perlakuan penambahan POME 30%.

Saran

Saran untuk penelitian selanjutnya adalah perlu dilakukan uji nutrien media kultivasi dan analisis kadar karbohidrat, protein, lemak pada setiap fase pertumbuhan.

DAFTAR PUSTAKA

Apriyanto A. 1999. Petunjuk Laboratorium Analisis Pangan. Bogor: Graha Utama. Bartley ML, Boeing WJ, Corcoran AA, Holhuin FO, Schaub T. 2013. Effects of salinity on growth and lipid accumulation of biofuel microalga Nannochloropsis salina and invading organisms. Biomass and Bioenergy. 54: 83-88.

Ben-Amotz A. 2008. Bio-Fuel and CO2 Capture by Algae. Seambiotic NASA [internet]. [diunduh 2015 Agustus 31]. Tersedia pada: http://pathway.soe.uq.edu.au/mediawiki/images/1/17/BenAmotz.pdf.

Bligh EG, Dyer WJ. 1959. A rapid method of total lipid extraction and purification. Canadian Journal of Biochemistry and Physiology. 37(8): 911-917.

Borowitzka MA, Prasil O, Suggett DJ. 2011. Chlorophyll a Fluorescence in Aquatic Science: Methods and Applications. New York (NY): Springer.

Buckle KA, Edward RA, Fleet GH, Wooton M. 2007. Ilmu Pangan. Penerjemah: Purnomo H, editor. Jakarta (ID): UI Press. Terjemahan dari: Food Science. Darsi R, Supriadi A, Sasanti AD. 2012. Karakteristik kimiawi dan Potensi

Pemanfaatan Dunaliella salina dan Nannochloropsis sp. Fishtech. 1(1): 14-25. Day RA dan Underwood AL. 2002. Analisis Kimia Kuantitatif Edisi Keenam.

Sopyan I, penerjemah; Wilarius WH, editor. Jakarta (ID): Penerbit Erlangga. Terjemahan dari: Quantitative Analysis Sixth Edition.

18

Griffiths MJ, Garcin C, van Hille RP, Harrison STL. 2011. Interface by pigment in the estimation of microalgal biomass concentration by optical density. Juornal of Microbiological Methods. 85: 119-123.

Hart BT, Bailey P, Edwards R. Hortlek K. 1991. A review of the salt sensitivity of the Australian fresh water biota. Hydrobiologia. 210: 105-144.

Hu H dan Gao K. 2003. Optimization of growth and fatty acid composition of a unicellular marine picoplankton, Nannochloropsis sp., with enriched carbon sources. Biotechnology letters. 25: 421-425.

Kawaroe M, Hwangbo J, Augustine D, Putra HA. 2015. Comparison of density, specific growth rate, biomass weight, and doubling time of microalgae Nannochloropsis sp. cultivated in Open Raceway Pond and Photobioreactor. Aquaculture, Aquarium, Conservaiton & Legislation International Journal of the Bioflux society. 8(5): 740-750.

Kawaroe M, Prartono T, Hwangbo J, Sunuddin A, Agustine D, Gustini AS. 2015. Effect of ethyl methane sulfonate (EMS) on cell size dan antioxidant activities of microalgae Dunaliella sp. Aquaculture, Aquarium, Conservaiton & Legislation International Journal of the Bioflux society. 8 (6): 751-759.

Kawaroe M, Prartono T, Sunuddin A, Sari D W, Augustine D. 2010. MIKROALGA: Potensi dan Pemanfaatannya untuk Produksi Bio Bahan Bakar. Bogor: IPB Press.

Kawaroe M, Sudrajat A O, Hwangbo J, Augustine D. 2015. Chemical Mutagenesis of Microalgae Nannochloropsis sp. Using EMS (Ethyl Methanesulfonate). British Journal of Applied Science & Technology. 8(5): 494-505.

Lin Q, GuN, Li Gang, Lin J, Huang J, Tan L. 2012. Effects of Inorganic Carbon Concentration on carbon Formation, Nitrate Utilization, Biomass and Oil Accumulation of Nannochloropsis oculata CS 179. Bioresource Technology. 111: 353-359.

Mahdi MZ, Titisari TN, Hadiyanto. 2012. Evaluasi Pertumbuhan Mikroalga dalam Medium POME: Variasi Jenis Mikroalga, Medium, dan Waktu Penambahan Nutrien. Jurnal Teknologi Kimia Industri. 1:312-319.

Na Gu, Lin Q, Li G, Tan Y, Huang L, Lin J. 2012. Effect of salinity on growth, biochemical composition, and lipid productivity of Nannochloropsis oculata CS 179. Life Science. 5: 1-7.

Phang SM dan Ong KM. 1988. Algal Biomass Production in Digested Palm Oil Mill Effluent. Biological Wastes. 25: 177-191.

Prartono T, Kawaroe M, Sari DW, Augustine D. 2010. Fatty Acid Content of Indonesia Aquatic Microalgae. HAYATI Journal of Biosciences. 17(4): 196-200. Prartono T, Kawaroe M, Katili V. 2013. Fatty Acid Composition of Three Diatom Species Skeletonema costatum, Thalassiosira sp. and Chaetoceros gracilis. International Journal of Environment and Bioenergy. 6(1): 28-43.

Renaud SM dan Parry DL. 1994. Microalgae for use in tropical aquaculture II, effect of salinity on growth, gross chemical composition of three species of marine microalgae. Journal of Applied Phycology. 6: 347-356.

Richmond A. 2004. Handbook of Microalgal Culture: Biotechnology and Applied Phycology. Israel (IL): Blackwell Science.

Rocha JMS, Gracia JE, Hendriques MHF. 2003 Growth aspect of the marine microalga Nannochloropsis gaditana. Biomolecul Engineer. 20: 237 -242.

19 Sari, FYA, I Made Suryajaya A, Hadiyanto. 2012. Kultivasi Mikroalga Spirulina platensis dalam Media POME dengan Variasi Konsentrasi POME dan Komposisi Jumlah Nutrien. Jurnal Teknologi Kimia dan Industri. 1: 487-494. Suminto dan Hirayama K. 1996. Effects of Bacteria on the Growth of a Marine

Diatom Chaetoceros gracilis. Fisheries science. 62: 40-43.

Wagenen JV, Miller TW, Hobbs S, Hook P, Crowe B, Huesemann M. 2012. Effects of Light and Temperature on Fatty Acid Production in Nannochloropsis salina. Energies. 5:731-740.

Walkley A and Black IA. 1934. An Examination of Degtjareff Method for Determining Soil Organic Matter and a Proposed Modification of the Chromic Acid Titration Method. Soil Science. 37:29-37.

Wang ZT, Ullrich N, Joo S, Waffenschmidt S, Goodenough U. 2009. Algal lipid boddies: stress induction, purification, and biochemical characterization in wild-type and starchless Chlamydomonas reindardtii. Eukaryote cell. 8: 1856 – 1868. Winarno FG. 2004. Kimia Pangan dan Gizi. Jakarta (ID): Gramedia Pustaka Utama.

20

21 Lampiran 1 Perhitungan kadar Karbon

Nilai Karbon dihitung menggunakan persamaan di bawah ini. = × Keterangan: X = Kadar C (mg L-1) = Absorbansi sample = Absorbansi blanko

= Absorbansi larutan standar

Lampiran 2 Perhitungan kadar Fosfor

Nilai Fosfor dapat diketahui menggunakan persamaan di bawah ini.

� = − × �

Keterangan:

�= Kandungan fosfor (mg L-1) = Absorbansi sample

= Absorbansi blanko

= Absorbansi larutan standard k= Konsentrasi standard = 1 mg L-1 Lampiran 3 Perhitungan kadar Nitrogen

Kadar nitrogen (N) dapat diketahui dengan menggunakan persamaan di bawah ini.

� = . 7 × × � ×

Keterangan:

N = Kadar Nitrogen (mg L-1)

*1 = setiap mL NaOH 0.05 N setara dengan 0.0007 g Nitrogen Vs = mL titran 0.05 N NaOH untuk sample

Vb = mL titran 0.05 N NaOH untuk blanko S = bobot sample (g)

22

Lampiran 4 Persamaan Kadar Air

Kadar air dapat dihitung menggunakan persamaan di bawah ini:

= × %

Keterangan: X = Kadar air (%)

= bobot sampel sesudah dikeringkan (g) = bobot sampel sebelum dikeringkan (g) Lampiran 5 Persamaan Kadar Abu

Kadar abu dapat dihitung menggunakan persamaan di bawah ini:

= × %

Keterangan: = Kadar abu (%)

= bobot contoh + cawan sesudah diabukan (g) = bobot cawan kosong (g)

= bobot contoh sebelum diabukan (g) Lampiran 6 Perhitungan Karbohidrat

Kadar karbohidrat dapat dihitung menggunakan persamaan di bawah ini. C = × .9

W × %

Keterangan:

C = kadar karbohidrat %

= glukosa yang terkandung untuk ml tio yang dipergunakan (mg) dari daftar penetapan gula menurut luff-Schrool.

= faktor pengenceran W = bobot cuplikan dalam mg

Lampiran 7 Perhitungan kadar Protein

Kadar protein yang terkandung dapat dihitung menggunakan persamaan di bawah ini.

� = × � × . × � × � × %

Keterangan

P = Kadar Protein (%) = bobot cuplikan (g)

= volume NaOH 0.01 N yang dipergunakan penitaran contoh (mL). = volume NaOH yang dipergunakan penitaran blanko (mL).

23 � = faktor pengenceran

� = faktor konversi protein secara umum (6.25) Lampiran 8 Perhitungan kadar lemak

Persentase lemak yang dihasilkan dapat dihitung menggunakan persamaan di bawah ini.

� = × %

Keterangan

L = Kadar lemak (%)

= bobot labu lemak sesudah ekstraksi (g) = bobot lemak sebelum ekstraksi (g) = bobot contoh (g)

24

Lampiran 9 Dokumentasi

Persiapan bibit mikroalga Kultivasi kontrol

Kultivasi perlakuan P1 Kultivasi perlakuan P2

Sampel mikroalga yang akan dianalisis Pasta mikroalga

25 Lampiran 10 Perhitungan Analysis of Variance

1. Pengaruh Perbedaan Perlakuan terhadap Kepadatan Sel

Hasil analysis of variance (ANOVA) kepadatan sel setiap perlakuan Sumber

Keragaman Jumlah Kuadrat

Derajat

Bebas Kuadrat Tengah F Hitung Nilai-P Perlakuan 270045350877193.030 2 135022675438596.520 11,827 <.0001

Galat 1917906491228069.000 168 11416110066833.748 Total 2187951842105262.000 170

Hasil Uji Duncan Perlakuan

N

Subset for alpha = 0.05

1 2

Duncan Kontrol 57 5303508.7719

P2 57 5471052.6316

P1 57 8049122.8070

2. Pengaruh Perbedaan Perlakuan terhadap Biomassa

Hasil analysis of variance (ANOVA) biomassa setiap perlakuan Sumber

Keragaman Jumlah Kuadrat

Derajat

Bebas Kuadrat Tengah F Hitung Nilai-P Perlakuan 3.407 2 1.703 30.003 <.0001

Galat 9.538 168 0.057 Total 12.944 170

Hasil Uji Duncan Perlakuan

N

Subset for alpha = 0.05

1 2

Duncan P2 57 0.6427

Kontrol 57 0.6534

P1 57 0.9473

Lampiran 11 Perhitungan Analysis of Variance kadar air

Hasil analysis of variance (ANOVA) kadar air setiap perlakuan Sumber

Keragaman Jumlah Kuadrat

Derajat

Bebas Kuadrat Tengah F Hitung Nilai-P Perlakuan 673,835 2 336,918 72,188 <.0001

Galat 28,003 6 4,667 Total 12.944 170

Hasil Uji Duncan Perlakuan

N

Subset for alpha = 0.05 1 2 3

Duncan P2 3 15.0257

P1 3 21.4320

Kontrol 3 35.7256 Lampiran 12 Perhitungan Analysis of Variance kadar abu

26

Hasil analysis of variance (ANOVA) kadar abu setiap perlakuan Sumber

Keragaman Jumlah Kuadrat

Derajat

Bebas Kuadrat Tengah F Hitung Nilai-P Perlakuan 50.919 2 25.460 0.223 0.806

Galat 685.090 6 114.182 Total 736.009 8

Lampiran 13 Perhitungan Analysis of Variance kadar karbohidrat

Hasil analysis of variance (ANOVA) karbohidrat setiap perlakuan Sumber

Keragaman Jumlah Kuadrat

Derajat

Bebas Kuadrat Tengah F Hitung Nilai-P Perlakuan 96.039 2 48.019 15.200 0.004

Galat 18.955 6 3.159 Total 114.994 8

Hasil Uji Duncan Perlakuan

N

Subset for alpha = 0.05

1 2

Duncan Kontrol 3 1.0598

P1 3 4.2394

P2 3 9.0086

Lampiran 14 Perhitungan Analysis of Variance kadar lemak

Hasil analysis of variance (ANOVA) kadar lemak setiap perlakuan Sumber

Keragaman Jumlah Kuadrat

Derajat

Bebas Kuadrat Tengah F Hitung Nilai-P Perlakuan 171.902 2 85.951 5.831 0.039

Galat 88.441 6 14.740 Total 260.343 8

Hasil Uji Duncan Perlakuan

N

Subset for alpha = 0.05

1 2

Duncan Kontrol 3 6.3941

P2 3 7.5995

P1 3 16.2088

Lampiran 15 Perhitungan Analysis of Variance kadar protein

Hasil analysis of variance (ANOVA) kadar protein setiap perlakuan Sumber

Keragaman Jumlah Kuadrat

Derajat

Bebas Kuadrat Tengah F Hitung Nilai-P Perlakuan 74.882 2 37.441 4.302 0.069

Galat 52.213 6 8.702 Total 127.095 8

27

RIWAYAT HIDUP

Penulis dilahirkan di Jakarta pada tanggal 15 November 1993 dari ayah Drs. Muchamad Nur, M.pd dan ibu Tri Andayani. Penulis adalah putri kedua dari tiga bersaudara. Tahun 2011 penulis lulus dari SMA Negeri 13 Jakarta dan pada tahun yang sama penulis lulus seleksi masuk Institut Pertanian Bogor (IPB) melalui jalur SNMPTN tulis dan diterima di Departemen Ilmu dan Teknologi Kelautan, Fakultas Perikanan dan Ilmu Kelautan.

Selama mengikuti perkuliahan, penulis menjadi asisten praktikum Biologi Laut pada tahun ajaran 2013/2014 dan 2014/2015 serta Biologi Tumbuhan Laut pada tahun 2015/2016. Penulis aktif dalam organisasi Himpunan Mahasiswa Ilmu dan Teknologi Kelautan (HIMITEKA-IPB) sebagai sekretaris II pada periode 2012 – 2013, dan sekretaris umum pada periode 2013 – 2014. Bulan Juni-Juli 2014 penulis melaksanakan Praktik Kerja Lapang di PPN Pondokdadap dengan judul Kegiatan Usaha Perikanan Tangkap serta Implikasinya terhadap Kesejahteraan Nelayan di Pondokdadap, Kabupaten Malang, Jawa Timur.

Penulis juga pernah mengikuti Program Kreativitas Mahasiswa Artikel Ilmiah (PKM-AI) yang didanai oleh DIKTI tahun 2013 dengan judul Distribusi dan Penutupan Mangrove Pulau Tengah, Kepulauan Seribu, Jakarta dan Program Kreativitas Mahasiswa Penelitian (PKM-P) yang didanai oleh DIKTI pada tahun 2013 dengan judul Pengaruh Pola Pemberian Pakan terhadap Kandungan Protein dan Tingkat Stres Bulu Babi (Diadema setosum) sebagai Upaya Optimalisasi Hasil Budidaya. Penulis memperoleh beasiswa BBM pada tahun 2012 dan 2014.

Dalam rangka penyelesaian studi di Fakultas Perikanan dan Ilmu Kelautan, penulis melaksanakan penelitian dengan judul “Potensi Pemanfaatan Limbah Palm Oil Mill Effluent (POME) sebagai Media Kultivasi Mikroalga Nannochloropsis sp.

Dokumen terkait