PENGGUNAAN PROBIOTIK DALAM PENINGKATAN PERFORMA IKAN DAN PENURUNAN KADAR AMMONIA DAN NITRIT PADA BUDIDAYA TAMBAK KERAPU MACAN (Epinephelus fuscoguttatus)
T E S I S
Untuk memperoleh Gelar Magister Sains
Dalam Program Studi Pengelolaan Sumberdaya Alam dan Lingkungan Pada Sekolah Pascasarjana Universitas Sumatera Utara
Oleh
HELENTINA MARIANCE MANULLANG 127004011 / PSL
SEKOLAH PASCA SARJANA UNIVERSITAS SUMATERA UTARA
KATA PENGANTAR
Puji dan syukur penulis haturkan kehadirat Tuhan Yang Maha Esa atas segala berkat dan karuniaNya sehingga penyusunan laporan penelitian ini telah dapat diselesaikan sebagai salah satu syarat untuk mendapatkan gelar Magister Sains dalam program studi Pengelolaan Sumberdaya Alam dan Lingkungan pada Sekolah Pascasarjana Universitas Sumatera Utara.
Dalam kesempatan ini penulis mengucapkan banyak terima kasih kepada Bapak Prof. Dr. Dwi Suryanto, M.Sc dan Ibu Dr. Hesti Wahyuningsih, S.Si, M.Si sebagai Komisi Pembimbing, Bapak Prof. Dr. Erman Munir, M.Sc dan Bapak Drs. Chairuddin, M.Sc sebagai Komisi Pembanding (Penguji) yang telah banyak memberikan bimbingan, bantuan dan saran dalam penyusunan laporan penelitian ini. Ucapan terima kasih dan penghargaan yang tinggi disampaikan kepada Ibu Prof. Dr. Retno Widiastuti, M.Si selaku Ketua Program Studi PSL. Terima kasih penulis ucapkan pula kepada Direktorat Jenderal Pendidikan Tinggi Departemen Pendidikan dan Kebudayaan yang telah membiayai penulis selama pendidikan, serta Ketua Yayasan Universitas Dharmawangsa yang telah membantu membiayai penulis selama pendidikan. Juga ucapan terima kasih yang tak terhingga kepada Bapak Effendi yang telah memberikan tempat dan kesempatan kepada penulis dalam melaksanakan penelitian, begitu pula Sahabat PSL 2012 yang telah senasib sepenanggungan, serta Rekan, Sahabat, Handai tolan yang tidak dapat disebut satu persatu tetapi telah memberikan banyak kontribusi. Terima kasih penulis ucapkan pula kepada Bapak Jan Buhar Hutabarat, S.Pi yang telah banyak memberikan bimbingan, bantuan dan saran dalam penyusunan laporan penelitian ini. Kepada Orangtua dan keluarga tercinta disampaikan terima kasih yang setinggi-tingginya atas dukungan dari segi material dan moril yang selalu diberikan dengan tulus kepada penulis.
Penulis telah berupaya semaksimal mungkin dalam menyelesaikan laporan hasil penelitian ini, namun tidak tertutup kemungkinan adanya kekurangan dan kesalahan. Oleh karena itu penulis mengharapkan kritik dan saran yang bersifat membangun demi kesempurnaan laporan hasil penelitian ini nantinya. Akhir kata penulis mengucapkan terima kasih.
Judul Tesis : PENGGUNAAN PROBIOTIK DALAM PENINGKATAN PERFORMA IKAN DAN PENURUNAN KADAR AMMONIA DAN NITRIT PADA BUDIDAYA TAMBAK KERAPU MACAN (Epinephelus fuscoguttatus)
Nama : HELENTINA MARIANCE MANULLANG
Nomor Pokok : 127004011
Program Studi : Pengelolaan Sumberdaya Alam dan Lingkungan
Menyetujui Komisi Pembimbing :
Prof. Dr. Dwi Suryanto, M.Sc Pembimbing I
Dr. Hesti Wahyuningsih, S.Si, M.Si Pembimbing II
Ketua Program Studi,
(Prof. Dr. Retno Widiastuti, M.Si)
Mengetahui :
Direktur,
Tanggal lulus : Senin 25 Agustus 2014
Telah diuji pada
Tanggal : Senin 25 Agustus 2014
PANITIA PENGUJI TESIS
Ketua : Prof. Dr. Dwi Suryanto, M.Sc
PENGGUNAAN PROBIOTIK DALAM PENINGKATAN PERFORMA IKAN DAN PENURUNAN KADAR AMMONIA DAN NITRIT PADA BUDIDAYA TAMBAK KERAPU MACAN (Epinephelus fuscoguttatus)
ABSTRAK
Kondisi kualitas air sangat penting bagi pemeliharaan gelondongan ikan kerapu macan (Epinephelus fuscoguttatus) karena berpengaruh pada kelulusan hidup. Tujuan penelitian ini adalah untuk mengetahui dosis probiotik terbaik dalam menurunkan kadar ammonia dan nitrit serta mampu meningkatkan kelulusan hidup, pertambahan panjang-berat mutlak ikan kerapu macan. Dua belas unit tambak masing-masing ukuran luasnya 5.000 m2 dipilih secara acak untuk wadah uji perbedaan dosis probiotik, yaitu 1 mg/L, 2 mg/L, 3 mg/L dan kontrol yang diberikan seminggu sekali ke dalam air tambak selama penelitian. Tambak tersebut ditebari gelondongan ikan kerapu macan ukuran 3-4 inci dengan padat tebar 8.000 ekor/tambak. Analisis ammonia dan nitrit air tambak diukur seminggu sekali. Pengukuran jumlah bakteri dilakukan dengan metode Total Plate Count sebelum pemberian probiotik dan sesudah pemberian probiotik. Pengukuran suhu, derajat keasaman (pH), salinitas serta oksigen terlarut air tambak dilakukan setiap hari. Data yang diperoleh dianalisis dengan analisis variansi pola rancangan acak lengkap non faktorial dan dilanjutkan uji beda nyata terkecil apabila terdapat perbedaan yang berarti diantara perlakuan yang diuji. Hasil analisis variansi menunjukkan bahwa pemberian probiotik dengan dosis berbeda berpengaruh sangat nyata (P < 0,01) dalam menurunkan kadar ammonia dan nitrit serta mampu meningkatkan kelulusan hidup gelondongan ikan kerapu macan. Berdasarkan uji BNT, dosis probiotik 3 mg/L merupakan perlakuan terbaik dalam menurunkan kadar ammonia dan nitrit yaitu 0,32 mg/L dan 0,22 mg/L, sehingga ikan dapat hidup 81,5 %, pertambahan panjang-berat mutlak ikan yaitu 10 cm dan 110 g.
THE USE OF PROBIOTIC IN INCREASING OF FISH PERFORMANCES AND REDUCING OF AMMONIA AND NITRITE IN BRACKISHWATER
CULTURE OF TIGER GROUPER(Epinephelus fuscoguttatus)
ABSTRACT
The water qualities is very important for nursery of tiger grouper fries (Epinephelus fuscoguttatus) because its affect on the fries survival rate. Probiotic is known as a natural product that could be used to improve the water qualities. The objectives of the research are to analyze the effect of probiotic on performances of tiger grouper fries, ammonia and nitrite concentration in water, and to determine optimal dose of probiotic to gain the highly survival rate of the fish. The research was carried out in twelve units of brachkishwater ponds by using completely randomized experiment method with four treatments of probiotics (0, 1, 2, 3 mg/L) and three replications. The initial length of fries was 3 to 4 inch with fries density of 8.000 fishes/pond. The measurement of water quality parameters (temperature, pH, DO, salinity) was done every day, while the ammonia and nitrite concentration measured one time a week, and total amount of bacteria before and after treatment measured one time using Total Plate Count method. Based on the variance analysis showed that probiotic doses in ponds water showed to have higly significant effect (P<0.01) on increasing fish performances i.e. length by 10 cm and weight by 110 g, survival rate, and reducing of ammonia and nitrite concentration in water. Least Significant Difference Test showed 3 mg/L probiotics gave relatively more reducing ammonia and nitrite was 0,32 mg/L and 0,22 mg/L, survival rate by 81,5 %,.
DAFTAR RIWAYAT HIDUP
Helentina Mariance Manullang dilahirkan pada tanggal 11 Maret 1982 di Medan, Sumatera Utara. Merupakan anak ke 1 dari 4 bersaudara dari pasangan yang berbahagia Bapak P.M. Manullang dan Ibu N. br Sitorus.
Penulis mengikuti pendidikan formal di TK Betania Medan pada tahun 1987-1988. Penulis melanjutkan pendidikan di SD Betania Medan pada tahun 1988-1994. Kemudian penulis melanjutkan pendidikan di SLTP Negeri 13 Medan pada tahun 1994-1997. Penulis melanjutkan pendidikan di SMK Negeri 3 Medan, Jurusan Kimia dengan Program studi Kimia Analis pada tahun 1997-2001. Penulis melanjutkan pendidikan S-1 Perikanan di Universitas Dharmawangsa Medan pada tahun 2002-2006. Penulis melanjutkan pendidikan Akta Mengajar IV di Universitas Muslim Nusantara Al-Washliyah Medan pada tahun 2008-2009. Selanjutnya penulis melanjutkan pendidikan S-2 Pengelolaan Sumberdaya Alam dan Lingkungan di Sekolah Pascasarjana Universitas Sumatera Utara pada tahun 2012-2014.
DAFTAR ISI
Halaman
KATA PENGANTAR ... i
DAFTAR ISI ... ii
DAFTAR TABEL...iii
DAFTAR GAMBAR ... iv
DAFTAR LAMPIRAN ... v
I. PENDAHULUAN ... 1
1.1 Latar Belakang ... 1
1.2 Perumusan Masalah ... 5
1.3 Tujuan... ... 5
1.4 Hipotesis ... 5
1.5 Manfaat.. ... 6
II. TINJAUAN PUSTAKA ... 7
2.1 Probiotik ... 7
2.2 Ikan Kerapu Macan (Epinephelus fuscoguttatus) ... 9
2.3 Kualitas Air untuk Budidaya Ikan ... 11
III. METODOLOGI ... 13
3.1 Waktu dan Tempat ... 13
3.2 Bahan, Alat dan Wadah ... 13
3.3 Metode Penelitian ... 13
3.3.1 Rancangan Percobaan ... 14
3.3.2 Prosedur Penelitian ... 15
3.3.3 Pengumpulan Data ... 20
3.3.4 Analisis Data ... 21
IV. HASIL DAN PEMBAHASAN ... 24
4.1 Kualitas Air Tambak ... 24
4.1.1 Suhu ... 24
4.1.2 Derajat Keasaman (pH) ... 25
4.1.3 Salinitas ... 26
4.1.4 Oksigen Terlarut (DO)... 27
4.1.5 Ammonia ... 28
4.1.6 Nitrit... 31
4.2 Jumlah Bakteri Secara Umum Dengan Metode Total Plate Count ... 33
4.3 Kelulusan Hidup, Pertambahan Panjang-Berat Mutlak...34
V. KESIMPULAN DAN SARAN ... 40
DAFTAR TABEL
No. Judul Halaman
3.1.Alat yang digunakan dalam penelitian...14 4.1. Kisaran beberapa parameter kualitas air pada 3 perlakuan pemberian
dosis probiotik berbeda di tambak pemeliharaan gelondongan ikan
DAFTAR GAMBAR
No. Judul Halaman
2.1.Kerapu Macan (Epinephelus fuscoguttatus) ... 11 4.1.Jumlah bakteri pada air tambak selama penelitian ... 33 4.2.Kelulusan hidup gelondongan ikan kerapu macan selama penelitian ... 35 4.3.Pertambahan panjang mutlak gelondongan ikan kerapu macan selama
penelitian ... 36 4.4.Pertambahan berat mutlak gelondongan ikan kerapu macan selama
penelitian
... 38
DAFTAR LAMPIRAN
No. Judul Halaman
1. Peta lokasi penelitian ... 46
2. Alat yang digunakan dalam penelitian ... 47
3. Rancangan petak penelitian ... 48
4. Cara perhitungan dosis probiotik………49
5. Rata-rata pengukuran suhu air tambak selama penelitian (oC) ... 50
6. Rata-rata pengukuran derajat keasaman (pH) air tambak selama penelitian ... 51
7. Rata-rata pengukuran salinitas air tambak selama penelitian (‰) ... 52
8. Rata-rata pengukuran oksigen terlarut (DO) air tambak selama penelitian (mg/L) ... 53
9. Rata-rata kadar ammonia air tambak selama penelitian (mg/L) ... 54
10.Rata-rata kadar nitrit air tambak selama penelitian (mg/L) ... 62
11.Data hasil pengamatan Total Plate Count (TPC) air tambak selama penelitian (sel/ml) ... 70
12.Data hasil pengamatan kelulusan hidup (survival rate) gelondongan ikan kerapu macan selama penelitian ... 71
13.Data hasil pengamatan pertambahan panjang mutlak gelondongan ikan kerapu macan selama penelitian ... 72
14.Data hasil pengamatan pertambahan berat mutlak gelondongan ikan kerapu macan selama penelitian... 73
PENGGUNAAN PROBIOTIK DALAM PENINGKATAN PERFORMA IKAN DAN PENURUNAN KADAR AMMONIA DAN NITRIT PADA BUDIDAYA TAMBAK KERAPU MACAN (Epinephelus fuscoguttatus)
ABSTRAK
Kondisi kualitas air sangat penting bagi pemeliharaan gelondongan ikan kerapu macan (Epinephelus fuscoguttatus) karena berpengaruh pada kelulusan hidup. Tujuan penelitian ini adalah untuk mengetahui dosis probiotik terbaik dalam menurunkan kadar ammonia dan nitrit serta mampu meningkatkan kelulusan hidup, pertambahan panjang-berat mutlak ikan kerapu macan. Dua belas unit tambak masing-masing ukuran luasnya 5.000 m2 dipilih secara acak untuk wadah uji perbedaan dosis probiotik, yaitu 1 mg/L, 2 mg/L, 3 mg/L dan kontrol yang diberikan seminggu sekali ke dalam air tambak selama penelitian. Tambak tersebut ditebari gelondongan ikan kerapu macan ukuran 3-4 inci dengan padat tebar 8.000 ekor/tambak. Analisis ammonia dan nitrit air tambak diukur seminggu sekali. Pengukuran jumlah bakteri dilakukan dengan metode Total Plate Count sebelum pemberian probiotik dan sesudah pemberian probiotik. Pengukuran suhu, derajat keasaman (pH), salinitas serta oksigen terlarut air tambak dilakukan setiap hari. Data yang diperoleh dianalisis dengan analisis variansi pola rancangan acak lengkap non faktorial dan dilanjutkan uji beda nyata terkecil apabila terdapat perbedaan yang berarti diantara perlakuan yang diuji. Hasil analisis variansi menunjukkan bahwa pemberian probiotik dengan dosis berbeda berpengaruh sangat nyata (P < 0,01) dalam menurunkan kadar ammonia dan nitrit serta mampu meningkatkan kelulusan hidup gelondongan ikan kerapu macan. Berdasarkan uji BNT, dosis probiotik 3 mg/L merupakan perlakuan terbaik dalam menurunkan kadar ammonia dan nitrit yaitu 0,32 mg/L dan 0,22 mg/L, sehingga ikan dapat hidup 81,5 %, pertambahan panjang-berat mutlak ikan yaitu 10 cm dan 110 g.
THE USE OF PROBIOTIC IN INCREASING OF FISH PERFORMANCES AND REDUCING OF AMMONIA AND NITRITE IN BRACKISHWATER
CULTURE OF TIGER GROUPER(Epinephelus fuscoguttatus)
ABSTRACT
The water qualities is very important for nursery of tiger grouper fries (Epinephelus fuscoguttatus) because its affect on the fries survival rate. Probiotic is known as a natural product that could be used to improve the water qualities. The objectives of the research are to analyze the effect of probiotic on performances of tiger grouper fries, ammonia and nitrite concentration in water, and to determine optimal dose of probiotic to gain the highly survival rate of the fish. The research was carried out in twelve units of brachkishwater ponds by using completely randomized experiment method with four treatments of probiotics (0, 1, 2, 3 mg/L) and three replications. The initial length of fries was 3 to 4 inch with fries density of 8.000 fishes/pond. The measurement of water quality parameters (temperature, pH, DO, salinity) was done every day, while the ammonia and nitrite concentration measured one time a week, and total amount of bacteria before and after treatment measured one time using Total Plate Count method. Based on the variance analysis showed that probiotic doses in ponds water showed to have higly significant effect (P<0.01) on increasing fish performances i.e. length by 10 cm and weight by 110 g, survival rate, and reducing of ammonia and nitrite concentration in water. Least Significant Difference Test showed 3 mg/L probiotics gave relatively more reducing ammonia and nitrite was 0,32 mg/L and 0,22 mg/L, survival rate by 81,5 %,.
BAB I PENDAHULUAN
1.1. Latar Belakang
Ikan kerapu macan (Epinephelus fuscoguttatus) merupakan salah satu jenis ikan laut bernilai ekonomis penting yang terdapat di perairan Indonesia. Permintaan pasar ikan kerapu cenderung terus meningkat dari tahun ke tahun, baik untuk pasar dalam negeri maupun untuk ekspor. Berdasarkan sumber data Kementerian Kelautan dan Perikanan (2010), pada tahun 2009 nilai ekspor ikan kerapu mencapai US $ 50,7 juta dan mengalami peningkatan menjadi US $ 100 juta pada akhir tahun 2010. Tingginya nilai jual dan permintaan akan kerapu hidup dari berbagai negara pengimpor kerapu seperti Singapura, Jepang, Hongkong, Taiwan, Malaysia dan Amerika telah mendorong terjadinya peningkatan produksi diberbagai negara produsen kerapu khususnya di Indonesia.
Sesuai dengan Keputusan Menteri Kelautan dan Perikanan No.Kep.02/MEN/2007 tentang Cara Budidaya Ikan Yang Baik, serta Peraturan Menteri Kelautan dan Perikanan No.Per.01/MEN/2007 tentang Pengendalian Sistem Jaminan Mutu dan Keamanan Hasil Perikanan melarang penggunaan antibiotik pada setiap usaha budidaya perikanan. Budidaya ikan yang menggunakan antibiotik dapat membahayakan konsumen yaitu berupa gangguan kesehatan baik akut maupun kronis. Pelarangan penggunaan antibiotik diatur dalam Surat Edaran Dirjen Perikanan Budidaya No: 575/DPB/PB.150.D1/II/2007 yang isinya melarang para pengusaha pembudidaya di Indonesia menggunakan antibiotik apapun jenisnya dalam proses pembenihan maupun pembesaran ikan (Taukhid, 2006).
dekomposisi nitrogen organik, penguraian nitrogen menjadi ammonia dan nitrit. Ammonia dan nitrit yang terbentuk dalam kadar rendah pun akan menimbulkan gangguan pada organisme akuatik, bahkan mematikan. Dalam lingkungan tambak ammonia dan nitrit bersifat toksis. Ammonia meningkat seiring dengan kenaikan suhu, jika kadarnya tinggi dapat menyebabkan kematian pada ikan. Kadar ammonia meningkat sejalan dengan kenaikan pH (pH>8), setiap kenaikan satu unit pH, kadarnya meningkat 10 kali. Jika kadar ammonia > 0,6 mg/L maka hanya dalam beberapa hari sudah dapat mematikan ikan. Sedangkan kadar nitrit yang aman dan tidak berbahaya bagi ikan adalah < 0,1 mg/L (Suprakto dan Fahlivi, 2007).
imun pada inang dan (5) memperbaiki kualitas air. Manfaat yang diharapkan dari aplikasi probiotik ini, yaitu: (1) meningkatkan populasi bakteri non patogenik; (2) sebagai dekomposer bahan-bahan organik menjadi mineral dan mengubah senyawa beracun menjadi tidak beracun, seperti senyawa ammonia dan nitrit yang beracun menjadi senyawa nitrogen bebas melalui proses nitrifikasi. Aplikasi probiotik yang tepat dapat membantu mengurangi kandungan bahan organik di tambak, mempertahankan tersedianya nutrisi hasil penguraian bahan organik dan kandungan senyawa beracun bagi ikan menurun. Dosis probiotik yang direkomendasikan yaitu 1-3 mg/L/minggu. Bakteri probiotik memproduksi enzim proteolitik dan mempunyai kemampuan meningkatkan jumlah senyawa yang bersifat protein yang dicerna sehingga menurunkan jumlah limbah yang mengandung nitrogen yang berasal dari proses pencernaan. Hal ini menguntungkan karena akan menekan jumlah ammonia yang berasal dari proses mineralisasi nitrogen organik.
1.2. Perumusan Masalah
Air sebagai media hidup ikan harus memenuhi persyaratan baik kualitas maupun kuantitasnya. Keberhasilan budidaya ikan kerapu di antaranya ditentukan oleh faktor kualitas air. Kualitas air terutama kadar total ammonia dan nitrit yang melebihi ambang batas merupakan salah satu faktor penyebab penurunan produksi ikan kerapu. Salah satu upaya yang dapat dilakukan untuk pengendalian kualitas air tambak pada budidaya ikan kerapu melalui aplikasi probiotik, sehingga pada penelitian ini akan dapat terlihat dan terjawab untuk pertanyaan berikut:
a. Apakah ada pengaruh penggunaan probiotik terhadap pengurangan kadar ammonia dan nitrit pada kualitas air tambak ?
b. Apakah dosis probiotik terbaik dalam menurunkan kadar ammonia dan nitrit mampu meningkatkan kelulusan hidup (survival rate) serta pertambahan panjang-berat mutlak ikan kerapu macan ?
1.3. Tujuan
Adapun tujuan penelitian ini adalah:
a. Untuk mengetahui pengaruh probiotik terhadap kadar ammonia dan nitrit. b. Untuk mengetahui dosis probiotik terbaik dalam menurunkan kadar ammonia
dan nitrit mampu meningkatkan kelulusan hidup (survival rate) serta pertambahan panjang-berat mutlak ikan kerapu macan.
1.4. Hipotesis
Adapun hipotesis dari penelitian ini adalah:
b. Dosis probiotik terbaik dalam menurunkan kadar ammonia dan nitrit mampu meningkatkan kelulusan hidup (survival rate) serta pertambahan panjang-berat mutlak ikan kerapu macan.
1.5. Manfaat
Adapun manfaat dari penelitian ini adalah:
a. Memberikan informasi tentang penggunaan probiotik komersial pada kegiatan budidaya tambak ikan kerapu macan.
BAB II
TINJAUAN PUSTAKA 2.1. Probiotik
Verschuere et al. (2000) mendefenisikan probiotik sebagai penambahan mikroorganisma yang memiliki pengaruh menguntungkan bagi inang melalui modifikasi bentuk asosiasi dengan inang atau komunitas mikroorganisma lingkungan hidupnya, mengoptimalkan penggunaan pakan atau meningkatkan nilai nutrisinya, berkompetisi dengan mikroorganisma yang patogen, memperbaiki respon inang terhadap penyakit dan memperbaiki kualitas air. Mekanisme kerja probiotik dapat dibagi menjadi beberapa cara yaitu: (1) produksi senyawa inhibitor seperti antibiotik, bakteriosin, siderofor, lisosim, protease, hidrogen peroksida atau senyawa organik yang dapat mengubah pH; (2) kompetisi terhadap senyawa kimia atau sumber energi (nutrisi) seperti besi atau nutrien yang diambil dari inang; (3) kompetisi terhadap tempat perlekatan pada tubuh inang; (4) meningkatkan respon imun pada inang dan (5) memperbaiki kualitas air dengan cara mendegradasi ammonia dan nitrit. Manfaat yang diharapkan dari aplikasi probiotik yaitu: (1) meningkatkan populasi bakteri non patogenik dan (2) sebagai dekomposer bahan organik menjadi mineral dan mengubah senyawa beracun menjadi tidak beracun, seperti senyawa ammonia dan nitrit yang beracun menjadi senyawa nitrogen bebas melalui proses nitrifikasi.
mampu mengkonversi bahan organik (sisa pakan) menjadi CO2 yang digunakan dalam metabolisme sel. Jamilah (2011) melaporkan bahwa Bacillus cereus
memiliki isoenzim yang mampu mendegradasi dan mendetoksifikasi sisa pakan yang terdapat di tambak budidaya.
Genus bakteri yang sering digunakan sebagai probiotik adalah Bacillus
(Bacillus subtilis, Bacillus cereus, Bacillus licheniformis) (Rengpipat et al., 1998; Gullian et al., 2004; Ghosh et al., 2004), Lactobacillus (Lactobacillus achidophilus, Lactobacillus casei, Lactobacillus fermentum, Lactobacillus plantarum, Lactobacillus reuteri) (Gatesoupe, 1994; Nikoskelainen et al., 2001),
Pseudomonas, Nitrobacter, Nitrosomonas (Gram et al., 1999), Vibrio (Vibrio alginolyticus) (Austin et al., 1995), Leuconostoc (Feliatra et al., 2004) dan
Dalam budidaya perikanan, probiotik dapat diaplikasikan dalam beberapa cara yaitu: (1) ditambahkan ke dalam pakan buatan (pellet); (2) ditambahkan ke dalam pakan hidup (Artemia, Rotifera); dan (3) ditebarkan/ditambahkan ke dalam air pemeliharaan ikan. Jadi melalui penambahan bakteri probiotik yang menguntungkan ke tambak atau bak pemeliharaan ikan maka kualitas air dapat ditingkatkan. Penggunaan probiotik komersial yang kandungan bakterinya terdiri dari bakteri Bacillus, Nitrosomonas sp., Pseudomonas, Nitrobacter sp. dan
Aerobacter sp. mampu menguraikan senyawa ammonia dan nitrit. Moriarty
(1999) dan Suprapto (2005) menggunakan probiotik yang mengandung Bacillus,
Lactobacillus, Nitrobacter sp. dan Nitrosomonas sp. untuk tambak udang dengan tujuan untuk memperbaiki kualitas air melalui dekomposisi materi organik, menyeimbangkan komunitas mikroba serta menekan pertumbuhan patogen sehingga menyediakan lingkungan yang lebih baik bagi kehidupan udang.
2.2. Ikan Kerapu Macan (Epinephelus fuscoguttatus)
15-17 buah dan bercabang dengan jumlah 13-15 buah. Sisik yang menutupi seluruh permukaan tubuh terbentuk kecil, mengikat dengan bentuk sikloid. Warna dasar kerapu macan adalah coklat, dengan perut berwarna putih serta bercak hitam dan putih disekujur tubuh yang tidak beraturan (Sudradjat, 2008; Abduh, 2007).
Hermawan (2007) mengemukakan bahwa bentuk badan kerapu macan memanjang dan cenderung gepeng atau agak membulat. Ketebalan tubuh adalah 2,6 – 2,9 dari panjang standar dengan skala garis lateral adalah 53-58. Panjang total tubuh ikan kerapu macan dapat mencapai 80 cm. Mulut berukuran besar dengan posisi serong keatas dan bibir bawah menonjol keatas. Rahang atas dan bawah dilengkapi dengan gigi-gigi geretan berderet dua baris, lancip dan kuat. Gigi-gigi terbesar terletak di bagian depan. Sirip ekor berbentuk bulat (rounded). Lubang hidung besar dan berada di atas mulut berbentuk bulan sabit.
Jenis kerapu macan dapat dilihat pada Gambar 2.1 berikut:
Gambar 2.1. Kerapu Macan (Epinephelus fuscoguttatus)
2.3. Kualitas Air untuk Budidaya Ikan
Umumnya budidaya kerapu di Indonesia menggunakan karamba jaring apung yang dilakukan di laut, tetapi pada saat ini juga masih terdapat budidaya secara tradisional di tambak. Menurut Suprakto dan Fahlivi (2007) bahwa kualitas air yang cocok untuk pemeliharaan ikan kerapu yaitu suhu berkisar antara 24-31 o
C, salinitas antara 22-32 ‰, pH antara 7-8, kandungan oksigen terlarut diatas 3 mg/L, nitrit yang aman dan tidak berbahaya adalah < 0,1 mg/L dan ammonia < 0,6 mg/L.
dalam kolam dengan kepadatan tinggi dimana ikan diberi makan makanan tambahan, kadar ammonia dapat meningkat pada tingkat yang lebih tinggi (Boyd, 1990).
Ammonia diproduksi dari penguraian protein untuk memperoleh energi dan dikeluarkan melalui insang sebagai pertukaran dengan sodium sebagai bagian dari sistem regulasi ion. Daya racun ammonia menurun sejalan dengan meningkatnya salinitas air diatas 30 ‰ (Andrews et al., 2003). Boyd (1990) juga mengatakan bahwa di air, ammonia nitrogen mempunyai 2 (dua) bentuk yaitu ammonia tidak terionisasi (NH3) yang menyebabkan toksisitas pada ikan dan ammonia terionisasi (NH4) yang tidak menyebabkan toksisitas bagi ikan.
Nitrit merupakan bentuk peralihan antara ammonia dan nitrat (nitrifikasi), reaksinya berlangsung dengan cepat dan dipengaruhi oleh jumlah konsentrasi ammonia yang dioksidasi sehingga memiliki orde reaksi 2 (K2). Nitrit berbahaya
karena nitrit bergabung dengan ion hidrogen membentuk asam nitrous (HNO2-N) yang berupa asam kuat dan karena tidak bermuatan listrik sehingga dengan bebas dapat berdifusi melintasi membran insang atau melalui transport aktif. Mekanisme efek toksik nitrit adalah ketika asam nitrous berdifusi ke dalam darah melalui insang lalu bereaksi dengan besi II (Fe2+) menghasilkan besi III (Fe3+). Hal ini akan mengurangi kemampuan sel darah merah untuk mengikat oksigen, yang mengakibatkan penyakit darah coklat (methemoglobin) yang dapat mematikan ikan karena kekurangan oksigen (hypoxia) (Boyd, 1990).
BAB III METODOLOGI
3.1. Waktu dan Tempat
Penelitian ini dilaksanakan pada tanggal 31 Januari – 28 Februari 2014 di lahan pertambakan milik Bapak Effendi yang beralamat di Desa Paluh Kurau Kecamatan Hamparan Perak. Pengecekan kadar ammonia (NH3), nitrit (NO2) dan uji TPC (Total Plate Count) dilakukan di Laboratorium Dinas Perikanan dan Kelautan Propinsi Sumatera Utara. Peta lokasi penelitian dapat dilihat pada Lampiran 1.
3.2. Bahan, Alat dan Wadah
Bahan yang digunakan dalam penelitian ini adalah probiotik komersial yang kandungan bakterinya terdiri dari bakteri Bacillus, Nitrobacter sp.,
Pseudomonas sp., Aerobacter sp., dan Nitrosomonas sp. Ikan kerapu macan
ukuran 3-4 inci (± 7,5-10 cm). Reagensia ammonia dan nitrit. Peralatan yang digunakan dalam penelitian disajikan pada Tabel 3.1 dan Lampiran 2.
Wadah yang digunakan dalam penelitian ini adalah tambak yang ukuran luasnya 5.000 m2 .
3.3. Metode Penelitian
Tabel 3.1. Alat yang digunakan dalam penelitian
No Alat Satuan Spesifikasi Kegunaan Keterangan 1 Hand
Refractometer
‰ Merek Atago Hand-Held Refractometer Made in Japan, range salinity 0-100‰
Mengukur salinitas
Insitu
2 pH-meter - Merek Eco Testr pH, ketelitian 0,1 Mengukur derajat keasaman (pH) Insitu
3 DO-meter mg/L Merek YSI 550A, ketelitian 0,01 mg/L
Mengukur oksigen terlarut
Insitu
4 Termometer oC Air raksa (Hg) Mengukur
suhu
Insitu 5 Botol sampel ml Volume 200 ml Wadah
sampel air
Insitu
6 Timbangan g Merek Tanita,
Kapasitas 2000 g
Menimbang berat ikan
Insitu 7 Penggaris cm Merek Joyko, kapasitas
30 cm Mengukur panjang ikan Insitu 8 DR/890 Colorimeter
mg/L Merek HACH Analisis ammonia dan nitrit
Eksitu
3.3.1 Rancangan Percobaan
Jumlah taraf pada faktor perlakuan dosis probiotik adalah sebagai berikut: Taraf perlakuan: - A = Dosis probiotik 1 mg/L
-B = Dosis probiotik 2 mg/L -C = Dosis probiotik 3 mg/L -Kontrol
3.3.2 Prosedur Penelitian
Tahapan dari kegiatan penelitian ini meliputi: persiapan tambak, penebaran ikan, pemberian pakan, pemberian probiotik, monitoring kualitas air (suhu, derajat keasaman (pH), salinitas, oksigen terlarut (DO), ammonia dan nitrit), uji TPC (Total Plate Count) untuk mengetahui jumlah bakteri secara umum dan panen.
a. Persiapan Tambak
b. Penebaran Ikan
Padat tebar yang dilakukan dalam penggelondongan kerapu macan di lokasi penelitian adalah 8.000 ekor/tambak dengan ukuran ikan tebar 3-4 inci (± 7,5-10 cm). Hal ini didasarkan dengan diketahuinya jumlah dan ukuran benih yang telah dikembangkan oleh Bapak Effendi.
c. Pemberian Pakan
Dalam frekuensi pemberian pakan di lokasi penelitian untuk pemeliharaan gelondongan ini dilakukan 2 kali sehari yaitu pada pagi dan sore hari sebanyak 10% dari bobot ikan. Hal ini sesuai dengan yang dikemukakan oleh Sunaryat (2004) yang menyatakan bahwa pakan diberikan 2 kali sehari untuk ukuran penggelondongan. Adapun jenis pakan yang diberikan pada benih yaitu pakan ikan rucah (ikan peperek, ikan mata besar, ikan merah, ikan bijinangka, ikan gendang dan ikan tembang). Hal ini dikarenakan ikan rucah memiliki harga yang relatif murah, namun memiliki gizi yang masih mencukupi untuk benih ikan kerapu macan. Hal ini sesuai dengan yang dikemukakan oleh Tinggal et al. (2003), yang menyatakan bahwa secara umum untuk jenis pakan yang diberikan pada ikan kerapu berupa ikan rucah segar karena memiliki harga yang relatif lebih murah dan mempunyai nilai gizi yang cukup.
pada box yang telah diberi es, agar pakan tersebut tetap segar sampai pada saat sore hari yang akan diberikan pada benih ikan kerapu macan. Sesuai dengan yang dikemukakan oleh Puja et al. (2003), menyatakan bahwa dosis pemberian pakan yang baik untuk kegiatan penggelondongan adalah 7,5-10 % dari berat total benih yang dipelihara.
d. Pemberian Probiotik
e. Monitoring Kualitas Air
Selama pemeliharaan gelondongan kerapu macan berkisar 1 bulan, maka pengukuran kualitas air (suhu, derajat keasaman (pH), salinitas dan oksigen terlarut (DO)) diukur setiap hari. Ammonia dan nitrit diukur seminggu sekali. Sedangkan uji TPC dilakukan sebelum pemberian probiotik dan sesudah pemberian probiotik. Pengukuran faktor fisika dan kimia yaitu:
1. Suhu
Pengukuran suhu dilakukan secara insitu dengan metode pemuaian yaitu dilakukan dengan mencelupkan termometer Hg dipermukaan air tambak selama beberapa menit hingga menunjukkan angka yang konstan.
2. Derajat keasaman (pH)
Derajat keasaman (pH) diukur dengan menggunakan pH meter. Sensor pH meter terlebih dahulu dicelupkan ke dalam larutan buffer serta atur knop kalibrasi pH hingga angka 7,0 , kemudian dibilas dengan aquadest dan kertas tissu yang bersih. Setelah itu, sensor pH meter dicelupkan ke dalam air tambak dan dibiarkan hingga angka yang ditunjukkan oleh layar pH meter menunjukkan konstan. Kemudian catat angka yang ditunjukkan pH meter sebagai nilai pH air tambak.
3. Salinitas
nilai/salinitas dari air yang sedang diukur. Bersihkan permukaan prisma setelah selesai digunakan.
4. Oksigen terlarut
Pengukuran oksigen terlarut dilakukan secara insitu dengan menggunakan DO meter. Sensor DO meter dicelupkan ke dalam air tambak selanjutnya baca angka yang konstan ditunjukkan pada DO meter dan dicatat berapa besar oksigen terlarutnya.
5. Ammonia
Sampel air tambak diambil dengan menggunakan botol sampel, dimana air diambil pada keempat bagian sudut dan bagian tengah tambak. Kemudian sampel air dibawa ke Laboratorium Dinas Perikanan dan Kelautan Propinsi Sumatera Utara untuk dianalisis.
6. Nitrit
Sampel air tambak diambil dengan menggunakan botol sampel, dimana air diambil pada keempat bagian sudut dan bagian tengah tambak. Kemudian sampel air dibawa ke Laboratorium Dinas Perikanan dan Kelautan Propinsi Sumatera Utara untuk dianalisis.
f. Panen
Menghitung gelondongan kerapu macan yang masih hidup selama 1 bulan pemeliharaan dapat dilakukan setelah panen. Kelulusan hidup (survival rate) gelondongan kerapu macan dapat dihitung dengan memakai rumus menurut Darmono (2003) adalah sebagai berikut:
% 100 x No
Nt
SR
dimana : SR = Survival Rate (%) No = Populasi awal (ekor) Nt = Populasi akhir (ekor)
Sedangkan pertumbuhan panjang mutlak dan pertumbuhan berat mutlak gelondongan kerapu macan dapat dihitung dengan memakai rumus menurut Effendi (1979) adalah sebagai berikut:
Lm = Lt - Lo
dimana: Lm = Panjang mutlak ikan (cm)
Lt = Panjang individu rata-rata pada akhir penelitian (cm) Lo = Panjang individu rata-rata pada awal penelitian (cm) Wm = Wt - Wo
dimana: Wm = Berat mutlak ikan (g)
Wt = Berat akhir rata-rata individu (g) Wo = Berat awal rata-rata individu (g) 3.3.3 Pengumpulan Data
Selama penelitian, data yang diamati dan dikumpulkan adalah sebagai berikut :
2. Total Plate Count (TPC)
3. Kelulusan hidup (survival rate) gelondongan kerapu macan
4. Pertambahan panjang mutlak dan berat mutlak gelondongan kerapu macan
3.3.4 Analisis Data a. Validasi Data
Data pengamatan meliputi suhu, derajat keasaman (pH), salinitas dan oksigen terlarut (DO) dianalisis dengan diinterpretasikan, sedangkan data pengamatan ammonia dan nitrit dianalisis dengan analisis variansi (ANAVA).
Untuk mengetahui apakah data pengamatan dapat dianalisis dengan analisis variansi (ANAVA) dan memenuhi syarat-syarat asumsi yang digunakan maka dilakukan uji homogenitas ragam galat dengan menggunakan sebaran chi-kuadrat dengan rumus menurut Hanafiah (2000); Sastrosupadi (2000); Steel dan Torrie (2003) sebagai berikut :
X2 empirik = 2,3026 { ∑ ( ri – 1). Log S2 - ∑ (ri – 1) log Si2 } X2 murni = ( . X2empirik
b. Analisis Variansi
Untuk mengetahui pengaruh perlakuan dosis probiotik yang berbeda dalam menurunkan kadar ammonia dan nitrit, maka dilakukan analisis variansi data hasil pengamatan. Analisis variansi dilakukan berdasarkan rancangan percobaan acak lengkap dengan model linier bersifat additif sebagai berikut :
Y
ij= µ +
τ
i+
ε
ijdimana :
Yij = Data yang disebabkan perlakuan pemberian dosis probiotik taraf ke-i dan ulangan ke-j
µ
= Nilai rata-rata umumε
ij = Nilai error dari perlakuan pemberian dosis probiotik taraf ke-i dan ulangan ke-j [image:36.595.105.517.214.765.2]Sebelum data yang dikumpulkan dianalisis, data tersebut terlebih dahulu dimasukkan ke dalam tabel, kemudian dilakukan pengolahan data kedalam bentuk tabel simpul untuk mempermudah analisis data sebagai berikut :
1. Untuk jumlah kuadrat (JK) - JK T = ∑ij Y2ij
= (YA.1)2 + (YA.2)2 + ... + (Yi.k)2 - JK R =
r t
Yij .
2 ) (
- JK P =
- JK E = JK T – JK R – JK P 2. Untuk derajat bebas (db)
db T = (t.r) db R = 1 db P = (t-1) db E = t (r-1)
3. Untuk Kuadrat Tengah (KT) - KT R = - KT P = - KT E = 4. Untuk Fhitung (Fh)
- Fh Perlakuan =
- Ft 0,05 = { db P( t – 1 ) dan db E t ( r – 1 )} - Ft 0,01 = { db P( t – 1 ) dan db E t ( r – 1 )}
Selanjutnya untuk mengetahui diterima tidaknya hipotesis yang diajukan maka dilakukan uji statistik dengan menggunakan uji F dengan membandingkan nilai Fhitung (Fh) dengan Ftabel 0,05 dan 0,01 sebagai berikut :
Jika Fhitung < Ftabel 0,05 : Berarti perlakuan dosis probiotik tidak berpengaruh nyata (non significant/ns) dalam menurunkan kadar ammonia dan nitrit maka Ho diterima dan Ha ditolak
Jika Fhitung > Ftabel 0,05 : Berarti perlakuan dosis probiotik memberikan pengaruh nyata (significant/*) dalam menurunkan kadar ammonia dan nitrit maka Ho ditolak dan Ha diterima
Jika Fhitung > Ftabel 0,01 : Berarti perlakuan dosis probiotik memberikan pengaruh sangat nyata (highly significant/**) dalam menurunkan kadar ammonia dan nitrit maka Ho ditolak dan Ha diterima
Bila uji F yang dilakukan menunjukkan adanya pengaruh significant, highly significant atau non significant dari perlakuan, maka selanjutnya adalah mengetahui perbedaan pengaruh dari masing-masing perlakuan agar diperoleh perlakuan terbaik diantara keseluruhan perlakuan yang ada. Untuk tujuan tersebut digunakan uji beda rata-rata pengaruh perlakuan dengan Uji Beda Nyata Terkecil (BNT) pada taraf nyata BNT0,05 dan BNT0,01 dengan rumus sebagai berikut : BNTα = tα ( db E )
S
đBAB IV
HASIL DAN PEMBAHASAN
4.1. Kualitas Air Tambak
[image:38.595.114.513.349.487.2]Untuk mengetahui keadaan kualitas air di tambak lokasi penelitian dilakukan pengukuran terhadap beberapa parameter kualitas air seperti disajikan pada Tabel 4.1 berikut.
Tabel 4.1. Kisaran beberapa parameter kualitas air pada 3 perlakuan pemberian dosis probiotik berbeda di tambak pemeliharaan gelondongan ikan kerapu macan
Parameter
Perlakuan A
(1 mg/L)
B (2 mg/L)
C (3 mg/L)
Kontrol (0 mg/L)
Suhu (oC) 29,6-30,0 29,6-30,0 29,0-29,6 30,0-31,0
Derajat keasaman (pH) 7,26-7,30 7,26-7,30 7,20-7,26 7,30-7,40 Salinitas (‰) 24,6-25,0 24,6-25,0 24,0-24,3 25,0-25,3 Oksigen terlarut/DO (mg/L) 5,63-5,66 5,76-5,80 6,03-6,06 5,20-5,33
4.1.1. Suhu
Kordi dan Tancung (2010) berpendapat bahwa suhu sangat berkaitan erat dengan konsentrasi oksigen terlarut dalam air dan konsumsi oksigen biota air. Semakin tinggi suhu, semakin besar konsumsi oksigen biota airnya, padahal kenaikan suhu tersebut mengurangi daya larut oksigen dalam air. Taukhid (2006) mengemukakan bahwa suhu perairan sangat mempengaruhi ekskresi ammonia dari ikan yang dipelihara. Ikan akan mencerna protein dalam pakan dan mengekskresikan ammonia melalui insang dan feses. Ammonia pada lingkungan budidaya juga berasal dari proses dekomposisi bahan organik seperti sisa pakan, penambahan pupuk yang berlebihan dan biota akuatik yang telah mati. Effendi (2000) menyatakan bahwa seiring dengan kenaikan suhu perairan kadar ammonia meningkat pula dan bersifat toksik pada ikan. Hasil pengukuran suhu selama penelitian masih berada dalam kisaran yang layak untuk pemeliharaan ikan kerapu yaitu berkisar antara 24-31 oC (Suprakto dan Fahlivi, 2007).
4.1.2. Derajat Keasaman (pH)
tinggi, keadaan suhu air yang tidak stabil serta tingginya tingkat kekeruhan melebihi ambang batas.
Noga (2000) mengatakan bahwa pH rendah dapat menyebabkan penurunan tingkat produksi lendir, sedangkan pH tinggi dapat menyebabkan ikan stres. Seiring dengan kenaikan pH perairan kadar ammonia meningkat pula yang dapat menyebabkan toksisitas bagi organisme akuatik (Effendi, 2000). Hasil pengukuran pH selama penelitian masih berada dalam kisaran yang layak untuk pemeliharaan ikan kerapu yaitu berkisar antara 7-8 (Suprakto dan Fahlivi, 2007). 4.1.3. Salinitas
pemeliharaan ikan kerapu yaitu berkisar antara 22-32 ‰ (Suprakto dan Fahlivi, 2007).
4.1.4. Oksigen Terlarut (DO)
Oksigen terlarut sangat dibutuhkan ikan untuk proses pernafasan, selain itu juga untuk mengoksidasi bahan organik yang ada di tambak. Hasil pengukuran oksigen terlarut air tambak menunjukkan bahwa oksigen terlarut rata-rata tertinggi terdapat pada perlakuan C yaitu 6,06 mg/L dibandingkan dengan kontrol yaitu 5,33 mg/L (Tabel 4.1 dan Lampiran 8). Rendahnya kadar oksigen terlarut diduga karena meningkatnya suhu dan salinitas. Jeffries dan Mills (1996) berpendapat bahwa kadar oksigen berkurang dengan semakin meningkatnya suhu, salinitas, ketinggian dan berkurangnya tekanan atmosfer. Kadar oksigen terlarut secara harian dan musim bergantung pada percampuran dan pergerakan massa air, aktivitas fotosintesis, respirasi dan limbah yang masuk ke badan air. Kordi dan Tancung (2010) menyatakan bahwa oksigen dalam air tambak dihasilkan melalui proses difusi dari udara yang mengandung 20,95% oksigen. Proses ini terjadi pada permukaan air. Sumber oksigen lainnya adalah fitoplankton, melalui proses fotosintesis fitoplankton dapat menghasilkan oksigen seperti terlihat dari persamaan reaksi berikut:
cahaya
6 CO2 + 6 H2O C6 H12 O6 + 6 O2 klorofil
masuk ke dalam tambak kadar oksigen dapat lebih meningkat karena turbulensi/arus air.
Aleem, Hock dan Varner (1965) menyatakan bahwa perputaran oksigen terlarut dalam mengoksidasi nitrit adalah sebagai penerima elektron. Rees dan Nason (1966) menambahkan bahwa dalam mengoksidasi ammonia menjadi nitrit oleh Nitrosomonas, molekul oksigen menjadi pusat penerima elektron dan tidak dapat berhubungan secara langsung terhadap nutrien. Painter dan Prosser (1986) menyatakan bahwa proses nitrifikasi dapat dipengaruhi oleh berbagai faktor lingkungan yang optimal seperti suhu (20-30 oC) dan batas oksigen terlarut (5-10 mg/L). Hasil pengukuran DO selama penelitian masih berada dalam kisaran yang layak untuk pemeliharaan ikan kerapu yaitu > 3 mg/L (Suprakto dan Fahlivi, 2007).
4.1.5. Ammonia
Ammonia dalam air tambak merupakan hasil perombakan dari senyawa-senyawa nitrogen organik oleh bakteri dari penambahan pupuk yang berlebihan, biota akuatik yang telah mati dan sisa pakan. Di dalam air ammonia terdapat dalam dua bentuk, yaitu ammonia terionisasi (NH4+) yang tidak menyebabkan toksisitas bagi ikan. Ammonia tidak terionisasi (NH3) yang menyebabkan toksisitas pada ikan. Kedua bentuk ammonia tersebut berada dalam air dalam keseimbangan seperti terlihat dari persamaan reaksi berikut:
NH4+ + H2O NH3 + H2O.
darah ikan budidaya meningkat. Dengan meningkatnya kadar ammonia mengakibatkan kebutuhan oksigen semakin meningkat, jika kebutuhan oksigen tidak terpenuhi akan merusak insang ikan yang mengakibatkan kemampuan darah membawa oksigen berkurang (Boyd, 1990).
[image:43.595.110.513.306.435.2]Hasil pengukuran ammonia pada air tambak selama penelitian disajikan pada Tabel 4.2 berikut.
Tabel 4.2. Rata-rata kadar ammonia pada air tambak selama penelitian
Perlakuan A
(1 mg/L)
B (2 mg/L)
C (3 mg/L)
Kontrol (0 mg/L) Kadar ammonia awal (mg/L) 0,79 0,79 0,79 0,78 Kadar ammonia akhir (mg/L) 0,64 0,59 0,47 0,81 Penurunan kadar ammonia (mg/L) 0,15 0,20 0,32**) 0,03 Keterangan: **) Berbeda sangat nyata
menjadi mineral kembali. Proses regenerasi nutrien tersebut dapat berlangsung cepat apabila Bacillus sp. yang ditambahkan ke air tambak frekuensinya lebih sering dan kepadatannya tinggi. Bacillus sp. salah satu contoh bakteri probiotik yang efisien digunakan dalam budidaya perairan karena mampu mengkonversi bahan organik (sisa pakan) menjadi CO2 yang digunakan dalam metabolisme sel. Jamilah (2011) melaporkan bahwa B. cereus memiliki isoenzim yang mampu mendegradasi dan mendetoksifikasi sisa pakan yang terdapat di tambak budidaya. Moriarty (1999) dan Suprapto (2005) menggunakan probiotik yang mengandung
Bacillus, Lactobacillus, Nitrobacter sp. dan Nitrosomonas sp. untuk tambak udang dengan tujuan untuk memperbaiki kualitas air melalui dekomposisi materi organik, menyeimbangkan komunitas mikroba serta menekan pertumbuhan patogen sehingga menyediakan lingkungan yang lebih baik bagi kehidupan udang.
Bacillus mampu merubah senyawa nitrat menjadi nitrogen bebas dan menguraikan
senyawa organik (karbohidrat, lemak dan protein) menjadi senyawa yang sederhana dan larut dalam air. Lactobacillus mampu merubah senyawa nitrat menjadi nitrogen bebas dan menguraikan senyawa organik (karbohidrat, lemak dan protein) menjadi senyawa yang sederhana dan larut di dalam air. Nitrobacter
bahwa konsentrasi probiotik 4 mg/L adalah perlakuan terbaik dalam menurunkan kadar ammonia selama 60 hari pemeliharaan udang vaname, kadar ammonia pada awal penelitian yaitu 2,0013 mg/L kemudian menurun menjadi 0,3027 mg/L. Hasil penelitian yang dilakukan oleh Aquarista et al. (2012) melaporkan bahwa konsentrasi probiotik 5 mg/L adalah perlakuan terbaik dalam menurunkan kadar ammonia selama pembesaran ikan lele dumbo, kadar ammonia pada awal penelitian yaitu 0,22 mg/L kemudian menurun menjadi 0,17 mg/L.
4.1.6. Nitrit
Nitrit dalam air tambak merupakan bentuk peralihan antara ammonia dan nitrat yang mengalami proses nitrifikasi dengan bantuan bakteri Nitrosomonas sp. Dalam proses nitrifikasi diperlukan sumber karbon dan oksigen terlarut yang cukup. Persamaan reaksi sebagai berikut (Effendi, 2000):
2NH3 + 3O2 Nitrosomonas 2NO2- + 2H+ + 2H2O
Nitrit beracun bagi ikan karena nitrit bergabung dengan ion hidrogen membentuk asam nitrous (HNO2-N) yang berupa asam kuat dan karena tidak bermuatan listrik sehingga dengan bebas dapat berdifusi melintasi membran insang atau melalui transport aktif. Mekanisme efek toksik nitrit adalah ketika asam nitrous berdifusi ke dalam darah melalui insang lalu bereaksi dengan besi II (Fe2+) menghasilkan besi III (Fe3+). Hal ini akan mengurangi kemampuan sel darah merah untuk mengikat oksigen, yang mengakibatkan penyakit darah coklat (methemoglobin) yang dapat mematikan ikan karena kekurangan oksigen (hypoxia) (Boyd, 1990).
Tabel 4.3. Rata-rata kadar nitrit pada air tambak selama penelitian
Perlakuan A
(1 mg/L)
B (2 mg/L)
C (3 mg/L)
Kontrol (0 mg/L) Kadar nitrit awal (mg/L) 0,27 0,27 0,27 0,26 Kadar nitrit akhir (mg/L) 0,11 0,08 0,05 0,28
Penurunan kadar nitrit (mg/L) 0,16 0,19 0,22**) 0,02 Keterangan: **) Berbeda sangat nyata
udang vaname. Kadar nitrit pada awal penelitian sebesar 0,7060 mg/L menurun menjadi 0,0769 mg/L.
[image:47.595.127.501.449.656.2]4.2. Jumlah Bakteri Secara Umum Dengan Metode Total Plate Count Hasil pengamatan terhadap jumlah bakteri sebelum penggunaan probiotik komersial menunjukkan bahwa pada perlakuan A dan B masing-masing rata-rata jumlah bakteri 51.666 sel/ml, perlakuan C rata-rata jumlah bakteri 53.333 sel/ml sedangkan kontrol rata-rata jumlah bakteri 50.000 sel/ml. Setelah penggunaan probiotik komersial menunjukkan bahwa pada perlakuan A rata-rata jumlah bakteri 71.666 sel/ml, perlakuan B rata-rata jumlah bakteri 81.666 sel/ml, perlakuan C rata-rata jumlah bakteri 93.333 sel/ml, sedangkan kontrol rata-rata jumlah bakteri 65.000 sel/ml. Untuk lebih jelasnya dapat dilihat pada Lampiran 11 dan Gambar 4.1.
Pada Gambar 4.1 di atas jelas terlihat bahwa setelah penggunaan probiotik maka rata-rata jumlah bakteri yang lebih tinggi adalah perlakuan C yaitu 93.333 sel/ml dibandingkan dengan perlakuan B, A, dan kontrol. Peningkatan populasi bakteri diperlakuan C diduga karena dosis probiotik yang diberikan lebih banyak (3 mg/L), meningkatnya populasi bakteri pada kontrol diduga akibat pengaruh akumulasi bahan organik dalam tambak yang tidak mengalami dekomposisi. Hasil penelitian yang dilakukan oleh Lante dan Haryanti (2006) melaporkan bahwa aplikasi probiotik komersial multibacter yang terdiri dari: Bacillus subtilis,
Nitrobacter winogradsky, Nitrosomonas europeae dan Cellulomonas biazotea
menunjukkan peningkatan populasi bakteri dari 2,8x103 cfu/ml menjadi 109,8x103 cfu/ml, peningkatan populasi bakteri karena akumulasi bahan organik dan juga karena probiotik yang diaplikasikan itu sendiri turut meningkatkan populasi bakteri di dalam air. Sedangkan pada kontrol populasi bakteri meningkat dari 1,7x103 cfu/ml menjadi 54x103 cfu/ml, meningkatnya populasi bakteri pada kontrol akibat pengaruh akumulasi bahan organik dalam tambak yang tidak mengalami dekomposisi.
4.3. Kelulusan Hidup, Pertambahan Panjang-Berat Mutlak
rata-rata kelulusan hidup pada perlakuan B dan A masing-masing 75,6% dan 66,4%. Untuk lebih jelasnya dapat dilihat pada Gambar 4.2.
Gambar 4.2. Kelulusan hidup gelondongan ikan kerapu macan selama penelitian
konsentrasi probiotik 5 mg/L adalah perlakuan terbaik dalam meningkatkan kelulusan hidup ikan lele dumbo yaitu 85 %.
[image:50.595.156.468.363.566.2]Data pertambahan panjang mutlak gelondongan ikan kerapu macan yang diperoleh selama penelitian untuk setiap perlakuan dan ulangan diperlihatkan pada Lampiran 13. Pada perlakuan C rata-rata pertambahan panjang mutlak tertinggi mencapai 10 cm, rata-rata pertambahan panjang mutlak terendah diperoleh pada kontrol yaitu 9,2 cm. Sementara rata-rata pertambahan panjang mutlak pada perlakuan B dan A masing-masing 9,6 cm dan 9,3 cm. Untuk lebih jelasnya dapat dilihat pada Gambar 4.3.
Gambar 4.3. Pertambahan panjang mutlak gelondongan ikan kerapu macan selama penelitian
Hal ini disebabkan karena penggunaan probiotik dapat mengendalikan kualitas air tambak pemeliharaan gelondongan ikan kerapu macan sehingga nafsu makan ikan menjadi lebih baik. Hasil penelitian yang dilakukan oleh Setijaningsih et al. (2011) melaporkan bahwa adanya penambahan panjang pada benih ikan nila yang diberi probiotik dimana panjang awal rata-rata 5,26 cm, panjang akhir rata-rata 8,65 cm kemudian pertambahan panjang mutlak rata-rata 4,0 cm. Pertambahan dapat terjadi karena terdapat kelebihan energi yang berasal dari pakan setelah dikurangi dengan energi hasil metabolisme dan energi yang terkandung dalam feses. Penambahan bakteri probiotik (Bacillus sp.) mampu memperbaiki penyerapan nutrisi oleh saluran pencernaan ikan. Gatesoupe (1999) menyatakan bahwa aktifitas bakteri dalam pencernaan akan berubah dengan cepat ketika ada mikroba yang masuk melalui pakan dan air. Keseimbangan mikroflora di dalam saluran pencernaan akan sangat berpengaruh terhadap peran bakteri sebagai probiotik yang akan menekan bakteri patogen lainnya sehingga saluran pencernaan akan lebih baik dalam mencerna makanan.
Gambar 4.4. Pertambahan berat mutlak gelondongan ikan kerapu macan selama penelitian.
BAB V
KESIMPULAN DAN SARAN
5.1. Kesimpulan
Dari hasil penelitian yang telah dilakukan dapat disimpulkan sebagai berikut: 1. Penambahan dosis probiotik yang digunakan meningkatkan kualitas air
tambak, kelulusan hidup serta pertambahan panjang-berat mutlak ikan kerapu macan.
2. Pemberian probiotik 3 mg/L dapat menurunkan kadar ammonia sebesar 0,32 mg/L dan nitrit sebesar 0,22 mg/L serta mampu meningkatkan kelulusan hidup gelondongan ikan kerapu macan sebesar 81,5%.
5.2.Saran
1. Perlu dilakukan penelitian lebih lanjut mengenai penggunaan probiotik pada pemeliharaan kerapu macan dengan dosis pakan yang berbeda dalam menciptakan kegiatan budidaya perikanan yang ramah lingkungan.
DAFTAR PUSTAKA
Abduh, M., 2007. Pembesaran Kerapu Macan di Karamba Jaring Apung. Balai Budidaya Laut Batam.
Allem, M.I.H., G.E. Hock and J.E. Varner., 1965. Water as The Source of Oxidant and Reductant in Bacterial Chemosythesis. Proceedings of the National Academy Sciences of the United States of America 54:869-873.
Andrews, C., Adrian E., and Neville C., 2003. Manual of Fish Health. A Firefly Publisher. Canada. First Printing.
Aquarista, F., Iskandar and U. Subhan, 2012. Pemberian Probiotik Dengan Carrier Zeolit Pada Pembesaran Ikan Lele Dumbo (Clarias gariepinus). Jurnal Perikanan dan Kelautan 3(4):133-140.
Austin, B., L.F. Stuckey, P.A.W. Robertson, I. Effendi and D.R.W. Griffith, 1995. A Probiotic Strain of Vibrio alginolyticus Effective In Reducing Diseases Caused by Aeromonas salmonicida and Vibrio ordalii. Journal Fish Diseases 18:93-96.
Balcazar, J.L., I. deBlas, I., R. Zarzuela I., Cunningham, D., Vendrell, D., and Muszquiz, J.L., 2006. The Role of Probiotic in Aquaculture. Veterinary Microbiology 114:173-186.
Boyd, C.E., 1989. Water Quality Management and Aeration in Shrimp Farming. American Soybean Association US Wheat Association, USA.
Boyd, C.E., 1990. Water Quality in Pond for Aquaculture. Auburn University. Alabama. 482 p.
Darmono, 2003. Budidaya Udang Penaeus. Kanisius, Jakarta. 104 pp.
Dinas Perikanan dan Kelautan Propinsi Sumatera Utara, 2009. Buku Tahunan Statistik Perikanan Budidaya. Medan.
Effendi, M.I., 1979. Metode Biologi Perikanan. Yayasan Agromedia, Bogor. 122 pp.
Effendi, H., 2000. Telaahan Kualitas Air Bagi Pengelolaan Sumberdaya dan
Lingkungan Perairan. Fakultas Perikanan dan Ilmu Kelautan IPB, Bogor.
Farzanfar, A., 2006. The Use of Probiotic in Shrimp Aquaculture. FEMS
Immunology Medical Microbiology 48:149-158.
Feliatra, I. Efendi and E. Suryadi, 2004. Isolasi dan Identifikasi Bakteri Probiotik dari Ikan Kerapu Macan (Ephinephelus fuscogutattus) dalam Upaya Efisiensi Pakan Ikan. Natur Indonesia 6(2):75-80.
Fuller, R., 1989. Probiotics in Man and Animal. Journal Applied Bacteriology
66(5):365-378.
Gatesoupe, F.J., 1994. Lactic Acid Bacteria Increase The Resistance of Turbot Larvae, Scophthalmus maximus, Against Pathogenic Vibrio. Aquatic Living Resources 7:277-282.
Gatesoupe, F.J., 1999. The Use of Probiotics in Aquaculture. Aquaculture 180: 147-165.
Ghosh, K., S.K. Sen and A.K. Ray, 2004. Growth and Survival of Rohu, Labeo rohita (Hamilton) Spawn Fed Diets Fermented with Intestinal Bacterium, Bacillus circulans. Acta Ichthyologica et Piscatoria 34(2):155-165.
Gram, L., J. Melchiorsen, B. Spanggaard, I. Huber and T. Nielsen, 1999. Inhibition of Vibrio anguillarum by Pseudomonas flourescens Strain AH2- A Possible Probiotic Treatment of Fish. Applied Environment Microbiology 65:969-973.
Gullian, M., Thompson F. and Rodriguez J., 2004. Selection of Probiotic Bacteria and Study of Their Immunostimulatory Effect in Penaeus vannamei.
Aquaculture 23:1-14.
Hanafiah, K.A., 2000. Rancangan Percobaan Teori & Aplikasi. Raja Grafindo Persada, Jakarta. 238 pp.
Hermawan, T., 2007. Biologi Laut. Modul Pelatihan Pembenihan dan Pembesaran Ikan Laut Ekonomis Se-Sumatera. Balai Budidaya Laut Batam.
http://kkp.go.id/index.php/search/c/6/?keyword=nilai+ekspor+ikan+kerapu,
diakses tanggal 5 Januari 2014.
Jamilah, I., 2011. Penapisan Bacillus dan Karakterisasi Protease dan Amilase Ekstraseluler yang Dihasilkan untuk Degradasi Sisa Pakan pada Budidaya Udang. Disertasi. Institut Pertanian Bogor.
Kordi, M.G.H.K., and Tancung, A.B., 2010. Pengelolaan Kualitas Air Dalam Budidaya Perairan. Rineka Cipta, Jakarta. 208 pp.
Lante, S., and Haryanti, 2006. Aplikasi Probiotik Pada Budidaya Induk Udang Windu (Penaeus monodon) Di Tambak. Aquacultura Indonesiana
7(3):145-155.
Moriarty, D.J.W., 1999. Disease Control in Shrimp Aquaculture with Probiotic Bacteria. Proceeding of The 8th International Symposium on Microbial Ecology, Atlantic Canada Society for Microbial Ecology. 7p.
Moriarty, D.J.W., O. Decamp and P. Lavens., 2005. Probiotic in Aquaculture. Aquaculture Asia Pacific Magazine, September/October 2005:14-16. Murdjani, B., S. Subiyakto and P. Sitorus, 2004.Cerita Sukses Pembudidaya Ikan
Kerapu. Prosiding Seminar Teknologi Perikanan Pantai “Perkembangan Terakhir Teknologi Budidaya Pantai untuk Mendukung Pemulihan
Ekonomi Nasional”.
Nikoskelainen, S., S. Salminen, G. Bylund and A. Ouwehand, 2001. Characterization of The Properties of Human and Dairy-Derived Probiotics for Prevention of Infectious Diseases in Fish. Applied
Environment Microbiology 67:2430-2435.
Noga, E.J., 2000. Fish Disease : Diagnosis and Treatment. Iowa State University Press.
Painter, H.A., and J.I. Prosser., 1986. A Review of the Literature Nitrogen Metabolism in Microorganism. Water Resources 4:393-450.
Pratiwi, I., 2010. Tehnik Cerdas Budidaya Ikan Mas. Seri Perikanan Modern. Pustaka Baru Press, Yogyakarta.
Puja, Y., Evalawati and S. Akbar, 2001. Teknik Pembesaran Kerapu Bebek dan
Kerapu Macan di Keramba Jaring Apung. Direktorat Jenderal Perikanan.
Balai Budidaya Laut, Lampung. p. 26-30.
Rees, M.K., and A. Nason., 1966. Cytochrome and Soluble Terminal Oxidase Identified as Cytochrome from Nitrosomonas europeae. Biochemistry
Biophysics Resources Community 21:248-256 p.
Sastrosupadi, A., 2000. Rancangan Percobaan Praktis Bidang Pertanian, Edisi Revisi. Kanisius. Yogyakarta.
Setijaningsih, L., N. Nafiqoh and E. Nugroho, 2011. Pengaruh Pemberian Probiotik Pada Pemeliharaan Benih Ikan Nila (Oreochromis niloticus).
Prosiding Forum Inovasi Teknologi Akuakultur 2011. p. 745-752.
Sisterkarolin. 2008. Data Ekspor Tahunan Komoditi Ikan Hidup melalui Pintu
Pengeluaran Bandara Polonia-Medan. Sistem Informasi Karantina Ikan
On-line. Pusat Karantina Ikan. Departemen Kelautan dan Perikanan. Jakarta
Steel, R.G.D., and J.H. Torrie, 2003. Prinsip dan Prosedur Statistika Suatu
Pendekatan Biometrik. Gramedia Pustaka Utama, Jakarta. 748 pp.
Sudirman and Karim, 2008. Ikan Kerapu (Biologi, Eksploitasi, Manajemen dan Budidaya). Yasif Watampone, Jakarta.
Sudradjat, A., 2008. Budidaya 23 Komoditas Laut Menguntungkan. Penebar Swadaya, Jakarta. 171 pp.
Sunaryat, 2004. Analisa Usaha pada Usaha Perikanan. Balai Budidaya Laut, Lampung.
Suprakto, B., and Fahlivi, M. R. 2007. Studi tentang kesesuaian lokasi budidaya ikan di KJA di perairan Kecamatan Sapeken Kabupaten Sumenep. Pembangunan Kelautan Berbasis IPTEK dalam Rangka Peningkatan Kesejahteraan Masyarakat Pesisir. Prosiding Seminar Kelautan III, Universitas Hang Tuah 24 April 2007,Surabaya : 58 – 65.
Suprapto, H., 2005. Penelitian Pendahuluan Penggunaan Bacillus sp. sebagai Probiotik untuk Mengurangi Jumlah Bakteri Vibrio sp. pada Hepatopankreas dan Air Pemeliharaan Udang Windu (Penaeus monodon).
Jurnal Perikanan 7(1):54-59.
Suwoyo, H.S., and Mangampa, M., 2010. Aplikasi Probiotik Dengan Konsentrasi Berbeda Pada Pemeliharaan Udang Vaname (Litopenaeus vannamei).
Prosiding Forum Inovasi Teknologi Akuakultur 2010. p. 239-247.
Taukhid, 2006. Manajemen Kesehatan Ikan dan Lingkungan. Laboratorium Riset Kesehatan Ikan, Bogor.
Verschuere, L., G. Robaut, P. Sorgeloos and W. Verstraete, 2000. Probiotic Bacteria As Biological Control Agents in Aquaculture. A Reviews.
Lampiran 2. Alat yang digunakan dalam penelitian
Termometer pH meter
Hand Refractometer DO meter
Timbangan Penggaris
Lampiran 3. Rancangan petak penelitian
In Let
1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12
A2 B1 Kontrol C1 Kontrol C2 B3 A1 B2 A3 C3 Kontrol
Out Let
Keterangan :
1-12 = Urutan pengacakan petak penelitian
Lampiran 4. Cara perhitungan dosis probiotik
Diketahui:
Panjang tambak = 100 m Lebar tambak = 50 m Tinggi air = 1 m
Volume air tambak = p x l x t = 5.000 m3 1 m3 = 1.000 liter
5.000 m3 = 5.000 x 1.000 L = 5.000.000 L 1 mg/L (ppm) = 1/1.000.000
Lampiran 5. Rata-rata pengukuran suhu air tambak selama penelitian (oC)
Waktu Pengamatan
(hari)
Perlakuan A
(1 mg/L)
B (2 mg/L)
C
(3 mg/L) Kontrol
0 29,6 29,6 29,3 30
1 30 29,6 29,3 30,3
2 29,6 29,6 29 30
3 30 30 29,6 30 4 29,6 30 29 30,3
5 30 29,6 29,3 30,6
6 30 29,6 29,6 31
7 30 30 29 31 8 29,6 29,6 29 30,3 9 29,6 29,6 29,6 30,3 10 29,6 30 29 30 11 30 29,6 29,3 30,6 12 29,6 30 29,3 30,3 13 30 29,6 29 31 14 30 30 29 31 15 29,6 29,6 29,6 30,6 16 29,6 29,6 29,6 30,3
17 30 29,6 29,3 30
18 30 30 29,3 31 19 29,6 29,6 29 30,6 20 30 30 29 31 21 30 30 29 31 22 29,6 29,6 29,6 30,3
23 30 29,6 29,6 30
24 29,6 30 29,6 30,6 25 29,6 29,6 29 31
26 30 30 29,3 30,6
Lampiran 6. Rata-rata pengukuran derajat keasaman (pH) air tambak selama penelitian
Waktu Pengamatan
(hari)
Perlakuan A
(1 mg/L)
B (2 mg/L)
C
(3 mg/L) Kontrol
0 7,26 7,26 7,23 7,3
1 7,3 7,26 7,23 7,33
2 7,26 7,26 7,2 7,3
3 7,3 7,3 7,26 7,3 4 7,26 7,3 7,2 7,33 5 7,3 7,26 7,23 7,36 6 7,3 7,26 7,26 7,4 7 7,3 7,3 7,2 7,4
8 7,26 7,26 7,2 7,33
9 7,26 7,26 7,26 7,33 10 7,26 7,3 7,2 7,3 11 7,3 7,26 7,23 7,36 12 7,26 7,3 7,23 7,33 13 7,3 7,26 7,2 7,4 14 7,3 7,3 7,2 7,4 15 7,26 7,26 7,26 7,36 16 7,26 7,26 7,26 7,33 17 7,3 7,26 7,23 7,3 18 7,3 7,3 7,23 7,4 19 7,26 7,26 7,2 7,36 20 7,3 7,3 7,2 7,4 21 7,3 7,3 7,2 7,4 22 7,26 7,26 7,26 7,33 23 7,3 7,26 7,23 7,3 24 7,26 7,3 7,26 7,36 25 7,26 7,26 7,2 7,4
26 7,3 7,3 7,23 7,36
Lampiran 7. Rata-rata pengukuran salinitas air tambak selama penelitian (‰)
Waktu Pengamatan
(hari)
Perlakuan A
(1 mg/L)
B (2 mg/L)
C
(3 mg/L) Kontrol
0 24,6 24,6 24,3 25
1 24,6 24,6 24,3 25
2 25 25 24,3 25
3 24,6 24,6 24 25
4 25 25 24,3 25 5 25 25 24,3 25 6 25 25 24 25 7 25 25 24 25 8 24,6 24,6 24,3 25,3
9 24,6 24,6 24,3 25
10 24,6 24,6 24,3 25 11 25 25 24,3 25 12 25 25 24 25 13 25 25 24 25 14 25 25 24 25 15 24,6 24,6 24,3 25,3 16 24,6 24,6 24,3 25 17 24,6 24,6 24,3 25
18 25 24,6 24,3 25
Lampiran 8. Rata-rata pengukuran oksigen terlarut (DO) air tambak selama penelitian (mg/L)
Waktu Pengamatan
(hari)
Perlakuan A
(1 mg/L)
B (2 mg/L)
C
(3 mg/L) Kontrol
0 5,63 5,76 6,06 5,33 1 5,66 5,76 6,03 5,33
2 5,63 5,8 6,03 5,33
3 5,63 5,76 6,06 5,33 4 5,63 5,8 6,06 5,2 5 5,63 5,8 6,06 5,2 6 5,63 5,8 6,06 5,2 7 5,63 5,8 6,06 5,2
8 5,66 5,76 6,06 5,2
9 5,63 5,76 6,03 5,2
Lampiran 9. Rata-rata kadar ammonia air tambak selama penelitian (mg/L)
Perlakuan
Waktu pengamatan (hari) Besarnya kadar ammonia yang turun
(mg/L) 0 7 14 21 28
A
(1 mg/L) 0,79 0,77 0,74 0,70 0,64 0,15 B
(2 mg/L) 0,79 0,76 0,72 0,62 0,59 0,20 C
Data hasil pengamatan kadar ammonia yang turun pada air tambak selama penelitian
Ulangan Perlakuan dosis probiotik (mg/L) A (1) B (2) C (3) Kontrol (0)
1 0,16 0,21 0,33 0,04
2 0,15 0,20 0,32 0,03
3 0,14 0,19 0,31 0,02
Jumlah 0,45 0,60 0,96 0,09
Rata-rata 0,15 0,20 0,32 0,03
Uji homogenitas ragam galat terhadap data hasil pengamatan kadar ammonia
Untuk mengetahui apakah data hasil penelitian dapat dianalisis dengan analisis variansi, maka terlebih dahulu dilakukan Uji Homogenitas Ragam Galat terhadap data hasil pengamatan kadar ammonia dengan perhitungan sebagai berikut :
1. Menghitung jumlah kuadrat (JK) dari hasil pengamatan dari masing-masing taraf perlakuan dengan rumus sebagai berikut :
a. Nilai Jumlah Kuadrat
JKi =
i i ij j r Y j Y 2 ) . (JK A = 0,162 + 0,152 + 0,142 - 3 ) 45 , 0 ( 2
= 0,0002
JK B = 0,212 + 0,202 + 0,192 - 3 ) 60 , 0 ( 2
= 0,0002
= 0,0002
JK Kontrol = 0,042 + 0,032 + 0,022 - 3 ) 09 , 0 ( 2
= 0,0002
b. Tabel Perhitungan Uji Bartlett untuk Uji Homogenitas Ragam Galat terhadap data hasil pengamatan kadar ammonia.
Perlakuan Db (ri-1)
1
ri-1 JK Si 2
Log Si2 (ri-1) Log Si2
A 2 0,5 0,0002 0,0001 -4,0 -8,0
B 2 0,5 0,0002 0,0001 -4,0 -8,0
C 2 0,5 0,0002 0,0001 -4,0 -8,0
Kontrol 2 0,5 0,0002 0,0001 -4,0 -8,0
∑ 8 2 0,0008 - - -32,0
c. Menghitung chi-kuadrat murni X2 murni = ( . X2 empirik Dimana :
C = 1 +
( 1)1 ) 1 ( 1 ) 1 ( 3 1 ri ri t
= 1 +
8 1 2 ) 1 4 ( 3 1
= 1 +
2 0,125
)3 ( 3
1
= 1 +
1,875
91
C = 1,20625
Si2 =
Total db Total JK = 8 0008 , 0
= 0,0001
Log Si2 = log 0,0001
= -4,0
X2 empirik = 2,3026
( 1) 2 ( 1) 2
Si Log ri
Si xLog
ri
= 2,3026
8x(4,0)(32,0)
= 2,3026
(32,0)(32,0)
= 2,3026
0= 0
X2 murni = X empirik c 2 . 1
= .0
20625 , 1 1 = 0
d. Mencari X2 Tabel pada Tabel X sebagai berikut :
X2 tabel =
db pembilang()dandb penyebut(t1
=
db pembilang(0,05)dandb penyebut(41
=
db pembilang (0,05)dandb penyebut(3
= 7,81
Maka diperoleh hasil : X2 murni (0) < X2 tabel (7,81)
2. Analisis Variansi Terhadap Data Hasil Pengamatan Kadar Ammonia a. Untuk Derajat Bebas (db)
- db R = 1 - db P = (t-1)
= (4-1) = 3 - db T= (t.r)
= (4.3) = 12 - db E = t (r-1)
= 4 (3-1) = 4 . 2 = 8
b. Untuk Jumlah Kuadrat (JK)
JK T = (Y Ti Ai)2 + (Y TiAi)2 + …..+ (Yik)2
= 0,162 + 0,152 + 0,142 + 0,212 + 0,202 + 0,192 + 0,332 + 0,322 + 0,312 + 0,042 +0,032 + 0,022
= 0,4982
JK R = 0,3675
3 . 4 ) 1 , 2 ( . )
( 2 2
r t Yijk
JK P =
r
Y
Yi j j
i
2
2) ...(
) (
- JK R
= 0,3675
3 09 , 0 96 , 0 60 , 0 45 ,
0 2 2 2 2
= 0,1299
= 0,0008 c. Untuk Kuadrat Tengah (KT)
KT R =
R db JKR = 1 3675 , 0 = 0,3675
KT P =
P db P JK = 3 1299 , 0 = 0,0433
KT E =
E db E JK = 8 0008 , 0 = 0,0001 d. F hitung (Fh)
Fhitung =
E KT
P KT
= 433
0001 , 0 0433 , 0
e. Untuk Ftabel (Ft)
Ft α =
dbP(t1)dandbEt(r1)
=
db P(3) dandb E(8)
= 4,07
Ft 0,01 =
dbP(t1)dandbEt(r1)
=
db P(3) dandb E(8)
[image:74.595.130.340.107.247.2]= 7,59
Tabel Analisis Variansi Data Hasil Pengamatan Kadar Ammonia Sumber
Keragaman db JK KT Fh
Ft 0,05 0,01 Rata-rata Perlakuan Error 1 3 8 0,3675 0,1299 0,0008 0,3675 0,0433 0,0001 - 433**) - - 4,07 - - 7,59 -
Total 12 0,4982 - - - -
Keterangan : **) Berbeda sangat nyata (highly significant)
Hasil Analisis Variansi :
1. Untuk faktor perlakuan dosis probiotik Fh (433) > Ft 0,01 (7,59)
Berarti faktor perlakuan dosis probiotik berpengaruh sangat nyata (highly significant) dalam menurunkan kadar ammonia pada budidaya tambak ikan kerapu macan (Epinephelus fuscoguttatus) maka :
Uji beda rata – rata pengaruh perlakuan (Uji lanjutan)
Untuk mengetahui perlakuan dosis probiotik berbeda dalam menurunkan kadar ammonia maka dilakukan uji beda rata – rata pengaruh perlakuan (uji lanjutan).
Dikarenakan jumlah perlakuan dalam percobaan < 5 maka dilakukan Uji Beda Nyata Terkecil (BNT) dengan perhitungan :
BNTά = tά (db E). Sd BNT0,05 = t0,05 (db E). Sd = t0,05 (8)
= t0,05 (8) 3
0001 , 0 2x
= t0,05 (8) . 0,008 = 1,860 . 0,008
