Alamanda IE, Handjani NS, Budiraharjo A, 2006. Penggunaan metode hematologi dan pengamatan endoparasit darah untuk penetapan kesehatan ikan lele dumbo (Clarias gariepinus) di kolam budidaya desa Mangkubumen Boyolali. Biodiversitas. 8:34-38.
Anderson DP. 1993. Disease of fishies. Fish Immunology. TFH Publication Ltd. Nepture City.
Ansal MD, Dhawan A, Kaur VI. 2010. Duckweed based bio-remediation of village ponds: An ecologically and economically viable integrated approach for rural development through aquaculture. Livestock Research for Rural Development. 22:7.
Benjamin MM. 1978. Outline of Veterinary Clinichal Pathology. 3rd edition. The Iowa State University Press. Ames. Iowa.
29 Boyd CE. 1990. Water quality in pond for aquaculture. Brimingham Publishing
Co. Alabama. 482.
Bozorgnia A, Alimohammadi R, Hosseinifard R. 2011. Acute effects of different temperature in the blood parameters of common carp (Cyprinus carpio). 2nd International Conference on Environmental Science and Technology IPCBEE. IACSIT Press. Singapore. Vol 6.
Bureau DP, Harris AM, Cho CY. 1999. Apparent digestibility of rendered animal protein ingredients for rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Aquaculture. 180:345-358.
Castell JD, Sinnhuber RO, Wales JH, Lee DJ. 1972. Essential fatty acids in the diet of rainbow trout (Salmo gairdneri): Growth, feed conversion and some gross deficiency symptoms. Journal Nutrition.102:77-86.
Cedergreen N, Madsen TV. 2002. Nitrogen uptake by the floating macrophyte
Lemnaminor. New Phytologist. 155:285–292.
Cowey CB. 1995. Intermediary metabolism in fish with reference to output of end products of nitrogen and phosphorus. Water Science Technology. 31:21–28. Davis DA, Gatlin DM. 1991. Dietery mineral requirement of fish and shrimp. In:
Proceedings of the feed proceeding nutrition workshop. Thailand and Indonesia. 80-98.
Dinas Kelautan dan Perikanan Daerah. 2010. Petunjuk teknis pembenihan dan pembesaran ikan nila. Dinas Kelautan dan Perikanan Sulawesi Tengah. Hlm 2.
Docan AV, Cristea V, Lorena D. 2011. Influence of thermal stress on the hematological profile of Oncorhynchus mykiss held in different stocking densitiesin recirculating aquaculture systems. Environmental Sciences and Cadastre Department, Dunarea de Jos University of Galati. Romania. Dosim E, Hardi, Agustina. 2013. Efek penginjeksian produk intraseluler (ICP)
dan ekstraseluler (ECP) bakteri Pseudomonas sp. terhadap gambaran darah ikan nila (Oreocrhomis niloticus). Jurnal Ilmu Perikanan Tropis. 19:1402-2006.
Dwiyanti DS, Bambang G. 2006. Efektivitas biofilter tanaman air terhadap pengolahan limbah budidaya ikan dengan sistem resirkulasi. Seminar Nasional Limnologi. Widya Graha LIPI Jakarta.
Eduardo GA, Gisele CF, Daniela C, Fabiana G, Jose CD. 2009. Dietary supplementation of lysine and/or methionine on performance, nitrogen retention and excretion in pacu Piaractus mesopotamicus reared in cages.
Aquaculture. 295:266-270.
El-Kheir WA, Ismail G, El-Nour FA, Tawfik T, Hammad D. 2007. Assessment of the efficiency of duckweed (Lemna gibba) in wastewater treatment.
International Journalof Agriculture and Biology. 9:681-687.
El-Shafaia SA, El-Goharya FA, Nasra NP, Van Der Steenb, Gijzenb HJ. 2004. Chronic ammonia toxicity to duckweed-fed tilapia (Oreochromis niloticus).
Aquaculture. 232:117–127.
El-Sherif MS, El-Feky AMI. 2009. Performanceof nile tilapia (Oreochromis niloticus) fingerlings II. Influence of different water temperature.
International Journal Agriculture Biology. 11:301-305.
Engelsma MY, Hougee S, Nap D, Hofenk M, Rombout J, Muiswinkel WB. 2003. Multiple acute temperature stress affects leucocyte populations and
30
antibody responses in common carp, Cyprinus carpio L. Journal Fish Shellfish Immunology. 15:397-410.
Guillaume M. 1999. Defining obesity in childhood: current practice. Am JClin Nutr.126S–30S. Retrieved September 15 2014 from www.ajcn.org.
Haetami K, Junianto, Andriani Y. 2005. Tingkat penggunaan gulma air Azolla pinnata dalam ransum Terhadap pertumbuhan dan konversi pakan Ikan bawal air tawar. Laporan Penelitian. Fakultas pertanian Universitas Padjadjaran. Bandung.
Halver JE. 1985. Recent advances in vitamin nutrition and metabolism in fish Nutrition and feeding in fish. Academic Press London. 221–242.
Handajani H. 2011. Optimalisasi substitusi tepung azolla terfermentasi pada pakan ikan untuk meningkatkan produktivitas ikan nila gift. Jurnal Teknik Industri. 12:178-184.
Hasan MR, Chakrarbarti R. 2009. Use of algae and aquatic macrophytes as feed in small scale aquaculture: A review, FAO Fisheries and Aquaculture Technical Paper. 531:123.
Hemre GI, Mommsen TP, Krogdahl Å. 2002. Carbohydrates in fish nutrition: effects on growth, glucose metabolism and hepatic enzymes. Aquaculture Nutrition. 8: 175-194.
Hrubec TC, Smith SA. 2011. Hematology of fishes. in schalm's veterinary hematology. 6th ed. A John Wiley and Sons, Ltd. Publication.
Joseph JB, Sujatha SS. 2010. Real-time quantitative (PCR) applications to quantify and the expression profiles of heat shock protein (HSP70) genes in Nile tilapia, Oreocrhomis niloticus (L.) and Oreocrhomis mossambicus
(P.). International Journal Fish. Aquaculture. 2:044-048.
Ketola HG dan Harland BF. 1993. Influence of phosphorus in rainbow trout diets on phosphorus discharges in effluent water. Trans. Am. Fish. Soc. 122:1120-1126.
Khalil RH, Saad TT, Asmaa ED. 2010. Effect of lysine and methionine deficiency on immunity in fresh water fish. Journal of Thearabian Aquaculture Society. 5:1
Lagler KF, Bardach JE, Miller RR, Passino DRM. 1977. Ichthyology. John Willey and Sons, Inc. New York-London. 506 P.
Landesman L, Parker, Fedler, Konikoff. 2005. Modeling duckweed growth in wastewater treatment systems. Livestock Research for Rular Development. Leng RA, Stambolie JH, Bell R. 1995. Duckweed a potential high protein feed resource for domestic animals and fish. Livestock Research for Rural Development. New England. 7:1.
Leray C, Nonnotte G, Roubaud P, Leger C. 1985. Incidence of (n-3) essential fatty acid deficiency on trout reproductive processes. Reproduction Nutrition Development. 25:567-581.
Mjoun K & Kurt AR. 2010. Tilapia: profile and economic importance. South Dakota Cooperative Extension Service. 1:1-4.
Mokoginta I, Hapsyari F, Suprayudi MA. 2004. Peningkatan retensi protein melalui peningkatan efisiensi karbohidrat pakan yang diberi chromium pada ikan mas Cyprinus carpio LINN. Jurnal Akuakultur Indonesia. 3: 37-41.
31 Moyle PB, Cech JJ. 2004. Fishes: An Indtroduction to Ichthiology. Parentice Hall.
USA, 597 hlm.
Murtini JT, Novalia R. 2007. Kandungan logam berat pada ikan, air dan sedimen di Waduk Saguling Jawa Barat. Jurnal Pasca Panen Dan Bioteknologi Kelautan Dan Perikanan. 2:153-159.
Nasution SH. 1991. Pertumbuhan ikan pelangi (Melanolaenia boesemani) pada suhu yang berbeda. Biologi Perairan darat. Bio Air. 3:4347.
National Research Council. 1993. Nutrient requirement of warm water fishes.
National Academy Press. Washington DC. 78.
National Research Council. 1983. Nutrient requirement of warm water fishes and shellfishes. National academy of sciences. Washington DC.
Novotny V, Olem H. 1994. Water quality, prevention, identification, and management of diffuse polution. Van Nostrands Reinhold. New York. 1054.
Nurhidayat MA, Sucipto A. 2002. Budidaya Ikan Nila (Oreochromis niloticus) Berdasarkan Konsep SNI. Departemen Kelautan danPerikanan. Direktorat Jendral Perikanan Budidaya. Balai Budidaya AirTawar Sukabumi.
Nuryati S, Puspitaningtyas D, Wahjuningrum D. 2007. Potensi ekstrak bawang putih (Allium sativum) untuk menginaktifasi koi herpesvirus (KHV) pada ikan mas (Cyprinus carpio). Jurnal Akuakultur Indonesia. 6:147-154. Olaniyi CO, Oladunjoye IO. 2012. Replacement value of duckweed (Lemna
minor) in nile tilapia (Oreochromis niloticus) diet. Intersnational Journal of Science and Technology. 2:9.
Palinggi N, Rachmansyah, Usman. 2002. Pengaruh pemberian sumber lemak berbeda dalam pakan terhadap pertumbuhan ikan kuwe, Caranx sexfasciatus. Jurnal Penelitian Perikanan Indonesia. 8:25-29.
Ravichandra JA. 2012. Influence of acute temperature stresson hemoglobin content in snakeheaded fish (Channa Punctatus) Gavari River, Nanded, India. International Journal Biomed. Adv. Res. 3:1-5.
Said A. 2006. Pengaruh Komposisi Hydrilla verticillata dan Lemna minor sebagai pakan harian terhadap pertumbuhan dan sintasan ikan nila merah
(Oreochromis niloticus X Oreochromis mossambicus) dalam keramba jaring apung di Perairan Umum Das Musi. Prosiding Seminar Nasional Ikan IV. Jatiluhur, 29-30 Agustus 2006.
Salasia SIA, Sulanjari D, Ratnawati A. 2001. Studi hematologi ikan air tawar. Bagian Patologi Klikik Fakultas Kedokteran Hewan. Universitas Gajah Mada.
Satoh S, Poe WE, Wilson RP. 1989. Effect of dietary n-3 fatty acids on weight gain and liver polar lipid fatty acid composition of fingerling channel catfish. Journal Nutrition. 119: 23-28.
Siakpere KO dan Ubogu EO. 2008. Sublethal haematological effects of zinc on the freshwater fish. Heteroclarias sp. African Journal of Biotechnology,
7:2068-2073.
Sidik AS. 1996. Pemanfaatan Hidroponik dalam Budidaya Perikanan Sistem Resirkulasi Air Tertutup. Lembaga Penelitian Universitas Mulawarman, Samarinda. 43 hlm.
Skillcorn P. 1993. Duckweed aquaculture a new aquatic Arming System for Developing Countries. TheInternational Bank. Washington, DC.
32
Smits PE. 2005. Phytoremediation. Annu Rev Plant Biol. 56:15-39.
Snieszko SF, Howard JE, Pettijohn LL. 1960. Micohematocrit as a tool in fishery research and management. Bureau of Sport Fisheries and Wildlife. Washington DC. 15P.
Southgate DAT. 1975. Fiber and other available carbohydtare and energy effects in diet. Proc. western Hemisphere Nutr. Con. IV. Publishing Science Group Inc Action press. 51-55.
Sowunmi AA. 2003. Haematology of the African catfish Clarias gariepinus from eleiyele reservoir. Ibadan South-West, Nigeria. The Zoologist. 2:85-91. Suprayudi MA dan Setiawati M. 2003. Kebutuhan ikan gurame (Osphronemus
gouramy Lac.) akan mineral fosfor. Jurnal Akuakultur Indonesia. 2: 67-71 Sutriana A. 2007. The use of cassava leaves as a dietary component for African
catfish fry. Jurnal Kedokteran Hewan. 1(2): 59-65.
Syahrial A, Tri RS, Siti K. 2013. Tingkat kerusakan jaringan darah ikan mas (Cyprinus carpio) yang dipaparkan pada media Zn-Sulfat (ZnSO4). Jurnal Protobiont. 2181–185
Takeuchi T. 1988. Laboratory work chemical evaluation of dietary nutriens. In: fish fish nutrition and mariculture. Department of Aquatic Biosience. Tokyo University of Fisheries. JICA P. 179-226.
Talukdar, Shajahan, Rahman. 2012. Suitability of duckweed (Lemna minor) as feed for fish in polyculture system. International Journal of Agricultural Research Innovation and Technology. Bangladesh. 2:42-46.
Tresna LK, Yayat D, Titin H. 2012. Kebiasaan makanan dan luas relung ikan di hulu Sungai Cimanuk Kabupaten Garut Jawa Barat. Jurnal Perikanan dan Kelautan. 3:163-173.
Vosyline MZ. 1999. The effect of heavy metals on haematological indices of fish,
Acta ZoologicaLituanica. Hydrobiologia. 9:76-82
Watanabe. 1996. Effect of polar and nonpolar lipids from krill on quality of eggs of red seabream pagrus major. Nippon Suisan Gakkaishi.
Webster SD, Lim C. 2002. Nutrien requirement and feeding of finfish for aquaculture research center. Kentucky State University. 26:279–283. Yandes Z, Ridwan A, Ing M. 2003. Pengaruh pemberian selulosa dalam pakan
terhadap kondisi biologis benih ikan gurami (Osphronemus gourami Lac).
Jurnal Iktiologi Indonesia. 3:1.
Yuwono E, Sukardi P. 2008. Fisiologi Hewan Air. Unsoed Press. Puwokerto. Zimmo OR, Van der Steen NP, Gijzen HJ. 2005 Effect of organic surface load on
process performance of pilot-scale algae and duckweed-based waste stabilization ponds. J Environ Eng. 131:587–594.
Zonneveld NEA, Huinsman, Boon JH. 1991. Prinsip-prinsip budaya ikan. Gramedia Pustaka Utama. Jakarta. 318 hal.
Zuhrawati NA. 2014. Pengaruh peningkatan suhu terhadap kadar hemoglobin dan nilai hematokrit ikan nila (Oreocrhomis niloticus). Jurnal Medika Veterinaria. 8:1.
33 Lampiran 1 Prosedur analisis proksimat ikan dan lemna
Prinsip Analisis Kadar Air
Banyaknya air yang terkandung dalam suatu bahan dapat diketahui bila bahan tersebut dipanaskan (oven) pada suhu 110oC 1oC. Karena terjadi penguapan, ukuran bobot dari bahan tersebut menjadi berkurang sampai bobot konstan, yang berarti semua air sudah diuapkan.
Peralatan
1. Cawan porselen kering (bebas air)
2. Oven di set pada suhu 110oC 1oC, ventilasi baik 3. Timbangan analistik/Sartorius, ketelitian 0,000 g 4. Desikator
Cara Kerja
Timbang cawan porselen yang suda dioven (110oC, 1 jam). Masukkan bahan/sampel sebanyak 1 g pada cawan tadi. Panaskan/dioven 110oC selama 2 jam. Kemudian pindahkan segera ke desikator, dinginkan selama 30 menit. Setelah dingin, timbang cawan tadi dan catat beratnya. Kemudian panaskan kembali cawan berisi sampel tadi selama sejam dan ulangi prosedur sebelumnya sampai berat antara pengeringan tadi maksimal 0,3 mg. Perlu diperhatikan bahwa sewaktu melakukan pengangkatan cawan harus menggunakan penjepit (tidak boleh langsung menggunakan tangan).
Perhitungan % Kadar Air
Persentase nilai kadar air ditentukan berdasarkan banyaknya air yang menguap saat pemanasan, yaitu dengan cara mengukur selisih antara berat cawan akhir (setelah cawan berisi bahan dikeringkan dalam oven) dengan berat cawan awal (cawan kosong bebas air), dibandingkan dengan berat sampel (bahan).
Kadar Air (%) =
B C B A ) ( x 100% Penentuan Kadar Abu Prinsip
Membakar bahan dalam tanur (furnace) dengan suhu 600°C selama 3-8 jam sehinggaseluruh unsur pertama pembentuk senyawa organik (C,H,O,N) habis terbakar dan berubah menjadi gas. Sisanya yang tidak terbakar adalah abu yang merupakankumpulan dari mineral-mineral yang terdapat dalam bahan. Dengan perkataan lain,abu merupakan total mineral dalam bahan.
Alat dan Bahan
•Cawan porselen 30 mL
•Pembakar bunsen atau hot plate •Tanur listrik
•Eksikator •Tang penjepit Prosedur
• Keringkan cawan porselen ke dalam oven selama 1 jam pada suhu 100°-105°C• Dinginkan dalam eksikator selama 15 menit dan timbang, catat sebagai A gram•
34
Masukkan sejumlah sampel kering oven 2-5 gram ke dalam cawan, catat sebagai Bgram• Panaskan dengan hot plate atau pembakar bunsen sampai tidak berasap lagi• Masukkan ke dalam tanur listrik dengan temperatur 600-700°C, biarkan beberapalama sampai bahan berubah menjadi abu putih betul. Lama pembakaran sekitar 3-6 jam• Dinginkan dalam eksikator kurang lebih 30 menit dan timbang dengan teliti, catat sebagai C gram• Hitung kadar abunya.
Analisis Kadar Protein
Metode yang paling banyak digunakan untuk determinasi protein dalam bahan organik adalah metode Kjeldahl. Sesuai dengan sifat bahan organik bahwa penggunaan bahan sulfuric acid (H2SO4) dan beberapa katalis dapat menghancurkan bahan organik dan mengubah nitrogen menjadi ammonium sulfat. Pada saat campuran bahan alkalin bereaksi, ammonia bebas dilepaskan melalui penyulingan uap air, dikumpulkan dan dititrasi.
Peralatan
1. Rak digestion/oksidasi 2. Labu digestion/oksidasi 3. Alat destilasi
4. Aluminium foil
5. Labu Erlenmeyer 125 ml dan 250 ml, buret 50 ml, gelas ukur 100 ml, dan pipet
Reagent
1. H2SO4: pekat, bebas nitrogen;
2. Katalis: campuran potassium sulfat dan cupri sulfat dengan rasio 9:1; 3. Larutan indikator: MR/MB: campur 0,2% larutan MR (0,2 g MR
dilarutkan dalam 100 ml ethanol) sebanyak 100 ml dengan 0,1% larutan MB (0,05 g MB dilarutkan dengan 50 ml ethanol) ssebanyak 50 ml;
4. H2SO4 (0,05 N): larutkan 1,4 ml sulfuric acid pekat dengan akuades hingga mencapai 1000 ml;
5. NaOH (0,005 N): larutkan 2 gram NaOH dengan akuades hingga mencapai 1000 ml;
6. NaOH 30%: misalnya dalam 500 ml gelas ukur larutkan 120 g NaOH dengan 400 ml akuades.
Cara Kerja
A. Tahap oksidasi
1. Timbang bahan sebanyak 0,5-1 g ditimbang menggunakan aluminium foil, masukkan bahan ke dalam labu kjeldahl.
2. Tambahkan 3 g katalis dan 10 ml H2SO4 pekat untuk mempercepat penguraian. Panaskan ke dalam rak oksidasi/digestion selama 3-4 jam sampai terjadi perubahan warna menjadi hijau bening.
3. Dinginkan, setelah dingin lalu encerkan dengan akuades hingga volume 100 ml menggunakan gelas ukur. Lalu masukkan ke dalam erlenmeyer dan didestilasi.
Tahap destilasi
1. Beberapa tetes H2SO4 dimasukkan ke dalam labu, sebelumnya labu diisi dengan akuades sampai setengahnya untuk menghindari kontaminasi oleh ammonia lingkungan, kemudian didihkan selama 10 menit.
35 2. Erlenmeyer yang berisi 10 ml H2SO4 0,05 N dan 2 tetes larutan indikator disimpan di bawah pipa pembuangan kondensor dengan cara dimiringkan sehingga ujung pipa tenggelam dalam cairan.
3. Masukkan 5 ml larutan sampel ke dalam tabung destilasi dan melalui corong tersebut masukkan kedalamnya 10 ml NaOH 30% lalu ditutup. 4. Campuran alkalin dalam labu destilasi disuling menjadi uap air selama 10
menit setelah terjadi pengembunan pada kondensor.
5. Labu erlenmeyer diturunkan sehingga kondensor berada di leher labu, diatas permukaan larutan. Bilas kondensor dengan akuades selama 1-2 menit
C. Tahap titrasi
1. Larutan hasil destilasi dititrasi dengan NaOH 0,05 N hingga berubah warna.
2. Catat volume titran
3. Lakukan prosedur yang sama terhadap blanko.
Persentase kadar protein dihitung berdasrkan rumus berikut:
Protein (%) = 100 S 20 * * 6,25 F Vs) (Vb * [{0,0007 Keterangan:
Vs = ml 0,05 N titran NaOH untuk sampel Vb = ml titran NaOH untuk blanko
F = faktor koreksi dari 0,05 larutan NaOH S = bobot sampel
* = setiap ml 0,05 NaOH ekuivalen dengan 0,0007 gram nitrogen ** = faktor nitrogen
Analisa Kadar Lemak ( Metode Soxhlet)
Lemak merupakan senyawa organik kompleks yang tidak larut air tetapi larut dalam pelarut organik, berfungsi sebagai sumber energi, bahan penyusun sel dan untuk pemeliharaan membran-membran sel (Watanabe 1988). Lemak berfungsi sebagai sumber energi paling besar diantara protein dan karbohidrat. Dalam pakan buatan, kadar lemak tidak boleh terlalu tinggi karena akan berpengaruh terhadap mutu pakan yaitu mudah mengalami oksidasi dan menimbulkan bau tengik. Watanabe (1988) menyatakan bahwa lemak yang dibutuhkan ikan berkisar antara 4-8%.
Prinsip Analisa
Pada metode ini, lemak dihasilkan dengan cara melarutkan bahan dengan pelarut N-hexan kemudian diekstraksi dengan menggunakan Soxhlet.
Peralatan
1. Soxhlet axtractor
2. Water bath/penangas air 3. Desikator
4. Kertas saring Reagent
1. N-hexan 2. Pipa penyaring
36
Cara Kerja
1. Panaskan labu ekstraksi dalam oven pada suhu 110oC selama 1 jam, didinginkan dalam desikator lalu ditimbang (X1).
2. Timbang 3-5 gram bahan (A), masukkan dalam selongsong dan Soxhlet serta pemberat di atasnya.
3. Masukkan N-hexan 100-150 ml ke dalam Soxhlet sampai selongsong terendam dan sisa hexan dimasukkan ke dalam labu.
4. Panaskan labu yang telah dihubungkan dengan Soxhlet diatas water bath
sampai cairan yang merendam bahan dalam Soxhlet berwarna bening.
5. Labu dilepaskan dan tetap dipanaskan hingga N-hexan menguap.
6. Labu dan lemak yang tersisa dipanaskan dalam oven selama 15-60 menit kemudian didinginkan dalam desikator selama 15-30 menit dan ditimbang (X2). % Kadar Lemak 100 A X1 X2 %
Penelitian tahap satu
Lampiran 2 Perhitungan jumlah pemberian pakan ikan gurame Bobot biomassa = 272,8 g
Persen pemberian pakan = 5% per hari Kadar air L. perpusilla = 91,05% Jumlah pemberian pakan = 5% x 272,8 g
= 13,64 g berat kering per hari Berat basah lemna =
= 152,4 g per hari
Lampiran 3 Perhitungan jumlah pemberian pakan ikan nila Bobot biomassa = 272 g
Persen pemberian pakan = 5% per hari Kadar air L. perpusilla = 91,05% Jumlah pemberian pakan = 5% x 272 g
= 13,64 g berat kering per hari Berat basah lemna =
= 152,0 g per hari
Penelitian Tahap Dua
Lampiran 4 Perhitungan jumlah pemberian pakan ikan nila pada minggu ke 0
Perlakuan I 100% L. perpusilla + 0% Pelet
Bobot biomassa = 400 g
Persen pemberian pakan = 3% per hari Kadar air L. perpusilla = 91,05% Jumlah pemberian pakan = 3% x 400 g
37
Berat lemna basah
= 134,1 g per hari
Perlakuan II 50% L. perpusilla + 50% Pelet Bobot biomassa = 400 g Persen pemberian pakan = 3% per hari Kadar air L. perpusilla = 91,05% Jumlah pemberian pakan = 3% x 400 g
= 12 g berat kering per hari
Berat lemna basah =
= 134,08 g per hari 50% lemna basah = 50% x 134,1 = 67,1 g per hari 50% pelet = 50% x 12 g = 6 g per hari
Perlakuan III 25% L. perpusilla + 75% Pelet Bobot biomassa = 400 g Persen pemberian pakan = 3% per hari Kadar air L. perpusilla = 91,05% Jumlah pemberian pakan = 3% x 400 g
= 12 g berat kering per hari
Berat lemna basah =
= 134,1 g per hari 25% lemna basah = 25% x 134,1 = 33,5 g per hari 75% pelet = 75% x 12 g = 9 g per hari
Perlakuan IV 0% L. perpusilla + 100% Pelet Bobot biomassa = 400 g Persen pemberian pakan = 3% per hari Jumlah pemberian pakan = 3% x 400 g
= 12 g berat kering per hari
Pemberian pakan untuk tiap minggunya bergantung pada penambahan bobot biomassa ikan pada masing-masing perlakuan dan ulangan.
Lampiran 5 Analisis sidik ragam (ANOVA) terhadap pertumbuhan bobot mutlak ikan nila (O. niloticus) dengan perlakuan konsentrasi pakan L. perpusilla dan pelet yang berbeda
SK DB JK KT F Sig.
Perlakuan 3 553219.591 184406.530 29.330 .000 Galat 8 44011.085 6287.298
38
Lampiran 6 Uji lanjut Duncan terhadap Bobot mutlak ikan nila (O. niloticus) dengan perlakuan konsentrasi pakan L. perpusilla dan pelet yang berbeda. Angka yang diikuti dengan huruf yang sama menunjukkan pengaruh yang sama antar perlakuan pada taraf uji 5%
No. Perlakuan Rata-rata bobot Signifikansi
1 0% 6.1225E2 a
2 25% 4.9937E2 ab
3 50% 3.7497E2 b
4 100% 9.9333 c
Lampiran 7 Analisis sidik ragam (ANOVA) terhadap laju pertumbuhan spesifik ikan nila (O. niloticus) dengan perlakuan konsentrasi pakan L. perpusilla dan pelet yang berbeda
SK DB JK KT F Sig.
Perlakuan 3 5.192 1.241 24.199 .000
Galat 8 .572 .042
Total 11 5.764
Lampiran 8 Uji lanjut Duncan terhadap laju pertumbuhan spesifik ikan nila (O. niloticus) dengan perlakuan konsentrasi pakan L. perpusilla dan pelet yang berbeda. Angka yang diikuti dengan huruf yang sama menunjukkan pengaruh yang sama antar perlakuan pada taraf uji 5% No. Perlakuan Rata-rata bobot Signifikansi
1 0% 1.9333 a
2 25% 1.5100 ab
3 50% 1.3433 b
4 100% .1600 c
Lampiran 9 Analisis sidik ragam (ANOVA) terhadap sintasan ikan nila (O. niloticus) dengan perlakuan konsentrasi pakan L. perpusilla dan pelet yang berbeda
SK DB JK KT F Sig.
Perlakuan 3 75.000 25.000 1.000 .441
Galat 8 200.000 25.000
Total 11 275.000
Lampiran 10 Analisis sidik ragam (ANOVA) terhadap rasio konversi pakan ikan nila (O. niloticus) dengan perlakuan konsentrasi pakan L. perpusilla
dan pelet yang berbeda
SK DB JK KT F Sig.
Perlakuan 3 59.559 20.111 102.729 .000
Galat 8 1.546 .212
39 Lampiran 11 Uji lanjut Duncan terhadap rasio konversi pakan ikan nila (O. niloticus) dengan perlakuan konsentrasi pakan L. perpusilla dan pelet yang berbeda. Angka yang diikuti dengan huruf yang sama menunjukkan pengaruh yang sama antar perlakuan pada taraf uji 5% No. Perlakuan Rata-rata bobot Signifikansi
1 0% 1.3900 a
2 25% 1.4867 a
3 50% 1.8300 a
4 100% 6.7000 b
Lampiran 12 Analisis sidik ragam (ANOVA) terhadap laju pertumbuhan spesifik pakan ikan nila (O. niloticus) dengan perlakuan konsentrasi pakan L. perpusilla dan pelet yang berbeda.
SK DB JK KT F Sig.
Perlakuan 3 5.017 1.672 163.550 .000
Galat 8 .082 .010
Total 11 5.099
Lampiran 13 Uji lanjut Duncan terhadap laju pertumbuhan spesifik ikan nila (O. niloticus) dengan perlakuan konsentrasi pakan L. perpusilla dan pelet yang berbeda. Angka yang diikuti dengan huruf yang sama menunjukkan pengaruh yang sama antar perlakuan pada taraf uji 5% No. Perlakuan Rata-rata bobot Signifikansi
1 0% 1.9333 a
2 25% 1.5100 ab
3 50% 1.3433 b
4 100% .1600 c
Lampiran 14 Analisis sidik ragam (ANOVA) terhadap retensi protein ikan nila (O. niloticus) dengan perlakuan konsentrasi pakan L. perpusilla dan pelet yang berbeda.
SK DB JK KT F Sig.
Perlakuan 3 2186.473 728.824 83.437 .000
Galat 8 69.881 8.735
Total 11 2256.354
Lampiran 15 Uji lanjut Duncan terhadap retensi protein ikan nila (O. niloticus) dengan perlakuan konsentrasi pakan L. perpusilla dan pelet yang berbeda. Angka yang diikuti dengan huruf yang sama menunjukkan pengaruh yang sama antar perlakuan pada taraf uji 5%
No. Perlakuan Rata-rata bobot Signifikansi
1 0% 36.3500 a
2 25% 32.7533 a
3 50% 22.4500 b
40
Lampiran 16 Analisis sidik ragam (ANOVA) terhadap retensi nitrogen ikan nila (O. niloticus) dengan perlakuan konsentrasi pakan L. perpusilla dan pelet yang berbeda.
SK DB JK KT F Sig.
Perlakuan 3 237712.167 79237.389 3.354E3 .000
Galat 8 188.997 23.625
Total 11 237901.164
Lampiran 17 Uji lanjut Duncan terhadap retensi nitrogen ikan nila (O. niloticus) dengan perlakuan konsentrasi pakan L. perpusilla dan pelet yang berbeda. Angka yang diikuti dengan huruf yang sama menunjukkan pengaruh yang sama antar perlakuan pada taraf uji 5%
No. Perlakuan Rata-rata bobot Signifikansi
1 0% 37.4967 a
2 25% 31.7733 b
3 50% 24.0867 c
4 100% 3.6800 d
Lampiran 18 Analisis sidik ragam (ANOVA) terhadap retensi lemak ikan nila (O. niloticus) dengan perlakuan konsentrasi pakan L. perpusilla dan pelet yang berbeda.
SK DB JK KT F Sig.
Perlakuan 3 28360.738 9453.579 54.401 .000
Galat 8 1390.214 173.777
Total 11 29750.952
Lampiran 19 Uji lanjut Duncan terhadap retensi lemak ikan nila (O. niloticus) dengan perlakuan konsentrasi pakan L. perpusilla dan pelet yang berbeda. Angka yang diikuti dengan huruf yang sama menunjukkan pengaruh yang sama antar perlakuan pada taraf uji 5%
No. Perlakuan Rata-rata bobot Signifikansi
1 0% 1.4538E2 a
2 25% 1.1845E2 b
3 50% 79.7033 c
4 100% 16.0333 d
Lampiran 20 Analisis sidik ragam (ANOVA) terhadap retensi fosfor ikan nila (O. niloticus) dengan perlakuan konsentrasi pakan L. perpusilla dan