ALKALOID PADA TANAMAN JERUJU (Hydrolea spinosa L.)
NOFIA HARDARANI
SEKOLAH PASCASARJANA INSTITUT PERTANIAN BOGORBOGOR 2011
DAFTAR PUSTAKA
Alam G, Wiryowidagdo S, Soegihardjo CJ, Sudarsono, Gobel RB. 2002. Peningkatan produksi alkaloid indol kantina-6-on di dalam kultur suspensi Brucea javanica (L.) Merr. Jurnal Bahan Alam Indonesia 1(1):25-29. Al-Juboory KH, Skirvin RM, Williams DJ. 1998. Callus induction and
adventitious shoot regeneration of gardenia (Gardenia jasminoides Ellis) leaf explants. Scientia Horticulturae 72:171–178.
Amdoun R, Khelifi L, Khelifi-Slaoui M, Amroune S, Benyoussef EH, Thi DV, Assaf-Ducrocq C, Gontier E. 2009. Influence of minerals and elicitation on Datura stramonium L. tropane alkaloid production: Modelization of the in vitro biochemical response. Plant Science 177:81–87.
Amien S, Ariyanti M, Arief M, Kurniawan D. 2007. Induksi kalus dari daun nilam kultivar Lhoksemauwe, Sidikalang dan Tapaktuan dengan 2.4D. Zuriat, 18(2):179-192.
Ananthakrishnan G, Ravikumar R, Girija S, Ganapathi A. 2002. In vitro adventitious shoot formation from cotyledon explants of cashew (Anacardium occidentale L.). Scientia Horticulturae 93:343-355.
Ansah C, Khan A, Gooderham NJ. 2005. In vitro genotoxicity of the West African anti-malarial herbal Cryptolepis sanguinolenta and its major alkaloid cryptolepine. Toxicology 208:141–147.
Arigita L, Fernández B, González A, Tamés RS. 2005. Effect of the application of benzyladenine pulse on organogenesis,acclimatisation and endogenous phytohormone content in kiwi explants cultured under autotrophic conditions. Plant Physiology and Biochemistry 43:161–167
Arteca RN. 1996. Plant Growth Substances Principles and Applications. New York:Chapman & Hall.
Aryanti, Ermayanti TM, Prinadi KI, Dewi RM. 2006. Uji daya antimalaria Artemisia spp. terhadap Plasmodium falciparum. Majalah Farmasi Indonesia 17(2):81-84.
Avancini G, Abreu IN, Saldana MDA, Mohamed RS, Mazzarefa P. 2003. Induction of pilocarpine formation in jaborandi leaves by salicylic acid and methyljasmonate. Phytochemistry 63:171-175.
Balai Besar Penelitian dan Pengembangan Bioteknologi dan Sumberdaya Genetik Pertanian (BB Biogen). 2007. Rekayasa genetik tanaman untuk produksi artemisinin, senyawa antimalaria. Warta Penelitian dan Pengembangan Pertanian 29(6):4-5.
Baldi A, Dixit VK. 2008. Yield enhancement strategies for artemisinin production by suspension cultures of Artemisia annua. Bioresource Technology 99:4609–4614.
Blankenship JD, Spierin MJ, Wilkinson HH, Fannin FF, Bush LP,Schardl CL. 2001. Production of loline alkaloids by the grass endophyte, Neotyphodium uncinatum, in defined media. Phytochemistry 58:395–401. Charriere F, Hahne G. 1998. Induction of embryogenesis versus caulogenesis on
in vitro cultured sunflower (Helianthus annuus L.) immature zygotic embryos: role of plant growth regulators. Plant Science 137:63–71.
D’Onofrio C, Morini S. 2006. Somatic embryo, adventitious root and shoot regeneration in in vitro grown quince leaves as influenced by treatments of different length with growth regulators. Scientia Horticulturae 107:194– 199.
Davies PJ. 2004. Plant Hormones Biosynthesis, Signal Transduction, Action!. London:Kluwer Academic Publishers.
De Luca V, St-Pierre B. 2000. The Cell and Developmental Biology of Alkaloid Biosynthesis. Trends in Plant Science 5 (4) : 168-173.
Dewick PM. 2003. Medicinal Natural Products A Biosynthetic Approach. Great Britain: John Wiley& Sos LTD.
Dharmono. 2007. Kajian etnobotani tumbuhan jaruju (Hydrolea spinosa) suku Dayak Bukit Loksado. Paradigma Jurnal Pendidikan MIPA 1(2):51-65. Dharmono. 1998. Kajian etnobotani terhadap tumbuhan obat yang ditemukan
pada masyarakat Dayak Bakumpai di tepian sungai Barito kecamatan Marabahan kabupaten Barito Kuala. Banjarmasin: Lembaga Penelitian Universitas Lambung Mangkurat.
Dharmono. 1997. Kajian etnobotani tumbuhan herba dan semak yang digunakan sebagai obat pada masyarakat Batibati kecamatan Batibati kabupaten Tanah Laut. Banjarmasin: Lembaga Penelitian Universitas Lambung Mangkurat.
Dinkes Kalsel. 2009. Penyakit menular. http://pdfcontact.com/ebook/DINKES KALSEL.html [12 Januari 2010].
Du N, Pijut PM. 2008. Regeneration of plants from Fraxinus pennsylvanica hypocotyls and cotyledons. Scientia Horticulturae 118:74–79.
Duong NT. 2007. Effect of genotype, explant size, position, and culture medium on shoot generation of Gerbera jamesonii by receptacle transverse thin cell layer culture. Scientia Horticulturae 111:146–151.
Facchini PJ, St-Pierre B. 2005. Synthesis and trafficking of alkaloid biosynthetic enzymes. Current opinion in Plant Biology 8:657-666.
Farber K, Schumann B, Miersch O, Roos W. 2003. Selective desensitization of jasmonate and pH-dependent signaling in induction of Benzophenanthridine biosynthesis in cells of Eschscholtzia californica. Phytochemistry 62:491-500.
Fitriany A. 2003. Kandungan ajmalisin pada kultur kalus Catharanthus roseus (L.) G. Don. setelah dielisitasi homogenat jamur Pythium aphanidermatum Edson Fitzp. [Makalah Pengantar Falsafah Sains]. Bogor: Program Pasca Sarjana. Institut Pertanian Bogor.
Flick CE, Evans DA, Sharp WR. 1993. Organogenesis in: Handbook of Plant Cell Culture. DA Evans, WR Sharp, PV Amirato dan Y.Yamada (Eds.) Collier MacMilan.
Ford YY, Taylor JM, Blake PS, Marks TR. 2002. Gibberellin A3 stimulates adventitious rooting of cuttings from cherry (Prunus avium). Plant Growth Regulation 37:127–133,
Fujita Y, Hara Y, Morimoto T, Misawa M. 1990. Semisynthetic production of vinblastine involving cell cultures of Catharanthus roseus and chemical reaction. Progress and Plant Cellular an Molecular Biology:738-743. Gaines JL. 2004. Increasing alkaloid production from Catharanthus roseus
suspensions through methyl jasmonate elicitation. Journal of ISPE 24(4):1-6.
George EF, Sherrington PD. 1984. Plant Propagation by Tissue Culture. Great Britain: Eastern Press.
Gunawan LW. 1988. Teknik Kultur Jaringan Tumbuhan. Bogor: Laboratorium Kultur Jaringan tanaman Pusat Antar Universitas (PAU) Bioteknologi Institut Pertanian Bogor. Direktorat Jendral Pendidikan Tinggi Departemen Pendidikan dan Kebudayaan.
Han BH, Yae BW, Yu HJ, Peak KP. 2005. Improvement of in vitro micropropagation of Lilium oriental hybrid ‘Casablanca’ by the formation of shoots with abnormally swollen basal plates. Scientia Horticulturae 103:351–359.
Harahap RA. 2005. Studi kultur kalus tanaman pegagan (Centella asiatica L.) untuk menghasilkan senyawa asiatikosida [Thesis]. Bogor: Program Pascasarjana, Institut Pertanian Bogor.
Hartmann HD, Kester DE, Davies FT, Geneve RL. 1997. Plant propagation: principles and practices. London:Prentice-Hall International (UK) Limited.
Hendaryono DPS, Wijayani A. 1994. Teknik Kultur Jaringan. Yogyakarta: Yayasan Kanisius.
Herbert RB. 1995. Biosintesis Metabolit Sekunder. Srigandono B, Soedarsono, penerjemah. Semarang: IKIP Semarang Press. Terjemahan dari: The Biosynthesis of Secondary Metabolites.
Heryani H, Erhaka ME, Mahrita, Susanti H, Ismuhajaroh BN. 2008. Karakteristik morfologi dan penggunaan tanaman obat khas lahan basah Kalimantan [Laporan Kegiatan Eksplorasi Tanaman Obat Khas Lahan Basah Kalimantan yang Berkhasiat sebagai Obat Antimalaria dan Filariasis]. Banjarmasin: Universitas Lambung Mangkurat.
Hutagaol RP. 2006. Pembantukan kalus, regenerasi Geranium homeanum Turez secara in vitro dan pencirian awal senyawa kimianya. Thesis IPB.
Ignatov A, Clark WG, Cline SD, Psenak M, Krueger RJ. 1996. Elicitation of dihydrobenzhophenanthridine oxydase in Sanguinaria canadensis cell cultures. Phytochemistry 43(6):1141-1144.
Isogai S, Touno K, Shimomura K. 2008. Gibberellic acid improved shoot multiplication in Cephaelis ipecacuanha. In Vitro Cell. Dev. Biol. Plant 44:216–220
Istiana, Hayatie L. 2009. Aktivitas plasmodial in vivo ekstrak etanol daun jeruju [Laporan kegiatan eksplorasi tanaman obat khas lahan basah Kalimantan yang berkhasiat sebagai obat antimalaria dan filariasis]. Banjarmasin: Universitas Lambung Mangkurat.
Jain A, Kantia A, Kothari SL. 2001. De novo differentiation of shoot buds from leaf-callus of Dianthus caryophyllus L. and control of hyperhydricity. Scientia Horticulturae 87:319-326.
Jain N, M.W. Bairu, W.A. Stirk, J. Van Staden. 2009. The effect of medium, carbon source and explant on regeneration and control of shoot-tip necrosis in Harpagophytum procumbens. South African Journal of Botany 75:117–121.
Kamei K, Matsuoka H, Furuhata S, Fujisaki R, Kawakami T, Mogi S, Yoshihara H, Aoki N, Ishi A, Shibuya T. 2000. Anti-malarial activity of leaf-extract of Hydrangea macrophylla, a common Japanese plant. Acta Med Okayama 54(5):227-232.
Kang SM, Jung HY, Kang YM, Yun DJ, Bahk JD, Yang JK, Choi MS. 2004. Effects of methyl jasmonate and salicylic acid on the production of tropane alkaloids and the expression of PMT and H6H in adventitious root cultures of Scopolia parviflora. Plant Science 166:745–751.
Kantia A, Kothari SL. 2002. High efficiency adventitious shoot bud formation and plant regeneration from leaf explants of Dianthus chinensis L. Scientia Horticulturae 96:205–212.
Kaufman PB, Pennacchini L, McKenzie M, Hoyt JE. 1999. Good and Bad Uses of These Compounds by Human in Natural Products from Plants. Di dalam: Cseke LJ et al. Natural Products from Plants. New York: CRC Press.
Kee WY, Gao WY, Son SH, Paek KY. 2000. Improvement of sinsenoside production by jasmonic and some other elicitor in hairy root culture of ginseng (Panax ginseng C.A. Meyer). In Vitro Cell Dev Biol Plant. 36:124-128.
Kevers C, Gaspar T. 1985. Vitrivication of carnation in vitro: changes in ethylene production, ACC level and capacity to convert ACC to ethylene. Plant Cell Tissue Organ Culture 4:215-223.
Komaraiah P, Kishor PBK, Carlsson M, Magnusson KE, Mandenius CF. 2005. Enhancement of anthraquinone accumulation in Morinda citrifolia suspension cultures. Plant Science 168:1337–1344.
Kristina NN, Sirait N, Surachman D. 2008. Multiplikasi tunas dan aklimatisasi pegagan (Centella asiatica L.) periode kultur lima tahun. Jurnal Littri 14(1):30-35.
Kusumawati IW, Djatmiko, Rahman A, Studiawan H, Ekasari W. 2003. Eksplorasi keanekaragaman dan kandungan kimia tumbuhan obat di hutan tropis Gunung Arjuno. Jurnal Bahan Alam Indonesia 2(3):100-104.
Lee YK, Chung WI, Ezura H. 2003. Efficient plant regeneration via organogenesis in winter squash (Cucurbita maxima Duch.). Plant Science 164:413-/418.
Lestari EG. 2008. Kultur Jaringan. Bogor: Penerbit Akademia.
Lenny S. 2006. Senyawa flavonoida, fenilpropanoida dan alkaloid [Karya Ilmiah]. Medan: USU Repository.
Lo KH. 1997. Factors affecting shoot organogenesis in leaf disc culture of African violet. Scientia Horticulturae 72:49-57.
Lusiana H. 2009. Isolasi dan uji anti Plasmodium secara in vitro senyawa alkaloid dari Albertisia papuana BECC [Thesis]. Bogor: Program Pascasarjana, Institut Pertanian Bogor.
Madhuri V, Rajam MV. 1993. Apical shoot meristem culture in red pepper (Capsicum annuum L.). J Plant Biochem Biotech. 2:67-68.
Mantell SH, Smith H. 1985. Cultural Factor that Influence Secondary Metabolites Accumulation in Plant Cell and Tissue Cultures. London: Plant Biotechnology Cambridge University.
Materia Medika Indonesia Jilid VI. 1995. Departemen Kesehatan RI.
Matjik AA, Sumertajaya IM. 2006. Perancangan Percobaan dengan Aplikasi SAS dan Minitab. Bogor:IPBPress.
MillerRM, Kaul V, Hutchinson JF, Richards D, 1991. Adventitious shoot regeneration in carnation (Dianthus caryopyhllus L.) from axillary bud explants. Ann. Bot 67:35-42.
Mohamed-Yasseen. 1994. In vitro shoot proliferation and production of sets from garlic and shallot. Plant Cell Tissue Organ Culture 23:243-247.
Mulyati AH. 2005. Pertumbuhan akar rambut dan produksi alkaloid kinolin dengan elisitasi dan penggandaan kromosom tanaman kina (Chinchona succirubra) [Thesis]. Bogor: Program Pascasarjana, Institut Pertanian Bogor.
Nisa C, Ismuhajaroh BI, Adriani DE, Purnomo J, Hardarani N. 2009. Pengaruh jumlah ruas dan komposisi media tanam terhadap pertumbuhan setek jeruju (Hydrolea spinosa L.) [Laporan Kegiatan Ekstraksi Tanaman Obat Khas Lahan Basah Kalimantan yang Berkhasiat sebagai Obat Antimalaria dan Filariasis]. Banjarmasin: Universitas Lambung Mangkurat.
Ntui VO, Thirukkumaran G, Iioka S, Mii M. 2009. Efficient plant regeneration via organogenesis in ‘‘Egusi’’ melon (Colocynthis citrullus L.). Scientia Horticulturae 119:397–402.
Nugroho LH, Peltenburg-Looman AMG, de Vos H, Verberne MC, Verpoorte R. 2002. Nicotine and related alkaloids accumulation in constitutive salicylic acid producing tobacco plants. Plant Science 162:575--580.
Ouattara Y, Sanon S, Traoré Y, Mahiou V, Azas N, Sawadogo L. 2007. Antimalarial activity of Swartzia madagascariensis (leguminosae), Combretum glutinosum Guill. And Perr. (combretaceae) and Tinospora bakis Miers. (menispermaceae), Burkino Faso mecinal plants. Afr J Traditional 3(1):75-81.
Pal SP, Alam I, Anisuzzaman M, Sarker KK, Sharmin SA, Alam MA. 2007. Indirect Organogenesis in Summer Squash (Cucurbita pepo L.). Turk J Agric For 31:63-70.
Pandiangan D. 2006. Respon pertumbuhan kalus Catharanthus roseus yang diberi perlakuan triptofan. Jurnal Biotika 5(2):48-56
Pandiangan D, Nainggolan N. 2006. Peningkatan kandungan katarantin pada kultur kalus Catharanthus roseus dengan pemberian NAA. Hayati:1-7. Peddaboina V, Thamidala C, Karampuri S. 2006. In vitro shoot multiplication and
plant regeneration in four Capsicum species using thidiazuron. Scientia Horticulturae 107:117–122.
Peebles CAM. 2008. Metabolic engineering of the terpenoid indole alkaloid pathway of Catharanthus roseus hairy root [Thesis]. Houston: Iowa State University.
Pierik RLM. 1987. In Vitro Culture of Higher Plants. Dardrecht:Martinus Nijhoff Publ.
Pitoyo A, Solichatun, Anggarwulan E. 2003. Optimalisasi produksi alkaloid terpenoid pada kultur kalus dan suspensi sel Catharanthus roseus (L.) G. Don. dengan pemberian HCl dan variasi triptofan dalam media kultur. BioSMART 5(1):25-32.
Purnamaningsih R, Lestari EG, Yunita R. 2007. Pengaruh jenis eksplan dan auksin terhadap pertumbuhan kalus Artemisia. Prosiding Seminar Nasional dan Pameran Perkembangan Teknologi Tanaman Obat dan Aromatik:348-354.
Radji M. 2005. Peranan bioteknologi dan mikroba endofit dalam pengembangan obat herbal. Majalah Ilmu Kefarmasian 2(3):113-126.
Ramanayake SMSD, Meemaduma VN, Weerawardene TE. 2006. In vitro shoot proliferation and enhancement of rooting for the large-scale propagation of yellow bamboo (Bambusa vulgaris ‘Striata’). Scientia Horticulturae 110:109–113.
Ramli D, Dharmono. 1997. Penamaan dan pemanfaatan tumbuhan rawa sebagai obat pada masyarakat Negara kabupaten Hulu Sungai Selatan. Widya Karya 12(2):23-33.
Raveendar S, Premkumar A, Sasikumar S, Ignacimuthu S, Agastian P. 2009. Development of a rapid, highly efficient system of organogenesis in cowpea Vigna unguiculata (L.) Walp. South African Journal of Botany 75:17–21.
Ripley KP, Preece JE. 1986. Micropropagation of Euphorbia lathyris L. Plant
Cell, Tissue Organ Cult 5:213–218.
Rohayati. 2002. Organogenesis dan pola pertumbuhan tunas melon (Cucumis melo L.) cv Japanese cantaloupe secara in vitro [Thesis]. Bogor: Program Pascasarjana, Institut Pertanian Bogor.
Rothe G, Drager B. 2002.Tropane alkaloids metabolic response to carbohydrate signal in root cultures of Atropa belladonna. Plant Science 163:979-985. Rothe G, Garske U, Drager B. 2001. Calystegines in root cultures of Atropa
belladonna respond to sucrose, not to elicitation. Plant Sci. 160:1043- 1053.
Roy J, Banerjee N. 2002. Rhizome and shoot development during in vitro propagation of Geodorum densiflorum (Lam.) Schltr. Scientia Horticulturae 94:181–192.
Sahoo Y, Pattnaik SK, Chand PK. 1997. Plant regeneration from callus cultures of Morus indica L. derived from seedlings and mature plants. Scientia Horticulturae 69:85-98.
Samantaray S, Rout GR, Das P. 1995. An in vitro study on organogenesis in Trema orientalis (Blume) Linn. Plant Science 105:87-94.
Santoso U, Nursandi F. 2001. Kultur Jaringan Tanaman. Malang:Penerbitan Fakultas Pertanian Universitas Brawijaya.
Selvaraj N, Vasudevan A, Manickavasagam M, Kasthurirengan S, Ganapathi A. 2007. High frequency shoot regeneration from cotyledon explants of cucumber via organogenesis. Scientia Horticulturae 112:2–8.
Sen J, Sen S. 1995. Two-step bud culture technique for a high frequency regeneration of Gladiolus corms.
Silvestrini A et al. 2002. Effects of alkaloid precursor feeding on a Camptotheca acuminate cell line. Plant Physiol Biochem 40 (2002) 749–753
Smith JL, Smart NJ, Kurtz WGW, Misawa M. 1987. Stimulation of indole alkaloid production in cell-suspension cultures of Catharanthus roseus by abscisic acid. Planta Med 53:470–474.
Srivastava NK, Srivastava AK. 2007. Influence of gibberellic acid on 14CO2 metabolism, growth, and production of alkaloids in Catharanthus roseus. Photosynthetica 45 (1): 156-160.
Sutomo, Arnida, Yunus R, Wathan N. 2009. Karakterisasi golongan senyawa bioaktif daun jeruju yang berpotensi sebagai antimalaria melalui pendekatan bioassay quide [Laporan Kegiatan Ekstraksi Tanaman Obat Khas Lahan Basah Kalimantan yang Berkhasiat sebagai Obat Antimalaria dan Filariasis]. Banjarmasin: Universitas Lambung Mangkurat.
Syahid SF, Hernani. 2001. Pengaruh ZPT terhadap pembentukan dan pertumbuhan serta kandungan sinensetin dalam kalus pada tanaman kumis kucing (Orthosiphon aristatus). Jurnal Littri 7(4):99-103.
Syamsudin. 2008. Penapisan senyawa antimalaria yang berasal dari tumbuhan. Jurnal Ilmu Kefarmasian Indonesia 6(2):95-99.
Taha HS, El-Bahr MK, El-Nasr MMS. 2009. In vitro studies on Egyptian Catharanthus roseus (L.). Ii. Effect of Biotic and Abiotic Stress on Indole Alkaloids Production. Journal of Applied Sciences Research 5(10):1826- 1831.
Taiz L, Zeiger E. 2002. Plant Physiology. Sunderland, Massachusetts: Sinauer Associates, Inc. Publisher.
Tarigan J. 2003. Kombinasi kina tetrasiklin pada pengobatan malaria falciparum tanpa komplikasi daerah resisten multidrug malaria. Medan: USU digital library.
Thiem OB. 2003. In vitro propagation of isoflavone-producing Pueraria lobata (Willd.). Plant Science 165:1123-1128.
Tjitra E. 2005. Pengobatan malaria dengan kombinasi artemisinin. Buletin Penelitian Kesehatan 33(5):53-61.
Triagiano RN, Gray DJ. 2000. Plant Tissue Culture Concepts and Laboratory Exercise. New York: CRC Press.
Vasconsuelo A, Boland R. 2007. Review : molecular aspects of the early stages of elicitation of secondary metabolites in plants. Plant Science 172:861–875. Veltcheva MR, Svetleva DL. 2005. In vitro regeneration of Phaseolus vulgaris L.
via organogenesis from petiole explants. Journal of Central European Agriculture 6(1):53-58.
Verpoorte R. 2000. Plant Secondary Metabolism. In: Verpoorte R, Alfermann AW, editor. Metabolic Engineering of Plant Secondary Metabolism. London: Kluwer Academic Publisher.
Vickery ML, Vickery B. 1981. Secondary Plant Metabolism. London and Basingstoke: The Macmillan Press LTD.
Villegas M, Sommarin M, Brodelius PE. 2000. Effects of sodium orthovanadate on benzophenanthridine alkaloid formation and distribution in cell suspension cultures of Eschscholtzia californica. Plant Physiol. Biochem 38(3):233−241.
Watad AA, Ahroni A, Zuker A, Shejtman H, Nissim A, Vainstein A. 1996. Adventitious shoot formation from carnation stem segments: a comparison of different culture procedures. Scientia Horticulturae 65:313-320.
Wattimena GA, Gunawan LW, Mattjik NA, Syamsudin E, Wiendi NMA, Ernawati A. 1992. Bioteknologi Tanaman Laboratorium Kultur Jaringan Tanaman. Bogor:Departemen Pendidikan dan Kebudayaan Direktorat Jenderal Pendidikan Tinggi Pusat Antar Universitas Bioteknologi IPB. Wetter LR, Constabel F. 1991. Metode Kultur Jaringan Tanaman. Bandung:
Penerbit Institut Teknologi Bandung.
Widyastuti N, Blondine CP, Yuniarti RA. 2008. Pengaruh pH larutan buffer dan suhu penyimpanan terhadap aktivitas larvasida Bacillus sphaericus 2362. Bulletin Penelitian Kesehatan 36(1):33-47.
Wiendi NMA, Wattimena GA, Gunawan LW. 1992. Produksi Senyawa Metabolit Sekunder dengan Kultur Jaringan. Bogor: Bioteknologi Tanaman. Pusat Antar Universitas. Institut Pertanian Bogor.
Xu B, Dai W,Chao WS. 2008. An efficient method for in vitro regeneration of leafy spurge (Euphorbia esula L.). In Vitro Cell Dev Biol Plant 44:548– 556.
Yelnititis, Yuliani S, Syahid SF. 2000. Induksi senyawa Alkaloid pada Daun Tanaman Kemukus (Piper cubeba L.) melalui Kultur Jaringan. Buletin Penelitian Tanaman Rempah dan Obat 11(2):1-10.
Yunita R, Lestari EG. 2008. Induksi kalus dan regenerasi tunas pulai pandak (Rauwolfia serpentine L.). Berita Biologi 9(1):91-97.
Yuwono T. 2008. Bioteknologi Pertanian. Yogyakarta: Gadjah Mada University Press.
Zambre M et al. 2002. Prolific regeneration of fertile plants from green nodular callus induced from meristematic tissues in Lathyrus sativus L. (grass pea) Plant Science 163:1107-/1112.
Zheng W, Xu XD, Dai H, Chen LQ. 2009. Direct regeneration of plants derived from in vitro cultured shoot tips and leaves of three Lysimachia species. Scientia Horticulturae 122:138–141.
Lampiran 1 Data kasus malaria di Kalimantan Selatan Tahun Banyaknya
kasus
Korban meninggal dunia (jiwa)
Wilayah penyebaran (kabupaten)
2006 800 5 Tanah Bumbu
Hulu Sungai Selatan Hulu Sungai Tengah Tabalong
Banjar
2007 747 14 Hulu Sungai Selatan
Banjar Barito Kuala
2008 1167 11 Hulu Sungai Selatan
Barito Kuala Hulu Sungai Utara Tapin
2009 3000 13 Hulu Sungai Selatan
Hulu Sungai Utara Tanah Bumbu Tabalong Banjarbaru Tanah Laut Kota Baru Sumber : DinKes KalSel 2009
Lampiran 4 Komposisi hara dalam media Murashige and Skoog
Stok Bahan Konsentrasi
per liter (mg) Kepekatan larutan stok Larutan stok 1 l (g) A NH4NO3 1 650.000 50 x 82.500 B KNO3 1 900.000 50 x 95.000 C KH2PO4 H3BO3 KI Na2MoO4.2H2O CoCl2.6H2O 170.000 6.200 0.830 0.250 0.025 200 x 34.000 1.240 0.166 0.050 0.005 D CaCl2.2H2O 440.000 200 x 88.000 E MgSO4.7H2O MnSO4.4H2O CuSO4.7H2O 370.000 22.300 0.025 200 x 74.000 4.460 0.005 F Na2EDTA.2H2O FeSO4.7H2O 37.300 27.800 100 x 3.730 2.780 Myo Myo-inositol 100.000 100 x 10.000 Vitamin Thiamine Nicotine Piridoxine Glycine 0.100 0.500 0.500 2.000 100 x 0.010 0.050 0.050 0.200
Lampiran 6 Cara membuat reagen Mayer dan Bouchardat
y Mayer LP : 60 ml HgCl2 2.266% b/v ditambah dengan 10 ml KI 50%
b/v kemudian ditera dengan air hingga 100 ml y Bouchardat LP : 2 gr I2 dan 4 g KI dilarutkan dalam 100 ml air
(DepKes RI).
NOFIA HARDARANI. Perbanyakan In Vitro dan Induksi Akumulasi Alkaloid pada Tanaman Jeruju (Hydrolea spinosa L.). Dibimbing oleh AGUS PURWITO dan DEWI SUKMA.
Hydrolea spinosa merupakan salah satu tanaman yang berpotensi sebagai obat antimalaria. Masyarakat setempat di Kalimantan Selatan menyebut tanaman ini sebagai Jeruju. Senyawa alkaloid dalam tanaman ini memiliki aktivitas antiplasmodial. Pertumbuhan tunas aksilar tanaman ini terhambat apabila dibudidayakan menggunakan media tanah karena membutuhkan lingkungan seperti habitat aslinya, yaitu di lahan basah. Kultur jaringan menjadi alternatif teknik perbanyakan sehingga diperlukan protokol perbanyakan in vitro untuk tanaman ini. Teknik ini juga digunakan dalam upaya peningkatan kandungan senyawa alkaloid melalui beberapa metode manipulasi. Tujuan dari penelitian ini adalah untuk menemukan pengaruh zat pengatur tumbuh dan jenis eksplan terhadap induksi, proliferasi dan elongasi tunas, juga induksi kalus pada kultur jaringan tanaman jeruju serta untuk menginduksi akumulasi senyawa alkaloidnya melalui beberapa metode secara in vitro. Induksi dan proliferasi tunas menggunakan eksplan pucuk dan buku dengan berbagai konsentrasi BAP, sedangkan induksi kalus dari eksplan daun muda dan batang menggunakan perlakuan berupa beberapa konsentrasi auksin (2.4-D and NAA) dengan sitokinin (BAP) konsentrasi tinggi. Elongasi tunas dilakukan menggunakan media MS dengan berbagai konsentrasi hara (penuh, setengah dan seperempat konsentrasi hara) dan dengan atau tanpa penambahan giberelin (GA3). Prekursor asam amino
(triptofan), elisitor (asam salisilat) and pemberian sukrosa konsentrasi tinggi (6%) digunakan untuk menginduksi akumulasi alkaloid pada kultur kalus dan tunas. Konsentrasi sitokinin memberikan pengaruh yang berbeda nyata bagi jumlah tunas per eksplan dan jumlah buku per eksplan. Baik eksplan pucuk maupun buku memiliki potensi yang sama sebagai bahan tanam dalam induksi dan proliferasi tunas. Keberadaan zat pengatur tumbuh penting bagi induksi kalus namun konsentrasinya tidak berpengaruh nyata terhadap induksi kalus. Dalam induksi kalus, eksplan daun lebih baik daripada eksplan batang. Media MS dengan setengah konsentrasi hara menghasilkan perakaran dan tunas yang vigor. Tunas hasil elongasi pada media MS ½ diaklimatisasi dan memiliki daya tumbuh sebesar 75%. Semua perlakuan induksi akumulasi alkaloid total tidak dapat menunjukkan peningkatan aenyawa secara kualitatif.