Saran - KESIMPULAN DAN SARAN - PENGARUH SUPLEMENTASI SELENIUM ORGANIK DENGAN DOSIS BERBEDA DALA

IV. KESIMPULAN DAN SARAN

4.2 Saran

Perlunya dilakukan penelitian lanjutan dengan dosis suplementasi selenium organik lebih tinggi dalam pakan yang bertujuan untuk mengetahui dosis selenium organik yang optimal untuk kinerja pertumbuhan ikan nila merah (Oreochromis sp.).

DAFTAR PUSTAKA

Anonim. 2010. Selenium. http://digilib.unsri.ac.id/download/selenium.pdf. [5 Agustus 2012].

Bell, J.G., Cowey, C.B., and Adron, J.W. 1985. Some effect of vitamin E selenium deprivation on tissue enzyme levels and indices of tissue peroxidation in rainbow trout (Salmo gairdneri). British Journal of Nutrition, 53:149-157

Blazer, V.S. 1992. Nutrition and disease resistance in fish. Annual Rev. of Fish Disease, 2:309-323.

Brown, K.M., and Arthur, J.R. 2001. Selenium, selenoproteins and human health: a review. Public Health Nutrition 4(2B):593-599

Effendie, M.I. 2005. Biologi Perikanan. Yogyakarta: Yayasan Pustaka Nusatama. Gatlin, D.M., and Wilson, R.P. 1984. Dietary selenium requirement of fingerling channel catfish. Departement of Biochemistry, Mississippi State University, Mississippi State, MS 39762.

Hilton, J.W., Hodson, P.V., and Slinger, S.J. 1980. The Requirements and Toxicity of selenium in rainbow trout (Salmo gairdneri). Journal of Nutrition, 110: 2527-2535.

Junior, M.Z. 2003. Endrokrinologi dan peranannya bagi masa depan perikanan Indonesia. Orasi Ilmiah. Fakultas Perikanan dan Ilmu Kelautan, Institut Pertanian Bogor.

Junior, M.Z., Pahlawan, R.G., dan Raswin, M. 2005. Pengaruh pemberian hormon tiroksin secara oral terhadap pertumbuhan dan kelangsungan hidup ikan plati koral Xiphophorus maculatus. Jurnal Akuakultur Indonesia, 4 (1) : 31 -35.

Lin, Y.H., and Shiau, S.Y. 2005. Dietary selenium requirements of juvenile grouper Epinephelus malabaricus. Aquaculture, 250: 356–363.

[NRC] National Research Council. 1993. Nutrient Requirement of Fish. National Academic Press, Washington DC.

16 Tawwab, M.A., Mousa, M.A.A, and Abbas, F.E. 2007. Growth performance and physiological response of African catfish, Clarias gariepinus (B.) fed organik selenium prior to the exposure to environmental copper toxicity. Aquaculture, 272: 335–345.

Watanabe, T. 1997. Trace mineral in fish nutrition. Journal Aquaculture, 151: 185 – 207.

18 Lampiran1. Prosedur analisis proksimat

1. Prosedur analisis kadar air

2. Prosedur analisis kadar serat kasar

Kertas saring dipanaskan dalam oven 110 ^oC selama 1 jam, lalu dinginkan dalam desikator selam 30 menit, dan

ditimbang (X1) Bahan ditimbang 0,5 g (A), lalu dimasukkan ke

dalam Erlenmeyer 250 ml

50 ml H2SO4 0,3 N ditambahkan dalam Erlenmeyer, lalu dipanaskan selama 30 menit di

atas hotplate

Tambahkan 25 ml NaOH 1,5 N, lalu dipanaskan kembali selama 30 menit

Larutan disaring dengan bahan pembilasan secara berurutan sebagai berikut:

1. 50 ml air panas 2. 50 ml H2SO4

3. 50 ml air panas 4. 25 ml aceton

Kertas saring hasil penyaringan dimasukkan ke dalam cawan porselen

Cawan porselen dipanaskan pada suhu 105-110 ^oC selama 1 jam lalu

didinginkan

Dipanaskan pada suhu 105-110 ^oC selama 1 jam, didinginkan, dan ditimbang (X2)

Dipanaskan dalam tanur pada suhu 600 ^oC hingga berwarna putih, didinginkan, dan

ditimbang (X3)

Kertas saring dipasang pada labu Buchner yang telah terhubung dengan

vacumm pump Cawan porselen dipanaskan pada suhu 105-110 ^oCselama 1 jam, dan kemudian didinginkan dalam desikator selama 30 menit dan ditimbang (X1)

Bahan ditimbang 2-3 g (A) lalu dimasukkan ke dalam cawan

Cawan dan bahan dipanaskan selama 4 jam pada suhu 105-110 ^oC, didinginkan dalam desikator selama 30 menit dan ditimbang (X2)

19 Lanjutan Lampiran 1

3. Prosedur analisis kadar protein a. Tahap oksidasi

b. Tahap Destilasi

c. Tahap Titrasi

Keterangan :

Vb = ml 0,05 N titran NaOH untuk blanko A = Bobot sampel (gr) Va = ml 0,05 N titran NaOH untuk sampel ** = Faktor Nitrogen * = Setiap 0,05 NaOH ekivalen dengan 0,0007 gr N

5 ml larutan hasil oksidasi dimasukkan ke dalam labu destilasi

Destilasi selama 10 menit dari tetesan pertama

Dimasukkan ke dalam gelas piala 250 ml 2-3 tetes indikator methylen

blue (larutan B) 10 ml H2SO4 0,05 N

H2SO4 pekat 10 ml Katalis (K2SO4+CuSO4.%H2O)

ditimbang sebanyak 3 g Bahan ditimbang 0,5 g (A)

Masukan ke dalam labu Kjedhal dan dipanaskan sampai suhu 400 ^oC selama 3-4 jam hingga berwarna hijau bening, dinginkan dengan akudes dan diencerkan dengan hingga volume 100 ml

(larutan A)

Hasil destilasi dititrasi dengan NaOH

Titrasi hingga larutan menjadi kehijauan.

Hitung ml titran yang dipakai dan catat (V)

Lakukan prosedur yang sama pada blanko

20 Lanjutan Lampiran 1

4. Prosedur analisis kadar lemak

a. Metode Soxchlet (sampel kering/pakan)

b. Metode Folch (sampel basah/ikan)

Labu dipanaskan pada suhu 104-110 ^oC selama 1 jam, kemudian didinginkan dalam desikator dan ditimbang (X1)

Bahan ditimbang 2-3 g (A) lalu dimasukkan ke dalam selongsong

Dimasukkan ke dalam Soxhlet dan diberi 100-150 ml N-Hexan hingga selongsong terendam. Sisa N-Hexan dimasukkan ke dalam

labu

Labu dipanaskan di atas hotplate hingga larutan perendam selongsong dalam Soxhlet berwarna bening

Labu dan lemak yang tersisa dipanaskan dalam oven selama 15 menit, didinginkan, lalu ditimbang (X2)

Timbang sampel 2 g (A), tambahkan 40 ml larutan chloroform: methanol (2:1), homogenkan dalam mortar selama 5 menit, saring

dengan menggunakan vacuum pump

Mg Cl2.6H2O2 sebanyak 0,2 x volume chloroform:methanol (2:1) yang digunakan

hasil saringan dimasukan ke dalam labu Pemisah dan saring kembali

lakukan pembilasan dengan larutan chloroform:methanol sebanyak 10 ml

selesai disaring labu pemisah ditutup dan diaduk hingga merata selama 1 menit

labu diuapkan menggunakan vacuum evaporator hingga larutan menguap semua

diamkan 1 malam hingga terjadi 2 lapisan, ambil larutan bawah dan disimpan dalam labu yang telah diketahui bobotnya (B)

timbang labu akhir (C) setelah dipastikan larutannya menguap semua

21 Lanjutan Lampiran 1

5. Prosedur analisis kadar abu

Catatan : Cawan dari tanur dimasukan dalam desikator setelah suhu tanur turun sampai 100 ^oC atau 200 ^oC

Lampiran 2. Prosedur preparasi sampel untuk analisis kadar selenium pakan 1. Sampel (pakan/ikan) ditimbang sebanyak 5 g dan masukan ke dalam

Erlenmeyer 125 ml

2. Tambahkan 5 ml HNO₃ (Nitric Acid) dan diamkan selama 1 jam

3. Panaskan pada hot plate dengan temperatur rendah selama 4-6 jam atau sampai semua warna kuning menguap

4. Sampel tersebut di tutup kemudian didiamkan selama 1 malam

5. Tambahkan 0,4 ml H2SO4 (Sulfuric Acid) pekat, lalu dipanaskan diatas hot

plate sampai larutan berkurang atau lebih pekat.

6. Tambahkan 2-3 tetes larutan campuran HClO₄ : HNO3 (2:1). Pemanasan terus dilanjutkan sampai terjadi perubahan warna dari coklat menjadi kuning tua, kemudian menjadi kuning muda.

7. Pemanasan dilanjutkan selama 10-15 menit setelah terjadi perubahan warna 8. Sampel dipindahkan, didinginkan dan ditambahkan 2 ml akuades dan 0,6 ml

HCl

9. Sampel dipanaskan (±15 menit) kembali agar larut, kemudian dimasukan kedalam labu takar 100 ml

10. Apabila terdapat endapan, maka disaring terlebih dahulu dengan menggunakan

glass wool

11. Hasil penggabungan basa kemudian dianalisis di AAS atau spektrofotometer sesuai dengan panjang gelombang untuk mineral Se.

Cawan dan bahan dipanaskan di dalam tanur dengan suhu 600 ^oC, lalu didinginkan dalam desikator selama 30 menit dan ditimbang (X2)

Bahan ditimbang 2-3 gr (A) lalu dimasukkan ke dalam cawan Cawan dipanaskan dalam oven pada suhu 105-110^oC selama 1 jam, kemudian didinginkan dalam desikator selama 30 menit dan ditimbang (X1)

22 Lampiran 3. Data hasil pengukuran kadar selenium pakan uji

23 Lampiran 4. Hasil biomassa awal, biomassa akhir, laju pertumbuhan harian, jumlah konsumsi pakan, efisiensi pakan, tingkat kelangsungan hidup dan hasil analisis sidik ragam (ANOVA) ikan nila merah (Orechromis sp.) yang dipelihara selama 40 hari.

Biomassa Awal (g)

Ulangan ^{Pakan Perlakuan (mg Se/kg pakan)}

A (0,12) B (0,19) C (1,05) D (1,42) 1 92,64 95,24 94,5 94,89 2 94,35 97,57 94,94 96,27 Rerata BA 93,50 96,41 94,72 95,58 Deviasi 1,21 1,65 0,31 0,98 ANOVA

Sum of Squares Df Mean Square F Sig.

Between Groups 9.288 3 3.096 2.370 .212

Within Groups 5.225 4 1.306

Total 14.513 7

Biomassa Akhir (g)

Ulangan ^{Pakan Perlakuan (mg Se/kg pakan)}

A (0,12) B (0,19) C (1,05) D (1,42) 1 184,64 208,17 192,85 235,28 2 189,81 196,74 198,51- 226,36 Rerata BAk 187,23 202,46 195,68 230,82 Deviasi 3,66 8,08 4,00 6,31 ANOVA D40

Sum of Squares Df Mean Square F Sig.

Between Groups 2144.629 3 714.876 21.262 .006

Within Groups 134.488 4 33.622

Total 2279.117 7

Tukey HSD^a

Biomassa.Akhir

Subset for alpha = 0.05

N 1 2 A (0,12 mg se/kg pakan) 2 187.23 C (1,05 mg se/kg pakan) 2 195.68 B (0,19 mg se/kg pakan) 2 202.45 D (0,12 mg se/kg pakan) 2 230.82 Sig. .176 1.000

Means for groups in homogeneous subsets are displayed. a. Uses Harmonic Mean Sample Size = 2,000.

24 Jumlah Konsumsi Pakan (JKP)

Ulangan ^{Pakan Perlakuan (mg Se/kg pakan)}

A (0,12) B (0,19) C (1,05) D (1,42) 1 239,90 ^262,65 243,48 278,03 2 248,01 ^262,19 245,95 276,46 Rerata JKP ^243,96 ^262,42 ^244,71 ^277,25 Deviasi 5,73 0,32 1,75 1,11 ANOVA D40 Sum of

Squares Df Mean Square F Sig.

Between Groups 1520.603 3 506.868 54.393 .001

Within Groups 37.275 4 9.319

Total 1557.878 7

D40

Tukey HSD^a

Jumlah Konsumsi Pakan

Subset for alpha = 0.05

N 1 2 3 A (0,12 mg se/kg pakan) 2 243.95 C (1,05 mg se/kg pakan) 2 244.71 B (0,19 mg se/kg pakan) 2 262.42 D (1,42 mg se/kg pakan) 2 277.25 Sig. .994 1.000 1.000

Means for groups in homogeneous subsets are displayed. a. Uses Harmonic Mean Sample Size = 2,000.

Laju Pertumbuhan Harian (LPH)

Ulangan ^{Pakan Perlakuan (mg Se/kg pakan)}

A (0,12) B (0,19) C (1,05) D (1,42) 1 1,74 1,98 1,80 2,28 2 2,03 1,77 1,86 2,16 Rerata LPH 1,89 1,88 1,83 2,22 Deviasi 0,2 0,15 0,04 0,1 ANOVA D40

Sum of Squares Df Mean Square F Sig.

Between Groups .194 3 .065 3.543 .127

Within Groups .073 4 .018

25 Efisiensi Pakan (EP)

Ulangan ^{Pakan Perlakuan (mg Se/kg pakan)}

A (0,12) B (0,19) C (1,05) D (1,42) 1 38,35 43,00 40,39 50,49 2 42,57 37,82 42,11 47,06 Rerata EPP 40,46 40,41 41,25 48,78 Deviasi 2,99 3,66 1,21 2,43 ANOVA D40 Sum of

Squares Df Mean Square F Sig.

Between Groups 98.535 3 32.845 4.426 .092

Within Groups 29.682 4 7.421

Total 128.217 7

Retensi Protein (RP)

Ulangan ^{Pakan Perlakuan (mg Se/kg pakan)}

A (0,12) B (0,19) C (1,05) D (1,42) 1 18,10 23,26 19,77 23,33 2 18,03 20,55 20,98 21,41 Rerata RP 18,07 21,91 20,37 22,37 Deviasi 0,05 1,91 0,85 1,36 ANOVA D40 Sum of

Squares Df Mean Square F Sig.

Between Groups 22.576 3 7.525 4.816 .081

Within Groups 6.250 4 1.562

Total 28.826 7

Retensi Lemak (RL)

Ulangan ^{Pakan Perlakuan (mg Se/kg pakan)}

A (0,12) B (0,19) C (1,05) D (1,42)

1 22,97 19,97 33,88 19,32

2 22,37 18,55 32,27 18,50

Rerata RL 22,67 19,26 33,08 18,91

26 ANOVA

D40

Sum of Squares Df Mean Square F Sig.

Between Groups 262.827 3 87.609 124.248 .000 Within Groups 2.820 4 .705 Total 265.647 7 D40 Tukey HSD^a Retensi Lemak

Subset for alpha = 0.05

N 1 2 3 D (1,42 mg se/kg pakan) 2 18.91 B (0,19 mg se/kg pakan) 2 19.26 19.26 A (0,12 mg se/kg pakan) 2 22.67 C (1,05 mg se/kg pakan) 2 33.08 Sig. .973 .050 1.000

Means for groups in homogeneous subsets are displayed. a. Uses Harmonic Mean Sample Size = 2,000.

Tingkat Kelangsungan Hidup (TKH)

Ulangan ^{Pakan Perlakuan (mg Se/kg pakan)}

A (0,12) B (0,19) C (1,05) D (1,42) 1 100 ¹⁰⁰ ¹⁰⁰ ¹⁰⁰ 2 90 ¹⁰⁰ ¹⁰⁰ ¹⁰⁰ Rerata TKH 95,00 100,00 100,00 100,00 Deviasi 7,1 0,00 0,00 0,00 ANOVA D40 Sum of

Squares Df Mean Square F Sig.

Between Groups 37.500 3 12.500 1.000 .479

Within Groups 50.000 4 12.500

27 Lampiran 5. Retensi protein ikan nila merah (Oreochromis sp.)

Ikan Ulangan ^{Perlakuan ( mg Se /kg pakan )}

A (0,12) B (0,19) C (1,05) D (1,42)

Biomassa ikan awal (g) ¹ ^92,64 ^95,24 ^94,5 ^94,89

2 94,35 97,5 94,95 96,27

Biomassa ikan akhir (g) ¹ ^184,681 ^208,17 ^192,85 ^235,28

2 189,81 196,74 198,51 226,36

Protein ikan awal ¹ ¹³ ¹³ ¹³ ¹³

2 13 13 13 13

Protein ikan akhir ¹ ^13,40 ^14,42 ^13,68 ^13,32

2 13,35 14,35 13,83 13,19

Protein total awal (g) ¹ ^12,04 ^12,38 ^12,29 ^12,34

2 12,27 12,68 12,34 12,52

Protein total akhir (g) ¹ ^24,75 ^30,02 ^26,38 ^31,34

2 25,34 28,23 27,45 29,86

Protein yang disimpan ¹ ^12,70 ^17,64 ^14,10 ^19,00

2 13,07 15,56 15,11 17,34

Jumlah konsumsi pakan ¹ ^239,90 ^262,65 ^243,48 ^278,03

2 247,92 262,19 245,95 276,46

Protein pakan ¹ ^29,25 ^28,87 ^29,29 ^29,30

2 29,25 28,87 29,29 29,30

Jumlah protein yang dikonsumsi ¹ ^70,17 ^75,83 ^71,32 ^81,46

2 72,52 75,69 72,04 81,00

Retensi protein ¹ ^18,10 ^23,26 ^19,77 ^23,33

2 18,03 20,55 20,98 21,41

28 Lampiran 6. Retensi lemak ikan nila merah (Oreochromis sp.)

Ikan Ulangan ^{Perlakuan ( mg Se /kg pakan )}

A (0,12) B (0,19) C (1,05) D (1,42)

Biomassa ikan awal (g) ¹ ^92,64 ^95,24 ^94,5 ^94,89

2 94,35 97,5 94,95 96,27

Biomassa ikan akhir (g) ¹ ^184,681 ^208,17 ^192,85 ^235,28

2 189,81 196,74 198,51 226,36

Lemak ikan awal ¹ ^2,13 ^2,13 ^2,13 ^2,13

2 2,13 2,13 2,13 2,13

Lemak ikan akhir ¹ ^3,02 ^2,64 ^3,73 ^2,43

2 2,97 2,69 3,53 2,46

Lemak total awal (g) ¹ ^1,97 ^2,03 ^2,01 ^2,02

2 2,01 2,08 2,02 2,05

Lemak total akhir (g) ¹ ^5,58 ^5,50 ^7,19 ^5,72

2 5,64 5,29 7,01 5,57

Lemak yang disimpan ¹ ^3,60 ^3,47 ^5,18 ^3,70

2 3,63 3,22 4,98 3,52

Jumlah konsumsi pakan ¹ ^239,90 ^262,65 ^243,48 ^278,03

2 247,92 262,19 245,95 276,46

Lemak pakan ¹ ^6,54 ^6,61 ^6,28 ^6,88

2 6,54 6,61 6,28 6,88

Jumlah lemak yang dikonsumsi ¹ ^15,69 ^17,36 ^15,29 ^19,13

2 16,21 17,33 15,45 19,02

Retensi Lemak ¹ ^22,97 ^19,97 ^33,88 ^19,32

2 22,37 18,55 32,27 18,50

Retensi Lemak ± deviasi _{22,67±0,42 19,26±1,00} _33,08±1,14 _18,91±0,59

Lampiran 7. Hasil pengkuran kualiatas air selama pemeliharaan ikan nila merah (Oreochromis sp.)

Parameter ^{Perlakuan (mg se/kg pakan)} ^Optimal

A (0,12) B (0,19) C (1,05) D (1,42) Suhu (^oC) 27 – 31 27 – 31 27 – 31 27 – 31 26 – 31 pH 6 - 7,1 6 - 6,85 6 - 6,88 6-7,07 6-9 DO (mg/l) 5,6 - 5,7 5,3 - 5,7 5,5 - 5,8 5,3 - 6,5 > 4 Alkali (mg/l) 45,84 – 48 32 - 61,12 44 - 61,12 60 - 137,52 30 – 500 TAN (mg/l) 0,8 - 0,91 0,38 - 0,48 0,38 - 1,21 0,59 - 1,49 < 2,4

Dalam dokumen PENGARUH SUPLEMENTASI SELENIUM ORGANIK DENGAN DOSIS BERBEDA DALAM PAKAN TERHADAP KINERJA PERTUMBUHAN IKAN NILA MERAH (Oreochromis sp. (Halaman 24-38)