BAB V KESIMPULAN DAN SARAN
5.2 Saran
Diharapkan kepadapeneliti selanjutnya untuk dapat melakukan formulasi dari ekstrak etanol daun nipah dengan mempertimbangkan uji toksisitas terlebih dahulu.
DAFTAR PUSTAKA
Akiyama, H., Fujii, K., Yamasaki, O., Oono, T., dan Iwatsuki, K. (2001). Antibacterial Action of Several Tannins Against Staphylococcus aureus. Journal of Antimicrobial Chemotherapy. 48(4): 487-491.
Bakshi, M., Punarbasu, C. (2014). Antimicrobial Potential of Leaf Extracts of Ten Mangrove Species From Indian Sudarban. International Journal of Pharma and Bio Science. 5(1): 294-304.
Depkes RI. (1980). Materia Medika Indonesia. Jilid IV. Cetakan Pertama. Jakarta: Direktorat Jendral Pengawasan Obat dan Makanan. Hal. 94-98.
Depkes RI. (1995). Materia Medika Indonesia. Jilid VI. Cetakan Keenam. Jakarta: Direktorat Jendral Pengawasan Obat dan Makanan. Hal. 247-251, 199-304, 321-325.
Difco. (1977). Difco Manual of Dehydrated Culture Media and Reagents for Microbiology and Clinical Laboratory Procedures. 9th ed. Detroit Michigan: Difco Laboratories. Hal. 32-33.
Ditjen POM. (1979). Farmakope Indonesia. Edisi III. Jakarta: Departemen Kesehatan RI. Hal. 9, 33.
Ditjen POM. (1995). Farmakope Indonesia. Edisi IV. Jakarta: Departemen Kesehatan RI. Hal. 855, 896, 898, 1035.
Ditjen POM. (2000). Parameter Standar Umum Ekstrak Tumbuhan Obat. Jakarta: Departemen Kesehatan Republik Indonesia. Halaman 1, 10-11.
Dwidjoseputro. (1978). Dasar- Dasar Mikrobiologi. Jakarta : Penerbit Djambatan. Halaman 15-17.
Dzen, S.M., Santoso, S., Roekistiningsih., dan Winarsih S. (2003). Bakteriologi Medik. Malang: Bayumedia Publishing. Hal. 31-32, 120.
Engelkirk, P.G. (2010). Burton’s Microbiology for the Health Sciences. Edisi sembilan. North America: Lippincott Williams & Wilkins. Halaman 299. Farnsworth, N. R. (1966). Biological and Phytochemical Screening of Plants,
Journal of Pharmaceutical Sciences. Volume 55. Number 3. Chicago: Reheis Chemical Company. 262-264.
Ferawaty, A.S., Agus, S., dan Delianis, P. (2012). Potensi Antibakteri Ekstrak Rumput Laut Terhadap Bakteri Penyakit Kulit Pseudomonas aerufinosa,
Staphlococcus epidermis dan Micrococcus luteus. Journal of Marine Research. 1(2):152-160
Ganiswarna, S. (1995). Farmakologi dan Terapi. Edisi 4. Jakarta: Penerbit UI. Hal. 158.
Guzman, D.E., Galicia, J.J.M., Gatuz., M.S., Santiago, M.AR., Yumul, C.S., Castro, E.J.D., Clemente, R.F., Naguiat, E.S., Hillario, D.S. (2014). Antibacterial Soap from Nypa fruticans Wurmb Ethanolic Leaf Extract. International Conference on Convergence Technology. 4(1): 55-60.
Harborne, J. B. (1987). Phytochemical Method. Terbitan Kedua. Penerjemah: Kosasih Padmawinata dan Iwang Soediro. Metode Fitokimia. Bandung: Penerbit ITB. Hal. 147.
Hayek, S. A., Gyawali, R., dan Ibrahim, S. A., (2013). Antimicrobial Natural Product. Dalam: Vilas, A. M. (ed). Microbial Pathogens and Strategies for Combating them: Science, Technology and Education. Hal. 911, 915-916. Holt, G.J., Kneg, N.R., Sneath, A.H., Starley, T.J, Witirams, T.S. (1988). 9th
edition. Bergey’s Manual Od Determinative Bacteriology. London: Williams & Wilkins Company. Halaman 187.
ICMSF. (1996). Microorganisms in Food 5: Characteristic of Microbial Phatogens. Singapore: Science Publisher. Halaman 299.
Karsinah., Lucky H.M., Suharto., dan Mardiastuti H.W. (1994). Batang Negatif Gram. Dalam: Buku Ajar Mikrobiologi Kedokteran. Edisi Revisi. Jakarta: Penerbit Binarupa Aksara. hal. 161-162.
Lay, W.B. (1994). Analisis Mikrobiologi di Laboratorium. Jakarta: PT. Raja Grafindo Persada. Hal. 71-73.
Madduluri, S., Rao, B. K., dan Taram, S. B. (2013). In Vitro Evaluation of Antibacterial Activity of Five Indigenous Plants Extract Againts Five Bacterial Pathogens of Human. International Journal of Pharmacy and Pharmaceuticals Science. 5(4): 683-684.
Mursito. (2001). Ramuan Tradisional Untuk Kesehatan Anak. Jakarta: Penebar Swadaya. Hal. 2.
Osabor, V.N., Egbung, G.E., Okafor, P.C. (2008). Chemical Profile of Nypa fruticans from Cross River Estuary South Eastern Nigeria. Pakistan Journal of Nutrition. 7(1): 146-150.
Oxoid. (1982). The Oxoid Manual of Culture Media, Ingredients and Other Laboratory Service. Edisi ke-5. Basingstoke: Oxoid Ltd. Hal. 20.
Pelczar, M. J dan E. C. S. Chan. (1988). Dasar- Dasar Mikrobiologi. Terjemahan: R. S.Hadioetomo, T. Imas, S. S. Tjitrosomo, dan S. L. Angka. Jakarta :Penerbit UI Press. Halaman 132-133.
Pratiwi, S.T. (2008). Mikrobiologi Farmasi. Jakarta: Penerbit Erlangga. Hal. 105 117, 140-142.
Putri, I.J., Fauziyah, Elfita. (2012). Aktivitas Antioksidan Daun dan Biji Buah Nipah (Nypa fruticans) Asal Pesisir Banyuasin Sumatera Selatan Dengan Metode DPPH. Maspari Journal. 5(1): 16-21.
Robinson, T. (1995). Kandungan Organik Tumbuhan Tinggi. Bandung: ITB. Hal. 71-72.
Siregar, B. S. (2012). Analisis Finansial Serta Prospek Pengolahan Buah Nipah (Nypa fruticans) Menjadi Berbagai Produk Olahan. Skripsi. Medan: Departemen Kehutanan Fakultas Pertanian Universitas Sumatera Utara. Staf Pengajar FK Universitas Indonesia. (1993). Buku Ajar Mikrobiologi
Kedokteran. Jakarta: 18-20.
Stevanofic, O., Radojevic, I., Vasic, S., dan Comic, L. (2012). Antibacterial Aktivity of Naturally Occuring Compound from Selected Plants. Dalam: Bobbarala, V. (ed). Antimicrobial Agents. Kroasia: In Tech. Hal 2-3.
Supardi, I dan Sukamto. (1999). Mikrobiologi dalam Pengolahan dan Keamanan Pangan. Bandung : Penerbit Alumni. Hal. 138-141; 175-177; 182-184. Tim Mikrobiologi FK Universitas Brawijaya. (2003). Bakteriologi Medik. Cetakan
Pertama. Malang: Bayu Media Publisher. Hal. 12, 59.
Todd, J. (1999). Infeksi Bakteri. Dalam: Behrman, R, C., Kliegman, R, M., Arvin, A, M. Ilmu Kesehatan Anak Nelson, 15(2). Jakarta: Penerbit Buku Kedokteran EGC.
Vandepitte, J., Engback, K., Piot, P. dan Heuck, C. C. (1991). Basic Laboratory Procedures in Clinicals Bacteriology. WHO Library, Geneva.
Volk, W.A. dan Wheeler, M.F. (1993). Mikrobiologi Dasar. Jilid I. Alih Bahasa: Markam. Jakarta: Erlangga. Halaman 33-40; 218-219.
World Health Organization. (1998). Quality Control Methods for Medicinal Plants Materials. Switzerland. Hal. 31-33.
Lampiran 2. Gambar tumbuhan nipah
Lampiran 3. Gambardaun nipah segar dan simplisia serta serbuk simplisia
Daun nipah segar
Lampiran 3. (Lanjutan)
Lampiran 4. Hasil pemeriksaan mikroskopik serbuk simplisia daun nipah Hasil pemeriksaan mikroskopik serbuk simplisia daun nipah (perbesaran 10x40)
1 2
3
Keterangan:
1. Berkas pembuluh bentuk spiral 2. Stomata tipe parasitik
Lampiran 5. Perhitungan penetapan kadar air simplisia daun nipah a. Berat sampel = 5,034 g Volume I = 1,30 ml Volume II = 1,55 ml Kadar air = 1,55-1,30 5,034 x 100% = 4,97% b. Berat sampel = 5,031 g Volume I = 1,55 ml Volume II = 1,85 ml Kadar air = 1,85-1,55 5,031 x 100% = 5,96% c. Berat sampel = 5,015 g Volume I = 1,85 ml Volume II = 2,15 ml Kadar air = 2,15-1,85 5,015 x 100% = 5,98%
Kadar air rata-rata = (4,97 + 5,96 + 5,98 )%
3 = 5,64%
Kadar air = Volume II - Volume I
Lampiran 6. Perhitungan penetapankadar sari larutdalam air simplisia daun nipah a. Berat sampel = 5,023 g Berat sari = 0,214 g Kadar sari = 0,214 5,023
x
100 20x
100% = 21,30% b. Berat sampel = 5,008 g Berat sari = 0,193 g Kadar sari = 0,193 5,008x
100 20x 100% = 19,27% c. Berat sampel = 5,042 g Berat sari = 0,174 g Kadar sari = 0,174 5,042x
100 20 x 100% = 17,25%Kadar sari rata-rata = (21,30 + 19,27 + 17,25)%
3 = 19,27%
Kadar sari = Berat sari
Berat sampel x
100
Lampiran 7. Perhitungan penetapankadar sarilarutdalam etanol simplisia daun nipah a. Berat sampel = 5,006 g Berat sari = 0,176 g Kadar sari = 0,176 5,006
x
100 20x
100% =17,57% b. Berat sampel = 5,012 g Berat sari = 0,143 g Kadar sari = 0,143 5,012x
100 20x
100% = 14,26% c. Berat sampel = 5,009 g Berat sari = 0,168 g Kadar sari = 0,168 5,009x
100 20x
100% = 16,77%Kadar sari rata-rata = (17,57 + 14,26 + 16,77)%
3 = 16,20%
Kadar sari = Berat sari
Berat sampel x
100
Lampiran 8. Perhitungan penetapankadarabu total simplisia daun nipah a. Berat sampel = 2,0041 g Berat abu = 0,1262 g Kadar abu = 0,1262 2,0041 x 100 % = 6,29 % b. Berat sampel = 2,0172 g Berat abu = 0,1354 g Kadar abu = 0,1354 2,0172x 100% = 6,71% c. Berat sampel = 2,0080 g Berat abu = 0,1221 g Kadar abu = 0,1221 2,0080 x 100% = 6,08%
Kadar abu total rata-rata = (6,29 + 6,71 + 6,08)%
3 = 6,36%
Kadar abu total = Berat abu
Lampiran 9. Perhitungan penetapankadarabu tidaklarutdalamasam simplisia daun nipah
Sampel I Berat sampel = 2,0041 g
Berat abu = 0,0361 g
Kadar abu = 0,0361
2,0041 x 100% = 1,80 %
Sampel II Berat sampel = 2,0172 g
Berat abu = 0,0290 g
Kadar abu = 0,0290
2,0172 x 100% = 1,44%
Sampel III Berat sampel = 2,0080 g
Berat abu = 0,0312 g
Kadar abu = 0,0312
2,0080 x 100% = 1,55 %
Kadar abu yang tidaklarutdalamasam rata-rata = (1,80 + 1,44 + 1,55)%
3 = 1,59%
Kadar abu yang tidaklarutdalamasam
=
Berat abuLampiran 10. Bagan kerja penelitian
dicuci dari pengotor sampai bersih ditiriskan
ditimbang berat basahnya
pemeriksaan organoleptis
dikeringkan pada lemari pengering dengan suhu 40-50°
ditimbang berat keringnya
dihaluskan dengan blender disimpan dalam wadah yang tertutup rapat sebelum digunakan Daun nipah
Simplisia
Simplisia
Karakterisasi Skrining fitokimia Ekstraksi
•kadar air
•kadar sari larut dalam air
•kadar sari larut dalam etanol
•kadar abu total
•kadar abu tidak larut dalam asam d l senyawa golongan: • flavonoid • glikosida • saponin • tanin • steroid/triterpenoid Serbuk simplisia
Lampiran 10. (Lanjutan)
dimasukkan ke dalam wadah
dituangi dengan 75 bagian etanol 96% dan ditutup
dibiarkan selama 5 hari terlindung dari cahaya, sambil sering diaduk
diserkai dan diperas
dicuci ampas dengan cairan penyari secukupnya hingga diperoleh 100 bagian
dipindahkan kedalam bejana bertutup
dibiarkan ditempat sejuk terlindung dari cahaya selama 2 hari
dienap tuangkan atau disaring
dipekatkan denganrotaryevaporator Maserat Ekstrak kental (53,20 g) senyawa golongan: • flavonoid • glikosida • saponin • tanin •
Skrining fitokimia Uji aktivitas antibakteri 300 g serbuk simplisia
Lampiran 10. (Lanjutan)
diambil dengan jarum ose steril
ditanam pada media nutrient agar miring diinkubasi pada suhu 37oC selama 24 jam
disuspensikan dalam 10 ml media nutrient broth steril
diukur kekeruhan suspensi bakteri
menggunakan spektrofotometer visible pada panjang gelombang 580 nm sampai diperoleh nilai transmitan 25%
dimasukkan 0,1 ml inokulum ke dalam cawan petri
ditambahkan 15 ml media nutrient agar ke dalam cawan petri
dihomogenkan dan dibiarkan hingga memadat
diletakkan pencadang kertas yang telah direndam ke dalam larutan uji ekstrak dengan berbagai konsentrasi dan pelarut DMSO sebagai blanko
diinkubasi pada suhu 37oC selama 18 - 24 jam
diukur diameter daerah hambatan di sekitar pencadang kertas dengan menggunakan jangka sorong
Biakan murni bakteri
Stok kultur bakteri
Inokulum bakteri
Media padat
Lampiran 11. Hasil pengukuran daerah hambat pertumbuhan bakteri dari ekstrak etanol daun nipah
Konsentrasi Ekstrak (mg/ml)
Diameter Daerah Hambat Pertumbuhan Bakteri (mm)
Staphylococcus aureus Escherichia coli
D1 D2 D3 D* D1 D2 D3 D* 500 17,8 17,6 17,9 17,77 18,5 18,7 18,8 18,67 400 16,7 16,5 16,8 16,67 17,2 17,4 16,9 17,17 300 16,2 16,4 16,1 16,23 16,3 16,2 16,7 16,40 200 15,4 15,3 15,4 15,37 15,6 15,4 15,9 15,63 100 14,2 14,1 14,5 14,27 14,8 15,2 15,1 15,03 75 13,7 13,4 14,4 13,83 13,9 14,1 14,3 14,10 50 12,2 12,7 12,9 12,60 12,2 12,9 13,1 12,73 25 10,2 10,7 10,8 10,57 11,3 11,4 11,6 11,43 12,5 7,7 7,7 7,6 7,67 8,4 8,2 8,3 8,30 6,25 - - - - Blanko - - - - Keterangan:
D = Diameter daerah hambatan 1,2,3 = Perlakuan
* = Rata-rata
Lampiran 12. Gambar pengujian aktivitas antibakteri ekstrak etanol daun nipah terhadap bakteri Staphylococcus aureus
A B
C D
Keterangan
A : Konsentrasi 500; 400 dan 300 mg/ml B : Konsentrasi 200; 100 mg/ml dan blanko C : Konsentrasi 75; 50 dan 25 mg/ml
D : Konsentrasi 12,5; 6,25 mg/ml dan blanko 300 500 100 200 Blanko 50 400 75 25 6,25 12,5 Blanko
Lampiran 13. Gambar pengujian aktivitas antibakteri ekstrak etanol daun nipah terhadap bakteri Escherichia coli
A B
C D
Keterangan
A : Konsentrasi 500; 400 dan 300 mg/ml B : Konsentrasi 200; 100 mg/ml dan blanko C : Konsentrasi 75; 50 dan 25 mg/ml
D : Konsentrasi 12,5; 6,25 mg/ml dan blanko 500 300 400 200 100 Blanko 75 25 50 12,5 6,25 Blanko