Stability of Selected Hematological Para (1)

(1)

cc

II TT

Penentuan sampel darah yang disimpan atau ditangani secara tidak benar dapat menghasilkan hasil yang menyesatkan [5-9]. Butarrello dan Goosens dalam penelitian mereka menyimpulkan bahwa pendinginan sampel darah manusia

direkomendasikan untuk menstabilkan darah dan meminimalkan perubahan artifaktual [9,10].

Kata kunci: Sampel darah yang disimpan; Stabilitas; Parameter hematologi

Trombosit aferesis merupakan produk pendukung dan terapeutik andalan di pusat kanker tersier kami. Hal ini menyebabkan tingginya permintaan konsentrat trombosit (PC). Baru-baru ini, fokus diarahkan untuk mendapatkan PC dari donor aferesis, alih-alih trombosit donor acak yang biasanya diperoleh dari donor darah. Perubahan ini didorong oleh bukti pendukung yang menunjukkan efikasi trombosit aferesis dibandingkan trombosit donor acak, terutama pada pasien onkologi yang menerima transfusi darah berulang [1].

Akibatnya, layanan transfusi menghadapi tantangan dalam merekrut donor trombositferesis sukarela. Untuk mengatasi kebutuhan ini, program pengumpulan trombosit telah dilakukan di lembaga kami sejak November 2009 untuk

mendaftarkan donor yang bersedia.

Donor yang bersedia mendaftar untuk skrining donasi trombosit diikutsertakan dalam penelitian ini. Pemilihan donor untuk penelitian ini dilakukan secara acak. Sesuai Undang-Undang Obat dan Kosmetika 1940 (D&C Act), kriteria untuk donasi trombosit meliputi nilai hemoglobin > 12,5 g/dl dan jumlah trombosit >150 x 109 /L. Skrining awal untuk donasi trombosit meliputi hemoglobin, berat badan, dan riwayat kesehatan.

Abstrak

Sejauh pengetahuan penulis, belum ada laporan mengenai durasi penyimpanan ideal sampel darah di bank darah. Pedoman nasional bank darah di India juga tidak menjelaskan secara rinci durasi penyimpanan ideal sampel darah donor untuk pemeriksaan hitung darah lengkap. Oleh karena itu, pengambilan sampel mungkin harus dilakukan pada hari yang sama, sebaiknya dalam waktu 6 jam, karena sampel diasumsikan mengalami perubahan selama penyimpanan. Hal ini menghambat prospek kelayakan pelaksanaan rekrutmen donor trombosit pada akhir pekan, hari libur, dan di lokasi terpencil karena keterbatasan tenaga kerja dan ketersediaan mesin penghitung sel tunggal di bank darah. Proyek ini dilakukan untuk mempelajari stabilitas parameter hitung darah lengkap terpilih (Hb, WBC, Trombosit) yang penting dalam pemilihan donor, selama periode 72 jam.

Akses Terbuka Artikel Penelitian

Stabilitas sampel didefinisikan sebagai kemampuan sampel untuk mempertahankan nilai awal dari kuantitas yang diukur untuk jangka waktu tertentu dalam batas-batas tertentu ketika disimpan dalam kondisi yang ditentukan [2] Hanya sedikit penelitian yang menyelidiki stabilitas parameter hematologi yang tersedia hingga saat ini [3,4]. Sudah diketahui bahwa penanganan sampel darah, serta metode penyimpanan dapat secara signifikan memengaruhi hasil penentuan hematologi. Akibatnya, hasil hematologi

Sampel darah vena sebanyak 3 ml dikumpulkan dalam tabung vakum EDTA (Asam etilendiamintetraasetat) (K2 EDTA, 5,4 mg) dari 969 donor sehat berusia antara 18 hingga 50 tahun. Pengambilan sampel dilakukan dengan menggunakan tindakan pencegahan aseptik standar dan dalam waktu singkat. Sampel dicampur secara menyeluruh namun perlahan dengan antikoagulan segera setelah tabung terisi. Sampel darah diuji dalam waktu 4 jam dengan mesin uji diferensial otomatis 3 bagian.

ee ff

ISSN: 2157-7013 ISSN: 2157-7013

Jurnal Ilmu Sel & Terapi

II cc

A A

C C

J J

Perkenalan

Bahan dan Metode

ee S S

nn

Kutipan: Tendulkar A, Jain P, Gujral S, Tambe M, Kenjale R, dkk. (2015) Stabilitas Parameter Hematologi Terpilih dalam Sampel Darah yang Disimpan. J Cell Sci Ther 6: 220.

doi:10.4172/2157-7013.1000220

Hak Cipta: © 2015 Tendulkar A, dkk. Ini adalah artikel akses terbuka yang didistribusikan berdasarkan ketentuan Lisensi Atribusi Creative Commons, yang mengizinkan Maharashtara, India, Telp: 022-2417 7000; Email: [email protected] Diterima: 5 Juni 2015; Diterima: 13 Agustus 2015; Diterbitkan: 16 Agustus 2015

*Penulis korespondensi: Anita Tendulkar, Tata Memorial Hospital, Mumbai, Rumah Sakit Tata Memorial, Mumbai, Maharashtara, India

penulis dan sumber asli disebutkan.

penggunaan, distribusi, dan reproduksi tanpa batas dalam media apa pun, dengan syarat ee

A A hh

Stabilitas Parameter Hematologi Terpilih dalam Sampel Darah yang Disimpan

nn

aduh

&

kamu kamu

Tujuan: Tujuannya adalah untuk mempelajari stabilitas sampel darah yang diberikan pada kunjungan pertama untuk pendaftaran sebagai donor trombosit.

Parameter hematologi spesifik dipelajari pada interval waktu 4, 48 dan 72 jam.

Bahan dan Metode: Sampel darah vena donor yang memenuhi syarat dikumpulkan dalam wadah vakum K2-EDTA (Asam etilendiamintetraasetat) untuk penghitungan sel. Sampel ini diuji menggunakan penghitung sel otomatis (Humacount, Human, Jerman) selama 4 jam pada suhu ruangan.

Kemudian, sampel disimpan pada suhu 4ºC dan diuji ulang pada jam ke-48 dan ke-72.

Jurnal Ilmu Sel Ther

Anita Tendulkar*, Puneet Jain, Sumeet Gujral, Manisha Tambe, Ravindra Kenjale dan Bala Ganesh

1.1 Latar Belakang: Trombosit aferesis merupakan terapi andalan di pusat kanker tersier kami, yang menguji 3000 donor setiap tahunnya.

Pengumpulan trombosit untuk mendaftarkan donor yang bersedia dilakukan. Hitung darah lengkap untuk menentukan kelayakan donor trombosit dilakukan pada kunjungan donor pertama. Namun, pengujian sampel ini pada hari tersebut dapat menjadi tantangan karena berbagai alasan seperti kekurangan tenaga kerja, akhir pekan, dan penggunaan penghitung sel tunggal di bank darah. Pedoman nasional untuk bank darah di India tidak menjelaskan secara rinci waktu penyimpanan ideal untuk sampel darah tersebut. Oleh karena itu, kami melakukan penelitian ini untuk menentukan stabilitas sampel.

DOI: 10.4172/2157-7013.1000220 Tendulkar dkk., J Cell Sci Ther 2015, 6:5

ISSN: 2157-7013 JCEST, jurnal akses terbuka

Hemoglobin (Hb) merupakan parameter yang paling terjaga, diikuti oleh jumlah sel darah putih (WBC) dan jumlah trombosit.

Volume 6 • Edisi 5 • 1000220 Hasil: 969 sampel darah diuji kadar hemoglobin, WBC (sel darah putih), dan trombosit. Tidak terdapat perbedaan statistik dalam nilai rata-rata

hemoglobin dan jumlah WBC pada tiga interval waktu. Meskipun perbedaan rata-rata jumlah trombosit signifikan secara statistik (p<0,001), hal tersebut tidak memengaruhi kriteria penerimaan donor.

Kesimpulan: Parameter hematologi spesifik (Hb, WBC, trombosit) ditemukan stabil pada suhu 4ºC selama 72 jam.

aduh hal.

II ii

rr

ee

Pengambilan sampel dan instrumen

Peserta

(2)

Studi ini telah disetujui oleh Institutional Review Board (IRB)

Sampel EDTA dari 969 donor trombosit diuji pada penghitung sel 3 bagian dan parameter berikut dipelajari: hemoglobin, sel darah putih, dan jumlah trombosit pada 4, 48, dan 72 jam setelah pengambilan. Hipotesis nol yang dirumuskan untuk penelitian ini adalah tidak adanya perbedaan signifikan dalam jumlah parameter hematologi pada interval waktu yang berbeda.

Dokumentasi dan analisis. SPSS versi 18 digunakan untuk analisis statistik. Uji- t berpasangan digunakan untuk membandingkan setiap parameter hematologi pada interval waktu 4, 48, dan 72 jam. Rerata, deviasi baku, dan interval kepercayaan dihitung untuk setiap parameter hematologi. Nilai p kurang dari 0,05 dianggap signifikan secara statistik. Analisis varians satu arah (ANOVA) diterapkan pada setiap parameter hematologi untuk menghitung variasi antara nilai awal dan dua periode waktu lainnya.

Stabilitas hemoglobin: Nilai rata-rata hemoglobin (g/

Nilai penghitung sel dimasukkan ke dalam format lembar excel untuk

dan didanai oleh Departemen Energi Atom/Pemerintah India.

24°C) dan dicampur dengan baik secara manual sebelum diuji ulang dalam penghitung sel otomatis.

penghitung sel (Humacount 30, Human, Jerman) untuk menghitung hemoglobin, sel darah putih, dan trombosit. Sampel disimpan pada suhu 4°C di lemari pendingin bank darah yang dipantau dan diuji ulang pada 48 dan 72 jam setelah pengambilan. Sampel dibiarkan mencapai suhu ruangan (22-

dl) masing-masing adalah 14,25, 14,30, dan 14,32 pada jam ke-4, 48, dan 72.

Perbedaan nilai rata-rata tidak signifikan secara statistik (p=0,45).

Dari 969 sampel darah, kami menemukan 964 (99,5%) berada dalam kisaran 10%

dari nilai dasar pada 48 jam. Demikian pula, 963 (99,4%) sampel ditemukan berada dalam kisaran 10% dari nilai dasar pada 72 jam (Gambar 1 dan 2).

nilai dasar pada 48 jam. Demikian pula, 832 (85,9%) sampel ditemukan berada dalam variasi 10% dari nilai dasar pada 72 jam (Gambar 3 dan 4).

Stabilitas jumlah sel darah putih: Nilai rata-rata jumlah sel darah putih (x 109 /L) masing-masing adalah 7,63, 7,60, 7,58 pada jam ke-4, 48, dan 72.

Perbedaan nilai rata-rata ini tidak signifikan secara statistik (p=0,79). Dari 969 sampel darah, kami menemukan 892 (92,1%) berada dalam kisaran variasi 10% dari

Gambar 3: Jumlah sel darah putih pada 48 jam diplotkan terhadap rata-rata jumlah sel darah putih awal.

Gambar 4: Jumlah sel darah putih pada 72 jam diplotkan terhadap rata-rata jumlah sel darah putih awal.

Gambar 2: Nilai hemoglobin pada 72 jam diplotkan terhadap hemoglobin dasar rata-rata.

Gambar 1: Nilai hemoglobin pada 48 jam diplotkan terhadap hemoglobin dasar rata-rata.

Etika Analisa

Hasil

Volume 6 • Edisi 5 • 1000220

Halaman 2 dari 5

Kutipan: Tendulkar A, Jain P, Gujral S, Tambe M, Kenjale R, dkk. (2015) Stabilitas Parameter Hematologi Terpilih dalam Sampel Darah yang Disimpan. J Cell Sci Ther 6: 220.

doi:10.4172/2157-7013.1000220

Machine Translated by Google

(3)

Keterlambatan analisis sampel bukanlah situasi yang jarang terjadi dalam praktik klinis dan laboratorium [12]. Sampel darah terkadang harus disimpan untuk jangka waktu yang lebih lama. Kegiatan pendaftaran donor trombosit yang dilakukan pada akhir pekan menyebabkan penumpukan

sejumlah besar sampel darah untuk pengujian. Dalam skenario seperti itu, dengan hanya satu penganalisis sel khusus di

Di bank darah, waktu tunggu untuk tes hitung darah lengkap (CBC) meningkat.

Idealnya, tes CBC harus dilakukan segera setelah pengambilan sampel, tetapi jika penundaan tidak dapat dihindari, suhu 4°C dianggap sebagai suhu pilihan.

Keakuratan pengujian sampel bergantung pada bagaimana sampel dikumpulkan, berlanjut dengan bagaimana sampel ditangani hingga dijalankan, dan akhirnya bergantung pada mekanisme bagaimana pengujian dijalankan [13]. Untuk darah vena, K2 EDTA adalah antikoagulan pilihan untuk menghitung dan mengukur ukuran sel dalam penghitung sel otomatis.

Ini lebih disukai daripada K3 EDTA karena kurangnya efek pengenceran pada sampel dan karena pengaruh yang lebih kecil pada hematokrit, karena K3 menentukan penurunan MCV (Volume sel darah rata-rata) karena penyusutan eritrosit [9]. Kami mengumpulkan 969 sampel darah dari venepuncture bersih dalam tabung K2 EDTA dalam waktu yang minimal. Pengumpulan,

pengangkutan, dan penyimpanan spesimen merupakan penentu utama variabilitas praanalisis dan dapat memengaruhi keakuratan dan presisi

pengujian laboratorium, karena sebagian besar kesalahan laboratorium terjadi dalam fase praanalisis [14,15].

Elemen seluler diketahui memiliki stabilitas terbatas dalam darah yang mengandung EDTA [16]. Kami menyimpan sampel darah dalam lemari pendingin bank darah yang dipantau pada suhu 4°C selama 72 jam.

Konservasi spesimen pada suhu rendah diketahui dapat meningkatkan stabilitas beberapa parameter CBC dan DLC (Differential leucocyte count), tetapi tidak ada studi sistematis yang memperhitungkan semua instrumen yang tersedia dan mempertimbangkan spesimen normal serta berbagai patologi, di mana penundaan dalam analisis dapat menghasilkan hasil yang sangat berbeda [9]. Menyimpan sampel pada suhu 4-8°C meningkatkan stabilitas pada sebagian besar analit. Jumlah sel darah merah (RBC) dan kadar hemoglobin hampir tidak terpengaruh oleh penyimpanan pada suhu 4-8°C atau RT selama 72 jam. Kisaran suhu ini juga memperpanjang stabilitas

leukosit [17]. Pendinginan direkomendasikan untuk meningkatkan akurasi hasil CBC untuk sampel darah.

Namun, perbedaan pada tiga interval waktu ini tidak memengaruhi kriteria penerimaan donor. Perbedaan maksimum rata-rata jumlah trombosit pada tiga interval waktu tersebut adalah 17 x 109 /L (Gambar 5 dan 6). Dari 969 sampel darah, kami menemukan 756 (78%) berada dalam kisaran variasi 10%

dari nilai dasar pada 48 jam. Demikian pula, 680 (70,2%) sampel ditemukan berada dalam kisaran variasi 10% dari nilai dasar pada 72 jam (Tabel 1-4).

Penggalangan trombosit telah dimulai di fasilitas kanker tersier kami sejak November 2009. Karena dukungan trombosit merupakan modalitas pengobatan yang integral pada pasien kanker, permintaannya sangat tinggi [11]. Agar sistem donasi trombosit dapat berjalan dengan baik, para donor sukarela diuji dan didaftarkan dalam registri trombosit kami secara berkala.

Perbedaan nilai rata-rata signifikan secara statistik (p<0,001).

Stabilitas jumlah trombosit: Nilai rata-rata jumlah trombosit (x 109 /L) adalah 317,76, 330,71, 334,58 pada 4, 48 dan 72 jam berturut-turut.

Diskusi

Jumlah %

25,5 (247 / 969)

Jam 14.30

Berarti

100

10-20%

100

73.54 Interval

waktu (jam)

Tabel 3: Penyimpangan dari nilai dasar untuk jumlah WBC pada 48 dan 72 jam.

>20%

48 jam

<10%

1.73

0,1 (1 / 969) 1.20

99,5 (964 / 969) 0,5 (5 / 969) 4

92.1 (892 / 969) 5.5 (53 / 969) 2.4 (24 / 969)

100 67.43

72 jam

< 0,001 Berarti

Jumlah %

48 jam

4.3 (42 / 969) 1SD

7.6 nilai p

100

Gambar 5: Jumlah trombosit pada 48 jam diplotkan terhadap jumlah trombosit awal rata-rata.

Penyimpangan dari nilai dasar

330.7

72 jam 10-20%

7.6 48

85,9 (832 / 969) Nol

Tabel 4: Penyimpangan dari nilai dasar untuk jumlah trombosit pada 48 dan 72 jam.

Gambar 6: Jumlah trombosit pada 72 jam diplotkan terhadap jumlah trombosit awal rata-rata.

Berarti

Tabel 2: Penyimpangan dari nilai dasar untuk Hemoglobin pada 48 dan 72 jam.

14.25

100

72 jam

78 (756 / 969) 20 (194 / 969) 2 (19 /

969) 1.76 0,45

9.4 (91 / 969) 99,4 (963 / 969) Hemoglobin (g/dl) Jumlah WBC (x 109 /L) Jumlah trombosit (x 109 /L)

<10%

72.15

100 14.32

>20%

1.19

1.72

Tabel 1: Rata-rata parameter hematologi spesifik pada 3 interval waktu, n=969.

0,79

<10%

1SD (Simpangan 1SD baku) 1,19

334.6

Jumlah % 10-20%

70.2 (680 / 969) 72

7.6

0,5 (5 / 969)

4.7 (46 / 969) 317.8

48 jam

Halaman 3 dari 5

ISSN: 2157-7013 JCEST, jurnal akses terbuka Jurnal Ilmu Sel Ther

doi:10.4172/2157-7013.1000220

Volume 6 • Edisi 5 • 1000220

(4)

Dengan demikian, mereka menyimpulkan bahwa darah dari donor sehat normal dapat berfungsi sebagai kontrol yang memadai untuk coulter counter selama tiga hari jika disimpan pada suhu 4°C [6]. Studi unggas pada kalkun juga menunjukkan hasil yang konsisten dengan penyimpanan pada suhu 4°C selama 72 jam, yang secara signifikan menurunkan perubahan PCV, MCV, dan hemoglobin [22].

Literatur mengutip berbagai studi tentang sampel darah hewan untuk stabilitas

setelah penyimpanan; namun studi kami merupakan salah satu dari sedikit studi yang mengamati sampel manusia sehat.

Sampel darah untuk pengujian parameter hematologi spesifik dari donor trombosit ditemukan stabil pada suhu 4°C hingga 72 jam.

Stabilitas analit parameter hematologi bervariasi tidak hanya menurut parameter yang diselidiki tetapi juga menurut suhu penyimpanan dan sistem pengukuran yang digunakan. Dari 969 sampel darah yang diuji dalam penelitian kami, kami menemukan bahwa hemoglobin dalam 964 (99,5%) berada dalam variasi 10% dari nilai dasar pada 48 jam. Demikian pula, 963 (99,4%) sampel ditemukan berada dalam variasi 10% dari nilai dasar pada 72 jam. Dari ketiga parameter yang diuji dalam penelitian ini, Hemoglobin adalah yang paling terjaga.

Imeri et al juga menemukan bahwa jumlah sel darah merah dan kadar hemoglobin hampir tidak terpengaruh oleh penyimpanan pada suhu 4-8°C atau RT selama 72 jam [17]. Gulati et al. menggunakan penghitung Coulter GEN-S (Beckman-Coulter, Hyaleah, FL) dan menyimpan spesimen pada suhu kamar. Jumlah eritrosit dan konsentrasi hemoglobin mereka stabil selama 7 hari [20]. Studi pertama dalam literatur yang menganalisis parameter hematologi sampel darah utuh yang disimpan pada suhu ruangan selama 72 jam adalah pada tahun 1973. Hasilnya menunjukkan bahwa WBC, hemoglobin, RBC, dan MCV stabil [21]. Temuan ini dikonfirmasi pada suhu ruangan dan 4°C oleh studi lanjutan pada tahun 1981 oleh Cohle dkk.

Hemoglobin merupakan parameter yang paling terjaga, diikuti oleh leukosit dan trombosit. Hal ini dapat membantu meningkatkan jumlah pendonor trombosit dengan menyelenggarakan kamp trombosit jarak jauh dan akhir pekan. Kendala akibat kekurangan tenaga kerja, kerusakan peralatan, dan pengujian di akhir pekan dapat diatasi dengan penyimpanan sampel yang lebih lama pada suhu 4°C. Studi ini dapat berperan penting dalam merumuskan pedoman penyimpanan sampel darah untuk evaluasi hitung darah di layanan transfusi.

Metode impedansi menghitung dan mengukur sel (WBC dan Trombosit) dengan mendeteksi dan mengukur perubahan impedansi listrik ketika partikel dalam cairan konduktif melewati lubang kecil. Untuk hemoglobin, pengenceran sampel yang telah dilisis diukur dengan metode fotometrik. Reagen melisiskan sel darah merah, melepaskan hemoglobin yang melalui proses kimia membentuk methemoglobin. Hal ini diukur dengan fotometer yang terdapat pada bilik.

Berbeda dengan laboratorium Hematologi, penting untuk dicatat bahwa bank darah perlu melakukan pengujian hanya Hemoglobin, jumlah Trombosit dan jumlah WBC, karena kelayakan untuk donasi trombosit tidak memerlukan parameter lain. Sampel darah berasal dari individu yang sehat dan bukan pasien dengan kemungkinan morfologi sel yang terdistorsi. Pedoman NABH (Badan Akreditasi Nasional untuk Rumah Sakit & Penyedia Layanan Kesehatan) dan NACO

(Organisasi Pengendalian AIDS Nasional) untuk bank darah belum menentukan periode penyimpanan dan suhu yang ideal untuk sampel donor yang diuji pada penghitung sel. Selain itu, metode manual untuk konfirmasi ulang hasil tidak dipraktikkan di bank darah. Personel yang melakukan tes bank darah rutin harus melakukan tes penghitung sel dalam waktu tambahan dan tidak ada tenaga kerja khusus yang dialokasikan untuk tes penghitung sel seperti di laboratorium hematologi. Bank darah biasanya memiliki penghitung sel yang berfungsi berdasarkan prinsip impedansi yang bertentangan dengan prinsip optik penghitung sel laboratorium hematologi.

Penghitungan, yang pertama kali dijelaskan oleh Wallace Coulter pada tahun 1956, bergantung pada fakta bahwa sel darah merah merupakan konduktor listrik yang buruk, sementara beberapa pengencer merupakan konduktor yang baik;

perbedaan inilah yang menjadi dasar sistem penghitungan. Instrumen kami didasarkan pada prinsip impedansi, yang dikalibrasi terhadap material standar

referensi yang sesuai dan dikontrol setiap hari menggunakan kontrol yang telah dipatenkan.

[18]. Perubahan artifisial diketahui lebih menonjol pada sampel yang disimpan pada suhu lebih tinggi [19]. Pendekatan yang diinginkan untuk mengukur parameter hematologi adalah pemrosesan sampel darah yang tepat waktu, ketika opsi ini tidak tersedia, alternatif yang paling cocok adalah penyimpanan sampel dalam pendinginan, tidak termasuk parameter yang lebih sensitif terhadap penuaan spesimen [12].

Untuk jumlah trombosit, kami menemukan bahwa nilai rata-rata jumlah trombosit (x 109 /L) adalah 317,76, 330,71, dan 334,58 masing-masing pada jam ke-4, 48, dan 72. Perbedaan rata-rata ini signifikan secara statistik (p<0,001), yang tidak sesuai dengan hipotesis nol.

Namun, perbedaan ini tidak memengaruhi kriteria penerimaan donor karena perbedaan maksimum rata-rata jumlah trombosit adalah 17 x 109 /L, yang secara klinis tidak signifikan. Penelitian sebelumnya tentang jumlah trombosit telah membuktikan bahwa penyimpanan sampel memengaruhi volume trombosit dan menyebabkan penggumpalan, yang selanjutnya menyebabkan rendahnya nilai trombosit. Masalah ini dapat diatasi dengan pencampuran sampel secara berkala untuk menghasilkan hasil yang konsisten [6,23,24]. Oleh karena itu, kami berlatih

mencampur semua sampel darah kami sebelum melakukan penghitungan sel pada alat analisis.

Salah satu aspek konservasi spesimen yang perlu diperhatikan adalah perbedaan perilaku penghitung otomatis yang menggunakan metode optik atau impedansi. Penelitian sebelumnya menunjukkan peningkatan stabilitas penghitungan CBC, yang ditentukan berdasarkan prinsip impedansi aliran terfokus, terutama jika sampel didinginkan [25].

Dalam penelitian kami, dari 969 sampel darah, kami menemukan WBC ct pada 892 (92,1%) berada dalam variasi 10% dari nilai dasar pada 48 jam. Demikian pula, 832 (85,9%) sampel ditemukan berada dalam variasi 10% dari nilai dasar pada 72 jam. Dengan demikian, dalam penelitian kami hasil untuk hemoglobin dan WBC ct sesuai dengan hipotesis nol kami. Gulati et al menemukan jumlah leukosit dan trombosit tetap konstan selama 4 hari pada RT [20]. Imeri et al juga menemukan bahwa menyimpan sampel pada suhu 4-8 ° C memperpanjang stabilitas jumlah leukosit dan retikulosit [17]. Butarello et al menyimpan sampel manusia pada suhu 4 ° C hingga 72 jam dan menemukan bahwa jumlah WBC yang secara sistematis rendah ketika diperoleh oleh saluran optik penganalisa stabil dengan saluran impedansi [9].

4. Johnson M, Samuels C, Josza N, Gorney K (2002) Evaluasi tiga arah penganalisis hematologi throughput tinggi-Beckman Coulter LH 750, Abbott Cell-Dyn 4000, dan Sysmex XE 2100.

Lab Hematol 8: 230–238.

5. Schalm OW, Jain NC, Carroll EJ (1975) Hematologi hewan, Philadelphia,

AMERIKA SERIKAT.

6. Cohle SD, Saleem A, Makkaoui DE (1981) Pengaruh penyimpanan darah terhadap stabilitas parameter hematologi. Am J Clin Pathol 76: 67-69.

spesifikasi. Scand J Clin Lab Invest 59: 545-549.

3. Bourner G, Dhaliwal J, Sumner J (2005) Evaluasi kinerja alat analisis hematologi otomatis penuh terbaru di laboratorium komersial berskala besar: studi 4 arah dan berdampingan.

Lab Hematol 11: 285-297.

2. Guder WG (1999) Faktor pra-analitik dan pengaruhnya terhadap kualitas analitis

1. Andreu G, Vasse J, Sandid I, Tardivel R, Semana G (2007) Penggunaan konsentrat trombosit acak versus aferesis. Transfus Clin Biol 14: 514-521.

8. Wood BL, Andrews J, Miller S, Sabath DE (1999) Penyimpanan berpendingin meningkatkan stabilitas hitung sel darah lengkap dan diferensial otomatis. Am J Clin Pathol 112: 687-695.

7. Meyer DJ, Harvey JW (1998) Kedokteran laboratorium hewan- interpretasi dan diagnosis ( edisi ke-2) Philadelphia, AS.

Kesimpulan

Referensi

Volume 6 • Edisi 5 • 1000220

Halaman 4 dari 5

doi:10.4172/2157-7013.1000220

ISSN: 2157-7013 JCEST, jurnal akses terbuka Jurnal Ilmu Sel Ther

Machine Translated by Google

(5)

Halaman 5 dari 5

doi:10.4172/2157-7013.1000220

Volume 6 • Edisi 5 • 1000220 20. Gulati GL, Hyland LJ, Kocher W, Schwarting R (2002) Perubahan dalam sistem otomatis

16. [Tidak ada penulis yang tercantum] (1993) Rekomendasi Dewan Internasional

9. Buttarello M (2004) Spesifikasi mutu dalam hematologi: hitung sel darah otomatis. Clin Chim Acta 346: 45-54.

penyimpanan darah pada suhu ruangan. Arch Pathol Lab Med 126: 336-342.

Indeks darah yang ditentukan S. J Clin Pathol 26: 700-705.

23. Holme S, Vaidja K, Murphy S (1978) Penyimpanan trombosit pada suhu 22 derajat C: pengaruh jenis agitasi terhadap morfologi, viabilitas, dan fungsi in vitro. Blood 52:

perubahan dalam darah anjing setelah penyimpanan, dideteksi menggunakan ADVIA 120

penting. Nouv Rev Pastor Haematol 36: 114–117.

hasil yang akurat. Vet Clin North Am Small Anim Pract 37: 203-219, v.

24. Vogelaar SA, Posthuma D, Boomsma D, Kluft C (2002) Stabilitas sampel darah Antikoagulasi Darah untuk Penghitungan dan Pengukuran Sel Darah. Internasional

19. Ihedioha JI, Onwubuche RC (2007) Perubahan artifaktual pada PCV, hemoglobin

Kelompok Kerja Gugus Tugas Transfusi Darah. Transfus Med 2: 311-318.

Kimia Klinis 48: 691-698.

Vascul Pharmacol 39: 123-125.

17. Imeri F, Herklotz R, Risch L, Arbetsleitner C, Zerlauth M, dkk. (2008) Stabilitas analit hematologi bergantung pada penganalisa hematologi yang digunakan: studi stabilitas dengan Bayer Advia 120, Beckman Coulter LH 750 dan Sysmex XE 2100.

hasil hitung sel darah lengkap dan hitung leukosit diferensial yang diinduksi oleh suhu ruangan dan lemari es. Vet Clin Pathol 36: 60-63.

penyimpanan suhu terhadap parameter hematologi darah kalkun unggas.

jumlah sel darah, parameter hematologi dan indeks retikulosit pada

21. Hamilton PJ, Davidson RL (1973) Hubungan timbal balik dan stabilitas Coulter

Klinik Pathol 112: 687-695.

18. Furlanello T, Tasca S, Caldin M, Carli E, Patron C, dkk. (2006) Artefaktual

13. Meinkoth JH, Allison RW (2007) Pengumpulan dan penanganan sampel: mendapatkan

Kesehatan. l2: 158-166.

10. Goosens W (1994) Efek pra-analitik pada sel darah diferensial otomatis

425-435.

perspektif. Lab Hematol 10: 158-159.

untuk Standardisasi Hematologi untuk Asam Etilendiamintetraasetat

Penganalisis hematologi. Vet Clin Pathol 35: 42-46.

14. Bonini P, Plebani M, Ceriotti F, Rubboli F (2002) Kesalahan dalam kedokteran laboratorium.

11. Murphy MF, Brozovic B, Murphy W, Ouwehand W, Waters AH (1992) Pedoman transfusi trombosit. Komite Standar Hematologi Inggris,

pada suhu ruangan untuk menghitung sel darah merah dan putih serta trombosit.

Dewan Standardisasi Hematologi: Panel Ahli Sitometri. Am J Clin Pathol 100: 371-372.

konsentrasi, dan jumlah sel dalam darah sapi, kambing, dan babi yang disimpan di

12. Lippi G, Salvagno GL, Solero GP, Franchini M, Guidi GC (2005) Stabilitas

22. Hadzimusic N, Katica M, Muharemovic Z, Mušanovic J (2010) Pengaruh

25. Wood BL, Andrews J, Miller S, Sabath DE (1999) Penyimpanan berpendingin meningkatkan stabilitas hitung sel darah lengkap dan diferensial otomatis. Am J

Clin Chim Acta 397: 68-71.

Penganalisis hematologi Advia A120. J Lab Clin Med 146: 333-340.

Jurnal Internasional Penelitian Kolaboratif tentang Penyakit Dalam & Publik 15. Villarrubia J (2004) Aturan pengambilan keputusan untuk tinjauan hematologi. Sebuah jurnal internasional