Adelina, Mokoginta I, Yusadi D. 2000. Pengaruh pakan dengan kadar protein dan rasio energi protein yang berbeda terhadap pertumbuhan benih ikan bawal air tawar (Collosoma macropomum). J.Il. Pert.Indo. 9(2):31-36.
Affandi R., Tang UM 2002. Fisiologi hewan air. Unri Press. Universitas Riau. Pekanbaru.217 hal.
Anonimous. 1986. Longman dictionary of scientific usage. Longman Group. Ltd. Hongkong. 684 pp.
[APHA] American Public Health Association, American Water Works Assosiation and Water Pollution Control Federation. 1975. Standart methods for the examination of water and wastewater. 14th. Ed., Washington, D.C. 1193 pp. Besong S, Jackson JA, Trammell DS, Akay V. 2001. Influence of supplemental
chromium on concentrations of liver triglyceride, blood metabolites and rumen VFA profile in steers fed a moderately high fat diet. J. Dairy Sci., 84:1679-1685.
Capelu WT, Wang ZQ, Zhang XH, Baldor LC, Russell JC. 2002. Oral chromium picolinate improve carbohydrate and lipid metabolism and enhances skele tal muscle glut-4 translocation in obese, hyperinsulinemic (JCR-LA Corpulent) rats. J. Nutr., 132:1107-1114.
Cho CY, Watanabe T. 1988. Nutritional energetics, p. 79-92. In : Watanabe T, (ed.). Fish nutrition and mariculture JICA Textbook The General Aquaculture Course. Tokyo : Kanagawa International Fisheries Training Center.
Eckmann R. 1987. Growth and body composition of juvenile Colossoma macropomum Cuvier 1818 (Characoidei) feeding on artificial diets. Aquaculture, 64293-303.
Ensminger ME, Oldfield F, Heinemenn WW. 2000. Feeds and nutrition (formely, feeds and nutrition-complete). Second Edition. California : The Enminger Publishing Company.
Furuichi M. 1988. Fish nutrition, p.1-78. In: Watanabe T, (ed.). Fish nutrition and mariculture JICA Textbook The General Aquaculture Course. Tokyo : Kanagawa International Fisheries Training Center.
Goddard S. 1996. Feed management in intensive aquaculture. Chapman and Hall, New York.
Groff JL, Gropper SS. 2000. Advanced nutrition and human metabolism. 3rd. Edition. Wadsworth-Thomson Learning, Balmount, USA. 584 pp.
Gunther J. 1996. Growth of tambaqui (Colossoma macropomum) juveniles at different carbohydrate -lipid ratio. J.of Aquaculture in the tropics 11:105-112. Hafez ESE, Dyer IA. 1969. Animal growth nutrition. Lea and Febiger. Philadelphia.
402 p.
Halver JE, Hardy RW. 2002. Fish nutrition. 3rd Ed. Academic press, USA.822 p. Hastuti S. 2004. Respon fisiologis ikan gurame (Osphronemus gouramy, Lac) yang
diberi pakan mengandung kromium-ragi terhadap penurunan suhu lingkungan. Disertasi, Sekolah Pascasarjana. Institut Pertanian Bogor. 104 hal.
Hepher B. 1990. Nutrition of pond fishes. New York: Cambridge university press. Hernandez M, Takeuchi T, Watanabe T. 1995. Effect of dietary energy sources on
the utilization of protein by Colossoma macropomum fingerlings. Fisheries Science, 61(3):507-511.
Hertz Y, Mader Z, Hepher B, Gertler A. 1989. Glucose metabolism in the common carp (Cyprinus carpio L): the effects of cobalt and c hromium. Aquaculture, 76:255-267.
Huisman EA. 1976. Food conversion efficiencies at maintenance and production levels for carp, Cyprinus carpio L and rainbow trout, Salmon gairdneri R. Aquaculture 9:259-273.
Kegley EB, Galloway DL, Fakler TM. 2000. Effect of chromium-L-methionine on glucose metabolism of beef steers. J. Anim. Sci., 78:3177-3183.
Lall SP. 2002. The minerals, p.259-308. In: Halver JE, Hardy RW. (Eds). 2002. Fish nutrition. 3rd Ed. Academic press, USA.822 p.
Mattews JO, Higbie AD, Southern LL, Coomb DF, Bidner TD, Odgaard RL. 2003. Effect of chromium propionate and metabolizable energy on growth, carcass traits, and pork quality of growing-finising pigs. J. Anim. Sci., 81:191-196. Merola N, Cantelmo OA. 1987. Growth, feed corvertion and mortality of
cage-reared tambaqui. (Colossoma macropomum), fed various dietary feeding regimes and protein levels. Aquaculture 66:223-233.
Mertz W. 1979. Chromium-an overview, p.1-14. In Shapcott D, Hubert J. (Eds). Chromium nutrition and metabolism. Elsevier/North-Holland Biomed. Press. Amsterdam. The Netherlands.
Mokoginta I, Suprayudi MA, Setiawati M. 1992. Nutrie nt requirement of giant gouramy Osphronemus gouramy for the growth and reproduction. Bogor: Fakultas Perikanan Institut Pertanian Bogor. 264 p.
Mokoginta I, Hapsyari F, Suprayudi MA. 2005a. Peningkatan retensi protein melalui peningkatan efisiensi karbohidrat pakan yang diberi chromium pada ikan mas (Cyprinus carpio Linn). J. Akuakultur Indonesia. 3 (2) : 37-41.
Mokoginta I, Agustina VS, Utomo NBP . 2005b. Pengaruh kadar kromium pakan yang berbeda terhadap retensi protein, pertumbuhan dan kesehatan ikan nila (Orechromis niloticus). J. Ilmu-ilmu Perairan dan Perikanan Indonesia. 12 (1) : 33-37.
Murrey RK, Granner DK, Mayes PA, Rodwell VW. 2003. Biokimia harper. Eds. 25. Alih bahasa A. Hartono. Jakarta: Penerbit Buku Kedokteran (ECG).
New NB. 1987. Feed and feeding if fish and s hirmp. FAO and UNEP. Rome. 274p. [NRC] National Research Council, Subcommite on Warmwater Fish Nutrition. 1977.
Nutrient requirements of warmwater fishes. Washington DC : National Academy Press.
[NRC] National Research Council, Subcommite on Warmwater Fish Nutrition. 1993. Nutrient requirements of fish. Washington DC : National Academy of science. [NRC] National Research Council. 1997. The role of chromium in animal nutrition.
National Acad. Press. Washington DC. 80 pp.
Pan Q, Liu S, Tan YG, B i YZ. 2003. The effect of chromium picolinate on growth and carbohydrate utilization in tilapia (Oreochromis niloticus x O. aureus). Aquaculture 225:421-429.
Phillips AM Jr. 1969. Nutition, digestion and energy utilization. P.391-423. In Hoar, W.S. and D.J. Randal (Eds.). Fish physiology. Vol. I. Academic Press. New York.
Sahin K, Ozbey O, Onderci M, Cikim G, Aysondu MH. 2002. Chromium supplementation can alleviate negative effects heat stress on egg production, egg quality and some serum metabolites of laying japanese quail. J. Nutr., 132:1265-1268.
Saint-Paul U. 1989. Colossoma macropomum (Keluarga Serrasalmidae) jenis ikan neotropik yang potensila untuk dibudidayakan di Amazona dalam budidaya air. Seri Studi Pertanian, Kerjasama Jerman dan Indonesia. Penyunting Alfred Bittner. Yayasan Obor. Jakarta. 32 hal.
Seenappa D, Devaraj KV. 1995. Effect of different levels of protein, fat and carbohydrate on growth, feed utilization and body carcass composition of fingerling in Catla catla (Ham). Aquaculture., 129:243-249.
Shiau SY, Chen MJ. 1993. Carbohydrate utilization by tilapia (Oreocromis niloticus x O. aureus) as influenced by different c hromium sources. J.Nutr.,123:1747-1753.
Shiau SY, Liang HS. 1995. Carbohydrate utilization and digestibility by tilapia, Oreocromis niliticus x O. aureus, are affected by chromium oxide inclusion in the diet. J.Nutr., 125:976-982.
Shiau SY, Lin SF. 1993. Effects of supplementa tion dietary chromium and vanadium on the utilization of different carbohydrate in tilapia (Oreocromis niloticus x O. aureus). Aquaculture 110:321-330.
Shiau SY, Shy SM. 1998. Dietary chromic oxide inclusion le vel required to maximize glucose utilization in hybrid tilapia. (Oreocromis niloticus x O. aureus). Aquaculture. 161:357-364.
Shimeno S, Kheyyali D, Shikata T. 1995. Metabolic response to dietary lipid to protein ratios in common carp. Fisheries Science. 61(6):977-980.
Subandiyono, Mokoginta I, Sutardi T. 2003. Pengaruh kromium dalam pakan terhadap kadar glukosa darah, kuosien respiratori, ekskresi NH3-N, dan pertumbuahan ikan gurami. Hayati, 10:25-29.
Suprayudi MA, Setiawati M, Mokoginta I. 1994. Pengaruh rasio protein energi yang berbeda terhadap pertumbuhan ikan gurame (Osphronemus gouramy Lac). Laporan Penelitian. Fakultas Perikanan Institut Pertanian Bogor. Bogor. 68 hal. Southe rn CL. 2003. Understanding organic chromium sources for animal nutrition
and performance. WWW.Zinpro.com. PS-G-1011. June 24. 2003.
Supriatna. 1998. Pengaruh kadar lemak-n3 yang berbeda pada kadar asam lemak n6 tetap pakan terhadap pertumbuhan ikan bawal air tawar (Colossoma macropomum Cuvier). Tesis. Program Pascasarjana. Institut Pertanian Bogor. Bogor. 52 hal.
Takeuchi T. 1988. Laboratory work-chemical evaluation of dietary nutrients, p.179-233 In: Fish nutrition and mariculture. Watanabe T. (ed) 1988. Department of Aquatic Biosciences. Tokyo University of Fisheries. JICA.
Underwood EJ, Suttle NF. 1999. The mineral nutrition of livestock. 3rd Ed. CABI Pub., Oxon, UK, 624 pp.
Vincent JB. 2000. The biochemistry of chromium. J. Nutr., 130:715-718.
Watanabe T. 1988. Fish nutrition and mariculture. Department of Aquatic Biosciences. Tokyo University of Fisheries. JICA. 223 p.
Weatherly AH. 1972. Growth and ecology of freshwater fish population. Acad. Press. New York:234 p.
Webster CD, Lim C. 2002. Nutrient requirements and feeding of finfish for aquaculture. CABI Publishing. Frankfort. USA.
Wilson RP. 1994. Utilization of dietary carbohydrate by fish. Aquaculture, 124:67-80.
Xi G, Xu Z, Wu S, Chen S. 2001. Effect of chromium picolinate on growth performance, carcass characteristics, serum metabolites and metabolism of lipid in pigs. Asian-Aust. J. Anim. Sci., 14 (2):258-262
Yamada R. 1983. Pond production system: feeds and feeding practices in warmwater-fish ponds, p.117-144. In Lannan JE, Smitherman RO, Tchobanoglous G. (Eds.) P ranciples and practices of pond aquaculture: A state of the art review. Oregon State University,.Newport. Oregon.
Yusuf, M. 2001. Genetika I, struktur dan ekspresi gen. Sugeng Seto. Jakarta. 300 hlm.
Lampiran 1. Pengukuran konsentrasi RNA dengan me tode re aksi orsinol
1. Pembuatan homogenat otot ikan dengan cara menimbang 5.0 gram otot ikan dan diiris menjadi potongan-potongan kecil. Kemudian ditambahkan 10. 0 ml air dan dihomogenkan dengan Ultraturax dengan kecepatan rendah.
2. Diambil 2. 5 ml homogenat dan dimasukkan ke dalam tabung sentrifuse yang telah didinginkan, kemudian ditambahkan dengan 2. 5 ml HClO4 0.6 M dingin, dikocok dan disimpan dalam es selama 10 menit.
3. Kemudian disentrifugasi campuran di atas pada kecepatan 5000 rpm selama 10 menit.
4. Supernatannya dibuang dan peletnya disuspensikan kembali dalam 4.0 ml KOH 0. 3 M. Kemudian dipanaskan dalam penangas air pada suhu 40 oC selama 40 menit.
5. Tabung-tabung di atas selanjutnya didinginkan dalam es selama 5 menit kemudian ditambahkan 2. 5 ml HClO4 1. 2 M, dikocok dan disimpan dalam es selama 10 menit.
6. Disentrifugasi kembali seperti pada tahap 3.
7. Pada tahap ini baik supernatan maupun peletnya dikumpulkan. Supernatan diberi label sebagai ekstrak RNA sedangkan peletnya disuspensikan kembali untuk memperoleh ekstrak DNA.
8. Disediakan tabung-tabung reaksi yang telah diberi label yaitu B untuk blanko, S untuk standar dan tabung reaksi untuk sampel diberi nomor contoh masing-masing secara duplikat.
9. Untuk tabung standar ditambahkan sebanyak 1.0 ml standar RNA yang mengandung RNA terhidrolisa sebanyak 125 µg/ml dalam asam trichloroasetat 10%. Untuk tabung blanko ditambahkan sebanyak 1.0 ml akuades dan untuk tabung sampel ditambahkan sebanyak 1.0 ml ekstrak RNA dari masing-masing sampel.
10. Kemudian pada tiap-tiap tabung reaksi ditambahkan 3. 0 ml pereaksi orsinol. 11. Dipanaskan di dalam penangas air pada suhu 100oC selama 20 menit kemudian
didinginkan dan ditambahkan pada setiap tabung reaksi akuades sebanyak 2. 0 ml.
12. Absorbansinya diukur pada panjang gelombang 660 nm dengan spektrofotometer. Dinolkan dengan menggunakan blanko.
13. Konsentrasi RNA dapat dihitung dengan menggunakan rumus di bawah ini :
Absorbansi sampel
RNA (µg/ml) = x konsentrasi RNA Absorbansi standar
Lampiran 2. Pengukuran konsentrasi DNA dengan metode reaksi difenilamin
1. Pelet hasil ekstraksi pada tahap 7 Lampiran 1 disuspensikan kembali dalam 10. 0 ml HClO4 0.2 M dingin dan disentrifugasi dengan kecepatan 5000 rpm selama 10 menit.
2. Supernatannya dibuang dan peletnya disuspensikan kembali dalam 2.0 ml HClO4 0. 2 M dingin dan dipindahkan dalam 2 botol mikrofuse kecil.
3. Disentrifugasi kembali selama 10 menit.
4. Supernatannya dibuang kembali dan botol-botol mikrofuse yang berisi pelet dimasukkan ke dalam penangas air pada suhu 100oC selama 10 menit.
5. Ditambahkan 1. 0 ml HClO4 0. 2 M dingin pada setiap botol tersebut dan disuspensikan kembali.
6. Disentrifugasi lagi dan supernatannya digunakan sebagai ekstrak DNA.
7. Disiapkan tabung-tabung reaksi yang telah diberi label yaitu B untuk blanko, S untuk standar dan tabung reaksi untuk sampel diberi nomor sampel masing-masing s ecara duplikat.
8. Untuk tabung standar ditambahkan standar DNA yang mengandung DNA terhidrolisa sebanyak 250 µg/ml dalam asam trichloroasetat 10% dan untuk tabung blanko ditambahkan sebanyak 1.0 ml TCA 10% dan untuk tabung sampel ditambahkan sebanyak 0.5 ml ekstrak DNA dari masing-masing sampel. 9. Di dalam setiap tabung reaksi ditambahkan 4. 0 ml pereaksi difenilamin.
Selanjutnya pada tabung reaksi kontrol dan standar ditambahkan 1.0 ml TCA 10% sedangkan pada tabung sampel ditambahkan 1.5 ml TCA 10%.
10. Dipanaskan di dalam penangas air pada suhu 80 oC selama 30 menit dan selanjutnya didinginkan di dalam es.
11. Absorbansinya diukur pada panjang gelombang 600 nm dengan spektrofotometer.
12. Konsentrasi DNA dapat dihitung dengan menggunakan rumus di bawah ini :
Absorbansi sampel
Kadar purin (µg/ml) = x konsentrasi DNA Absorbansi standar
13. Nilai di atas dikoreksi dengan pengenceran selama ekstraksi dan juga dilakukan koreksi untuk fraksi pirimidin yang tetap tersisa dalam asam yang tak larut pada akhir ekstraksi. Dengan asumsi perbandingan purin dan pirimidin adalah 1:1.
Lampiran 3 Analisis kadar protein pakan dan tubuh ikan dengan metode semi mikro kjeldahl (Takeuchi, 1988)
1. Sampel 0.5 – 1.0 gram ditimbang dan dimasukkan ke dalam labu kjeldahl no. 1 dan salah satu labu (no.2) digunakan sebagai blanko dimana pada labu itu tidak dimasukan sampel.
2. Kedalam labu no. 1 ditambahkan 3. 0 gram katalis (K2SO4 + CuSO45H2O) dengan rasio 9:1 dan 10.0 ml H2SO4 pekat.
3. Labu no.2 dipanaskan selama 3-4 jam, sampai cairan dalam labu berwarna hijau, setelah itu pemanasan diperpanjang lagi 30 menit.
4. Laruta n didinginkan, lalu ditambahkan air destilasi 30. 0 ml, kemudian larutan no.2 dimasukkan ke labu takar, tambahkan larutan destilasi sampai volume larutan mencapai 100. 0 ml.
5. Dilakukan proses destilasi untuk membebaskan kembali NH3 yang berasal dari proses destruksi pada no.4
6. Labu erlenmeyer diisi 10.0 ml H2SO4 0.005 N dan ditambahkan 2-3 tetes indikator (methyl red/methylen blue) dipersiapkan sebagai penampung NH3 yang dibebaskan dari labu no.4
7. Labu destilasi diisi 5. 0 ml larutan no.4 lalu ditambahkan larutan sodium hydroxide 30%.
8. Pemanasan dengan uap terhadap labu destilasi (no. 7) dilakukan minimum 10 menit. Setelah kondensasi uap terlihat pada kondensor.
9. Larutan dalam labu erlenmeyer ditetrasi dengan 0.05 N larutan sodium hydroxide.
10. % protein = (0.0007*x(Vb-Vs)x F x 6.25** x 20)/S
Keterangan :
Vs = ml 0.05 N titer NaOH untuk sampel Vb = ml titer NaOH untuk blanko
F = faktor koreksi dari 0.05 N larutan NaOH S = bobot sampel (g)
* = setiap ml 0.05 N NaOH equivalent dengan 0.0007 g nitorgen ** = faktor nitrogen
Lampiran 4 Analisa kadar lemak pakan dan tubuh ikan dengan me tode e kstraksi soxhlet (Takeuchi, 1988 )
1. Labu ekstraksi dipanaskan pada suhu 110oC selama satu jam. Kemudian didinginkan selama 30 menit dalam desikator. Panaskan kembali selama 30 menit, lalu didinginkan, kemudian ditimbang. Proses tersebut diulang sampai tidak ada perbedaan bobot labu lebih dari 0.3 mg. Bobot ekstraksi (A).
2. 1. 0-2.0 g sampel dimasukkan kedalam tabung filter, lalu dipanaskan pada suhu 90 – 100 oC selama 2 – 3 jam.
3. Tempatkan tabung filter pada no.2 ke dalam ekstraksi dari alat Soxhlet. Kemudian sambungkan dengan kondensor labu ekstraksi pada no.1 yang telah diisi 100. 0 ml petroleum ether.
4. Panaskan ether pada labu ekstraksi dengan penggunaan water ba th, suhu 70 oC selama 16 jam.
5. Panaskan labu ekstraksi pada suhu 100 oC, kemudia n ditimbang (B) 6. % lemak = ((B – A)/berat sampel) x 100% .
Lampiran 5 Analisa kadar abu pakan dan ikan (Takeuschi, 1988)
1. Cawan proselin dipanaskan pada suhu 600oC selama 1 jam dengan menggunakan muffle furnace, kemudian dibiarkan sampa i suhu muffle furnace turun sampai 110oC, lalu cawan porselin dikeluarkan dan disimpan dalam desikator selama 30 menit, lalu ditimbang (A).
2. Masukkan sampel lalu ditimbang (B), penimbanagn sampai empat desimal. 3. Panaskan dalam muffle furnace pada suhu 600oC, sampai bahan berwarna putih. 4. Cawan porselin dikeluarkan lalu didinginkan dalam desikator selama 30 menit
lalu ditimbang (C ).
Lampiran 6 Analisi serat kasar pakan (Takeuchi, 1988)
1. Bahan (A gram) dimasukkan ke dalam erlenmeyer 350. 0 ml, ditambah dengan 50.0 ml H2SO4 0.3 N kemudian dipanaskan di atas hot plate selama 30 menit. 2. Tambahkan 25. 0 ml NaOH 1.5 N, kemudian dipanaskan kembali selama 30
menit.
3. Panaskan kertas saring didalam oven, masukkan ke dalam desikator selama 10 menit kemudian ditimbang (X1). Pasang kertas saring pada corong buchner yang dihubungkan dengan vaccum pump.
4. Larutan yang telah dipanaskan dituang ke dalam corong buthner, lakukan pembilasan berturut-turut menggunakan 50. 0 ml air panas, 50. 0 ml H2SO4 0.3 N, 50.0 ml air panas dan 25.0 ml aceton.
5. Panaskan cawan porselin pada suhu 105-110oC selama 1 jam dan dinginkan dalam desikator.
6. masukkan kertas saring dari corong buthner ke dalam cawan, panaskan pada suhu 105oC, desikator dan ditimbang (X2)
7. Serat kasar = ((X1 - X2)/A) x 100%.
Lampiran 7 Analisa kadar air pakan dan tubuh ikan (Takeuchi, 1988)
1. Cawan dipanaskan pada suhu 105oC selama 3 jam.
2. Bahan seberat A gram dimasukkan ke dalam cawan dan ditimbang (x gram). 3. Cawan yang sudah berisi bahan dimasukan kedalam oven pada suhu 105oC
selama 3 jam, selanjutnya didinginkan dalam desikator dan ditimbang (Y gram) 4. Prosedur no.3 diulang kembali, jika tidak ada perubahan berat, maka pengukuran
selesai.
Lampiran 8 Pertambahan bobot, laju pertumbuhan harian, konsumsi pakan, efisiensi pakan dan ekskresi total amonia ikan bawal air tawar (C. macropomum) yang diberi pakan mengandung kromium organik selama 60 hari pemeliharaan.
Pakan (ppm Cr+3; % protein)
Ulangan Bobot Awal (g) Bobot Akhir (g)
Pertambahan Bobot (g) Laju Pertumbuhan Harian (%) Konsumsi Pakan (g) Efisiensi Pakan (%) Ekskresi Total Amonia mg/g BT/Jam 1 241.50 938. 10 696.60 2.29 1038.50 67.08 0.00163 2 244.50 1169.60 925.10 2.64 1085.00 85.26 0.00173 0.0 ; 37.0 3 241.10 1061.40 820.00 2.50 1094.10 74.95 - Rata-rata 242.47±1.76 1056. 37±115.83 813.90±114. 37 2.48±0.18 1072. 53±29.82 75.76±9.12 0.00171±0.00007 1 244.50 1106.20 861.70 2.55 1050.40 82.04 0.00169 2 227.30 1061.80 834.50 2.46 1054.70 77.23 0.00166 1.5; 37.2 3 246.30 953. 40 707.10 2.28 985. 20 71.77 - Rata-rata 239.37±10.49 1040. 47±78.60 801.10±82.53 2.44±0.14 1030. 10±38.94 77.01±5.14 0.00167±0.00001 1 230.60 1163.40 932.80 2.73 990. 10 94.21 0.00105 2 232.90 1082.00 849.10 2.59 952. 40 89.15 0.00104 3.0; 37.1 3 220.00 1071.70 851.70 2.57 977. 60 85.76 - Rata-rata 227.83±6.88 1105. 70±50.23 877.87±47.59 2.63±0.09 973. 37± 19.20 89.71±4.25 0.00105±0.0000 1 1 227.00 1041.40 814.40 2.57 958. 00 85.01 0.00170 2 228.50 970. 20 714.70 2.46 907. 10 81.77 0.00410 4.4; 37.2 3 225.00 962. 60 737.60 2.45 917. 10 80.43 - Rata-rata 226.83±1.76 991. 40±43.47 764.57±43.21 2.49±0.07 927. 40± 26.98 82.40±2.35 0.00155±0.0001 5 1 238.80 913. 80 675.00 2.26 906. 00 74.50 0.001412 2 227.60 831. 90 604.30 2.12 883. 30 67.51 0.001568 1.5 ; 30.3 3 218.90 923. 90 705.00 2.31 918. 70 74.98 - Rata-rata 228.43±9.98 889. 87±50.45 661.43±51.70 2.23±0.10 902. 67± 17.93 72.33±4.18 0.00149 ±0.000078
Lampiran 9 Hasil analisis proksimat pakan uji ikan bawal air tawar (C. macropomum) (% bobot kering)
Pakan
(ppm Cr3 +, % protein) Abu Protein Lemak S.Kasar BETN
A (0.0; 37.0) 9.06 37.02 13.91 4.45 35.56 B (1.5; 37.2) 9.77 37.19 14.00 4.25 34.79 C (3.0; 37.1) 9.77 37.10 15.43 4.10 33.61 D (4.4; 37.2) 9.95 37.23 15.55 4.07 33.20 E (2.1; 30.3) 8.65 30.32 19.53 5.61 35.89
Lampiran 10 Hasil analisis proksimat awal dan akhir ikan bawal air tawar (C. macropomum) yang dipelihara selama 60 hari dengan pemberian pakan yang mengandung kromium organik.
% Bobot Kering Pakan
(ppm Cr3 +;
% protein) Abu Protein Lemak S. Kasar BETN
Awal 13.59 54.20 25.44 1.54 5.23 A1(0.0; 37.0) 13.00 48.90 36.27 1.18 0.65 A2(0.0; 37.0) 13.05 49.26 35.84 1.08 0.77 Rata -Rata 13.03±0.04 49.08±0.26 36.05±0.31 1.13±0.07 0.71±0.08 B1(1.5; 37.2) 12.23 48.35 36.78 1.66 0.97 B2(1.5; 37.2) 10.79 49.65 37.35 1.12 1.09 Rata -Rata 11.51±1.02 49.00±0.91 37.07±0.40 1.39±0.38 1.03±0.08 C1(3. 0; 37.1) 11.76 51.36 34.66 1.34 0.87 C2(3.0; 37.1) 11.63 51.27 34.71 1.43 0.94 Rata -Rata 11.70±0.09 51.31±0.06 34.69±0.03 1.39±0.07 0.90±0.04 D1 (4.4; 37.2) 13.22 53.45 31.05 1.27 1.02 D2 (4.4; 37.2) 13.15 53.04 31.34 1.33 1.14 Rata -Rata 13.18±0.05 53.24±0.29 31.19±0.21 1.30±0.04 1.08±0.09 E1(2.1; 30.3) 13.15 53.48 30.44 0.91 2.02 E2(2.1; 30.3) 12.87 52.99 31.20 0.94 1.98 Rata -Rata 13.01±0.20 53.24±0.35 30.82±0.54 0.93±0.02 2.00±0.03
Lampiran 11 Konsentrasi glikogen pada hati dan daging ikan bawal air tawar (C. macropomum) yang dipelihara selama 60 hari dengan pemberian pakan yang mengandung kromium organik.
Konsentrasi Glikogen (µg/g) Pakan
(ppm Cr3 +; % protein) Ulangan Hati Daging
A (0.0; 37.0) 1 38.75 3.19 2 39.97 2.73 3 39.30 2.94 Rata-rata 39.34±0. 61 2.95±0.23 B (1.5; 37.2) 1 60.49 4.14 2 60.95 4.02 3 60.70 4.05 Rata-rata 60.71±0.23 4.07±0.06 C (3.0; 37.1) 1 84.13 7.14 2 84.61 6.45 3 84.35 6.76 Rata-rata 84.36±0. 24 6.78±0.35 D (4.4; 37.2) 1 71.24 7.65 2 71.51 8.19 3 71.35 7.59 Rata-rata 71.37±0. 14 7.81±0.33 E (2.1; 30.3) 1 36.74 3.65 2 36.66 3.82 3 36.67 3.72 Rata-rata 36.69±0. 05 3.73±0.09
Lampiran 12 Konsentrasi R NA, DNA dan rasio RNA/DNA ikan bawal air tawar (C. macropomum) yang dipelihara selama 60 hari dengan pemberian pakan yang mengandung kromium organik.
Pakan
(ppm Cr3+; % protein) Ulangan RNA (µg/g) DNA (µg/g) RNA/DNA
A (0.0; 37.0) 1 1110.93 923.67 1.20 2 1162.81 941.72 1.23 3 1154.16 968.80 1.19 Rata-rata 1142±27.80 944.73±22.71 1.21±0.02 B (1.5; 37.2) 1 1347.11 1050.83 1.28 2 1298.08 1059.02 1.23 3 1217.68 1034.46 1.18 Rata-rata 1287.62±65.35 1048.10±12.51 1.23±0.05 C (3.0; 37.1) 1 1428.08 1140.84 1.25 2 1464.56 1124.81 1.30 3 1424.24 1108.78 1.28 Rata-rata 1438.96±22.25 1124.81±16.03 1.28±0.03 D (4.4; 37.2) 1 1370.33 1104.17 1.24 2 1374.66 1122.22 1.22 3 1344.39 1086.12 1.24 Rata-rata 1363.13±16.37 1104.17±18.05 1.23±0.01 E (2.1; 30.3) 1 1251.02 1008.71 1.24 2 1241.76 1024.18 1.21 3 1260.29 1031.92 1.22 Rata-rata 1251.02±9.27 1021.60±11.82 1.22±0.01