Penelitian ini dilaksanakan pada bulan April sampai Juli 2012. Pemeliharaan burung merpati dilakukan di Sinar Sari, Dramaga, Bogor, Jawa Barat. Pengamatan profil darah dan pengukurannya dilakukan di Laboratorium Anatomi Fisiologi dan Farmakologi, Fakultas Kedokteran Hewan, Institut Pertanian Bogor.
Materi
Burung merpati yang digunakan dalam penelitian ini adalah 25 pasang burung merpati dewasa berumur 9-12 bulan dengan kisaran bobot badan 200-405 g. Burung merpati tersebut berasal dari peternakan rakyat di Sinar Sari, Dramaga, Bogor, Jawa Barat.
Peralatan yang dibutuhkan dalam penelitian yaitu: timbangan digital dengan ketelitian 1 g, kandang untuk memelihara burung merpati, tempat pakan, dan minum, kertas koran, spuit, spektrofotometer, mikroskop serta preparat kaca. Bahan yang digunakan yaitu kertas koran, larutan koagulan Ethylene Diamine Tetra Acid (EDTA), alkohol 70%, larutan methanol, larutan giemsa, cuvet.
Prosedur
Burung merpati yang digunakan dalam penelitian ini diperoleh dari peternak dan pedagang di sekitar wilayah Bogor barat. Masa adaptasi burung merpati sebelum digunakan dalam penelitian meliputi tiga tahap yaitu (1). Adaptasi kandang pada hari pertama pada saat merpati datang, (2). Adaptasi lingkungan pada hari kedua, dan ketiga, (3). Burung merpati mulai bisa dilatih terbang. Latihan terbang dilakukan pada jarak 50, 100, 150, dan 200 meter dengan 2 kali pengulangan. Pengambilan darah dilakukan pada hari pertama (saat burung merpati datang dan pada hari ke-14 setelah dilatih terbang). Burung merpati yang dilatih terbang adalah burung merpati jantan sedangkan burung merpati betina hanya digunakan sebagai pemancing burung merpati jantan dengan cara diklepek (memanggil burung merpati pejantan dengan cara menggunakan burung merpati betina dengan cara mengayun- ayunkan burung merpati betina).
9
Pemeliharaan
Burung merpati dipelihara secara intensif. Burung merpati tersebut dikandangkan pada saat sore hari (menjelang malam) sebanyak 2 ekor per kandang (Gambar 1B). Burung merpati juga di lepas di dalam kurungan pada saat pagi hari hingga sore hari (Gambar 1A).
Gambar 1. Kurungan Merpati (A) dan Kandang Merpati (B).
Pemberian Pakan dan Minum
Pemberian pakan dilakukan pada pagi hari. Pakan burung merpati berupa jagung butir berukuran kecil dengan diameter 0,5 cm dan diberikan sesuai dengan kebutuhan yaitu 70 g jagung per pasang burung merpati per harinya. Air minum diberikan ad libitum dan disediakan dalam tempat air minum berkapasitas 2 l.
Penimbangan Bobot Badan
Penimbangan bobot badan burung merpati selama pemeliharaan dilakukan pada awal pemeliharaan dan minggu kedua (hari ke-14) pemeliharaan. Penimbangan bobot badan bertujuan untuk mengetahui pertambahan bobot badan. Penimbangan dilakukan dengan menggunakan timbangan digital dengan merk Weston dengan satuan gram (Gambar 2B).
Pengukuran Konsumsi Pakan dan Sisa Pakan
Konsumsi pakan diperoleh dengan menimbang jumlah pakan yang diberikan tiap harinya selama pemeliharaan dan dilanjutkan dengan penimbangan sisa pakan untuk mengetahui jumlah konsumsi pakan burung merpati tiap harinnya. Konsumsi pakan adalah selisih pakan dikurangi dengan sisa pakan yang tidak dimakan dalam satuan gram (Gambar 2A).
10 .
Gambar 2. Timbangan Pakan Digital (A), dan Timbangan Digital (B)
Pengambilan Sampel Darah
Pengambilan sampel darah dilakukan menggunakan spuit 1 ml dengan jarum
26G x 1/2’’. Sampel darah diambil pada vena sayap. Setelah darah burung merpati
diambil, langsung dimasukkan ke dalam tabung yang sudah diisi antikoagulan EDTA Ethylene Diamine Tetra Acid (EDTA) di dalamnya (Gambar 3A dan 3B).
Gambar 3. Pengambilan Sampel Darah Burung Merpati (A) dan Sampel Darah (B)
(A) (B)
11
Perhitungan Jumlah Hemoglobin
Perhitungan jumlah hemoglobin merujuk pada Sastradipradja et al. (1989). Metoda ini banyak digunakan dalam laboratorium klinik diagnostik dan untuk penelitian hematologi, karena cukup akurat. Prinsip yang digunakan dalam metoda ini yaitu darah ditambahkan ke dalam suatu larutan yang mengandung kalium sianida dan kalium ferisianida (reagen drabkins). Ferisianida akan merubah besi dari hemoglobin yang bervalensi dua (++ : ferro) menjadi bervalensi tiga (+++ : ferri) sehingga terbentuk methemoglobin yang kemudian berikatan dengan kalium sianida membentuk pigmen yang stabil ialah sianmethemoglobin.
Intensitas warna campuran ini diukur dengan alat spektofotometer, pada panjang gelombang 540 nm, atau menggunakan filter hijau kekuningan. Optical Density (O.D) larutan sebanding dengan konsentrasi hemoglobinnya. Semua bentuk- bentuk hemoglobin diukur dengan metoda ini, kecuali sulfhemoglobin.
Pipet larutan Reagen Drabkins 5,0 ml, kemudian masukan kedalam tabung reaksi 1 dan 2. Tambahkan 0,02 ml darah ke dalam tabung reaksi ke 2, dengan menggunakan pipet sahli atau pipet lainnya yang bervolume 0,02 ml, kemudian bilas pipet yang sudah digunakan, agar tidak ada darah yang tertinggal di dalam pipet, dengan cara menghisap dan meniupkan cairan yang ada dalam tabung reaksi ke 2 tersebut.
Campur dengan baik larutan di dalam tabung, kemudian dibiarkan selama paling sedikit 10 menit pada suhu kamar, agar terbentuk sianmthemoglobin dengan baik. Selanjutnya dilakukan pembacaan dengan transmittance (Optical Density) larutan tersebut dengan menggunakan alat kolorimeter atau spektofotometer pada panjang gelombang 540 nm (menggunakan filter hijau kekuningan).
Perhitungan Jumlah Hematokrit (PCV%)
Perhitungan jumlah hematokrit (PCV%) merujuk pada Sastradipradja et al. (1989). Perhitungan hematokrit (PCV%) bertujuan untuk menentukan nilai hematokrit (peresentase volume eritrosit di dalam darah) dengan prinsip darah yang bercampur dengan antikoagulan diputar dengan alat centrifuse sehingga akan terbentuk lapisan-lapisan. Kolom atau lapisan yang terdiri atas butir-butir darah merah atau eritrosit diukur dan dinyatakan sebagai peresentase volume dari keseluruhan darah.
12 Cara yang digunakan dalam perhitungan ini yaitu dengan metoda mikrohematokrit. Langkah pertama yaitu bersihkan daerah pengambilan darah, kemudian tusuk pembuluh darah dengan menggunakan spuit setelah darah keluar tempelkan mikrokapiler yang bertanda merah atau biru pada tetesan darah tersebut, biarkan darah sampai mengalir mengisi 4/5 bagian pipa kapiler kemudian sumbat ujung pipa kapiler yang bertanda (tidak selalu bertanda) dengan crestaseal. Setelah itu pipa-pipa kapiler ditempatkan dan disusun pada alat mikrocentrifuse, putar pipa- pipa kapiler yang berisikan darah dengan alat mikrocentrifuse selama 5 menit dengan kecepatan 11.500-15.000 rpm, setelah diputar akan terbentuk lapisan-lapisan yang terdiri atas lapisan plasma yang jernih dibagian atas kemudian lapisan putih abu-abu (buffy coat) ialah trombosit dan leukosit dan lapisan merah yaitu eritrosit. Nilai hematokrit ditentukan dengan mengukur presentase volume eritrosit (lapisan merah) dari darah dengan menggunakan alat baca mikrohematokrit (microcapillary hematokrit reader).
Perhitungan Jumlah Sel Darah Merah
Perhitungan jumlah sel darah merah merujuk pada penelitian Sikar et al.
(1984). Sampel darah dihisap dengan menggunakan pipet eritrosit hingga pada tera 1 dengan aspirator.
Ujung pipet dibersihkan dengan menggunakan tissue, lalu pipet diisi larutan Ress dan Ecker hingga tanda 101 dengan cara menghisap larutan tersebut, kemudian pipet diputar dengan membentuk angka 8, setelah homogen cairan-cairan yang tidak terkocok pada ujung pipet ditempatkan atau diteteskan ke kertas tissue. Setelah itu satu tetes darah diteteskan ke dalam hemocytometer dan dijaga tidak ada udara yang masuk, kemudian didiamkan beberapa saat hingga cairan mengendap, lalu mulai dilakukan penghitungan di bawah mikroskop dengan pembesaran 100 kali.
Penghitungan eritrosit dalam hemocytometer, menggunakan kotak eritrosit yang berjumlah dua buah dengan mengambil bagian sebagai berikut: satu kotak pojok kanan atas, satu kotak pojok kiri bawah. Untuk membedakan kotak eritrosit dengan kotak leukosit berpatokan pada tiga baris pemisah pada kotak eritrosit serta luas kotak eritrosit yang relatif lebih kecil dibandingkan kotak leukosit. Setelah jumlah eritrosit diperoleh maka jumlah darah dikalikan dengan 5.000, untuk mengetahui jumlah ertrosit dalam 1 mm3 darah, yaitu :
13 Jumlah eritrosit per mm3 darah = a x 5.000 butir
Perhitungan Jumlah Sel Darah Putih
Perhitungan jumlah sel darah putih merujuk pada penelitian Sikar et al.
(1984). Sampel darah dihisap menggunakan pipet leukosit hingga pada tera 1 dengan aspirator. Ujung pipet dibersihkan dengan menggunakan tissue, lalu dihisap larutan Ress dan Ecker hingga tanda 101. Kemudian pipet diputar dengan membentuk angka 8, setelah homogen cairan yang tidak terkocok pada ujung pipet dibuang dengan menempelkan ujung pipet pada kertas tissue. Setelah itu satu tetes darah diteteskan ke dalam hemocytometer dan jangan sampai ada udara yang masuk. Kemudian didiamkan beberapa saat hingga cairan mengendap, lalu penghitungan dapat dimulai di bawah mikroskop dengan pembesaran 100 kali. Untuk menghitung leukosit dalam hemocytometer, digunakan kotak leukosit yaitu jumlah leukosit yang didapat dari hasil pengamatan dibawah mikroskop dikalikan 200 untuk mengetahui jumlah leukosit setiap 1 mm3 darah, yaitu :
Jumlah leukosit per mm3 darah = b x 200 butir
Gambar 4 . Neubauer Hemocytometer Counting Area
14
Rancangan dan Analisis Data
Data konsumsi pakan dianalisa secara deskriptif. Uji t digunakan untuk membandingkan profil darah burung merpati jantan dan betina serta rataan bobot badan burung merpati. Analisa data merujuk pada Walpole (1982) dengan formula sebagai berikut
Peubah
Peubah yang diamati adalah persentase hemoglobin, hematokrit, sel darah merah dan sel darah putih sebelum dan setelah dilatih terbang. Selain itu dilengkapi data bobot badan dan konsumsi pakan.
Sp2 = (n1 - 1) S12 + (n2 - 1) ) S22
n1 + n2 - 2
Keterangan :
t = Nilai Hitung
= Nilai Rataan Kelompok Ke-1 = Nilai Rataan Kelompok Ke-2
Sp = Simpangan Baku
Sp2 = Kuadrat Simpangan Baku
n1 = Jumlah Sampel Ke-1 n2 = Jumlah Sampel Ke-2
Data profil darah burung merpati yang dilatih dan tidak dilatih terbang dianalisa dengan menggunakan uji t berpasangan. Uji t berpasangan merujuk pada Walpole (1982), yaitu
15 Keterangan :
Sd = Standar Deviasi n = Jumlah Sampel
d12 = Kuadrat Selisih dari Pengukuran Ke-1 dan Ke-2
= Rataan Sampel V = Derajat Bebas t = Nilai t Hitung Keterangan : = nilai rataan n = jumlah ternak
Xi = peubah sifat kuantitatif yang diukur, dimulai dari individu ke - i, i = 1, 2, …, n v = n-1
16 Keterangan :
sb = simpangan baku
X = peubah sifat kuantitatif yang diukur n = jumlah ternak Keterangan : KK = koefisien keragaman sb = simpangan baku = nilai rataan
Hemoglobin
Hemoglobin Burung Merpati Jantan dan Betina sebelum dan sesudah Dilatih Terbang
Hemoglobin burung merpati jantan dan betina sebelum dan sesudah dilatih terbang selama penelitian disajikan pada Tabel 1.
Tabel 1. Profil Hemoglobin Burung Merpati Jantan dan Betina
Rataan ± Simpangan Baku (KK)
Jantan Betina
Sebelum dilatih terbang
---(g/dl)--- 14,844 ± 2,807 (18,9)
---(g/dl)--- 15,206 ± 2,071 (13,6) Sesudah dilatih terbang 15,686 ± 1,566 (9,9) 15,169 ± 2,217 (14,6)
Rataan hemoglobin burung merpati jantan dan betina sebelum dilatih terbang masing-masing adalah 14,844 g/dl ± 2,807 g/dl (KK=18,9%), 15,206 g/dl ± 2,071 g/dl (KK=13,6%) (Tabel 1). Menurut Mitruka dan Rawnsley (1977) kadar hemoglobin burung merpati berkisar antara 10,7- 14,9 g%, itik 9,0 – 21 g%, kalkun 8,8 – 13,4 g%, dan puyuh 10,7 – 14,3 g%. Kadar hemoglobin pada burung beo menurut Archawaranon (2005) yaitu (13,59 – 14,32 g/dl). Berarti nilai hemoglobin pada penelitian ini lebih tinggi dibandingkan burung merpati dan unggas lain yang dilaporkan oleh Mitrukadan Rawnsley (1977) dan Archawaranon (2005).
18 Nilai hemoglobin burung merpati jantan dan betina sebelum dilatih terbang tidak berbeda. Hasil penelitian ini berbeda dengan Archawaranon (2005) yang menyatakan bahwa nilai hemoglobin betina lebih tinggi dibandingkan dengan jantan. Rataan dan simpangan baku hemoglobin antara burung merpati jantan dan betina sesudah dilatih terbang masing-masing adalah 15,686 g/dl ± 1,566 g/dl (KK=9,9 %) dan 15,169 g/dl ± 2,217 g/dl (KK=14,6 %) (Tabel 1), apabila dibandingkan dengan penelitian Mitruka dan Rawnsley (1977) dan Archawaranon (2005), pada penelitian ini mempunyai nilai yang tinggi seperti halnya nilai hemoglobin sebelum dilatih terbang. Nilai hemoglobin merpati jantan dan betina sesudah dilatih terbang tidak berbeda. Hal ini menunjukkan bahwa latihan terbang pada penelitian ini belum mempengaruhi nilai hemoglobin.
Rataan dan simpangan baku hemoglobin antara burung merpati jantan sebelum dan sesudah dilatih terbang tidak berbeda seperti disajikan pada Tabel 1. Nilai hemoglobin burung merpati jantan sebelum dilatih terbang diperoleh rataan 14,844 g/dl ± 2,807 g/dl (KK=18,9 %), sedangkan sesudah dilatih terbang diperoleh rataan 15,686 g/dl ± 1,566 g/dl (KK=9,9 %) apabila dibandingkan dengan penelitian lain Mitruka dan Rawnsley (1977) dan Archawaranon (2005) pada penelitian ini mempunyai nilai hemoglobin yang lebih tinggi. Meningkatnya hemoglobin disebabkan adanya aktifitas terbang karena banyak membutuhkan oksigen seperti dikemukakan (Lasiewksi, 1972; Berstien et al., 1973) pada burung-burung migran, saat terbang membutuhkan banyak oksigen begitu juga dengan pendapat (Viscor et al., 1985) bahwa aktifitas terbang diikuti oleh peningkatan jumlah hemoglobin.
Tabel 1 juga menunjukkan bahwa rataan dan simpangan baku hemoglobin burung merpati betina sebelum dilatih terbang adalah 15,206 g/dl ± 2,071 g/dl (KK=13,6%) sedangkan pada burung merpati betina yang sudah diterbangkan diperoleh rataan 15,169 g/dl ± 2,217 g/dl (KK=14,6%), jika dibandingkan dengan penelitian Mitruka dan Rawnsley (1977) dan Archawaranon (2005), hasil penelitian ini mempunyai nilai yang cukup tinggi seperti halnya nilai hemoglobin sebelum dilatih terbang. Ini menunjukan bahwa nilai hemoglobin burung merpati betina sebelum dan sesudah dilatih terbang tidak berbeda.
Koefisien keragaman yang diperoleh pada penelitian ini beragam baik jantan maupun betina sebelum dilatih terbang, akan tetapi nilai koefisien keragaman jantan
19 lebih tinggi yaitu 18,9% dibandingkan dengan betina sebelum dilatih terbang yaitu 13,6%.
Koefisien keragaman pada jantan sesudah dilatih terbang tidak beragam karena pada merpati jantan diperoleh nilai kurang dari 10% yaitu 9,9% sedangkan pada betina sebesar 14,6% berarti masih beragam. Nilai koefisien keragaman yang tinggi terdapat pada betina dibandingkan jantan sesudah dilatih terbang atau jantan lebih seragam dibandingkan betina. Nilai koefisien keragaman pada jantan sesudah dilatih terbang tidak beragam karena pada merpati jantan yang sudah dilatih terbang diperoleh nilai kurang dari 10% yaitu 9,9% sedangkan pada jantan yang belum dilatih terbang adalah sebesar 18,9% berati masih beragam berarti bisa dilakukan seleksi. Nilai koefisien keragaman burung merpati jantan sebelum dilatih terbang lebih beragam dibandingkan sesudah dilatih terbang. Adanya keragaman pada nilai hematologi pada burung yang dilatih menmungkinkan untuk memilih burung yang memiliki nilai hamatologi yang dibutuhakan untuk burungi merpati agar dapat dilatih terbang.
Hematokrit (PCV %)
Hematokrit (PCV%) Burung Merpati Jantan dan Betina sebelum dan sesudah Dilatih Terbang
Hematokrit (PCV%) burung merpati jantan dan betina sebelum dan sesudah dilatih terbang selama penelitian disajikan pada Tabel 2.
Tabel 2. Profil Hematokrit (PCV%) Burung Merpati Jantan dan Betina Rataan ± Simpangan Baku (KK)
Jantan Betina
Sebelum dilatih terbang
---(%)--- 44,30 ± 8,26 (18,6)
---(%)--- 46,77 ± 4,74 (10,1)a
Sesudah dilatih terbang 46,61 ± 3,47 (7,43)1 39,93 ± 9,84 (2,46)b2 Ket : Superskrip dengan angka yang berbeda pada baris yang sama berarti berbeda nyata (P < 0,05) Superskrip dengan huruf yang berbeda pada kolom yang sama berarti berbeda nyata (P < 0,05)
Pada Tabel 2 menunjukkan bahwa Rataan dan simpangan baku hematokrit (PCV%) antara burung merpati jantan dan betina sebelum dilatih terbang yaitu pada burung merpati jantan diperoleh rataan 44,30 ± 8,26 % (KK=18,6%) dan burung merpati betina diperoleh rataan 46,77 ± 4,74 % (KK=10,1%)a.
20 (Tabel 2) Hasil penelitian lain Mitruka dan Rawnsley (1977) menyatakan jumlah hematokrit pada burung merpati berkisar antara 39,3% - 59,4%, itik 32,6% - 47,5%, kalkun 30,4% - 45,6% dan puyuh 30,0% - 45,1%. Berarti nilai hematokrit pada penelitian ini lebih tinggi dibandingkan merpati yang dilaporkan oleh Mitruka dan Rawnsley (1977).
Rataan hematokrit betina sebelum dilatih terbang lebih tinggi dibanding dengan jantan sama akan tetapi berbeda dengan penelitian Campbell dan Dein (1984); Sturkie (1986) bahwa secara umum jumlah hematokrit lebih tinggi jantan dibandingkan betina.
Tabel 2 juga menunjukkan bahwa Rataan dan simpangan baku hematokrit (PCV%) antara burung merpati jantan dan betina sesudah dilatih terbang masing- masing adalah diperoleh yaitu 46,61 % ± 3,47 (KK=7,43%)1 39,93 % ± 9,84 % (KK=24,6%)2. (Tabel 2) Hasil ini menunjukan bahwa nilai hematokrit jantan dan betina sesudah terbang berbeda. Apabila dibandingkan dengan penelitian Mitruka dan Rawnsley (1977) yang menyatakan bahwa rataan hematokrit burung merpati adalah 49%, dengan demikian pada penelitian ini mempunyai nilai hematokrit yang lebih rendah.
Meningkatnya hematokrit yang diperoleh setelah burung dilatih terbang dalam penelitian ini disamping perbedaan jenis kelamin juga pengaruh aktifitas latihan terbang. Lasiewksi (1972) dan Berstien et al. (1973) menyatakan bahwa pada burung migran saat terbang memerlukan banyak oksigen sehingga terjadi peningkatan hematokrit dalam darah Viscor et al. (1985) menyatakan bahwa aktifitas terbang diikuti dengan peningkatan hematokrit.
Pada Tabel 2 menunjukkan bahwa Rataan dan simpangan baku hematokrit (PCV%) burung merpati jantan sebelum dan sesudah dilatih terbang diperoleh rataan 44,30% ± 8,26% (KK=18,6%) dan 46,61 ± 3,47 (KK=7,43%).
Dalam penelitian ini menunjukkan bahwa nilai hematokrit burung merpati jantan sebelum dan sesudah terbang tidak berbeda (sama), hal ini menunjukkan bahwa aktifitas dilatih terbang dan tidak dilatih terbang tidak mempengaruhi nilai hematokrit pada burung merpati. Canals et al. (2007) menyatakan bahwa parameter hematologi burung dan mamalia tampaknya merespon kebutuhan lingkungan, seperti hipoksia pada ketinggian tinggi dan kebutuhan energi penggerak dan penerbangan.
21 Burung yang terbang dan tidak terbang serta mamalia membutuhkan kebutuhan energi berbeda, adapun hematokrit kapiler tidak berbeda pada setiap takson. Apabila dibandingkan dengan penelitian Mitruka dan Rawnsley (1977), maka nilai hematokrit (PCV%) merpati jantan sebelum dan sesudah dilatih terbang Pada penelitian ini lebih rendah.
Rataan Hematokrit burung merpati jantan yang sudah dilatih terbang lebih tinggi dibandingkan dengan sebelum dilatih terbang hal ini disebabkan pada aktifitas terbang banyak membutuhkan oksigen yang dapat mempengaruhi meningkatnya hematokrit sebagaimana dikemukakan Lasiewksi (1972) dan Berstien et al. (1973). Pada burung-burung migran, saat terbang akan membutuhkan banyak oksigen begitu juga dengan pendapat (Viscor et al 1985) yang menyatakan bahwa aktiftas penerbangan burung dapat mempengaruhi peningkatan jumlah hematokrit.
Rataan dan simpangan baku hematokrit (PCV%) burung merpati betina sebelum dilatih terbang dan sesudah diltaih terbang adalah 46,77% ± 4,74% (KK=10,1)a dan 39,93% ± 9,84% (KK=24,6)b. Kondisi ini menunjukkan bahwa nilai baku hematokrit (PCV%) burung merpati betina sebelum dilatih terbang berbeda. Berarti apabila dibandingkan dengan penelitian lain Mitruka dan Rawnsley (1977) pada penelitian ini mempunyai nilai yang lebih rendah seperti halnya nilai hematokrit (PCV%) sebelum dilatih terbang.
Koefisien keragaman pada jantan maupun betina sebelum dilatih terbang pada penelitian ini beragam, hal ini berarti masih bisa dilakukan seleksi. Nilai koefisien keragaman yang diperoleh pada jantan yaitu 18,6% sedangkan betina sebesar 10,1%.
Nilai koefisien keragaman pada jantan sebelum dilatih terbang beragam karena nilai yang diperoleh pada jantan sebelum dilatih terbang yaitu 18,6% . Berarti masih bisa dilakukan seleksi sedangkan pada betina nilai koefisien keragamannya diperoleh yaitu 7,43% (berarti seragam).
Koefisien keragaman pada jantan dan betina sesudah dilatih terbang tidak beragam karena pada burung merpati jantan diperoleh nilai kurang dari 10% yaitu 7,43% dan pada betina sebesar 24,6%. Adapun nilai koefisien keragaman betina lebih tinggi dibandingkan pada jantan.
22 Nilai koefisien keragaman pada jantan sebelum dan sesudah dilatih terbang beragam, hal ini dapat dilakukan seleksi. Nilai koefisien keragaman yang diperoleh jantan sebelum dilatih terbang diperoleh sebesar 18,6 % sedangkan sesudah dilatih terbang yaitu sebesar 7,43 %.
Koefisien keragaman pada betina sebelum dan sesudah dilatih terbang beragam, sehingga hal ini dapat dilakukan seleksi. Nilai koefisien keragaman yang diperoleh betina sebelum dilatih terbang diperoleh sebesar 10,1% sedangkan sesudah dilatih terbang yaitu 24,6 %. Nilai koefisien keragaman betina sesudah dilatih terbang lebih tinggi dibandingkan dengan sebelum dilatih terbang.
Pada penelitian ini menunjukan masih ada keragaman nilai hemtokrit pada jantan setelah dilatih terbang. Selanjutnya dapat dipilih burung merpati yang memiliki nilai hematokrit yang dapat memenuhi aktifitas terbang.
Butir Darah Merah
Butir Darah Merah Burung Merpati Jantan dan Betina Sebelum dan Sesudah DilatihTerbang
Butir darah merah burung merpati jantan dan betina sebelum dan sesudah dilatih terbang selama penelitian disajikan pada Tabel 3. Rataan dan simpangan baku butir darah merah (eritrosit) antara burung merpati jantan dan betina sebelum dilatih terbang masing-masing adalah 2,691 x 106/mm3 ± 1,938 x 106/mm3 (KK=72,0 %)a 3,158 x 106/mm3 ± 1,753 x 106/mm3 (KK=55,5 %)b. Nilai butir darah merah (eritrosit) burung merpati jantan dan betina sebelum dilatih terbang berbeda (P<0,05).
Tabel 3. Profil Butir Darah Merah Burung Merpati Jantan dan Betina Rataan ± Simpangan Baku (KK)
Jantan Betina
Sebelum dilatih terbang
---(106/mm3)--- 2,691 ± 1,938 (72,0)a
---(106/mm3)--- 3,158±1,753 (55,5)b Sesudah dilatih terbang 3,712 ± 1,124 (30,2) 2,715 ±2,101 (77,3) Ket : Superskrip yang berbeda pada baris yang sama berarti berbeda nyata (P < 0,05)
23 Mitruka dan Rawnsley (1977) bahwa menyatakan bahwa burung merpati mempunyai butir darah merah (2,13 - 4,20) x 106/mm3. Adapun hasil penelitian Fowler (1978) menunjukkan bahwa elang mempunyai butir darah merah (2,30 – 3,25) x 106/mm3. Apabila dibandingkan dengan butir darah merah burung lain yang dilaporkan Suzana (2007) pada Beo Kalimantan memiliki jumlah eritrosit terbesar (2,63 x 106/mm3), kemudian diikuti Beo Flores (2,40 x 106/mm3),Beo Medan (2,20 x 106/mm3) dan Beo Nias (2,17 x 106/mm3), maka rataan butir darah merah merpati pada penelitian ini tidak jauh berbeda dengan jenis burung lainnya.
Pada penelitian ini diperoleh nilai rataan butir darah merah (eritrosit) lebih tinggi burung merpati betina dibandingkan dengan burung merpati jantan, hal ini berbeda dengan penelitian yang dilakukan Nirman & Robinson (1972) bahwa nilai butir darah merah jantan lebih tinggi dibandingkan dengan betina. Peningkatan butir darah merah pada burung jantan karena androgen dan efek balik dari estrogen.
peneliti lain berpendapat bahwa jumlah eritrosit pada burung jantan umumnya lebih tinggi dibandingkan burung betina (Santosa et al., 2003).
Pengaruh perbedaan jenis kelamin juga dapat mempengaruhi nilai butir darah merah (eritrosit) hal tersebut sesuai dengan pendapat (Strurkie, 1976; Schalm et al.,
1986) yang menyatakan bahwa perbedaan jenis kelamin pada burung merpati juga mempengaruhi jumlah nilai eritrosit. Begitu pula seperti yang dinyatakan (Santosa et al., 2003) bahwa hormon seks memiliki peran penting dalam produksi eritrosit.
Tabel 3 menunjukkan bahwa rataan dan simpangan baku butir darah merah (eritrosit) antara burung merpati jantan dan betina sesudah dilatih terbang masing- masing adalah 3,712 x 106/mm3 ± 1,124 x 106/mm3 (KK=30,2%) 2,715 x 106/mm3 ± 2,101 x 106/mm3(KK=77,3%). Ini menunjukkan bahwa nilai rataan merpati jantan dan betina sesudah dilatih terbang tidak beda. Apabila dibandingkan dengan penelitian Mitruka dan Rawnsley (1977), butir darah merah merpati pada penelitian ini mempunyai nilai yang lebih rendah seperti halnya nilai butir darah merah sebelum dilatih terbang. .
Selanjutnya Brown (1988) menyatakan bahwa jenis hewan yang memiliki ukuran eritrosit kecil, jumlahnya lebih banyak, sebaliknya yang ukurannya lebih besar jumlahnya akan lebih sedikit, untuk unit volume tertentu. Jumlah eritrosit
24 berbeda tidak hanya untuk tiap jenis hewan saja. Perbedaan trah (breed), kondisi nutrisi, aktifitas fisik, dan umur dapat memberikan perbedaan dalam jumlah eritrosit.
Rataan dan simpangan baku butir darah merah (eritrosit) burung merpati jantan sebelum dilatih terbang masing-masing adalah 2,691x106/mm3 ± 1,938x106/mm3(KK=72,0%), dan 3,712 x106/mm3 ± 1,124 x106/mm3 (KK=30,2%) (Tabel 3). Berarti nilai butir darah merah merpati jantan sebelum dan sesudah dilatih terbang tidak berbeda. Apabila dibandingkan dengan penelitian Mitruka dan Rawnsley (1977) pada penelitian ini mempunyai nilai yang rendah seperti halnya nilai butir darah merah sebelum dilatih terbang.
Faktor yang mempengaruhi nilai sel darah merah (eritrosit) dipengaruhi oleh