BAB II TINJAUAN PUSTAKA
2.4 Parameter Kualitas Air
7
Kualitas air adalah kondisi suatu perairan yang dicerminkan dari hasil pengukuran parameter-parameter tertentu pada perairan tersebut. Kualitas air yang baik akan mendukung pertumbuhan dan perkembangan udang vaname secara optimal yang perlu dikontrol secara seksama. Salah satu faktor yang utama penentu keberhasilan produksi budidaya udang adalah pengelolaan kualitas air, karena udang adalah hewan air yang segala kehidupan, kesehatan, dan pertumbuhannya tergantung pada kualitas air sebagai media hidupnya (Tricahyo, 1995).
Pengukuran kualitas air selama pemeliharaan udang penting dilakukan untuk mengetahui gejala-gejala yang terjadi sebagai akibat perubahan salah satu parameter kualitas air. Beberapa parameter kualitas air yang perlu dijaga yaitu suhu, salinitas, pH, oksigen terlarut, alkalinitas, total organik matter, amonium, nitrit, nitrat dan phospat serta kepadatan vibrio dan plankton.
Suhu Air
Suhu air dapat mempengaruhi kelangsungan hidup, pertumbuhan, reproduksi, pergantian kulit dan metabolisme udang. Suhu juga berpengaruh terhadap kelarutan gas-gas, kecepatan reaksi unsur dan senyawa yang terkandung dalam air (Boyd, 1990).
Menurut Sulistinarto (2008), suhu air berpengaruh terhadap cepat atau lambatnya reaksi kimiawi air. Suhu optimal pertumbuhan udang antara 26-320C.
Jika suhu lebih dari angka optimum maka metabolisme dalam tubuh udang akan berlangsung cepat. Imbasnya pada pada kebutuhan oksigen terlarut menigkat.
Suhu air tambak tergantung cuaca dan berpengaruh langsung terhadap nafsu makan udang. Pada suhu 26ᵒC nafsu makan turun hingga 50%, suhu air tetutama
8
pada bagian dasar juga dipengaruhi oleh partikel-partikel tersuspensi yang biasanya dapat diukur dengan kecerahan air dengan secchidisk. Kepadatan partikel yang salah satunya kepadatan plankton pula akan menghalangi penetrasi cahaya yang masuk kedasar tambak.
Suhu air pada bagian dasar dipengaruhi oleh kepadatan partikel yang dapat menghalangi penetrasi cahaya masuk ke dalam air sehingga dalam proses budidaya perlu dilakukan pengelolaan kualitas air dengan melakukan pengukuran yang menggunakan thermometer serta dapat dilakukan pada pagi dan sore hari (Amri dan Kanna, 2008).
Salinitas
Salintas adalah jumlah berat (g) zat padat yang terkandung dalam satu kg air laut. Salintas merupakan salah satu aspek kualitas air yang penting karena mempengaruhi pertumbuhan udang (Schlieper, 1972 dalam Mustofa, 1999).
Salinitas lingkungan yang optimal dibutuhkan udang untuk menjaga kandungan air dalam tubuhnya (terutama sel tubuh) agar dapat melangsungkan proses metabolisme dengan baik. Dinding sel bersifat semipermeable, yaitu saling tarik menarik antara larutan di dalam sel dengan larutan yang berada dalam lingkungannya karena tekanan osmotik. Jika kadar garam dalam sel lebih tinggi dari lingkungannya, maka air dari lingkungan akan masuk ke dalam sel sehingga sel akan membesar. Demikian sebaliknya jika kadar garam lingkungannya lebih besar dari sel tubuh, maka cairan dalam sel akan tertarik keluar sehingga udang akan kurus dan langkah yang dapat dilakukan untuk mengatasi rendahnya salinitas tersebut adalah dengan menambah input air laut. Sebaliknya jika salinitas terlalu tinggi, salinitas diturunkan dengan membuang sebagian air di dalam tambak dan
9
menggantinya dengan air tawar sehingga salinitas optimal dapat dicapai (Suyanto dan Takarina, 2009).
Udang dapat tumbuh optimal pada kisaran salinitas 15−25 ppt dan salinitas yang tinggi (>40 ppt) sering terjadi pada musim kemarau. Salinitas dapat dilihat dengan melakukan pengukuran yang menggunakan refraktometer atau salinometer (Amri dan Kanna, 2008).
Kecerahan
Kecerahan dipengaruhi oleh populasi plankton dan bahan padatan yang tersuspensi dalam petakan. Tingginya populasi plankton atau konsentrasi padatan tersuspensi dalam air, akan makin rendah kecerahan. Kecerahan yang bagus dalam budidaya udang vaname adalah kecerahan yang diakibatkan oleh plankton, bukan dari padatan tersuspensi. Kecerahan yang diakibatkan oleh padatan tersuspensi terjadi pada budidaya vaname di tambak tanah dengan aerasi 16 HP per hektar, semakin padat densitas tebar makin cepat terjadi air milky. Densitas fitoplankton pada tambak tanah tidak bisa berkembang dengan baik karena aktifitas fotosintesis terganggu, sinar matahari terhalang oleh partikel-partikel lumpur yang tersuspensi (Edhy et al, 2010).
Derajat Keasaman (pH)
Derajat keasaman didefinisikan secara konvensional sebagai – Log [H+].
pH merupakan parameter air yang berpengaruh secara langsung terhadap udang yang dibudidayakan. Nilai pH yang normal untuk tambak udang berkisar antara 6−9. Khusus untuk udang vaname, kisaran pH yang optimum adalah 7,5−8,5 (Wyban dan Sweeny, 1991).
10
Nilai pH di atas 10 dapat mematikan udang, sedangkan pH di bawah 5 mengakibatkan pertumbuhan udang menjadi lambat. Budidaya udang di tambak, guncangan pH air tidak begitu mengkhawatirkan karena air laut mempunyai daya penyangga atau buffer yang cukup kuat. Proses pembusukan dan kadar karbon dioksida yang tinggi dapat berpengaruh pada pH sehingga untuk mengatasi terjadinya guncangan pH perlu diusahakan penggantian air sesering mungkin dan pengoprasian aerator terutama pada pagi hari (Suyanto dan Takarina, 2009).
Guncangan pH yang bisa ditoleransi adalah tidak lebih dari 0,5 dan dalam budiaya udang, kita menginginkan agar nilai pH perairan tambak adalah sama atau mendekati sama dengan nilai pH tubuh udang. Hal ini ditujukan agar udang tidak mengalami stres dalam menyesuaikan pH tubuh dengan lingkungannya.
Jika nilai pH perairan tambak berada di bawah kisaran yang distandarkan, maka kita harus menaikkan nilai pH tersebut dengan cara pemberian kapur, demikian sebaliknya jika pH perairan, kita turunkan misalnya dengan cara pemberian saponin aktif. Derajat keasaman air dapat diukur dengan menggunakan pH meter atau kertas lakmus dan pengukuran dilakukan setiap 5 hari sekali pada pagi dan siang hari (Haliman dan Adijaya, 2005).
Oksigen Terlarut (Dissolved Oxygen)
Kandungan oksigen terlarut sangat mempengaruhi metabolisme tubuh udang. Oksigen dalam perairan berasal dari difusi O2dari atmosfer serta aktivitas fotosintesis oleh fitoplankton maupun tanaman lainnya. Oksigen yang bisa dimanfaatkan udang adalah oksigen terlarut (Amri dan Kanna 2008).
Kandungan oksigen terlarut yang baik untuk kehidupan udang vaname adalah >3 ppm dan sebaiknya berada pada kisaran 4−8 ppm. Oksigen dibutuhkan
11
oleh udang untuk proses pembakaran protein, lemak, dan karbohidrat sehingga menghasilkan energi (Hains Worth, 1981 dalam Mustofa, 1999).
Oksigen terlarut merupakan parameter utama kualitas air yang sangat berpengaruh terhadap pertumbuhan dan kelangsungan hidup udang serta kebutuhan konsumtif metabolisme tubuh udang yang dibutuhkan untuk melakukan aktivitas (berenang, reproduksi dan pertumbuhan). Pengaruh langsung oksigen adalah efektifitas penggunaan pakan serta proses metabolisme udang secara tidak langsung berpengaruh terhadap kondisi kualitas air. Rendahnya kandungan oksigen terlarut di dalam tambak sering terjadi pada periode musim kemarau yang tidak berangin dan tanda sederhana terjadinya kekurangan oksigen yaitu udang berenang dipermukaan air atau berkumpul di sekitar inlet air tambak.
Pada malam hari suhu menjadi rendah yang diikuti dengan meningkatnya aktivitas fitoplankton sehingga mengakibatkan turunnya kandungan oksigen. Upaya untuk meningkatkan oksigen terlarut di dalam tambak dapat dilakukan dengan menggunakan kincir dan ada dua metode penentuan oksigen terlarut yang dapat diandalkan yaitu metode elektrometris dan metode winkler atau biasa disebut metode titrasi. Metode elektrometris lebih banyak digunakan dan lebih mudah diaplikasikan di lapangan dengan menggunakan DO meter (Amri dan Kanna, 2008).
Alkalinitas
Alkalinitas merupakan kemampuan untuk menetralkan asam dalam air.
Alkalinitas diukur dengan penambahan asam hingga pH mencapai 4,5. Air yang mempunyai kestabilan pH yang baik terhadap penambahan asam atau basa disebut air yang terbuffer dengan baik (Fast 1983 dalam Mustofa, 1999).
12
Parameter alkialinitas, secara tidak langsung menunjukkan tingkat kesuburan tambak karena konstribusinya dalam penyediaan CO2 untuk keperluan fotosintesa dan HCO3 dalam penyediaan unsur penyangga (buffer ). Alkalinitas diukur dengan metode titrasi setiap 3 hari sekali. Nilai optimal alkalinitas dalam tambak adalah 90−150 ppm (SOP CP Prima, 2010).
Amri dan Kanna (2008) menyatakan bahwa nilai alkalinitas yang kurang dari 90 ppm dilakukan dengan cara pengapuran dosis 5 ppm. Jenis kapur hidroksida (Ca(OH)2) dapat diaplikasikan untuk menaikkan alkalinitas sekaligus menaikkan pH air, namun bila pH sudah tinggi jenis kapur yang digunakan adalah kapur pertanian (CaCO3) atau penggunaan kapur Dolomit (CaMg (CO3)2).
Total Organik Matter (TOM)
Total organik matter (TOM) menggambarkan kandungan bahan organik total suatu perairan yang terdiri dari bahan organik terlarut, tersuspensi dan koloid.
Peningkatan kandungan N-organik dalam air disebabkan sisa pakan yang tidak dikonsumsi, kotoran udang, kematian plankton dan bahan organik yang masuk pada saat pergantian air (Suyanto dan Takarina, 2009).
Boyd (1992) mengatakan bahwa kandungan bahan organik yang optimal 20 ppm dan kandungan bahan organik yang tinggi >60 ppm menunjukkan kualitas air yang menurun. Kandungan total bahan organik merupakan sumber terjadinya senyawa yang dapat meracuni udang dalam proses anaerob. Selanjutnya dijelaskan, bahwa pengukuran bahan organik dilakukan setiap minggu baik pada petak pembesaran udang maupun petak tandon. Bila kandungan air tambak mencapai 50 ppm maka perlu dilakukan penurunan yaitu dengan cara pergantian
13
atau penambahan air dari petak tandon, namun cara ini dapat dilakukan kalau petak tandon kandungan bahan organiknya lebih rendah.
Amonium (NH4+)
Amonium atau amonia terionisasi dengan rumus kimia NH4+ yang merupakan bentuk nitrogen anorganik yang tereduksi, tergantung konsentrasi dan komposisi perbandingan antara keduanya terhadap pH dan suhu (Kordi, 2010).
Pengukuran amonium dapat dilakukan dengan test kit, amonium dapat menyuburkan perairan tapi bagi tambak intensif penyuburan yang berlebihan tidak dikehendaki. Amonium akan dirombak menjadi nitrit dan nitrit akan dirombak menjadi nitrat, proses ini dinamakan nitrifikasi yang dilakukan oleh bakteri genus Nitrosomonas (Edhy et al 2010).
Nitrit (NO2−)
Nitrit diperoleh dari hasil perombakan amonia oleh bakteri aerob Nitrosomonas menjadi nitrit (NO2−) dan kemudian menjadi nitrat (NO3−) oleh bakteri Nitrobactery (Clifford, 1994).
Kisaran optimal nitrit untuk budidaya vaname yaitu 0,01-0,05 ppm (Adiwijaya et al, 2003). Konsentrasi nitrit pada kondisi normal sangat jarang konsentrasi mematikan udang. Bila kadar oksigen dalam air tinggi, senyawa ini akan teroksidasi menjadi nitrat (NO3−) yang dapat dimanfaatkan oleh fitoplankton sebagai nutrient. Senyawa ini diukur sebagai salah satu indikator kesuburan tambak, kekurangan unsur N ini dapat disuplai dengan pemupukan (Urea) dan Pengukuran senyawa ini menggunakan spektrofotometer.
Nitrat (NO3−)
14
Nitrat adalah bentuk senyawa nitrogen yang merupakan sebuah senyawa yang stabil dan merupakan zat nutrisi yang dibutuhkan dalam jumlah banyak oleh fitoplakton untuk tumbuh dan berkembang, serta sebagai salah satu indikator kesuburan tambak (Kordi, 2010)
Nitrat dapat berasal dari pupuk yang digunakan dan dari oksidasi nitrit oleh bakteri Nitrobaktery yang akan mengubah amoniak menjadi nitrit dan nitrit menjadi nitrat. Besarnya kadar nitrat di dalam tambak yang bisa ditoleransi berada pada kisaran 0,4 ppm (Edhy et al, 2010).
Phospat (PO4-3)
Phospat merupakan faktor pembatas produktivitas plankton sehingga kehadirannya di dalam air tambak harus selalu dimonitor. Total phospat tidak berubah konsentrasinya secara harian, seperti terjadi dengan pH, oksigen terlarut, dan parameter kualitas air yang lain. Namun, total phospat juga bisa berubah dengan cepat setelah pemberian pupuk. Hal tersebut dapat berubah dalam beberapa hari dan tergantung dengan fluktuasi kelimpahan fitoplankton atau konsentrasi padatan tersuspensi (Edhy et al, 2010). Dijelaskan lebih lanjut, ketika tambak dikeringkan khususnya sekitar 20–25% limbah tambak terakhir mengandung total phospat yang tinggi. Sampel yang diambil pada setiap minggu biasanya akan menggambarkan kondisi phospat yang bagus pada limbah tambak udang. Sampel dikumpulkan dalam botol plastik, disimpan dalam es, dan dianalisis dalam 12 jam setelah pengambilan dan analisis total phospat memerlukan sampel air yang dilarutkan dalam asam atau direaksikan dengan oksidator. Perubahan fosfor partikulat dan phospat organik terlarut menjadi orthophosphate terlarut dapat diukur dengan spektrofotometer.
15
Plankton
Plankton adalah organisme renik yang pada umumnya bergerak melayang di dalam air dan distribusinya selalu dipengaruhi gerakan massa air. Dikenal ada dua golongan besar plankton yaitu fitoplankton dan zooplankton. Fitoplankton adalah jasad renik perairan yang masuk dalam golongan tumbuh-tumbuhan, sedang zooplankton masuk dalam golongan hewan. Parameter kualitas air ini tercermin dari warna dan transparansi perairan. Perairan yang didominansi fitoplankton dari golongan chlorophyta, maka warna air akan nampak hijau, kalau didominansi oleh diatomae, maka warna air akan coklat. Fungsi utama dari fitoplankton dalam perairan adalah pemasok oksigen terbesar (pada siang hari), pakan alami dan penjaga kestabilan ekosistim tambak (Edhy et al, 2010).
Fitoplankton merupakan sumber produktivitas primer dalam tambak udang yang menggunakan nutrien anorganik dan sinar matahari (Ultraviolet) dalam menghasilkan bahan organik dalam bentuk karbohidrat dan oksigen melalui proses fotosintesis. Fotosintesis merupakan proses fototropik dimana tumbuhan yang berklorofil menggunakan energi cahaya untuk mereduksi karbon anorganik menjadi karbohidrat. Oksigen yang dibebaskan dalam proses fotosintesis merupakan sumber utama oksigen terlarut (DO) dalam tambak. Dalam mengelola parameter ini yang terpenting adalah bagaimana kita bisa membuat jenis plankton yang beragam, bukan didominasi oleh satu jenis plankton saja. Suatu perairan hanya didominansi oleh satu jenis plankton, kekhawatirannya adalah jika plankton tersebut terkena gangguan dan mati massal, maka perairan akan menjadi bening.
Pengukuran jumlah dan jenis plankton dilakukan setelah ada permintaan ke pihak laboratorium (Edhy et al, 2003).
16
Vibrio
Vibrio adalah salah satu jenis bakeri yang tergolong marine bakteri dan vibrio bersifat aerob dan ada yang bersifat anaerob. Keberadaan bakteri vibrio dalam perairan tambak, dibedakan dalam dua golongan koloni, yaitu golongan koloni kuning dapat memfermentasi sukrose dan koloni hijau tidak dapat memfermentasi sukrose sehingga toksisitasnya lebih tinggi dari warna kuning.
Pengamatan terhadap vibrio dapat menggunakan media selektif Tiosulfat Sitrat Bile Salt (TCBS) dan standar vibrio dalam budidaya udang vaname yaitu
<3 x 103cfu/ml, jika perairan tambak mempunyai nilai vibrio di atas standar maka dilakukan siphon dan penambahan probi,otik ke perairan tambak. Pengukuran vibrio dilakukan setiap dua kali dalam seminggu (Sari, 2009).
17
BAB III METODOLOGI
3.1 Waktu dan Tempat
Tugas akhir ini disusun berdasarkan hasil kegiatan Pengalaman Kerja Praktik Mahasiswa (PKPM) dari tanggal 12 Februari sampai 04 April 2020 di Boror o Jaya Vaname, Kabupaten Konawe Selatan, Sulawesi Tenggara.
3.2 Metode Pengumpulan Data
Metode pengumpulan data yang digunakan dalam penyusunan tugas akhir ini adalah sebagai berikut :
3.2.1 Observasi
Metode observasi adalah pengumpulan data yang dilakukan dengan sengaja, sistematis mengenai kegiatan pembesaran udang vaname untuk kemudian dilakukan pencatatan.
3.2.2 Wawancara
Wawancara adalah teknik pengumpulan data yang dilakukan melalui tatap muka dan tanya jawab langsung dengan pembimbing lapanga, teknisi tambak, yang berkaitan dengan pembesaran udang vaname.
3.2.3 Studi Literatur
Studi literatur merupakan teknik pengumpulan data melalui teks - teks tertulis maupun dengan melakukan pencarian terhadap berbagai sumber tertulis baik berupa buku-buku, artikel, dan jurnal atau dokumen–dokumen yang releven dengan permasalahan pada kegiatan budidaya udang vaname.
18
3.3 Alat dan Bahan 3.3.1 Alat
Alat yang digunakan selama proses pengelolaan kualitas air pada budidaya udang vaname, disajikan pada Tabel 3.1
Tabel 3.1 Alat yang Digunakan Selama Pengelolaan Kualitas Air
No Alat Kegunaan
1 Tambak Wadah budidaya
2 Kincir Digunakan untuk menyuplai oksigen
3 Pompa Memompa air masuk ke dalam wadah budidaya 4 Anco Digunakan untuk mengontrol pakan
5 Ember Sebagai tempat pakan, probiotik dan pengapuran 6 Termometer Mengukur suhu air
7 Handrefraktometer Digunakan untuk mengukur kadar garam (salinitas) 8 pH Meter Digunakan untuk mengukur pH air
9 Timbangan Digunakan untuk menimbang pakan dll.
10 Keranjang basket Digunakan untuk tempat udang
11 Genset Sebagai pembangkit listrik (cadangan) 3.3.2 Bahan
Bahan yang digunakan selama proses pengelolaan kualitas air pada budidaya udang vaname, disajikan pada Tabel 3.2
Tabel 3.2 Bahan yang Digunakan pada Pengelolaan Kualitas Air
No Bahan Kegunaan
1 Udang Vaname Organisme yang dibudidayakan 2 Kapur dolomit Untuk memperbaiki pH air
3 Kapur kaptan Untuk mengikat partikel-partikel kasar dalam air 4 Air Tawar Untuk membersihkan alat-alat yang telah digunakan 5 Air Laut Sebagai media budidaya
6 Dedak dan ragi untuk menumbuhkan pakan alami 7 Kaporit Untuk membunuh bakteri maupun virus 8 Kupri sulfat (CuSO4) Untuk membunuh alga
9 Nuvet plus Untuk membunuh Crustacea
10 Super NB Untuk Mengontrol bakteri bacillus sp
19
3.4 Metode Pelaksanaan 3.4.1 Persiapan
Pengeringan
a. Alat dan bahan disiapkan
b. Pipa pengeluaran dan central drain dibuka c. Tambak didiamkan selama 2-3 hari
Pembersihan Dasar Tambak a. Alat dan bahan disiapkan
b. Lumut yang menempel pada dinding dan dasar tambak disikat c. Dinding dan dasar tambak disemprot dengan air
d. Air yang mengendap dikeluarlkan melalui central drain Perbaikan Wadah
a. Alat dan bahan disiapkan
b. Kebocoran tambak ditambal menggunakan semen agar tertutup Pengapuran
a. Alat dan bahan disiapkan
b. Kapur ditebar merata ke dasar tambak Setting Kincir
a. Kincir disiapkan sesuai kebutuhan dengan jumlah 1 kincir untuk 150 m2 b. Titik kincir ditentukan dan pemberat ditempatkan 4 titik untuk 1 kincir
c. Settingan kincir dipastikan dapat menyentralkan lumpur dan mensuplai oksigen, serta tata letak kincir dapat dilihat pada Gambar 2.
20
Gambar 3.1 Tata Letak Kincir Bororo Jaya Vaname
Pengisian Air
a. Alat dan bahan disiapkan
b. Pompadinyalakandan air dialirkan ke petakan hingga ketinggian 120 cm.
Sterilisasi Air
Tujuan sterilisasi adalah membunuh semua bentuk mikroorganisme hidup termasuk sporanya pada alat –alat yang disterilkan atau untuk mencegah pencemaran organisme luar, untuk mepertahankan keadaan. Prosedur pengapuran sebagai berikut :
a. Alat dan bahan disiapkan
b. Copper sulphate ditebar dengan dosis 5 ppm secara merata dan kincir dioperasikan
c. Nuvet plus ditebar dengan dosis 1.5 – 2 ppm secara merata dan didiamkan selama 24 jam
d. Hari berikutnya, dilakukan penebaran kaporit dengan dosis 20 ppm dan didiamkan selama 2-3 hari sampai residu hilang.
Pembentukan Air Media 1. Alat dan bahan disiapkan
2. Super NB disiapkan sebanyak 2 hingga 3 liter dan dicampur dengan dolomit 20 kg didalam bak yang terdapat pada rakit
21
3. Kemudian berikan air secukupkan dan diaduk secara merata
4. Setelah diaduk secara merata maka siap untuk ditebar didalam tambak 5. Pemberian Super NB dilakukan saat DOC udang 2 hingga 30 hari 6. Pemberian Super NB dilakukan 2 hari sekali.
3.4.2 Pemeliharaan Pengelolaan Air Penggunaan Tandon
a. Air dipompa dari sumur bor
b. Air dikaporit dengan dosis 15-20 ppm dan kincir dioperasikanselama 2-3 jam c. Diendapkan selama 2-3 hari dan selanjutnya air dialirkan ke petakan.
Pengapuran
Tujuan pengapuran adalah untuk meningkatkan kualitas ai tambak ( pH air menjadi netral, bahan organik terurai ), unsur Ca dan Mg pada kapur dibutuhkan untuk pembentukan kulit pada udang, meningkatkan ketersediaan unsur P yang berguna bagi perkembangan plankton, kondisi pH air yang nyaman selain menekan perkembangan hama penyakit juga mempercepat perkembangan dan meningkatkan produktivitas. Prosedur pengapuran sebagai berikut :
a. Alat dan bahan disiapkan.
b. Menimbang kapur dolomit dengan dosis 3 ppm, Kapur dimasukkan ke dalam ember dan dicairkan/dilarutkan dengan menambahkan air
c. Kapur ditebar secara merata di permukaan air
22
Penebaran bakteri nitrifikasi
Tujuan penebaran bakteri nitrifikasi adalah untuk mengetahui pengaruh pemberian bakteri nitrifikasi terhadap kondisi kualitas air tambak pada saat proses pemeliharaan. Prosedur pengapuran sebagai berikut :
a. Alat dan bahan disiapkan.
b. Bakteri nitrifikasi ditakar menggunakan gelas ukur dengan dosis 0,5–1 ppm.
c. Bakteri nitrifikasi dimasukkan ke dalam ember.
d. Diaduk hingga homogen.
e. Bakteri nitrifikasi ditebar pada permukaan air secara merata Penebaran Fermentasi
Tujuan fermentasi adalah untuk meningkatkan aktivitas bakeri yang menguntungkan didalam tambak dan menumbuhkan plankton. Prosedur pengapuran sebagai berikut :
a. Alat dan bahan disiapkan.
b. Dedak ditimbang menggunakan timbangan digital dengan dosis 3 ppm.
c. Ragi ditimbang menggunakan timbangan analitik dengan dosis 15 gram/ kg dedak.
d. Dedak, ragi dan air dihomogenkan dalam ember sampai kental e. Ember ditutup dan didiamkan selama 48 jam.
f. Fermentasi dicampur dengan air dan ditebar secara merata di permukaan air.
23
Pergantian Air
a. Alat dan bahan disiapkan
b. Air dari tandon di masukkan ke petak budidaya melalui pintu masuk air (inlet) pada saat pagi hari pukul 07.00 pada ketinggian tertentu
c. Pada saat malam hari pada pukul 20.00 saluran pengeluaran (outlet) dibuka selama 4 jam melalui pintu keluar air lalu ditutup.
Pengukuran Parameter Kualitas Air Pengukuran Suhu Air
a. Mengangkat thermometer yang terpasang pada jembatan anco
b. Nilai suhu dilihat pada skala thermometer dan selanjutnya dicatat sesuai pembacaan pada skala.
Pengukuran Salinitas
a. Hand refraktometer disiapkan
b. Kaca prisma hand refraktometer dikalibrasi dengan akuadest sehingga nilai menunjukkan angka 0 (nol)
c. Air tambak diambil dan selanjutnya diteteskan pada permukaan kaca prisma d. Hand refraktometer diarahkan ke cahaya yang terang untuk melihat nilai
salinitas dan mencatat hasil pembacaannya.
Pengukuran Kecerahan a. Secchi disk disiapkan
b. Secchi disk dimasukkan ke dalam media budidaya secara perlahan-lahan
c. Jika piringan secchi disk mulai tidak terlihat lagi maka nilai kecerahan dapat dilihat dari skala sebagai T1dan dicatat.
d. Secchi disk diangkat perlahan-lahan sampai piringan terlihat
24
e. Skala pada secchi disk dilihat dan dicatat sebagai nilai kecerahan T2
f. Selanjutnya nilai kecerahan didapat dengan menjumlahkan T1+T2 Pengukuran pH 2
a. Alat dan bahan disiapkan b. Mengambil air sampel petakan
c. pH meter dicelupkan pada sampel dan muncul nilai pH pada monitor alat
3.5 Analisa Data dan Parameter yang Diukur
Data dianalisa secara deskriptif dan disajikan dalam bentuk grafik dan tabel.
Rumus yang digunakan dalam analisis parameter yang diamati yaitu:
a. Average Body Weight (ABW)
Average body weight (gr/ekor) dihitung dengan rumus Effendi (1997) : ABW = berat udang tertangkap ( gram ) ……… ( 3.1 )
Jumlah udang tertangkap ( ekor ) b. Average Daily Gain (ADG)
Average daily gain (gr/hari) dihitung dengan rumus Effendi (1997):
ADG = ABW II – ABW I ……….…… ( 3.2 ) t
Keterangan:
ADG : Pertumbuhan harian udang vaname (gram/hari) ABW II : Berat udang kedua pada saat sampling (gram) ABW 1 : Berat udang pertama pada saat sampling (gram)
t : Selisih waktu pada saat sampling (hari)
b. Biomassa
Biomassa (kg) dihitung dengan rumus Effendi (1997):
25
Biomassa = populasi x ABW………( 3.3 ) Keterangan :
Biomassa : Jumlah total berat udang yang ada dalam tambak (kg) Populasi : Jumlah total udang yang hidup selama pemeliharaan (ekor) ABW : Berat rata-rata udang vaname (gram/ekor)
c. Survival Rate (SR)
c. Survival Rate (SR)