III. BAHAN DAN METODE
5.2. Saran
Untuk menentukan feeding regime yang menghasilkan produksi optimum, pada penelitian selanjutnya perlu dilakukan pemberian rGH dengan lama waktu pemberian berbeda, dan menggunakan ikan sidat berukuran lebih besar sampai melewati fase lambat pertumbuhan ikan sidat (ukuran 50 gram).
DAFTAR PUSTAKA
Acosta JR, Morales R, Morales M, Alonso M, Estrada MP. 2007. Pichia pastoris
Expressing recombinant tilapia growth hormone accelerates the growth of tilapia. Biotechnology Letter, 29:1671-1676.
Acosta JR, Estrada MP, Carpio Y, Ruiz O, Morales R, Martinez E, Valdes J, Borroto C, Besada V, Sanchez A, Herrera F. 2009. Tilapia somatotropin polypeptides : potent enhancers of fish growth and innate immunity.
Biotechnologia Aplicada, 26:267-272.
Affandi R. 2005. Strategi pemanfaatan sumberdaya ikan sidat (Anguilla spp.) di Indonesia. Jurnal lktiologi Indonesia, 5:77-81.
Alimuddin, Lesmana I, Sudrajat AO, Carman O, Faizal I. 2010. Production and bioactivity potential of three recombinant growth hormones of farmed fish.
Indonesian Aquaculture Journal, 5:11-16.
AOAC, 1984. Official Methods of Analysis of The Association of Official Agricultural Chemist. AOAC, Inc., Washington.
Aoyama J. 2009. Life history and evolution of migration in catadromous eels (genus Anguilla). Aquaculture Bioscience Monograph (ABSM), 2:1-42. Arnesen AM, Toften H, Agustsson T, Stefansson SO, Handeland SO, Björnsson
BT. 2003. Osmoregulation, feed intake, growth and growth hormone levels in Atlantic salmon (Salmo salar L.) transferred to seawater at different stages of smolt development. Aquaculture, 222:167-187.
Bin X, Kang-xen M, Ying-li X, Hong-zhi M, Zen-hui L, Yong D, Shan L, Rao W, Pei-jun Z. 2001. Growth promotion of red sea bream, Pagrosomus major,
by oral administration of recombinant eel and salmon growth hormone.
Chinese Journal of Oceanology and Limnology, 19:141-146.
Björnsson BT, Hemre GI, Bjørnevik M, Hansen T. 2000. Photoperiod regulation of plasma growth hormone levels during induced smoltification of under yearling Atlantic salmon. General Comparative Endocrinology, 119:17–25. Blackshear PJ. 1984. Systems for polyacrylamide gel electrophoresis. Methode
Enzymology, 104:237–255.
Bollag DM, Rozycki MD, Edelstein SJ. 1996. Protein Methods 2nd Edition. Wiley-Liss Inc., New York.
Calduch-Giner JA, Sitia-Bobadilla A, Alvarez-Pellitero P, Perez-Sanchez J, 1995. Evidence for a direct action of GH on haemopoietic cells of a marine fish, the gilthead sea bream (Sparus aurata). Journal Endocrinology, 146:459– 467.
Carpio Y, León K, Acosta J, Morales R, Estrada MP. 2007. Recombinant tilapia Neuropeptide Y promotes growth and antioxidant defenses in African catfish (Clarias gariepinus) fry. Aquaculture, 272:649–655.
Cogburn LA, Liau SS, Rand AL, McMurtry JP . 1989. Growth, metabolic and endocrine responses of broiler cockerels given a daily subcutaneous injection of natural or biosynthetic chicken growth hormone. American Institute of Nutrition, 0022:213-1223.
Cook JT, McNiven MA, Richardson GF, Sutterlin AM. 2000. Growth rate, body composition and feed digestibility/conversion of growth enhanced Atlantic salmon (Salmo salar). Aquaculture, 188:15–32.
Debnanth S. 2010. A review on the physiology of insulin like growth factor-I (IGF-I) peptide in bony fishes and its phylogenetic correlation in 30 different taxa of 14 families of teleosts. Advances in Environmental Biology, 5:31-52.
Devlin RH, Biagi CA, Yesaki TY, 2004. Growth, viability and genetic characteristics of GH transgenic coho salmon strains. Aquaculture, 236: 607–632.
Drennon K, Moriyama K, Kawauchi H, Small B, Silverstein J, Parhar I, Shepherd B. 2003. Development of an enzyme-linked immuno sorbent assay for the measurement of plasma growth hormone (GH) levels in channel catfish (Ictalurus punctatus): assessment of environmental salinity and GH secretogogues on plasma GH levels. General Comparative Endocrinology, 133:314-322.
Dunham RA, 2004. Aquculture and fisheries biotechnology genetic approach.
CABI Publishing. Wallingford. Oxfordshire UK, 372 pp.
Fahmi MR. 2010. Phenotypic platisity kunci sukses adaptasi ikan migrasi : studi kasus ikan sidat (Anguilla sp.). Prosiding Forum Iovasi Teknologi Akuakultur 2010, p 9-17.
[FAO] Food and Agriculture Organization of the United Nations. 2012. Anguilla japonica (Temminck & Schlegel, 1847). Cultured Aquatic Species Information Programme. Fisheries and Aquaculture Department. [1 Mei 2012]. http://www.fao.org/fishery/ culturedspecies/Anguilla_japonica/en. Farmanfarmaian, A., Sun, L.Z., 1999. Growth hormone effects on essential amino
acid absorption, muscle amino acid profile, Nretention and nutritional requirements of striped bass hybrids. Genetic Analysis, 15:107–113.
Fauconneau, B., Mady, M.P., Le Bail, P.Y., 1996. Effect of growth hormone on muscle protein synthesis in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) and Atlantic salmon (Salmo salar). Fish Physiology Biochemistry, 15:49–56. Fu C, Cui Y, Hung SSO, Zhu Z. 1998. Growth and feed utilization by F4 human
growth hormone transgenic carp fed diets with different protein levels.
Journal of Fish Biology, 53:115–129.
Funkenstein B, Dyman A, Lapidot Z, de Jesus-Ayson EG, Gertler A, Ayson FG. 2005. Expression and purification of a biologically active recombinant rabbitfish (Siganus guttatus) growth hormone. Aquaculture, 250:504-515. Gala, R.R., 1991. Prolactin and growth hormone in the regulation of the immune
Gahr SA, Roger LV, Weber GM, Shepherd BS, Jeffrey Silverstein JT. Rexroad CE. 2008. Effects of short-term growth hormone treatment on liver and muscle transcriptomes in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Physiology Genomics, 32:380-392.
Habibi HR, Ewing R, Bajwa, Walker RL. 2003. Gastric uptake of recombinant growth hormone in rainbow trout. Fish Physiology and Biochemistry,
28:463–467.
Haghighi M, Sharif RM, Sharifpour I, Sepahdari A, Lashtoo AGR. 2011. Oral recombinant bovine somatotropin improves growth performance in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Iranian Journal of Fisheries Sciences, 10:415-424.
Hardiantho D, Alimuddin, Prasetyo AE, Yanti DH, Sumantadinata K. 2011. Aplikasi Rekombinan Growth Hormon (rGH) Ikan Mas Pada Ikan Nila Melalui Pakan Buatan. Makalah yang disampaikan dalam Pertemuan Broodstock Center Nila & Temu Koordinasi Perekayasa Kementrian Kelautan dan Perikanan pada tanggal 15-17 November 2011.
Harris J, Bird DJ. 2000. Modulation of the fish immune system by hormones (Mini Review). Veterinary Immunology and Immunopathology, 77:163-176. Heinsbroek LTN, Van Hooff PLA, Swinkels W, Tanck MWT, Schrama JW, Verreth JAJ. 2007. Effects of feed composition on life history developments in feed intake, metabolism, growth and body composition of European eel,
Anguilla anguilla. Aquaculture, 267:175–187.
Irmawati, Alimuddin, Zairin M, Suprayudi MA, Wahyudi AT. 2012. Peningkatan laju pertumbuhan benih ikan gurame (Osphronemus goramy Lac.) yang direndam dalam media yang mengandung hormon pertumbuhan ikan mas.
Jurnal Iktiologi Indonesia (in press).
Jeh HS, Kim CH, Lee HK, Han K. 1998. Recombinant flounder growth hormone from Escherichia coli: overexpression, efficient recovery, and growth- promoting effect on juvenile flounder by oral administration. Journal Biotechnology, 60:183-193.
Jonior MZ. 2003. Endokrinologi dan perannya bagi masa depan perikanan Indonesia. Orasi Ilmiah Guru Besar Tetap Ilmu Fisiologi Reproduksi dan Endokrinologi Hewan Air Fakultas Perikanan dan Ilmu Kelautan Institut Pertanian Bogor 13 September 2003. 45 hal.
Khoo HW. 2000. Transgenesis: its applications in aquaculture. Asian Fisheries Science, 8:1-25.
Kelley KW. 1989. Growth hormone. lymphocytes and macrophages. Biochemical Pharmacology, 38:705-713.
Kobayashi S, Alimuddin, Morita T, Miwa M, Lu J, Endo M, Takeuchi T, Yoshizaki G. 2007. Transgenic Nile tilapia (Oreochromis niloticus) over - expressing growth hormone show reduced ammonia excretion. Aquaculture, 270:427–435.
Leedom TA, Uchida K, Yada T, Richman NH, Byatt JC, Collier RJ, Hirano T, Grau EG. 2002. Recombinant bovine growth hormone treatment of tilapia: growth response, metabolic clearance, receptor binding and immunoglobulin production. Aquaculture, 207:359–380.
Leggatt RA, Raven PA, Mommsen TP, Sakhrani D, Higgs D, Devlin RH. 2009. Growth hormone transgenesis influences carbohydrate, lipid and protein metabolism capacity for energy production in coho salmon (Oncorhynchus kisutch). Comparative Biochemistry and Physiology, Part B, 154:121–133.
Lesmana I. 2010. Produksi dan Bioaktivitas Protein Rekombinan Hormon Pertumbuhan Dari Tiga Jenis Ikan Budidaya. [tesis]. Bogor : Sekolah Pascasarjana. Institut Pertanian Bogor.
Li Y, Bai J, Jian Q, Ye X, Lao H, Li X, Luo J, Liang X. 2003. Expression of common carp growth hormone in the yeast Pichia pastoris and growth stimulation of juvenile tilapia (Oreochromis niloticus). Aquaculture, 216: 329-341.
Lindholm J. 2006. Growth hormone: Historical notes. Pituitary, 9:5–10.
Liu S, Zang X, Liu B, Zhang X, Arunakumara K, Zhang X, Liang B. 2007. Effect of growth hormone transgenic Synechocystis on growth, feed efficiency, muscle composition, haematology and histology of turbot (Scophthalmus maximus L.). Aquaculture Research, 38:1283-1292.
Morimoto N, Sakai K, Basyet SR. 1995. Basic research study of Mahseer (Tor pititora) in Pokhara Fisheries Research Centre, Nepal. 30pp.
Moriyama S, Hiroshi Y, Seiji S, Toshio A, Tetsuya H, Hiroshi K. 1993. Oral administration of recombinant salmon growth hormone to rainbow trout,
Oncorhynchus mykiss. Aquaculture, 112: 99-106.
Moriyama S, Felix GA, Hiroshi K. 2000. Growth regulation by insuline-like growth factor-1 in fish. Bioscience Biotechnology Biochemistry, 64:1553- 1562.
Moriyama S, Hiroshi K. 1993. Growth stimulation of juvenile salmonids by immersion in recombinant salmon growth hormone. Nippon Suisan Gakkaishi, 56:31-34.
Mulyadi D, Alimuddin, Subiyakto, Rustidja, Maftuch. 2008. Kloning gen hormone pertumbuhan (GH) ikan kerapu kertang (Epinephelus lanceolatus).
Disampaikan dalam “Simposium Nasional Bioteknologi Akuakultur II, 14 Agustus 2008”. IPB International Convention Center, Botani Square, Bogor.. Nam YK, Noh JK, Cho YS, Cho HJ, Cho KN, Kim CG, Kim DS. 2004.
Dramatically accelerated growth and extraordinary gigantism of transgenic mud loach Misgurnus mizolepis. Transgenic Research, 10:353–362.
Nayak PK, Misra J, Mishra TK, Pandey AK, Singh BN, Ayyappan S. 2001. Evaluation of the potential for using hGH to enhance growth in juvenile
Nordgarden U, Hansen T, Hemre GI, Sundby A, Björnsson BT. 2005. Endocrine growth regulation of adult Atlantic salmon in seawater: the effects of light regime on plasma growth hormone, insulin-like growth factor-I, and insulin levels. Aquaculture, 250:862-871.
Nugroho E, Alimuddin, Kristanto AH, Carman O, Megawati N, Sumantadinata K. 2008. Kloning cDNA hormon pertumbuhan dari ikan gurame (Osphronemus gouramy) Jurnal Riset Akuakultur, 2:183-190.
O'Connor PK, Reich B, Sheridan MA. 1993. Growth hormone stimulates hepatic lipid mobilization in rainbow trout, Oncorhynchus mykiss. Journal of Comparative Physiology, 163:427–431.
Ohlsson C, Mohan S, Sjogren K, Tivesten A, Isgaard J, Isaksson O, Jansson JO, Svensson J. 2009. The Role of Liver-Derived Insulin-Like Growth Factor-I [Review]. Endocrine Reviews, 30:494–535.
Oommen, O.V., Johnson, B., 1998. Metabolic effects of ovine growth hormone in a teleost, Anabas testudineus. Annals of the New York Academy of Sciences, 839:380–381.
Pedroso FL, Fukada H, Masumoto T. 2009. In vivo and in vitro effect of recombinant salmon growth hormone treatment on IGF-I and IGFBPs in yellowtail, Seriola quinqueradiata. Fisheries Science, 75:887–894.
Poen S. 2009. Cloning, over-expression and characterization of growth hormone from stripped catfish (Pangasianodon hypophthalmus). [tesis]. Master of Science (Genetic Engineering) Graduate School, Kasetsart University. Promdonkoy B., Warit S, Panyim S. 2004. Production of a biologically active
growth hormone from giant catfish (Pangasianodon gigas) in Escherichia coli. Biotechnology Letter, 26:649-653.
Reinecke M, Björn T, Walton WD, Stephen DMC, Isabel N, Deborah MP, Joaquim G. 2005. Growth hormone and insulin-like growth factors in fish: where we are and where to go (Minireview). General and Comparative Endocrinology, 142:20–24.
Sakai M, Kajita Y, Kobayashi M, Kawauchi H. 1997. Immunostimulating effect of growth hormone : in-vivo administration of growth hormone in rainbow trout enhances resistance to Vibrio anguillarum infection. Veterinary Immunology and Immunopathology, 57:147-152.
Sakai, M. Kobayashi, M. and Kawauchi. H. 1996. In-vitro activation of fish phagocytic cells by growth hormone. prolactin and somatolactin. Journal Endocrinology, 151:1l3-118.
Pérez-Sanchez J. 2000. The involvement of growth hormone in growth regulation, energy homeostasis and immune function in the gilthead sea bream (Sparus aurata): a short review. Fish Physiology Biotechnology, 22:135–144.
Rahman MA, Mak R, Ayad H, Smith A, Maclean N. 1998. Expression of a novel piscine growth hormone gene results in growth enhancement in transgenic tilapia (Oreochromis niloticus). Transgenic Research, 7:357–369.
Sanchez JP, Pierre YLB. 1999. Growth hormone axis as marker of nutritional status and growth performance in fish. Aquaculture 177 : 117–128.
Santiesteban D, Martín L, Arenal A, Franco R, Sotolongo J. 2010. Tilapia growth hormone binds to a receptor in brush border membrane vesicles from the hepatopancreas of shrimp Litopenaeus vannamei. Aquaculture, 306:338– 342.
Sato N, Murata K, Watanabe K, Haryami T, Kariya Y, Sakaguchi M, Kimura S, Nonaka M, Kimura A. 1998. Growth-promoting aktivity of tuna growth hormone and expression of tuna growth hormone cDNA in Escherichia coli. Biotechnology Applied Biochemistry, 10:385-393.
Sekine S, Mizukami T, Nishi T, Kuwana Y, Saito A, Sato M, Itoh S, Kawauchi H. 1985. Cloning and expression of cDNA for salmon growth hormone in
Escherichia coli. Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 82:4306-4310.
Silverstein JT, Wolters WR, Shimizu M, Dickhoff MW. 2000. Bovine growth hormone treatment of channel catfish: strain and temperature effects on growth, plasma IGF-I levels, feed intake and efficiency and body composition. Aquaculture, 190:77–88.
Suitha IM. 2008. Teknik Pendederan Glass Eel/Elver Ikan Sidat. Makalah yang Disampaikan dalam Indonesian Aquaculture 2008 Tanggal 17-20 November 2008 di Hotel Inna Garuda, Daerah Istimewa Yogyakarta. Departemen Kelautan dan Perikanan.
Syazili A, Irmawati, Alimuddin, Sumantadinata K. 2011. Kinerja pertumbuhan dan kelangsungan hidup juvenil ikan gurame direndam hormon pertumbuhan rekombinan dengan frekuensi berbeda. Jurnal Akuakultur Indonesia : 10 (in press).
Takeuchi T. 1988. Laboratory work chemical evaluation of dietary nutrient, p.79- 229. In Watanabe, T. (Ed). Fish nutrient and mariculture. JICA. Tokyo. Kanagawa International Fisheries Training Centre, JICA.
Tanaka H. 2006. Development of artificial fry production technology of japanese eel (Special Articles). Farming Japan, 40:26-30
Tesch FW. 1911.The eel biology and management of anguillia eels. Chapman and Hall. London. 434 p.
Tomiyama T, Hibiya T. 1977. Fisheris in Japan (Eel). Japan Marine Product Photo Materials Association. 225 pp.
Tsai H, Lin K, Kuo J, Chen S. 1995. Highly efficient expression of fish growth hormone by Escherichia coli cells. Appl. Environ. Microbial, 61:4116-4119. Tsai HJ, Hsih. MH, Kuo JC. 1997. Escherichia coli produced fish growth hormone as a feed additive to enhance the growth of juvenile black seabream (Acanthopagrus schlegeli). J. Appl. Ichthyol., 13:78-82.
Utomo DSC, 2010. Produksi dan Uji Bioaktivitas Protein Rekombinan Hormon Pertumbuhan Ikan Mas. [tesis]. Depertemen Budidaya Perairan, Fakultas Perikanan dan Ilmu Kelautan, Institut Pertanian Bogor.
Volkoff H, Canosa LF, Unniappan S, Cerdá-Reverterfer JM, Bernier NJ, Kelly SP, Peter RE. 2005. Neuropeptides and the control of food intake in fish.
General and Comparative Endocrinology, 142:3–19.
Yandes, Affandi R, Mokoginta I. 2003. Pengaruh pemberian selulosa dalam pakan terhadap kondisi biologis benih ikan gurami (Osphronemus gourami Lac).
Jurnal lktiologi Indonesia, 3:27-33.
Walker RL, Buret AG, Jackson CL, Scott KG, Bajwa R, Habibi HR. 2004. Effects of growth hormone on leucine absorption, intestinal morphology, and ultrastructure of the goldfish intestine. Canadian Journal of Physiology Pharmacology, 82(11):951-959.
Wong AOL, Hong Z, Yonghua J, Wendy K, Ko W. 2006. Feedback regulation of growth hormone and secretion in fish and the emerging concept of intrapituitary feedback loop (Review). Comparative Biochemistry and Physiology, 144:284-305.
Lampiran 1 Hasil analisis SDS-PAGE protein rekombinan hormon pertumbuhan ikan gurami (rOgGH), ikan mas (rCcGH) dan ikan kerapu kertang (rElGH).
Keterangan : M = Marker
1 = protein rekombinan hormon pertumbuhan ikan gurami (rOgGH) 2 = protein rekombinan hormon pertumbuhan ikan mas (rCcGH)
3 = protein rekombinan hormon pertumbuhan ikan kerapu kertang (rElGH) dengan media 2xYT
4 = protein rekombinan hormon pertumbuhan ikan kerapu kertang (rElGH) dengan media 2xYT
Lampiran 2 Hasil analisis IGF-I pada hati ikan sidat yang diberi perlakuan rElGH dengan pertumbuhan terbaik dan kontrol.
Keterangan : 1 = Marker
2 = β-aktin kontrol pada 0 jam (sebelum diberi rElGH)
3 = β-aktin kontrol (24 jam setelah diberi pakan rElGH dosis 0 mg/kg pakan)
4 = β-aktin perlakuan (24 jam setelah diberi pakan rElGH dosis 30 mg/kg pakan)
5 = IGF-1 kontrol pada 0 jam (sebelum diberi rElGH) 6 = IGF-1 perlakuan pada 0 jam (sebelum diberi rElGH)
7 = IGF-1 kontrol (24 jam setelah diberi pakan rElGH dosis 0 mg/kg pakan) 8 = IGF-1 perlakuan (24 jam setelah diberi pakan rElGH dosis 30 mg/kg
Lampiran 3 Abstrak Sebagian dari tesis yang telah diseminarkan dalam INDOAQUA & FITA 2012 pada tanggal 8-11 Juni 2012 di Makassar.
PEMBERIAN REKOMBINAN HORMON PERTUMBUHAN IKAN KERAPU KERTANG SECARA ORAL PADA IKAN SIDAT (Anguilla sp.)
(Oral administration of giant grouper recombinant growth hormone in eel
Anguilla sp.)
Oleh : Boyun Handoyo1, Alimuddin2*, Nur Bambang PU2 1. Program Magister Ilmu Akuakultur, Departemen Budidaya Perairan,
FPIK, Institut Pertanian Bogor. Bogor 16680
2. Departemen Budidaya Perairan, Fakultas Perikanan dan Ilmu Kelautan, Institut Pertanian Bogor. *) E-mail: alimuddin_alsani@yahoo.com
ABSTRAK
Penelitian ini bertujuan untuk menentukan dosis rekombinan hormon pertumbuhan ikan kerapu kertang (rElGH) dicampur dengan pakan buatan untuk meningkatkan pertumbuhan pada benih ikan sidat (elver). Protein rElGH yang telah disalut (coating) dengan hipromellosa fitalat (HP55), dicampur dengan pakan pada dosis berbeda (0; 0,3; 3; dan 30 mg/kg pakan). Elver diberi pakan mengandung rElGH 2 kali seminggu, sebanyak 6% biomassa. Pemeliharaan ikan dilakukan selama 60 hari di akuarium volume 18 liter, dengan kepadatan 45 ekor/akuarium. Hasil penelitian menunjukkan bahwa pertumbuhan bobot (60,18±1,38) tertinggi diperoleh pada perlakuan 30 mg/kg, dengan peningkatan sekitar 65,7% lebih tinggi dibandingkan dengan kontrol (36,32±0,97). Selanjutnya, pemberian rElGH meningkatkan retensi protein (15,50%), dan lemak (34,48%) sekitar 99% dan 364% dibandingkan masing-masing dengan retensi protein dan lemak ikan kontrol (nilainya 7,78% (protein) & 7,42 (lemak)). Selain itu, pemberian rElGH meningkatkan nafsu makan, sedangkan tingkat konversi pakan (FCR) menurun 5,54 sekitar 33% lebih rendah daripada FCR kontrol yang tidak diberi rElGH 7,37. Nafsu makan ditunjukkan elver lebih cepat menghabiskan pakan (3 kali lipat). Dengan demikian pemberian rElGH dosis 30 mg/kg pakan memberikan performa tertinggi, dan aplikasi rElGH dapat berguna untuk meningkatkan produksi budidaya ikan.
Kata kunci: hormon pertumbuhan, pemberian secara oral, dosis, pertumbuhan, elver.
ABSTRACT
This study was aimed to determine the dose of giant grouper recombinant growth hormone (rElGH) mixed in artificial diet to increase growth of eel elver. HP55- coated rElGH was mixed to diet at different doses (0, 0.3, 3, and 30 mg/kg). Elver was fed on diet containing rElGH twice daily, 6% fish biomass. Fish rearing was performed in glass aquarium vol. 18 L liters for 60 days, at density of 45 fish/aquarium. The results showed that higher in growth body weight was obtained in treatment 30 mg/kg (60.18±1.38), by increment of about 65.7% compared to control (36,32±0,97). Furthermore, administration of rElGH increased protein (15.50%) and lipid retentions (34.48%) by 99%, and 364% compared to control, respectively. In addition, rElGH supplementation increased appetite, while feed conversion ratio (FCR) decreased 3,87 by 58% compared to that of control 6.12. Appetite was shown by treated elver ate faster (3 times) than control. Thus, rElGH administration of 30 mg/kg diet generated higher performances of elver, and application of rElGH can be useful to increase aquaculture production.
Lampiran 4 Profil bahan penyalut (coating) rGH HP55 yang digunakan dalam penelitian ini
Nama dangang : Hypromellose Pthalate (Hydroxypropylmethylcellulose Pthalate)
Produsen : Shinetsu, Japan
Nama IUPAC : Cellulose, 2-hydroxypropyl methyl ether, hydrogen benzene-1,2-dicarboxylate.
Bentuk : Serbuk
Warna : Putih
Fungsi : Bahan coating untuk melindungi obat/bahan dari asam lambung dan untuk melindungi lambung dari iritasi obat/bahan
Cara kerja : Tidak larut dalam lambung (pH rendah) dan larut dalam usus (pH tinggi) sehingga proses pennyerapan bahan/obat lebih optimum Paking : 1 kg, 5kg, 25 kg Rumus struktur kimia : Waktu disintegrasi dalam larutan buffer (bergantung pH) :
IV. HASIL DAN PEMBAHASAN
4.1. Hasil
4.1.1. Pemberian Protein rElGH melalui Perendaman
Pada Gambar 9 menjelaskan bahwa dosis yang paling tepat pada pemberian rElGH melalui perendaman pada ikan sidat (ukuran glass eel) adalah sebesar 12 mg/L. Dosis ini memberikan efek pertumbuhan yang paling cepat; 37,4% tumbuh lebih cepat tumbuh dibandingkan dengan kontrol. Pemberian rElGH pada dosis 1,2 mg/L masih memberikan efek pertumbuhan lebih cepat dibandingkan kontrol, tetapi pemberian yang lebih rendah lagi (0,12 mg/L) sudah tidak memberikan efek pertumbuhan yang lebih baik. Sementara itu, pada dosis yang lebih besar (120 mg/L) juga tidak memberikan efek yang lebih tinggi.
Gambar 9 Pertumbuhan ikan sidat (Anguilla sp.) yang diberi perlakuan perendaman rElGH dengan dosis berbeda pada awal pemeliharaan (hari pertama). Tanda berbeda (a, b, c) pada akhir garis menunjukan pertumbuhan berbeda nyata secara statistik (P < 0,05).
Kelangsungan hidup (SR) benih ikan sidat yang diberi perlakuan juga meningkat sebesar 58,9% antara perlakuan terbaik dibandingkan dengan kontrol BSA (Tabel 9). Pemberian pakan pada ikan yang diberi perlakuan rGH melalui perendaman juga lebih efisien, dilihat dari nilai FCR baik cacing maupun pakan buatan yang lebih rendah (32,6% dan 22,7%) dibandingkan dengan ikan kontrol.
0 20 40 60 80 100 120 H1 H15 H30 H45 H60 B o b o t b io m assa to tal (gr am )
Lama pemeliharaan (hari)
A (120 mg/L) B (12 mg/L) C (1,2 mg/L) D (0,12 mg/L) E (Kontrol BSA) G (Kontrol) a b c
Hal tersebut menunjukkan bahwa pemberian rGH secara langsung dapat meningkatkan produktivitas pada ikan sidat (dilihat dari pertumbuhan dan SR) dan menurunkan biaya produksi (dilihat dari nilai FCR).
Tabel 9 Biomassa, laju pertumbuhan (SGR), sintasan (SR) dan tingkat konversi pakan (FCR) ikan sidat (glass eel) yang diberi perendaman rElGH dan kontrol selama 2 bulan pemeliharaan.
Parameer uji Perlakuan dosis (mg rElGH/L)
K1 K2 120 12 1,2 0,12 Biomassa panen (g) 73,66±2,6c 72,93±1,8c 78,01±1,7c 101,2±0,8a 94,46±2,2 b 76,66±3,4c SGR (%) 1,98±0,0c 2,04±0,0bc 2,18±0,0b 2,56±0,0a 2,41±0,0a 2,05±0,0bc SR (%) 94,4±5,4b 93,3±1,8b 92,2±1,4c 98,8±1,0a 97,8±1,0a 91,8±3,7b FCR cacing 13,1±0,1a 13,0±0,0a 12,7±0,2b 9,8±0,0d 10,4±0,02c 12,7±0,0b FCR pakan 2,7±0,02a 2,7±0,01a 2,5±0,01c 2,2±0,02e 2,3±0,02d 2,6±0,02b
Keterangan: SGR= Specific Growth Rate; SR= Survival Rate; FCR= Feed Convertion Rate; K1= dosis 0; K2= dosis 0 + Shock salinitas + BSA. Huruf superskrip berbeda pada baris yang sama menunjukan berbeda nyata secara statistik (P < 0,05).
4.1.2.Pemberian Protein rElGH Secara Oral
Pemberian hormon pertumbuhan ikan kerapu kertang (rElGH) secara oral (melalui pakan) pada benih ikan sidat dengan dosis lebih besar dari 3 mg/kg pakan dengan frekuensi dua kali setiap minggu, memberikan efek pertumbuhan yang signifikan dibandingkan dengan kontrol (P<0,05) seperti pada (Gambar 10). Respons pertumbuhan terbaik pada dosis 30 mg/kg pakan, yaitu memberikan pertumbuhan yang lebih cepat 65,7% jika dibandingkan kontrol. Pada penelitian ini, pemberian rGH secara oral dengan dosis yang tepat juga secara signifikan dapat meningkatkan laju pertumbuhan (SGR) sebesar 101,2%, biomassa panen sebesar 65,7%, dan kelangsungan hidup (SR) sebesar 9,1% jika dibandingkan dengan kontrol pada benih ikan sidat (Tabel 10)
Gambar 10 Pertumbuhan ikan sidat (Anguilla sp.) yang diberi perlakuan rElGH secara oral dengan dosis berbeda, dan frekuensi pemberian 2 hari/minggu selama 2 bulan pemeliharaan. Dosis pemberian rElGH dalam mg/kg pakan. Tanda a dan b menunjukkan berbeda nyata secara statistik (P< 0,05).
Pemberian pakan pada ikan yang diberi perlakuan rGH melalui perendaman juga lebih efisien, dilihat dari nilai konversi pakan/FCR pakan yang lebih rendah 58,1% jika dibandingkan ikan kontrol (Tabel 10).
Tabel 10 Biomassa, laju pertumbuhan (SGR), sintasan (SR) dan tingkat konversi pakan (FCR) ikan sidat (elver) yang diberi pakan rElGH dan kontrol selama 2 bulan pemeliharaan.
Parameter yang diamati
Perlakuan dosis (mg rElGH/kg pakan)
K (0) 0,3 3 30
Biomassa panen (g) 36,32±0,97b 38,97±2,9b 53,94±4,17a 60,18±1,38a SGR (%) 0,800±0,07b 0,911±0,13b 1,421±0,04a 1,620±0,06a SR (%) 73,33±2,22a 75,56±4,44a 74,81±10,5a 80,00±6,67a FCR pakan 6,12±0,00a 5,57±0,01a 4,22±0,02b 3,87±0,08c
Keterangan: Huruf superskrip berbeda pada baris yang sama adalah berbeda nyata secara statistik (P<0,05). 20 25 30 35 40 45 50 55 60 65 H0 H15 H30 H45 H60 B iom assa (gr am)
Lama pemeliharaan (hari) Kontrol Dosis 0,3 Dosis 3 Dosis 30 a b b a
4.1.3. Pemberian rElGH Melalui Perendaman dan Oral
Semua perlakuan baik pemberian melalui perendaman pada glass eel, secara oral melalui pakan (elver), dan kombinasi antara perendaman dan pakan menghasilkan respons pertumbuhan secara signifikan lebih tinggi dibandingkan dengan kontrol (Gambar 11).
Gambar 11 Ikan sidat hasil percobaan perlakuan pemberian rElGH dengan metode pemberian yang berbeda: A) perendaman + pakan; B) pakan saja; C) perendaman saja; D) kontrol.
Respons pertumbuhan tertinggi didapatkan pada perlakuan kombinasi pemberian antara perendaman dan pakan jika dilihat dari biomassa panen (Gambar 12). Perlakuan tersebut menghasilkan biomassa panen 102,9% lebih