1. Penggunaan eksplan epikotil pamelo yang dikultur secara vertikal pada media MS0 di tempat terang, merupakan cara yang paling efektif dibandingkan penggunaan eksplan daun dan akar, untuk mendapatkan tunas adventif melalui organogenesis secara langsung.
2. Media terbaik dengan menggunakan metode konservasi in vitro berdasarkan penurunan konsentrasi media MS dan sukrosa adalah media MS tanpa sukrosa, yang diperkirakan dapat mengkonservasi pamelo selama 30,7 bulan.
3. Eksplan dan media terbaik pada metode konservasi in vitro dengan penggunaan osmotikum dan retardan adalah eksplan yang berasal dari tunas adventif dengan media MS + sorbitol 2% + paklobutrasol 7,5 ppm yang diperkirakan dapat mengkonservasi pamelo selama 22,2 bulan.
Saran
1. Berdasarkan pertumbuhan relatif dan visual kultur yaitu planlet normal yang lebih hijau dan vigor sehingga dapat dipulihkan lebih cepat, maka media MS + sorbitol 2% + paklobutrasol 7,5 ppm merupakan media yang lebih tepat digunakan untuk konservasi pamelo dibandingkan dengan media MS tanpa sukrosa.
2. Perlu penelitian lebih lanjut tentang uji stabilitas genetik pada planlet setelah konservasi.
DAFTAR PUSTAKA
Ali S, Mirza B. 2006. Micropropagation of rough lemon (Citrus jambhiri Lush.): Effect of explant type and hormone concentration. Acta Bot Croatia 65: 137-146.
Almeida WAB de, Filho FAAM, Mendes BMJ, Rodriguez APM. 2002. In vitro organogenesis: optimatization and plantlet regeneration in Citrus sinensis
and C. limonia. Scient Agric.59 : 35-40.
Anonim. 2007. Brosur Pengelolaan Terpadu Kebun Jeruk Sehat. Departemen Pertanian.
Ara N, Bashar MK, Uddin MK, Khalequzzaman KM. 2008. Evaluation of pummelo (Citrus grandis L.) cultivars in northern area of Bangladesh. J Agric Res 46: 65-75.
Bessembinder JJE, Staritsky G, Zandvoort EA. 1993. Longterm in vitro storage of
Colocasia esculenta under minimal growth conditions. Plant Cell Tissue Organ Cult 33:121-127.
Beyl CA. 2005. Getting Started with Tissue Culture: Media Preparation, Sterile Technique, and Laboratory Equipment. Di dalam Trigiano RN, Gray DJ, editor. Plant Development and Biotechnology. New York: CRC Press. hlm 11-37.
Botau D, Danci M, Danci O. 2005. In vitro medium term preservation of different romanian landraces. Acta Biol Szegediensis 499 : 41-42.
Buchanan BB, Gruissem W, Jones RL. 2000. Biochemistry and Molecular Biology of Plant. New York: American Society of Plant Physiologists. Campbell NA, Reece JB, Urry LA, Cain ML, Wasserman SA, Minorsky PV,
Jackson RB. 2008. Biology (8th ed.). San Francisco: Pearson, Benjamin Cummings. hlm 827–830.
Carimi F, Pasquale F de, D‟Onghia AM. 2012. Conservation strategies of Citrus
germplasm: in vitro and in vivo. Options Mediterraneennes, Serie B n. 33: 67-72. http://ressources.ciheam.org/om/pdf/b33/02001695.pdf 1 Maret 2012.
Catană R, Mitoi EM, Helepciuc F, Holobiuc I. 2010. In vitro conservation under slow growth conditions of two rare plant species from Caryophyllaceae family. Elec J Biol 6: 86-91.
Chaney WR. 2004. Paclobutrazol: More than just a growth retardant. Pro-Hort Conference, Peoria, Illinois, February 4th 2004. http://www.ina-
online.org/prohort/TreeGrowth.pdf 20 April 2009.
Davies PJ. 2004. The plant hormones : Their Nature, Occurrence, and Functions. Di dalam: Davies PJ, editor. Plant Hormones Biosynthesis, Signal Transduction, Action! London: Kluwer Academic Publisher. hlm 1-35. Desbrunais AB, Noirot M, Charrier A. 1992. Slow growth in vitro conservation
Dewi IS, Jawak G, Roostika I, Sabda M, Purwoko BS, Adil WH. 2010. Konservasi in vitro tanaman jeruk besar (Citrus maxima (Burm.) Merr.) kultivar Sri Nyonya menggunakan osmotikum dan retardan. J Agro Biogen
6 : 84-90.
Dewi N. 2002. Perbanyakan dan Pelestarian Plasma Nutfah Talas (Colocasia esculenta (L.) Schott) secara In vitro [tesis]. Bogor: Program Pasca Sarjana. Institut Pertanian Bogor.
Dewitte W, Murray J. 2002. Regulation of cell division in plants. Di dalam: Mcmanus MT, Veit BE, editor. Meristematic Tissues in Plant Growth and Development. London: Sheffield Academic Press. hlm 255-278.
Dianxiang Z, Mabberley DJ. 2008. Citrus Linnaeus, Sp. Pl. 2: 782. 1753. Fl Ch 11: 90–96. http://flora.huh.harvard.edu/china/PDF/PDF11/
Citrus.pdf. (2 Mei 2011).
Gaba VP. 2005. Plant growth regulators in plant tissue culture and development. Di dalam Trigiano RN, Gray DJ, editor. Plant Development and Biotechnology. New York: CRC Press. hlm 87-99.
Gahan PB, George EF. 2008. Adventitious Regeneration. Di dalam: George EF, Hall MA, De Klerk GJ, editor. Plant Propagation by Tissue Culture Vol. I.
The Background. Dordrecht: Springer. p 355–402.
Gahan PB. 2007. Totipotency and the cell cycle. Di dalam: S.M. Jain dan H. Häggman (eds). Protocols for Micropropagation of Woody Trees and Fruits. The Netherlands : Springer. p 3-14.
Hamilton A, Hamilton P. 2006. Plant Conservation: An Ecosystem Approach. USA: Earthscan. 324 p.
Hazarika BN, 2003. Acclimatization of tissue cultured plants. Curr Sci 85: 1704- 1711.
Hazarika BN, Parthasarathy VA, Nagaraju V. 2002. Action of paclobutrazol in acclimatizing micropropagated citrus planlets. Indian J Agric Res, 36 : 57– 60.
Hilae A, Te-chato S. 2005. Effects of carbon sources and strength of MS medium on germination of somatic embryos of oil palm (Elaeis quineensis Jacq.).
Songklanakarin J Sci Technol 27(Suppl. 3) : 629-635.
Hossain MA, Hossain MT, Ali MR, Rahman SMM. 2005. Effect of different carbon sources on in vitro regeneration of Indian Pennywort (Centella asiatica L.). Pak J Biol Sc 8: 963-965.
Hu CY, Wang PJ 1983. Meristem, shoot tip, and bud culture. Di dalam: Evans DA, Sharp WR, Amirato PV, Yamada Y, editor. Handbook of Plant Cell Culture Vol. I Techniques for Propagation and Breeding. New York: McMilan Publishing. hlm 177-227.
Indrawan M, Primack RB, Supriatna J. 2007. Biologi Konservasi. Jakarta: Yayasan Obor Indonesia. 625 hlm
Ibrahim MSD. 2005. Pengaruh pemberian paklobutrasol terhadap pertumbuhan Bangle (Zingiber purpureum) dalam penyimpanan in vitro. Bul Tan Rempah dan Obat 16: 49-55.
Imin N, Nizamidin M, Wu T, Rolfe BG. 2007. Factors involved in root formation in Medicago trunculata. J Exp Bot 58: 439-451.
Javed F, Ikram S. 2008. Effect of sucrose induced osmotic stress on callus growth and biochemical aspect of two wheat genotypes. Pak J Bot 40: 1487-1495. Kane ME. 2005. Shoot culture procedures. Di dalam Trigiano RN, Gray DJ, editor. Plant Development and Biotechnology. New York: CRC Press. hlm 145-172.
Kartha KK. 1985. Meristem culture and germplasm preservation. Di dalam Kartha KK, editor. Cryopreservation of Plant Cell and Organs. Florida: Cue Press. hlm 116-134.
Khan EU, Fu XZ, Wang J, Fan QJ, Huang XS, Zhang GN, Shi J, Liu JH. 2009.
Regeneration and characterization of plants derived from leaf in vitro
culture of two sweet orange (Citrus sinensis (L.) Osbeck) cultivars. Scient
Hort 120: 70-76.
Leunufna S. 2004. Improvement of the in vitro maintenance and cryopreservation of yams (Dioscorea spp.) [Dissertation]. Berlin: Martin-Luther– Universitat Halle-Wittenberg. Unpublished. 12 p.
Mabberley DJ. 1997. A classification for edible Citrus. Telopea 7: 167–172. Machakova I, Zazimalova E, George EF. 2008. Plant growth regulator I:
Introduction, Auxin, their analogues and inhibitor. Di dalam George EF, Hall MA, De Klerk GJ, editor. Plant Propagation by Tissue Culture Vol. I
The Background. Dordrecht: Springer. hlm 175-204.
Manner HI, Buker RS, Smith VE, Ward D, Elevitch CR. 2006. Citrus (citrus) and Fortunella (kumquat), Rutaceae (true family). Species Profiles for Pacific Island Agroforestry. www.traditionaltree.org. 12 Des 2009.
Marschner H. 1995. Mineral Nutrition of Higher Plant. Cambridge: Academic Press. 859 hlm.
Milfont ML, Martins JMF, Antonino ACD, Gouveia ER, Netto AM, Guiné V, Mas H, Freire MBGS. 2008. Reactivity of the plant growth regulator paclobutrazol (Cultar) with two tropical soils of the northeast semiarid region of Brazil. J. Environ. Qual. 37:90–97.
Moges AD, Karam NS, Shibli RA. 2003. Slow growth in vitro of African violet (Saintpaulia ionantha Wendl.) shoot tips. Adv Hort Sci 17:1-8.
Montalvo-Peniche MC, Iglesias-Andreu LG, Mijangos-Cortes JO, Nahuat-Dzib SL, Barahona-Perez F, Canto-Flick A, Santana-Buzzy N. 2007. In vitro germplasm conservation of Habanero Pepper (Capsicum chinense Jacq.).
HortSci 42: 1247-1252.
Morton J. 1987. Pummelo. Di dalam Morton JF, editor. Fruits of warm climates.
Miami: FL. hlm 147–151 http://www.hort.purdue.edu/newcrop/morton/
pummelo.html 23 Maret 2011.
Moshkov IE, Novikova GV, Hall MA, George EF. 2008. Plant growth regulator III: Gibberellins, Ethylene, Absisic Acid, their analogues and inhibitor; miscellaneous compounds. Di dalam George EF, Hall MA, De Klerk GJ, editor. Plant Propagation by Tissue Culture Vol. I The Background. Dordrecht: Springer. hlm 227-282.
Murashige T, Skoog F. 1962. A revised medium for rapid growth and bioassay with tobacco tissue cultures. Physiol Plant 15: 473-497.
Neto VB de P, Otoni WC. 2003. Carbon sources and their osmotic potential in plant tissue culture: does it matter? Sci Hort 97: 193–202.
Niyomdham C. 1997. Citrus maxima (Burm.) Merr. Di dalam Verheij EWM, Coronel E, editor. Plant Resources of South-East Asia 2: Edible Fruits and Nuts. Bogor: Prosea Foundation. hlm 153-157.
Normah MN, Hamidah S, Ghani FD. 1997. Micropropagation of Citrus halimii –
an endangered spesies of South East Asia. Plant Cell Tissue Organ Cult
50: 225-227.
Pandey VP, Cherian E, Patani G. 2010. Effect of growth regulators and culture conditions on direct root induction of Rauwolfia serpentina L. (Apocynaceae) Benth. by leaf explants. Trop J Pharm Res 9 : 27-34. Peer WA, Blakeslee JJ, Yang H, Murphy AS. 2011. Seven things we think we
know about auxin transport. Mol Plant 4: 487–504.
Pusat Penelitian dan Pengembangan Hortikultura. 2006. Katalog teknologi unggulan hortikultura, tanaman sayuran, tanaman buah, tanaman hias. Jakarta: Pusat Penelitian dan Pengembangan Hortikultura, Badan Penelitian dan Pengembangan Pertanian, Departemen Pertanian.
Rahayu A. 2012. Karakterisasi dan Evaluasi Aksesi Pamelo (Citrus maxima (Burm.) Merr. Berbiji dan Tidak Berbiji Asli Indonesia [disertasi]. Bogor: Sekolah Pascasarjana IPB, Institut Pertanian Bogor.
Rao NK. 2004. Plant genetic resources: Advancing conservation and use through biotechnology. Afr J Biotech 3: 136-145.
Read DB, Bengough AG, Gregory PJ, Crwford JW, Robinson D, Scrimgeour CM, Young IM, Zhang K, Zhang X. 2003. Plant root release phospholipid surfactants that modify the physical and chemical properties of soil. New Phytol 157 : 315–326.
Roostika I, Sunarlim N, Arief VN. 2005. Penyimpanan kentang hitam (Coleus tuberosus) secara kultur in vitro. J Pen Pert 24: 46-52.
Rose RJ, Wang XD, Nolan KE, Rolfe BG. 2006. Root meristem in Medicago trunculata tissue culture arise from vascular-derived procambial-like cells in a process regulated by ethylene. J Exp Bot 57: 2227-2235.
Sandmann G, Scherr H. 1998. Chloroplast pigment: chlorophylls and carotenoids. Di dalam Raghavendra, editor. Photosynthesis A Comprehensive Treatise. New York: Cambridge University Press. hlm 44-57.
Schwart OJ, Sharma AR, Beaty RM. 2005. Propagation from non meristimatic tissues: Organogenesis. Di dalam Trigiano RN, Gray DJ, editor. Plant Development and Biotechnology. New York: CRC Press. hlm 159-172. Shibli RA, Shatnawi MA, Subaih WS, Ajlouni MM. 2006. In vitro conservation
of plant genetic resources: A review. World J Agric Sci 2: 372–382.
Silva RP da, Almeida WAB de, Souza ES ES, Filho FAAM. 2006. In vitro
organogenesis from adult tissue of „Bahia‟ Sweet Orange (Citrus sinensis
(L.) Osbeck). Fruit 61: 367-371.
Srivastava LM. 2002. Plant Growth and Development, Hormon and Environment. London: Academic Press. 772 p.
Staden J van, Zazimalova E, George EF. 2008. Plant growth regulator II: Cytokinin, their analogues and antagonists. Di dalam George EF, Hall MA, De Klerk GJ, editor. Plant Propagation by Tissue Culture Vol. I The Background. Dordrecht: Springer. hlm 205–226.
Sunarlim N, Roostika I, Arief VN. 2004. Penyimpanan in vitro gembili melalui pertumbuhan minimal. Prosiding Seminar Kinerja Penelitian Mendukung Agribisnis Kacang-kacangan dan Umbi-umbian. BALITKABI. Malang. Sunarlim N, Zuraida N. 2001. Penyimpanan ubi kayu secara in vitro dengan
pertumbuhan minimal. Bul Plasma Nutfah 7: 7-12.
Susanto S. 2004. Perubahan kualitas buah jeruk besar (Citrus grandis (L.) Osbeck) yang disimpan dan dibiarkan di pohon. Hayati 11: 25-29.
Susanto S. 2010. Laporan Penelitian Program Insentif Riset Terapan 2010: Perbaikan Potensi Pembentukan Buah Jeruk Pamelo Tanpa Biji untuk Meningkatkan Daya Saing Buah Nasional. Bogor: Departemen Agronomi dan Hortikultura Fakultas Pertanian IPB (tidak diterbitkan).
Sutopo, Supriyanto A, Suhariyono. 2006. Penentuan dosis pupuk NPK berdasarkan hasil panen pada tanaman pamelo (Citrus grandis (L). Osbeck). Prosiding Seminar Nasional Jeruk Tropika Indonesia; Batu, 28-29 Juli 2005. hlm 243-251.
Syahid SF. 2007. Pengaruh retardan paklobutrazol terhadap pertumbuhan temu lawak (Curcuma xanthorriza) selama konservasi in vitro. J Litrri 13: 93-97. Taiz L, Zeiger E. 2002. Plant Physiology. New York: The Benjamin/Cummings
Publishing Co. Inc. 672 hlm.
Thorpe T, Stasolla C, Yeung EC, Klerk G-J de, Roberts A, George EF. 2008. The Components of Plant Tissue Culture Media II : Organic Additions, Osmotic and pH Effects, and Support Systems. Di dalam George EF, Hall MA, De Klerk GJ, editor. Plant Propagation by Tissue Culture Vol. I The Background. Dordrecht: Springer. hlm 115–174.
Towill LE. 2005. Germplasm preservation. Di dalam Trigiano RN, Gray DJ, editor. Plant Development and Biotechnology. New York: CRC Press. hlm 277-284.
Traore A, Guiltinan MJ. 2006. Effect of carbon source and explant type on somatic embryogenesis of four cacao genotypes. Hort Sci 41: 753-758. Trigiano RN, Gray DJ. 2005. A brief introduction to plant anatomy. Di dalam
Trigiano RN, Gray DJ, editor. Plant Development and Biotechnology.
New York: CRC Press. hlm 87-99.
Tsegaw T, Hammes S, Robbertse J. 2005. Paclobutrazol-induced leaf, stem and root anatomical modification in potato. Hort Sci 40: 1343-1346.
Usman M, Muhammad S, Fatima B. 2005. In vitro multiple shoot induction from nodal explants of Citrus cultivars. J Central Eur Agric 6: 435-442.
Wang SY, Sun T, Faust M. 1986. Translocation of paclobutrazol, a gibberellin biosynthesis inhibitor, in Apple seedlings. Plant Physiol 82: 11-14.
Wattimena GA, Gunawan LW, Matjik NA, Syamsudin E, Wiendi NMA, Ernawati A. 1992. Bioteknologi tanaman. Bogor : PAU IPB. 306 hal.
Whiters LA. 1985. Cryopreservation and storage of germplasm. Di dalam Dixon DA, editor. Plant Cell Culture. Washington: IRL Press. p. 169-190. Yamaguci M, Kato H, Yoshida S, Yamamura S, Uchimiya H, Umeda M. 2004.
Control of in vitro organogenesis by cyclin-dependent kinase activities in plants. PNAS 100 : 8019-8023.
Yelnitis, Bermawie N. 2001. Konservasi tanaman Lada (Piper nigrum L.) secara
in vitro. J Littri 7: 88-92.
Zhang S, Lemaux PG. 2005. Molecular aspects of in vitro shoot organogenesis. Di dalam Trigiano RN, Gray DJ, editor. Plant Development and Biotechnology. New York: CRC Press. p 173-185.
Ziv M, Chen J. 2008. The anatomy and morphology of tissue cultured plant. Di dalam George EF, Hall MA, De Klerk GJ, editor. Plant Propagation by Tissue Culture Vol. I The Background. Dordrecht: Springer. hlm 465-477.
Lampiran 1. Pamelo Adas Duku dari Magetan, Jawa Timur.
Gambar 1. Pamelo Adas Duku dari Magetan Jawa Timur, daging buah merah, rasa buah manis. a. habitus pohon, b. daun, c. buah, d. bunga, e. irisan membujur buah dengan biji (Foto : KN Tyas)
a
b c
d e
Lampiran 2. Karakter pamelo adas duku (Rahayu 2012)
Tabel 2.1 Karakteristik pohon pamelo‟Adas Duku‟ (Rahayu 2012)
Pohon Karakter
Bentuk tajuk obloid
Penyebaran cabang menyebar
Kerapatan cabang sedang
Sudut percabangan lebar
Kerapatan duri pada tanaman dewasa rendah
Panjang duri < 5 mm
Bentuk duri lurus
Warna trubus hijau
Permukaan trubus halus
Tabel 2.2 Karakteristik daun pamelo‟Adas Duku‟ (Rahayu 2012)
Daun Karakter
Pembagian daun tunggal
Intensitas warna sedang
Nisbah tangkai/helai lebih pendek
Panjang helai daun (cm) 13,8
Lebar helai daun (cm) 5,9
Panjang/lebar helai daun 2,4
Bentuk helai daun elliptic-ovate-hati
Tepi daun rata
Sayap daun ada
Lebar sayap sempit
Bentuk sayap daun hati-segitiga
Posisi helai dan sayap terpisah
Trikoma di bawah daun tidak ada
Tabel 2.3 Karakteristik bunga pamelo‟Adas Duku‟ (Rahayu 2012)
Bunga Karakter
Panjang tangkai (mm) 10,7
Diameter kelopak 11,3
Perbandingan panjang anther/stigma setara
Tipe bunga hermaprodit
Warna bunga mekar putih
Warna anther kuning
Jumlah petal per bunga 5
Panjang petal (mm) 19,6
Lebar petal (mm) 12,4
Jumlah stamen > 4 per bunga
Tabel 2.4 Karakteristik buah pamelo‟Adas Duku‟ (Rahayu 2012)
Buah Karakter
Bobot buah (g) 1394,68
Bentuk buah spheroid
Bentuk pangkal buah convex
Bentuk ujung buah truncate
Tebal epikarp 1,18
Warna kulit buah kuning
Tekstur permukaan buah agak kasar
Kelekatan albedo dengan kantung jus kuat Keberadaan kelenjar minyak jelas
Tebal mesokarp 13,27
Warna albedo merah muda
Ujung buah tertutup
Jumlah juring per buah 15,5
Kelekatan antar juring kuat
Keseragaman bentuk juring tidak
Ketebalan dinding juring sedang
Axis (inti buah) padat
Bentuk potongan melintang inti tidak teratur
Warna kantong jus merah muda
Intensitas warna kantong jus terang
Keseragan warna kantong jus tidak seragam
Ketegaran kantong jus sedang
Tekstur kantong jus berdaging
Panjang kantong jus pendek
Tebal kantong jus tipis
Jumlah biji rata-rata per buah 55,6
Bentuk biji fusiform, semi-deltoid
Permukaan biji keriput
Warna biji krem
Warna kotiledon putih
Warna titik kalaza krem
Embrioni biji mono-embrioni
Panjang biji (mm) 15,4
Lebar biji (mm) 8,2
Tabel 2.5 Karakteristik kimia pamelo‟Adas Duku‟ (Rahayu 2012)
Karakter Kimia Vitamin C (mg.100g-1) 37,88 Ph 3,97 PTT 9,60 ATT 0,58 PTT/ATT 16,56 Naringin 131,20 86
Tabel 2.6 Karakteristik fisik pamelo‟Adas Duku‟ (Rahayu 2012)
Karakter fisik %
Bobot kulit 30,80
Bobot bagian dapat dimakan 58,82
Sekat 8,02
Aksis 0,88
Biji 1,48
Lampiran 3. Komposisi Media MS (Murashige dan Skoog 1962) Tabel 3.1 Komposisi media Murashige dan Skoog (MS)
Larutan Stok Bahan Kimia Konsentrasi Larutan (g L-1)
Volume larutan stok yang digunakan (ml L-1) Konsentrasi senyawa dalam media (mg L-1) A NH4NO3 82,500 20 1650,000 B KNO3 95,000 20 1900,000 C KH2PO4 34,000 5 170,000 H3BO3 1,240 6,200 Na2MoO4.2H2O 0,050 0,250 CoCl2.H2O 0,005 0,025 KI 0,166 0,830 D CaCl2.2H2O 88,000 5 440,000 E MgSO4.7H2O 74,000 5 370,000 MnSO4.4H2O 4,460 22,300 ZnSO4.7H2O 1,720 8,600 CuSO4 0,050 0,025 F NaEDTA 3,730 10 37,300 FeSO4.7H2O 2,780 27,800 Vitamin Thiamine 0,010 10 0,100 Nicotinic acid 0,050 0,500 Pyridoxine 0,050 0,500 Glycin 0,200 2,000
Myo Myo inositol 10,000 10 100,000
Lampiran 4. Hasil Uji pada konservasi dengan pengenceran media MS dan konsentrasi sukrosa
Tabel 4.1 Rekapitulasi hasil sidik ragam peubah konservasi dengan pengenceran media MS dan konsentrasi sukrosa
Peubah Macam media
MS
Konsentrasi Sukrosa
Media x Sukrosa Penambahan jumlah daun 25,79** 11,60** 9,65**
Pemanjangan tunas 1,14** 0,37** 0,17tn Panjang akar 193,51** 137,84** 55,25tn
Jumlah akar 0,06** 0,01tn 0,03*
Waktu muncul akar 0,49** 0,26tn 0,48** Keterangan : ** = sangat nyata, * = nyata, tn = tidak nyata
Tabel 4.2 Rekapitulasi hasil uji kontras konservasi dengan penurunan konsentrasi media MS dan sukrosa
Contrast Panjang tunas Panjang akar
½ MS vs MS 1,14** 193,51**
0 vs 10 20 30 0,75** 311,88**
10 vs 20 0,03tn 67,12tn
10 vs 30 0,34* 84,36tn
20 vs 30 0,1tn 0,98tn
Keterangan : ** = sangat nyata, * = nyata, tn = tidak nyata
Tabel 4.3 Rekapitulasi hasil uji DMRT konservasi dengan penurunan konsentrasi media MS dan sukrosa
Peubah yang diamati Komposisi Media
Konsentrasi sukrosa (%)
0 1 2 3
Penambahan 1/2MS 4,07d 6,21bc 5,50cd 5,00cd jumlah daun MS 5,14cd 5,43cd 7,50b 8,14a Jumlah akar 1/2MS 1,25abc 1,35a 1,30ab 1,27ab
MS 1,22bc 1,16c 1,30ab 1,22bc Keterangan : Angka-angka yang diikuti huruf yang sama pada setiap peubah tidak berbeda nyata
pada taraf 5% DMRT.
Tabel 4.4 Interaksi antara konsentrasi media MS dan sukrosa terhadap tinggi
tunas pamelo „Adas Duku‟ selama periode konservasi BSK Konsentrasi media MS Konsentrasi sukrosa (%) 0 1 2 3 2 1/2MS 0.66b 0.49b 0.65b 0.71b MS 0.47b 0.61b 0.66b 0.96a 3 1/2MS 0.78 bc 0.91b 0.83bc 0.96b MS 0.64c 0.82bc 0.91b 1.29a 5 1/2MS 0.94bc 1.04bc 1.07bc 1.14bc MS 0.87c 1.31b 1.30b 2.09a 6 1/2MS 0.98c 1.05bc 1.13bc 1.14bc MS 0.92c 1.55b 1.49b 2.49a 7 1/2MS 0.99c 1.06c 1.18bc 1.26bc MS 0.96c 1.87b 1.74bc 2.89a
Keterangan : Angka-angka yang diikuti huruf yang sama pada setiap BSK tidak berbeda nyata pada taraf 5% DMRT. BSK = bulan setelah kultur
Lampiran 5. Hasil uji pada konservasi dengan osmotikum dan retardan
Tabel 5.1 Rekapitulasi hasil sidik ragam peubah konservasi dengan osmotikum dan retardan Peubah Macam Eksplan Macam Media Eksplan x Media Penambahan jumlah daun 5,96** 1,87** 0,42** Pemanjangan tunas 1,65** 0,09** 0,09**
Panjang akar 1,53** 2,14** 0,59*
Jumlah akar 0,15* 0,22** 0,13**
Keterangan : ** = sangat nyata, * = nyata
Tabel 5.2 Rekapitulasi uji DMRT konservasi dengan osmotikum dan retardan Peubah yang diamati Macam Eksplan Macam Media Sukrosa 3% Sorbitol 2% Paklo 0ppm Paklo 7,5 ppm Paklo 15 ppm Paklo 0 ppm Paklo 7,5 ppm Paklo 15 ppm Penambahan jumlah daun
Pucuk 10,50a 7,83ab 6,50bc 4,67bcd 5,17bc 4,67bcd Tunas 6,50bc 6,00bc 2,50de 4,00cd 1,00ef 0,00f Pemanjangan
batang
Pucuk 2,60a 2,30a 2,20a 1,80a 1,70a 2,00a Tunas 1,72ab 1,33bc 0,43e 0,93cd 0,60de 0,23e Panjang akar Pucuk 4,97b 2,33bcd 2,45bcd 0,58d 0,50d 1,50cd
Tunas 11,83a 1,82bcd 2,45bcd 3,83 bc 2,25bcd 1,00d Jumlah akar Pucuk 2,8a 1,3b 1,2bc 0,2d 0,7bcd 1,0bc Tunas 1,0bc 0,8bcd 1,0bc 0,7bcd 0,8bc 0,5cd Keterangan : Angka-angka yang diikuti huruf yang sama pada setiap peubah tidak berbeda nyata
pada taraf 5% DMRT.