B1J009034 16.

(1)

Lampiran 1. Spesifikasi Peralatan dan Bahan

No. Nama Alat Merek/Tipe Kegunaan Tempat

1 Laminar air flow AirClean 5000 Tempat kerja aseptis

Sterilisasi alat dan bahan

3 Inkubator Memmert Inkubasi kultur

bakteri

Lab.

Mikrobiologi 4 Shaker incubator Lab

Companion

Inkubasi inokulum sambil

larutan dan media

Lab. 6 Microcentrifuge Eppendorf Memisahkan kultur

dengan supernatan

kepadatan optik sel

Lab.

Mikrobiologi 8 Mikropipet dan tip Transferpette

& Eppendorf

Memindahkan larutan atau cairan

Lab.

Membiakkan kultur bakteri

Tempat membuat media

Lab.

Mikrobiologi & Lab. Eko-Fisiologi LIPI 11 Chlorophyll meter SPAD-502Plus Mengukur kadar

klorofil daun 13 Orbital Shaker Orbital Genie Inkubasi media

atau perlakuan sambil digojlog

(2)

42 14 High Performance

Liquid

Chromatography

Shimadzu Analisis kandungan IAA

Lab. Biokimia LIPI

15 Vortex Heidolf Menghomogenkan

larutan

Lab. Eko-Fisiologi LIPI 16 Rotary Evaporator Eyela Menguapkan

pelarut

Lab. Eko-Fisiologi LIPI

17 Oven Ecocell Mengeringkan

sampel tanaman

Lab. Eko-Fisiologi LIPI 18 Tabung gelas ukuran

3x20 cm

Iwaki Pyrex Tempat perlakuan penanaman jagung

Lab. Eko-Fisiologi LIPI 19 Tabung reaksi Iwaki Pyrex Mengkultur bakteri Lab.

Mikrobiologi 21 Milipore 0,22 mikron Corning Sterilisasi bahan

tidak tahan panas

Lab. Eko-Fisiologi LIPI 22 Syringe Terumo Alat bantu milipore Lab.

Mikrobiologi 23 Timbangan analitik Ohaus tipe EO

2140

Menimbang bahan pembuatan media

25 Tabung Eppendorf Eppendorf Wadah untuk

sentrifus

Mengukur akuades Lab.

Mikrobiologi & Lab. Eko-Fisiologi LIPI 28 Beaker glass Iwaki Pyrex,

Herma

Menampung media Lab.

Mikrobiologi & Lab. Eko-Fisiologi LIPI

29 Pembakar spiritus - Menciptakan

kondisi aseptis

Lab.

Mikrobiologi

30 Plastik wrapper ClingWrap Merekatkan tepi

cawan dan tabung

Lab.

Mikrobiologi & Lab. Eko-Fisiologi LIPI 31 Aluminium foil KlinPak Sebagai tutup

wadah

Lab.

(3)

43 36 Camera digital Olympus Dokumentasi

kegiatan

Lab.

Mikrobiologi

No. Nama Bahan Spesifikasi Kegunaan

1 Koleksi kultur

Azospirillum spp.

- Isolat uji dan objek penelitian

2 Koleksi fungi patogen (R.solani, F.oxysporum,

Cercospora sp., &

Aspergillus sp.)

- Isolat uji antagonisme

3 Pasir Besi - Medium pertumbuhan jagung

4 Biji jagung Manis Hibrida

F1

Objek penelitian

5 Medium selektif Caceres Racikan Subkultur isolat Azospirillum

6 Medium Pikovskaya Racikan Medium pelarut fosfat

7 Medium Chrome azurol sulfate

Racikan Medium produksi siderofor

8 Medium Dworkin-Foster Medium uji ACC Deaminase

9 Medium Iron Free

Succinate

Medium uji estimasi siderofor

10 Medium Nutrient agar OXOID Medium untuk subkultur isolat 11 Medium Nutrient broth OXOID-Half

strength

Medium untuk subkultur isolat

12 Medium Potato Dextrose Agar

OXOID, DIFCO

Medium uji antagonisme

13 Larutan Hoagland Half strength Larutan fisiologis

14 Reagen Salkowski Racikan Reagen deteksi IAA

15 Reagen Chloromolybdic Acid

Racikan Reagen estimasi fosfat anorganik terlarut

16 Reagen Chlorostannous Acid

Racikan

17 Substrat L-triptofan 10.000 ppm Prekursor IAA

18 Substrat ACC 0,5 M Prekursor uji ACC Deaminase

19 Etil Asetat - Pelarut ekstraksi IAA

20 Methanol HPLC - Fase Gerak IAA

21 Ethanol Absolut - Membilas esktrak kering IAA

22 Asam Asetat Glasial 1 % Fase Gerak IAA

23 NaOCl 5,5% Sterilisasi permukaan jagung

24 Alkohol 70% Desinfeksi meja kerja dan

(4)

44

Sterilisasi permukaan jagung

25 HCl 1 N Melarutkan triptofan dan atur pH

medium

26 NaOH 2 N Menaikkan pH media

27 Akuades - Melarutkan bahan dan media

28 Spiritus - Bahan pembakar

(5)

45

Lampiran 2. Komposisi dan Pembuatan Medium Pertumbuhan A. Medium Nutrient Agar/Nutrient Broth

Komposisi :

Beef Extract 3 g

Peptone 5 g

Agar 15 g

Akuades 1000 ml

pH medium 7,0 ± 0,2

Cara Pembuatan :

Larutkan semua bahan dalam akuades, untuk medium Nutrient Agar ditambahkan dengan agar sebagai pemadat, atur pH medium hingga sesuai lalu dimasukkan dalam labu Erlenmeyer/botol Schott. Sterilisasi dengan autoklaf pada suhu 121oC, 2 atm selama 20 menit. Untuk membuat medium Nutrient Broth 50%, komposisi yang dibutuhkan untuk 1000 ml medium adalah 1,5 g Beef Extract dan 2,5 g Peptone.

B. Medium Caceres (medium selektif Azospirillum spp.) Komposisi :

K2HPO4 0,5 g

MgSO4.7H2O 0,2 g

NaCl 0,1 g

Yeast Extract 0,5 g

FeCl3.6H2O 0,015 g

DL-Malic Acid 5 g

KOH 4,8 g

Congo Red 0,25% 15 ml

Agar 20 g

Akuades 1000 ml

Larutkan seluruh bahan ke dalam akuades kemudian ditambahkan dengan Congo Red Solution 0,25%, aduk hingga merata. atur pH medium hingga sesuai menggunakan NaOH/HCl lalu dimasukkan dalam labu Erlenmeyer/botol Schott. Sterilisasi dengan autoklaf pada suhu 121oC, 2 atm selama 20 menit.

(6)

46

C. Medium Pikovskaya (medium selektif Mikroorganisme Pelarut Fosfat) Komposisi :

Glukosa 10 g

Ca3(PO4)2 5 g

(NH4)2SO4 0,5 g

NaCl 0,2 g

MgSO4.7H2O 0,1 g

KCl 0,2 g

Yeast Extract 0,5 g

MnSO4 0,001 g

FeSO4.7H2O 0,001 g

Agar 22 g

Akuades 1000 ml

Larutkan seluruh bahan ke dalam akuades kemudian ditambahkan dengan Ca3(PO4)2, aduk hingga merata. atur pH medium hingga sesuai menggunakan NaOH/HCl lalu dimasukkan dalam labu Erlenmeyer/botol Schott. Sterilisasi dengan autoklaf pada suhu 121oC, 2 atm selama 20 menit.

D. Medium Potato Dextrose Agar

Komposisi :

Potato Extract 4 g

Dextrose 20 g

Agar 20 g

Larutkan seluruh bahan ke dalam akuades aduk hingga merata. atur pH medium hingga sesuai menggunakan NaOH/HCl lalu dimasukkan dalam labu Erlenmeyer/botol Schott. Sterilisasi dengan autoklaf pada suhu 121oC, 2 atm selama 20 menit.

E. Medium Dworkin-Foster Salt

Komposisi :

Macroelement

KH2PO4 4 g

Na2HPO4 6 g

MgSO4.7H2O 0,2 g

(7)

47

Glukosa 2 g

Gluconic Acid 2 g

Citric Acid 2 g

Akuades 1000 ml

Microelement Solution Stock I (larutkan dalam 10 ml akuades) FeSO4.7H2O 100 mg

Akuades 10 ml

Microelement Solution Stock II (larutkan dalam 100 ml akuades)

H3BO3 10 mg

MnSO4.H2O 11,19 mg

ZnSO4.7H2O 124,6 mg CuSO4.5H2O 78,22 mg

MoO3 10 mg

Larutkan seluruh bahan macroelement secara berurutan (penambahan bahan hanya boleh dilakukan setelah bahan sebelumnya larut sempurna). Setelah seluruh bahan macroelement larut, tambahkan dengan masing-masing 0,1 ml microelement solution stock I dan II dalam akuades berisi macroelement tersebut. Atur ph hingga 6,8 ± 0,2 dengan NaOH/HCl. Sterilisasi dengan autoklaf pada suhu 121oC, 2 atm selama 20 menit.

F. Medium Chrome Azurol Sulfate (medium selektif penghasil Siderofor)

 Blue Dye :

Solution I

Larutkan 0,06 g Chrome Azurol S (Sigma-Aldrich) dalam 50 ml akuabides

Solution II

Larutkan 0,0027 g FeCL3.6H2O dalam 10 ml HCl 10 mM

Solution III

Larutkan 0,073 g HDTMA dalam 40 ml akuabides

Tambahkan 9 ml Solution II ke dalam Solution I, aduk hingga homogen. Secara perlahan masukkan Solution III sambil diaduk perlahan dan terbentuk larutan berwarna biru. Tuang pada wadah yang telah dideferasi dengan 6 M HCl, sterilisasi dengan autoklaf selama 20 menit pada suhu 121oC, 2 atm.

 Mixture Solution :

Minimal Media 9 Salt Solution Stock

Larutkan 15 g KH2PO4, 25 g NaCl , dan 50 g NH4Cl dalam 500 ml Akuabides.

Glucose Stock

Larutkan 20 g Glukosa ke dalam 100 ml akuabides. Sterilisasi menggunakan milipore 0,2 µm, letakkan pada botol steril.

(8)

48

Casamino Acid Solution

Larutkan 5 g Casamino Acid dalam 45 ml akuabides kemudian diekstrak dengan 3%

8-hydroxyquinoline dalam Chloroform (v/v). Ekstrak air yang didapat kemudian disterilisasi menggunakan milipore 0,2 µm, letakkan pada botol steril.

Pembuatan CAS Agar

Larutkan 100 ml MM9 Salt pada 750 ml akaubides. Tambahkan 32,24 g PIPES secara perlahan sambil diaduk menggunakan magnetic stirrer, tambahkan sedikit demi sedikit NaOH hingga PIPES larut sempurna atau hingga pH medium mencapai 6,8 kemudian ditambahkan 15 g Bacto Agar dan disterilisasi dengan autoklaf selama 20 menit. Setelah steril, biarkan hingga suhu turun (±50-60oC) lalu ditambahkan dengan 30 ml Casamino Acid Solution dan 10 ml Glucose Stock kemudian secara perlahan tambahkan 100 ml Blue Dye melalui tepi wadah sambil dihomogenkan menggunakan magnetic stirrer. Setelah homogen, medium dituang ke dalam cawan Petri steril.

G. Medium Succinate Iron Free

Komposisi :

K2HPO4 6 g

KH2PO4 3 g

MgSO4.7H2O 0,2 g

(NH4)2SO4 1 g

Succinic Acid 4 g pH medium 7,0 ± 0,2

Larutkan seluruh bahan ke dalam akuades aduk hingga merata. atur pH medium hingga sesuai menggunakan NaOH/HCl lalu dimasukkan dalam labu Erlenmeyer/botol Schott. Sterilisasi dengan autoklaf pada suhu 121oC, 2 atm selama 20 menit.

H. Medium Fisiologis Hoagland

Komposisi :

Macroelement

CaNO3.4H2O 1,181 g

KNO3 0,506 g

MgSO4.7H2O 0,493 g

KH2PO4 0,136 g

Fe-EDTA solution 0,1 ml (0,03 g dalam 10 ml akuades)

Akuades 900 ml

Microelement Stock Solution (larutkan dalam 100 ml akuades)

H3BO3 0,286 g

MnSO4.7H2O 0,181 g

(9)

49 ZnSO4.7H2O 0,022 g

CuSO4.5H2O 0,008 g

H2MoO4.H2O 0,002 g

Larutkan seluruh bahan macroelement secara berurutan (penambahan bahan hanya boleh dilakukan setelah bahan sebelumnya larut sempurna). Setelah seluruh bahan macroelement larut, tambahkan dengan masing-masing 10 ml microelement stock solution dan 0,1 ml Fe-EDTA solution. Sterilisasi dengan autoklaf pada suhu 121oC, 2 atm selama 20 menit.

(10)

50

Lampiran 3. Komposisi dan Pembuatan Reagent serta Prekursor Medium A. Reagen Salkowski

Solution A

Sebanyak 100 ml HClO4 35% ditambahkan dengan 100 ml akuades lalu dihomogenkan

Solution B

Sebanyak 1,35 g FeCl3.6H2O dilarutkan dalam 10 ml akuades (0,5 M FeCl3.6H2O).

Sebanyak 4 ml solution B dimasukkan ke dalam 200 ml solution A sambil dihomogenkan. Setelah homogen, reagen kemudian disimpan pada wadah gelap.

B. Reagen Chloromolybdic Acid

Sebanyak 15 g Ammonium Molybdate dilarutkan ke dalam 400 ml akuades hangat, aduk menggunakan magnetic stirrer. Setelah larut, sebanyak 342 ml 12 N HCl ditambahkan sambil diaduk perlahan menggunakan magnetic stirrer. Larutan kemudian didinginkan dan ditambahkan dengan akuades hingga 1000 ml. Reagen disimpan pada botol gelap.

C. Reagen Chlorostannous Acid

Sebanyak 2,5 g SnCl2.2H2O dilarutkan ke dalam 10 ml HCl pekat sambil dipanaskan di labu takar hingga larutan berwarna jernih kemudiang dinginkan. Setelah dingin, larutan ditambahkan dengan akuabides hingga volume mencapai 100 ml. Reagen disimpan pada botol gelas.

D. Substrat L-Tryptophan (prekursor IAA)

Sebanyak 200 mg L-Tryptophan (Merck) dilarutkan dalam 6 ml HCl 1 N. Setelah larut sempurna, tambahkan dengan 4 ml akuades kemudian diaduk hingga merata. Sebanyak 3 ml NaOH 2 N kemudian ditambahkan dan larutan diaduk hingga tercampur rata. Atur ph menjadi 7,0, kemudian ditambahkan dengan akuades hingga volume mencapai 20 ml. Sterilisasi menggunakan milipore 0,2 µm, letakkan pada botol steril dan disimpan pada kulkas.

E. Substrat 1-Aminocyclopropane 1-Carboxylic Acid (prekursor ACC Deaminase)

Sebanyak 100 mg 1-Aminocyclopropane 1-Carboxylic Acid (Sigma-Aldrich) dilarutkan dalam 1,987 ml akuades untuk membuat konsentrasi sebanyak 0,5 M ACC. milipore 0,2 µm, letakkan pada botol steril dan disimpan pada suhu -20oC.

(11)

51

Lampiran 4. Kurva Standar IAA (Kolorimetri dan HPLC) A. Kurva Standar IAA (Kolorimetri)

Sebanyak 0,001 g Indole 3-Acetic Acid dilarutkan dalam 10 ml Methanol sehingga didapatkan larutan stok 100 mg/L IAA. Seri pengenceran dibuat larutan induk dengan cara melarutkan stok ke dalam medium Nutrient Broth 50% (v/v) dengan ketentuan seperti berikut

mg/L 0 2 4 6 8 10 12 14 16 18 20 22

IAA (ml) 0 0,1 0,2 0,3 0,4 0,5 0,6 0,7 0,8 0,9 1 1,1

NB 50% (ml)

5 4,9 4,8 4,7 4,6 4,5 4,4 4,3 4,2 4,1 4 3,9

Sebanyak 0,5 ml larutan induk dipindahkan ke tabung reaksi kosong kemudian ditambahkan dengan reagen Salkowski sebanyak 1 ml kemudian divortex dan inkubasi pada ruang gelap selama 30 menit. Tiap seri pengenceran dibuat pengulangan dua kali (duplo). Setelah inkubasi, nilai absorbansi diukur pada spektrofotometer dengan panjang gelombang 530 nm. Data nilai absorbansi dibuat regresi linier untuk mendapatkan persamaan kurva standar IAA.

B. Kurva Standar IAA HPLC (High Performance Liquid Chromatography)

Sebanyak 0,01 g Indole 3-Acetic Acid dilarutkan dalam 10 ml Methanol sehingga didapatkan larutan stok 1000 mg/L IAA. Seri pengenceran dibuat larutan induk dengan cara melarutkan stok ke dalam medium Methanol (v/v) dengan ketentuan seperti berikut

mg/L 0 10 20 30 40 50 60 70 80 90 100

IAA (ml) 0 0,05 0,1 0,15 0,2 0,25 0,3 0,35 0,4 0,45 0,5

Methanol (ml) 5 4,95 4,9 4,85 4,8 4,75 4,7 4,65 4,6 4,55 4,5

Tiap seri pengenceran kemudian diambil sebanyak ±1 ml kemudian disaring menggunakan milipore PTFE 0,22 µm untuk menghilangkan kotoran. Sampel kemudian diinjeksi pada alat HPLC dan tunggu hingga terbentuk peak chromatogram dan catat luas areanya. Regresi linier dibuat berdasarkan luas area yang terbentuk.

(12)

52

 Hasil pengukuran absorbansi Kurva Standar IAA (Kolorimetri)

mg/L abs1 abs2 Rataan

 Regresi Linier Kurva Standar IAA (Kolorimetri)

Berdasarkan regresi linier kurva standar IAA didapatkan persamaan :

y = 0,0197x – 0,021 Cara Perhitungan :

Abs. Sampel A = 0,567, berapa konsentrasi IAA ? y = 0,0197x - 0,021 ↔ 0,0197x = y + 0,021

0,0197x = 0,567 + 0,021 0,0197x = 0,588

x = 0,588/0,0197 x = 29,848

Jadi, konsentrasi IAA pada sampel A adalah 29,848 mg/L.

y = 0,0197x - 0,021

Konsentrasi IAA (mg/l)

Kurva Standar IAA

Series1

Linear (Series1)

(13)

53

 Hasil Pengukuran Luas Area Peak Chromatogram Standar IAA (HPLC)

mg/L Luas Peak Area

0 0

10 98409

20 248347

30 411483

40 498110

60 793498

80 1049086

90 1213242

100 1397929

 Regresi Linier Kurva Standar IAA (HPLC)

Berdasarkan regresi linier kurva standar IAA didapatkan persamaan :

y = 13825x - 26048 Cara Perhitungan :

Luas Peak Area Sampel A = 42420, berapa konsentrasi IAA ? y = 13825x - 26048 ↔ 13825x = y + 26048

13825x = 42420 + 26048 13825x = 68468

x = 68468/13825 x = 4,952

y = 13825x - 26048 R² = 0,9975

-500000 0 500000 1000000 1500000

0 20 40 60 80 100 120

A

xi

s

Ti

tle

Axis Title

Standar IAA-HPLC

Series1

Linear (Series1)

(14)

54

Lampiran 5. Pengukuran IAA isolat Azospirillum spp. asal lahan pasir besi dengan metode Kolorimetri

Kode Isolat

Jam Pengamatan

0 jam 24 jam 48 jam

Rataan Abs

Kons. IAA (mg.L-1)

Rataan Abs

Kons.IAA (mg.L-1)

Rataan Abs.

Kons.IAA (mg.L-1)

HR154 0,0715 4,695 0,083 5,279 0,937 48,629

KR33 0,0804 5,147 0,818 42,589 0,7 36,599

HR92 0,0914 5,706 1,47275 75,825 1,89025 97,018

HR124 0,1051 6,401 0,36775 19,734 0,53075 28,008

HR141 0,0968 5,980 1,09625 56,713 0,952 49,391

HR152 0,1073 6,513 1,015 52,589 0,8515 44,289

Keterangan : Abs = Absorbansi; Kons = Konsentrasi

Cara Perhitungan :

Abs. Sampel A = 0,567, berapa konsentrasi IAA ? y = 0,0197x - 0,021 ↔ 0,0197x = y + 0,021

0,0197x = 0,567 + 0,021 0,0197x = 0,588

x = 0,588/0,0197 x = 29,848

(15)

55

Lampiran 6. Pengukuran IAA isolat Azospirillum spp. asal lahan pasir besi dengan metode HPLC

Kode Isolat

Jam pengamatan

24 jam 48 jam

Luas Peak Area Jumlah IAA (mg.L-1)

HR154 36649 4,535045 72680 7,141266

KR33 57444 6,039204 42420 4,952477

HR92 407168 31,3357 584574 44,16796

HR124 173539 14,43667 239456 19,20463

HR141 114991 10,20174 112839 10,04608

HR152 47414 5,313707 112446 10,01765

Cara Perhitungan :

Luas Peak Area Sampel A = 42420, berapa konsentrasi IAA ? y = 13825x - 26048 ↔ 13825x = y + 26048

13825x = 42420 + 26048 13825x = 68468

x = 68468/13825 x = 4,952

(16)

56

Lampiran 7. Kurva Standar Fosfat Anorganik Terlarut (KH2PO4)

Sebanyak 0,2199 g KH2PO4 dikeringkan pada oven bersuhu 60oC selama satu jam kemudian didinginkan di dalam dessicator hingga bobot konstan lalu dilarutkan dalam 500 ml akuades sehingga didapatkan larutan induk fosfat 100 mg/L. Larutan induk kemudian dibuat seri pengenceran dengan cara memasukkan sejumlah variasi volume larutan induk ke dalam labu takar 50 ml sehingga didapatkan konsentrasi seri pengenceran seperti berikut

mg/L 0 5 10 15 20 30 35 40 45

Volume Lar.Induk 0 2,5 5 7,5 10 15 17,5 20 22,5

Larutan induk yang telah dimasukkan dalam labu takar kemudian ditambahkan dengan 10 ml reagen Chloromolybdic Acid kemudian dikocok hingga homogen. Setelah homogen kemudian ditambahkan dengan 100 µl reagen Chlorostannous Acid dan dikocok hingga tercampur rata lalu ditambahkan akuades hingga 50 ml. Larutan akan berubah warna menjadi biru dan tunggu hingga 10 menit kemudian diukur absorbansinya dengan spektrofotometer pada panjang gelombang 600 nm. Data absorbansi kemudian dibuat analisis regresi liniernya sehingga didapatkan persamaan kurva standar fosfat.

(17)

57

 Hasil pengukuran nilai absorbansi kurva standar Fosfat Anorganik Terlarut mg/L Abs1 Abs2 Rataan

 Regresi Linier Kurva Standar Fosfat Anorganik Terlarut (Spektrofotometri)

Berdasarkan regresi linier kurva standar fosfat anorganik terlarut didapatkan persamaan :

y = 0,005x + 0,0109 Cara Perhitungan :

Abs. Sampel A = 0,425, berapa konsentrasi fosfat anorganik terlarut dengan faktor pengenceran 50x ?

y = 0,005x + 0,0109 ↔ 0,005x = y - 0,0109

Jadi, konsentrasi fosfat anorganik terlarut pada sampel A adalah 4060 mg/L. y = 0,005x + 0,0109

Konsentrasi Fosfat (mg/L)

Standar Fosfat Anorganik Terlarut

Series1

Linear (Series1)

(18)

58

Lampiran 8. Analisis Perkecambahan Biji

Perlakuan

Ulangan

Rataan Deviasi

1 2 3

KONTROL 70 80 90 80 10

HR154 90 60 60 70 17,32051

KR33 80 60 30 56,66667 25,16611

HR92 100 80 80 86,66667 11,54701

HR141 100 100 100 100 0

HR124 80 60 50 63,33333 15,27525

HR152 80 90 80 83,33333 5,773503

ANOVA : Faktor Tunggal

Groups Count Sum Average Variance

KONTROL ₃ ₂₄₀ ₈₀ ₁₀₀

HR154 ₃ ₂₁₀ ₇₀ ₃₀₀

KR33 ₃ _{170 56,66667} _633,3333

HR92 ₃ _{260 86,66667} _133,3333

HR141 ₃ ₃₀₀ ₁₀₀ ₀

HR124 ₃ _{190 63,33333} _233,3333

HR152 ₃ _{250 83,33333} _33,33333

Sumber Variasi JK DB KT Fhitung F tabel

Perlakuan 3961,9048 6 660,3175 3,224806** 2,847726

Galat 2866,6667 14 204,7619

Total 6828,5714 20

UJI BEDA NYATA TERKECIL

Tabel Korelasi

KONTROL HR154 KR33 HR92 HR141 HR124 HR152

KONTROL 1

HR154 10 1

KR33 23,33333 13,33333 1

HR92 6,666667 16,66667 30 1

HR141 20 30 43,33333 13,33333 1

HR124 16,66667 6,666667 6,666667 23,33333 36,66667 1

(19)

59

Lampiran 9. Analisis Seedling Bioassay (15 hari setelah tanam) A. Tinggi Tanaman

Perlakuan Ulangan Rataan Deviasi

1 2 3

KONTROL 8,7 7,3 6,2 7,400 1,253

HR154 6,8 9,8 10,5 9,033 1,966

KR33 8,5 8,3 9,8 8,867 0,814

HR92 7,2 8,4 4,6 6,733 1,943

HR141 9,5 9,1 8,9 9,167 0,306

HR124 8,7 9,5 7,8 8,667 0,850

HR152 7,6 8,2 8,4 8,067 0,416

ANOVA : Faktor Tunggal

Perlakuan Jumlah Jumlah Rataan Variansi

KONTROL ₃ _22,2 _7,4 _1,57

HR154 ₃ _{27,1 9,033333 3,863333}

KR33 ₃ _{26,6 8,866667 0,663333}

HR92 ₃ _{20,2 6,733333 3,773333}

HR141 ₃ _{27,5 9,166667 0,093333}

HR124 ₃ _{26 8,666667 0,723333}

HR152 ₃ _{24,2 8,066667 0,173333}

ANOVA

Perlakuan 15,1781 6 2,529683 1,63055ns 2,847726

Galat 21,72 14 1,551429

Total 36,8981 20

(20)

60

B. Panjang Akar

Perlakuan

Ulangan

1 2 3

KONTROL 6,3 3,4 2,3 4 2,0663978

HR154 3,8 5,5 6,5 5,266667 1,3650397

KR33 4,9 5,2 5,6 5,233333 0,3511885

HR92 5,2 7,2 3,8 5,4 1,7088007

HR141 8,8 5,2 4,8 6,266667 2,2030282

HR124 10,4 6,7 7,4 8,166667 1,9655364

HR152 5,6 5,4 5,2 5,4 0,2

KONTROL ₃ ₁₂ ₄ _4,27

HR154 ₃ _15,8 _5,266667 _1,863333

KR33 ₃ _15,7 _5,233333 _0,123333

HR92 ₃ _16,2 _5,4 _2,92

HR141 ₃ _18,8 _6,266667 _4,853333

HR124 ₃ _24,5 _8,166667 _3,863333

HR152 ₃ _16,2 _5,4 _0,04

Perlakuan 29,63143 6 4,938571 1,927695ns 2,847726

Galat 35,86667 14 2,561905

Total 65,4981 20

(21)

61

C. Bobot Basah Tanaman

Perlakuan Ulangan Rataan Deviasi

1 2 3

KONTROL 0,23 0,36 0,31 0,300 0,066

HR154 0,62 0,59 0,6 0,603 0,015

KR33 0,42 0,28 0,52 0,407 0,121

HR92 0,36 0,38 0,41 0,383 0,025

HR141 0,45 0,4 0,42 0,423 0,025

HR124 0,52 0,46 0,48 0,487 0,031

HR152 0,36 0,37 0,29 0,340 0,044

KONTROL 3 0,9 0,3 0,0043

HR154 3 1,81 0,603333 0,000233

KR33 3 1,22 0,406667 0,014533

HR92 3 1,15 0,383333 0,000633

HR141 3 1,27 0,423333 0,000633

HR124 3 1,46 0,486667 0,000933

HR152 3 1,02 0,34 0,0019

Perlakuan 0,181162 6 0,030194 9,123261** 2,847726

Galat 0,046333 14 0,00331

Total 0,227495 20

UJI BEDA NYATA TERKECIL

Tabel Korelasi

KONTROL HR154 KR33 HR92 HR141 HR124 HR152

KONTROL 1

HR154 0,303333 1

KR33 0,106667 0,196667 1

HR92 0,083333 0,22 0,023333 1

HR141 0,123333 0,18 0,016667 0,04 1

HR124 0,186667 0,116667 0,08 0,103333 0,063333 1

HR152 0,04 0,263333 0,066667 0,043333 0,083333 0,146667 1

(22)

62

D. Bobot Kering Tanaman

Perlakuan

Ulangan

1 2 3

KONTROL 0,04 0,06 0,05 0,050 0,010

HR154 0,07 0,06 0,06 0,063 0,006

KR33 0,05 0,03 0,05 0,043 0,012

HR92 0,03 0,04 0,04 0,037 0,006

HR141 0,04 0,05 0,05 0,047 0,006

HR124 0,06 0,06 0,06 0,060 0,000

HR152 0,04 0,05 0,04 0,043 0,006

KONTROL ₃ _0,15 _0,05 _1E-04

HR154 ₃ _0,19 _0,063333 _3,33E-05

KR33 ₃ _0,13 _0,043333 _0,000133

HR92 ₃ _0,11 _0,036667 _3,33E-05

HR141 ₃ _0,14 _0,046667 _3,33E-05

HR124 ₃ _0,18 _0,06 ₀

HR152 ₃ _0,13 _0,043333 _3,33E-05

Perlakuan 0,001648 6 0,000275 5,242424** 2,847726

Galat 0,000733 14 5,24E-05

Total 0,002381 20

UJI BEDA NYATA TERKECIL Tabel Korelasi

KONTROL HR154 KR33 HR92 HR141 HR124 HR152

KONTROL 1

HR154 0,076009 1

KR33 0,056009 0,056009 1

HR92 0,049342 0,049342 0,049342 1

HR141 0,059342 0,059342 0,059342 0,059342 1

HR124 0,072676 0,072676 0,072676 0,072676 0,072676 1

HR152 0,056009 0,056009 0,056009 0,056009 0,056009 0,016667 1

(23)

63

E. Kandungan Klorofil Daun

Perlakuan

Ulangan

1 2 3

KONTROL 27,3 24,2 31,4 27,633 3,612

HR154 26 19 30,8 25,267 5,934

KR33 23,9 26,5 28,5 26,300 2,307

HR92 22,2 28 27,4 25,867 3,190

HR141 29,1 19,6 22,5 23,733 4,869

HR124 23,9 26,8 28,9 26,533 2,511

HR152 22,3 22,7 20,2 21,733 1,343

KONTROL ₃ _82,9 _27,63333 _13,04333

HR154 ₃ _75,8 _25,26667 _35,21333

KR33 ₃ _78,9 _26,3 _5,32

HR92 ₃ _77,6 _25,86667 _10,17333

HR141 ₃ _71,2 _23,73333 _23,70333

HR124 ₃ _79,6 _26,53333 _6,303333

HR152 ₃ _65,2 _21,73333 _1,803333

ANOVA

Perlakuan 70,38952 6 11,73159 0,859367ns 2,847726

Galat 191,12 14 13,65143

Total 261,5095 20

(24)

Lampiran 10. Dokumentasi Penelitian

Gambar 1. Uji Kemampuan Pelarutan Fosfat

Gambar 2. Uji Kemampuan Produksi IAA

Gambar 3. Pengukuran Estimasi Siderofor Unit

Gambar 4. Uji Kemampuan ACC Deaminase

Gambar 5. Uji Antagonisme terhadap

F.oxysporum

Gambar 6. Uji Perkecambahan Biji Jagung setelah 7 hari inkubasi

Gambar 7. Tanaman jagung 15 hari setelah tanam