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530 化学と生物 Vol. 54, No. 8, 2016

酵母を用いたアルツハイマー病の病因研究

病気の原因となる毒性アミロイド( A β 42 )の生成抑制に成功

膜内切断プロテアーゼは,膜貫通タンパク質の膜内の 領域を切断し,ペプチド断片を膜から遊離させる.断片 は情報伝達分子として機能する一方で,さらに分解を受 けることからタンパクの代謝においても重要なメカニズ ムとなる.膜領域の切断機構は,RIP(Regulated In- tramembrane Proteolysis) と 略 称 さ れ,ア ル ツ ハ イ

マー病の発症メカニズムとの関連から詳しく研究され,

理解が進んできた.

アミロイド前駆体タンパク(APP)(図1A,中央)

は,家族性アルツハイマー病患者の脳内に蓄積するアミ ロイド

β

ペプチド(A

β

)の前駆体である(1).APPは

β

セ クレターゼによって細胞外領域を切断され,生じた断片

図1アミロイドβ生成経路と酵母γセクレターゼ 発現系

A)アミロイド前駆体タンパク(APP)の分解経路.

I型膜タンパクであるAPPは,3種類(αβγ)のセク レターゼによる2つの経路によって分解され,その うちの1つの経路でアミロイド(Aβ)を生成する.

B)酵母γセクレターゼ発現系.ヒトγセクレターゼ の4サブユニット(プレセニリン,ニカストリン,

Aph1, Pen2)と,基質(APPもしくはNotch)に転 写因子Gal4を融合した人工基質を酵母に導入した.

基質の切断によるAβの生成と,膜から遊離した Gal4による , , 遺伝子(Aβ生成レ ポーター)の転写活性化を模式的に示した.

日本農芸化学会

● 化学 と 生物 

今日の話題

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531

化学と生物 Vol. 54, No. 8, 2016

(C99)の膜貫通ドメインを,さらに,

γ

セクレターゼが 切断して,A

β

と細胞内ドメイン(AICD)が生成される

(図1A).

家族性アルツハイマー病の研究から,プレセニリン

(PS1, PS2)の変異が疾病の原因であることが報告され たのは,1995年のことである.その後,プレセニリン が

γ

セクレターゼのサブユニットであること,そして,

プレセニリンの膜貫通領域には活性中心のアスパラギン 酸(2つ)が存在するとの発見(2)は,当初驚きをもって 受け入れられた.現在では,

γ

セクレターゼ,シグナル ペプチドペプチダーゼ,site-2プロテアーゼ,ロンボイ ドからなる 膜内切断プロテアーゼファミリー の存在 が確認されている.これらはチャンネル状の立体構造を とり, 常識 では考えられなかった「疎水環境(膜内 領域)の加水分解」についても,理解が進んできてい る.

膜内切断プロテアーゼの中でも

γ

セクレターゼは4  つのサブユニットからなり(図1B),生化学的に研究  す る の は 難 し い.複 合 体 を 界 面 活 性 剤(た と え ば,

CHAPSOなど)で可溶化し,精製した

γ

セクレターゼと 基質ペプチド(C99Flagなど)を反応させることがすぐ に頭に浮かぶ.しかし,

γ

セクレターゼの活性は,界面 活性剤や脂質によって大きく影響を受けるために(3),精 製酵素の特異性が生体内での本来のものとは異なってし まう.

私たちは,出芽酵母( )をい

わば 生きた試験管 として,ヒト

γ

セクレターゼを発 現させ(図1B)研究を進めてきた(4〜8)

γ

セクレターゼ は,触媒サブユニットであるプレセニリン以外に3つの 膜タンパク(ニカストリン,Aph1, Pen2)が一分子ず つ集合した,全分子量が23万を超える巨大な膜タンパ ク複合体である(1).これら4つのサブユニットを酵母に

図2酵母γセクレターゼ発現系を用いた解析

A)酵母発現系を使った活性化変異体の同定.酵母の生育を指標に,家族性アルツハイマー病変異体の活性を回復させる2次変異を同定し た.プレートはG384Aに対する2次変異の生育結果.B)PS1/PS2遺伝子破壊MEF(マウス胚性繊維芽細胞)細胞にPS1変異体を導入し て解析したところ,2次変異体ではAβ42の生成量が落ちていることがわかった( <0.01 (**), もしくは <0.05 (*)).C)同定した変異体 のうち,G384Aの活性を回復した2種類の変異の位置をプレセニリンの予測構造(PDB No. 4HYG)内に示した.触媒中心を細胞質側から 見ている.中央で向かい合う2つのアスパラギン酸(球状モデル)が活性残基である.さらに,2次変異の箇所(S438, I287; L432, C158)FAD変異部位(G384)を示した.基質の通り道として予想されている第9膜貫通領域に重要な変異(S438P or L432M)が位置し,プレセ ニリンが活性化されると考えている.文献8を改変.

日本農芸化学会

● 化学 と 生物 

今日の話題

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532 化学と生物 Vol. 54, No. 8, 2016

導入し,

γ

セクレターゼを細胞内に再構成した(図1B). 次に,基質となるAPPまたはNotchを導入し,

γ

セクレ ターゼ活性を解析した.転写因子Gal4を融合した基質 を用いると,

γ

セクレターゼによる切断に伴い,転写因 子Gal4pが膜から遊離し,レポーター遺伝子( , 

,  など)の発現を誘導する.ヒスチジンとア デニンのない条件での生育に必要なタンパク質と,

β

ガ ラクトシダーゼ(LacZ)が誘導され,生育と酵素活性 測定によって

γ

セクレターゼ活性を評価することができ た(4)(図1B).

さらに,酵母のミクロソーム膜画分を用いてAPPの 分解を解析するとヒトの脳内と同じく,A

β

40, A

β

42,  A

β

43のアミロイドA

β

分子種(数字はアミノ酸残基数)

の生成が確認できた(5)(図1B).

酵母を用いる利点は,①酵母には対応するホモログ分 子がないので,導入した

γ

セクレターゼ以外はAPPを切 断できない,②タンパク質の高発現が期待でき,強力な 遺伝学的手法によって小胞輸送をはじめ細胞内のAPP やアミロイドタンパク質の細胞内の動態を容易に研究で きる,の2つに要約できる.

本研究では,家族性アルツハイマー病(FAD)で見 つかっているプレセニリン(PS1)変異を解析した(8). PS1のG384AとL166P(384番 目 の グ リ シ ン が ア ラ ニ ン,もしくは166番目のロイシンがプロリンに置換し た)変異体は,ヒト細胞を用いた解析で切断活性が落ち ることが知られているが,酵母でも変異により機能がな くなった(図2A).変異した

γ

セクレターゼは切断活性 が落ち,同時に,毒性の高いA

β

42やA

β

43を生成する ようになり,これが病気の原因となると考えられてい る.

さて,遺伝的な解析が簡単にできる酵母の特徴を生か して,PS1変異体の活性を回復させる2次変異(抑圧変 異)を探索した.PCR(error-prone法)によりランダ ムに変異を導入し,生育を指標に106個の酵母をスク リーニングしたところ,5種類(16個)の2次変異が FAD変異体の活性を回復させた(図2A).また,2次変 異を単独でもつPS1について活性を解析したところ,野 生型と比べて最大で2倍に活性が上昇しており,活性化 変異とも言えることが明らかとなった.

マウス細胞中で,これらの変異の活性を解析したとこ ろ,酵母と同じように活性を上げただけでなく,アルツ ハイマー病で蓄積するA

β

42の生成を抑制した(図2B).

これらの結果を理解していただくために,

γ

セクレ ターゼの活性について,もう少し説明を加えたい.

γ

セ クレターゼは,APPを切断して生じた長いA

β

(A

β

48 もしくはA

β

49)をトリミングして,A

β

46, A

β

45, A

β

43,  A

β

42, A

β

40, A

β

38, A

β

37のように,3残基(もしくは4 残基)ごとに短く分解する切断機構をもっている(9).家 族性アルツハイマー病変異体では,このトリミングの活 性が落ち,長いままのA

β

がたまると考えられる.本研 究で明らかにした2次変異はトリミング活性を上昇させ て,A

β

42やA

β

43の生成を抑えていたのである.

A

β

42の生成を減少させる効果をもつ化合物は

γ

セクレ ターゼモジュレーター(GSM)と呼ばれ,認知症治療 薬を目指して,世界中で研究されている(10).私たちの 成果は,見つかった重要な変異の位置情報(第9膜貫通 領域のS438PやL432M(図2C))が有用なのはもちろ  んのこと,酵母発現系がモジュレーターの開発にも有  効であることを示している.本研究はアルツハイマー  病治療薬の開発を支援する重要な成果をもたらしたもの として,2015年11月11日付けで,

(オンライン版)に掲載された.

研究の遂行にあたってたいへんお世話になった東京大 学大学院薬学研究科の富田泰輔教授,同総合文化研究科 の石浦章一教授,東北大学大学院農学研究科の五味勝也 教授,原田昌彦准教授,新谷尚弘准教授,東京大学と東 北大学の研究室メンバーの方々に深謝いたします.

  1)  B. De Strooper, T. Iwatsubo & M. S. Wolfe: 

2, a006304 (2012).

  2)  M. S. Wolfe, W. Xia, B. L. Ostaszewski, T. S. Diehl, W. T. 

Kimberly & D. J. Selkoe:  , 398, 513 (1999).

  3)  P. C. Fraering, W. Ye, J. M. Strub, G. Dolios, M. J. LaVoie,  B. L. Ostaszewski, A. Van Dorsselaer, R. Wang, D. J. Sel- koe & M. S. Wolfe:  , 43, 9774 (2004).

  4)  E.  Futai,  S.  Yagishita  &  S.  Ishiura:  , 19,  13013 (2009).

  5)  S.  Yagishita,  E.  Futai  &  S.  Ishiura: 

377, 141 (2008).

  6)  Y. Yonemura, E. Futai, S. Yagishita, S. Suo, T. Tomita, T. 

Iwatsubo & S. Ishiura:  , 286, 44569 (2011).

  7)  T.  Onodera,  E.  Futai,  E.  Kan,  N.  Abe,  T.  Uchida,  Y. 

Kamio & J. Kaneko:  , 157, 301 (2015).

  8)  E. Futai, S. Osawa, T. Cai, T. Fujisawa, S. Ishiura & T. 

Tomita:  , 291, 435 (2016).

  9)  M. Takami, Y. Nagashima, Y. Sano, S. Ishihara, M. Mori- shima-Kawashima, S. Funamoto & Y. Ihara:  ,  29, 13042 (2009).

10)  T. Tomita:  , 156, 195 (2014).

(二井勇人,東北大学大学院農学研究科)

日本農芸化学会

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533

化学と生物 Vol. 54, No. 8, 2016 プロフィール

二井 勇人(Eugene FUTAI)

<略歴>1996年東京大学農学部農芸化学 科卒業/2001年同大学大学院農学生命科 学研究科応用生命工学専攻博士課程修了/

同年同大学分子生物学研究所研究員/2002 年カリフォルニア大学バークレー校研究 員/2006年東京大学大学院総合文化研究 科助教/2010年東北大学農学研究科准教 授,現在に至る<研究テーマと抱負>膜内 切断プロテアーゼと小胞輸送の解析<趣 味>野鳥観察<所属研究室ホームページ>

http://www.agri.tohoku.ac.jp/enzyme- futai/HOME.html

Copyright © 2016 公益社団法人日本農芸化学会 DOI: 10.1271/kagakutoseibutsu.54.530

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