Adil E.H. 1996. Gambaran Konsentrasi Hormon Progesteron Menjelang dan Selama Kebuntingan pada Kambing Peranakan Etawah (PE) yang Diinduksi dengan Pregnant Mare,s Serum Gonadotropin (PMSG. [Tesis] Bogor. Sekolah Pascasarjana Institut Pertanian Bogor.
Agil M 2005. Reproductive Biology of the Sumatran Rhinoceros Dicerorhinus
sumatrensis FISCHER (1814). [Colloquium] Bogor. Sekolah Pascasarjana Institut Pertanian Bogor.
Alfuraiji M, T Atkinson, PJ Broadbent, JSM Hutchinson, 1993. Superovulation in cattle using PMSG followed by PMSG-monclonal antibodies. J. Anim. Reprod. Fert. 100 : 607-611.
[Anonim]1995. Artificial Insemination in Red Deer.AgFACT. No: 48.
[Anonim] 1996. Controlled Breeding and Reproductive Management.Eazi-Breed CIDR.Hamilton New Zealand.
[Anonim] 2004.Biologi of the white–tailed deer (Odocoileus virginanus).New Jersey Division og Fish and Wildlife. http:/www.state.nj. us/dep/fgw/deerbiol.htm (5 Juli 2005).
Argo CM, Loudon ASI. 1992. Effect of age an time of day on the timing of the surge in luteinizing hormone, behavioural oestrus and mating in red deer hind (Cervus elaphus). J. Reprod.Fert. 96:667-672.
Argo C McG, Jabbour HN, Goddard PJ, Webb R, Loudont ASI. 1994. Superovulation in red deer (Cervus elaphus) and Pere David’s deer (Elaphurus davidianus), and fertilization rates following artificial insemination with Pere David’s deer semen. J. Reprod. Fert. 100:629-636 Asher GW. 1985. Oestrous cycle and breeding season of farmed fallow deer,
Dama dama. J. Reprod.Fert., 78: 487–496.
Asher GW, Thompson JGE. 1989. Plasma Progesterone and LH concentrations during oestrous synchronization in female fallow deer (Dama dama). Anim. Reprod. Scl. 19:143-153
Asher GW, Kraemer DC, Magyar SJ, Brunner M, Moerbe R, Giaquinto M.1990. Intrauterine insemination of farmed fallow deer (Dama dama) with frozen thawed semen via laparoscopy. Theriogenology 34:569-577.
Asher GW, Fisher MW, Jabbour HN, Smith JF, Smith RC, Mulley RC, Morrow CJ, Veldhuizen FA and Langridge M. 1992. Relationship between the onset of oestrus the preovulatory surge in luteinizing horomone and ovulation following oestrus synchronization and superovulation of farmed red deer (Cervus elaphus). J. Rep. Fert: 96:261-273.
Asher GW, Fisher MW, Fennessy PF, Mackintosh CG, Jabbour HM, Morrow CJ. 1993. Oestrous synchronization, semen collection and artificial insemination of farmed red deer (Cervus elaphus) and fallow deer (Dama dama). Anim. Reprod. Sci. 33:241-265.
Asher GW, Berg DK and Evans G. 2000. Storage of semen and artificial insemination in deer. Anim.Reprod. Sci. 62:195-211.
Austine CR and Short RS. 1985. Reproduction in Mammals.Book 4.Reproductive Fitness. Cambridge University Press.Cambridge.133-175.
Badarina I. 1995. Rusa “satwa harapan” sumber protein hewani masa depan. Ruminansia No.4. Th. IX: 7 – 8.
Becker JB, Breadlove M, and Crews D. 1992. Behavioral Endocrinology. The Mit Press Cambridge, Masschusetts.
Bianchi M, Lebal S, Hurlin JC, Humblot P, Chardonnet P and Thirbier M. 1994. Oestrous cycle pattern of deer (Cervus timorensis russa) hinds in New Caledonia. Recent Developments in Deer Biology.Proceeding of the Third International Congress of the Biology of Deer. pp 165.
Der Zon APM. 1979. Mammals of Indonesia. FAO. Bogor. pp: 130 - 132.
Djuwita I. Boediono A.Mohamad K. 2000.Embriologi. [Bhan Kuliah] Bogor. Sekolah Pascasarjana Institut Pertanian Bogor. Laboratorium Embriologi Bagian Anatomi Fakultas Kedokteran Hewan Institut Pertanian Bogor. Dradjat AS. 1994. Pengembangan Teknik Perkembangbiakan Buatan Pada Rusa
Tropik. Department of Animal Health, The University of Sydney, PMB3 Camden 2570 Australia.
Drajat AS. 1997. Artificial breeding and reproductive management in chital deer. PhD Thesis, University of Sydney.
Dradjat AS. 2000. Penerapan teknologi inseminasi buatan, embrio transfer dan fertilisasi in vitro pada rusa Indonesia.Laporan Riset Unggulan Terpadu V Bidang Teknologi Perlindungan Lingkungan.92-111.
Fathan S. 2006. Respons Estrus Hasil Sinkronisasi Menggunakan Hormon Progesteron dan Kombinasinya dengan PMSG pada Rusa Timor (Cervus timorensis). [Tesis] Bogor. Sekolah Pascasarjana Institut Pertanian Bogor.
Fennessy PF, Suttie JM and Fisher MW. 1985. Antler growth: Nutritional and endocrine factors. In: Biology of Deer Production. Edit: PF Fennessy and KR Drew.Bulletin. 22:239-250.
Feradis. 1999. Penggunaan Antioksidan Dalam Pengencer Semen Beku Dan Metode Sinkronisasi Estrus Pada Program Inseminasi Buatan Domba St. Croix. [Disertasi] Bogor. Sekolah Pascasarjana Institut Pertanian Bogor. Frandson RD. 1992. Anatomi dan Fisilogi Ternak.(terjemahan) Edisi ke-4. Gadjah
Mada University Press.Yogyakarta.
Garrott RA, Monfort SL, White PJ, Mashburn KL, Cook JG. 1998. One-sample pregnancy diagnosis in elk using fecal steroid metabolites. J Wildl Dis. 1998 Jan;34(1):126-31.Links. Biology Department, Montana State University Bozeman 59717, USA.
Geisert R. 2005. Deer Male Reproductive Anatomy, Learning Reproduction in
Farm Animals Visual study Aids
Http://www.ansi.okstate.edu/course/3443/study/antomymale/stag/index. Htm [2 Februari 2005]
Gordon I. 1999. Controlled Reproduction in Sheep and Goat. Emeritus Professor of Animal Husbandry University College Dublin Ireland. 96–102.
Hafez ESE. 1993. Reproduction in Farm Animals 6th Ed Lippincott Williams and Wilkins.
Haigh JC and Hudson RJ. 1993. Farming Wapiti and Red Deer in North America Mosby Year Book. Misouri.
Hamasaki S, Yamauchi K, Ohki T, Murakami M, Takahara Y, Takeuchi Y, Mori Y. 2001. Comparison of various reproductive status in Sika deer (Cervus nippon) using fecal steroid analysis. J Vet Med Sci. 2001;63(2):195-8. Links.Wildlife Management Office, Kawasaki-city, Kanagawa, Japan. Hunter RHF.1995. Teknik Memodifikasi Siklus Berahi. Dalam: Fisisologi dan
Teknologi Reproduksi Hewan Betina Domestik. Penerbit ITB Bandung dan Universitas Udayana. pp: 40-66.
Jabbour HM, Ashes GW, Smith JF, Morrow CJ. 1992. Effect of progesterone and oestrodiol benzoate on oestrus behaviour and svretion of luteinizing hormone in ovariectomized fallow deer (Dama dama). J Reprod Fertil 94:353-361.
Jabbour HM, Velahuizen FA, Green G, Asher GW. 1993 Endocrine respones and conception rates in follow deer (Dama dama) following oestrous synchronization and cervical insemination with fresh or frozen-thawed spermatozoa. J. Reprod. And Fert 98:495-502.
Jabbour HM, Argo CMcG, Brinklow BB, Hooton J, Londont ASI. 1994. Conseption rate following intrauterine insemination of European (Dama dama) fallow deer does witho fresh of frozen-thawed mesopotamin (Dama damamesopotamia) fallow deer spermatozoa. J. Zoo 230:379-384. Kapke CA, Arcese P, Ziegler TE, Scheffler GR. 1999. Estradiol and progesterone
metabolite consentration in white-tailed deer (Odocoileus virginianus) feces. J Zoo Wildl Med. 1999 Sep; 30 (3) : 361-71. Links. Department of Wlldlife Ecology, University of Wisconsin, Madison 53706, USA.
Kelly RW, McNatty KP, Moore GH, Ross D and Gibb M. 1982. Plasma Concentrations of LH, prolactin, oestradiol and progesterone in female red deer (cervus elaphus) during pregnancy. J. Reprod. Fert. 64:475-483. Lopez-Gatius F. 2000. Site of semen deposisi in cattle. A review. Theriogenology.
53:1407-1414.
Maheshwari H. 2006. Profil Metabolit Steroid sebagai Indikator dalam Penentuan
Siklus Ovarium Owa Jawa (Hylobates moloch AUDEBERT, 1797) [Ringkasan Disertasi] Bogor. Sekolah Pascasarjana Institut Pertanian Bogor.
Manan DJ. 1987. Studi Perbandingan Metode Palpasi Digital dan Endoskopi untuk Diagnosis Kebuntingan Dini pada Kambing Kacang. [Tesis] Bogor. Sekolah Pascasarjana Institut Pertanian Bogor.
Mcdonald LD. 1989. Veterinary Endocrinology and Reproduction. Fourth Ed. Lea and Febiger. Philadelphia. London.
Moore NW. 1984. Manipulation of Reproduction in the Goat. In. : Copland JW : Goat Production and Research in the Tropics. Proc. of a Workshop, held at the University of Queensland. Brisband. Australia. 6-8 February.
Mulley RC, English AW, Rawlinson RJ and Chapple RS. (1987). Pregnancy diagnosis of fallow deer by ultrasonography. Aus Vet J 64:8 257-258. Mylrea GE, English AW, Mulley RC and Evans G. 1985. Artificial insemination
of farmed chital deer. The Biology of Deer. Ed. Fennessy PF and Drew KR. The Royal Society of New Zealand, pp, 334-337.
Mylrea GE. 1992. Natural and artificial breeding of farmed chital deer (Axis axis). In Australia. PhD Thesis. Sydney: Univercity of Sydney.
Mylrea GE.1992a.Reproduction inTropical Species. Australian Deer Farming.pp9-14.
Nalley WMM, Handarini R, Toelihere MR, Yusuf TL, Purwantara B, Semiadi G. 2004. Kriopreservasi Semen Rusa Timor (Cervus timorensis) dalam berbagai konsentrasi gliserol. Disampaikan padaSeminar Nasional Teknologi Peternakan dan Veteriner. Pusat Penelitian dan Pengembangan Peternakan. Ciawi.4-5 Agustus 2004.
Nalley WMM. 2006. Kajian Biologi Reproduksi dan Penerapan Teknologi Inseminasi Buatan pada Rusa Timor (Cervus timorensis). [Disertasi] Bogor. Sekolah Pascasarjana Institut Pertanian Bogor.
Pabric Dpc. 2002. Immulite Operator,s Manual, Diagnostic Product Corporations. Pamores CC, Stojanov T, Eppleston J, Maxwell WMC. 1994. Effect of
glutathione peroxidase on the survival of goat and ram spermatozoa during liquid storage. In. Proc, 7th int. Symp. Or Spermatology. Cairms Vol. 9 p 24. (Abstract).
Partodihardjo S. 1992. Ilmu Reproduksi Hewan. Mutiara Sumber Widya. Jakarta. Pereira RJ, Polegato BF, de Souza S, Negrao JA, Duarte JM. 2006. Monitoring
ovarian cycles and pregnancy in brown brocket deer (Mazama gouazoubira) by measurement of fecal progesterone metabolites.Theriogenology. 2006 Jan 20;65(2):387-99. Links. Pos- graduacao Departmento de Reproducao Animal, Faculdade de Ciencias Agrarias e Veterinarias, Universidade Estadual Paulista, Jaboticabal, SP 14884-900, Brazil. ric-jose-garcia@yahoo.com.br.
Plotka ED, Seal US, Louis J, Verme and Ozoga JJ. 1980. Reproductive steroids in deer III. Luteinizing hormone, Estradiol and Progresteron around estrus. Biol. Reprod. 22 : 576-581.
Rizal M, Toelihere MR, Yusuf TL, Purwantara B, Situmorang PZ. Fertility of frozen-thawed ejaculated and epididymal sperm of garut ram. Proceedings of International Asia Link Symposium. Reproductive Biotechnology for Improved Animal Breeding in Southeast Asia. Denpasar, 19-20 August, 2005. Hlm 163-166.
Ropstad E, Frosberg M, Sire JE, Kindahl H, Nilsen T, Pedersen Q and Edqvist LE. 1995. Plasma concentrations of progesterone, oestradiol, LH and 15- ketoihydro-PGF2r, in Norwegian semi omestic reindeer (Rangifer tarandus tarandus L) during their first reproductive season. J. Reprod Fert. 105. 307314.
Rukman D. 1990. Pengaruh Prostaglandin F2-alpha terhadap Respons Estrus Rusa Bawean (Axis kuhlii, Muller dan Schelegel) di Kebun Binatang Ragunan, Jakarta.
Schoenecker KA. Lyda RO and Kirkpatrick J. 2004. Comparison of Three Fecal Steroid Metabolites for Pregnancy Detection used with Single Sampling in Bighorn Sheep (Ovis Canadensis). J. of Wildlife Diseases, 40(2), pp. 273-281.
Semiadi G, Barry TN and Muir PD. 1993. Growth, milk intake and behavior of artificially reared Sambar deer (Cervus unicolor) and red deer (Cervus elapsus) fawns. J. Agric. Sci. 121 : 273-281.
Semiadi G. 1995.Biology of Deer Reproduction: a Comparison Between Temperate and Tropical Species: Review. Bull. Pet. 19:9-18.
Semiadi G. Muir PD, Barry TN, Asher GW. 1998. Produksi semen rusa sambar jantan dan tanggapan terhadap penyerentakan berahi rusa sambar betina. Media Veteriner 5 : 11-16.
Semiadi G. 1998a. Pola kelahiran rusa timorensis di Nusa Tenggara Timur. Hayati 5. (1).22-24.
Semiadi G. 1998b. Budidaya Rusa Tropik Sebagai Hewan Ternak. Masyarakat Zoologi Indonesia. 35-38.
Semiadi G. 2002. Gambaran Umum Dunia Peternakan Rusa dan Harapannya di Indonesia. Disampaikan pada: Lokakarya Strategi Pengembangan Rusa Sebagai Ternak Alternatif Penghasil Daging dan Ikutannya yang Bernilai Tinggi. Dirjend Bina Produksi Peternakan. Jakarta. 2 September 2002. Semiadi G. dan Nugraha R.T.P. 2004. Panduan Pemeliharaaan Rusa Tropis. Puslit
Biologi LIPI. Bogor.
Stanbenfeldt GH, LE Edqvist. 1997. Female Reproductive Processes. In : Veterinary Drugs Registration. InterAg. New Zealand. 798-832.
Subekti DT. 1995 Produksi unggulan ternak rusa Ruminansia No.4 TH.IX 20 Februari-20 April Info Bisnis.
Sudirman M. 1986. Sifat reproduksi rusa Jawa (Cervus timorensis), Rusa sambar (Cervus unicolor), Rusa bawean (Axil kuhlii) dan Rusa totol (Axis axis). Karya Ilmiah Fakultas Peternakan Institut Pertanian Bogor.
Sutama IK, Budiarsana 1999. Kambing PE penghasil susu sebagai sumber pertumbuhan baru sub-sektor peternakan di Indonesia . Prosiding. Nasional Peternakan dan Veteriner. Bogor.
Syarif A. 1974. Kemungkinan Pembiakan Rusa di Indonesia. Direktorat Perlindungan Pengawetan Alam. Departemen Kehutanan. Bogor. pp. 24. Takahashi T, Hamanaka S, Imai K, Hashizume K. 2002. Fecal progesterone
analysis by time-resolved fluoroimmunoassay (TR-FIA) for monitoring of luteal function in the sika doe (Cervus nippon centralis). J Vet Med Sci. 2002 Jul;64 (7):565-9. Links. Laboratory of Reproductive Biology and Technology, National Institute of Agrobiological Sciences, Ikenodai 2, Kukizaki, Inashiki-gun, Ibaraki 305-8603, Japan.
Takandjandji M, Sutrisno E dan Garnadi D. 1997. Prospek Budidaya Rusa timor (Cervus timorensis) Sebagai Ternak. Prosiding Diskusi Hasil-hasil Penelitian BPK. Kupang.
Tambing SN. 2004. Optimalisasi pengembangan pengencer semen beku dan teknik inseminasi dalam upaya produksi kambing persilangan Saanen- peranakan Etawah. Disertasi. Bogor: Sekolah Pascasarjana, Institut Pertanian Bogor.
Toelihere M.R. 1985. Fisiologi Reproduksi pada Ternak. Angkasa. Bandung. Toelihere MR.1997. Increasing the Succes Rate and Adoption of Artificial
Insemination for Genetic Improvement of Bali Cattle (Makalah Workshop on Strateges to Improve Bali Cattle in Eastern Indonesia. PUSLITBANGNAK & ACIAR di Denpasar Bali).
Tomaszewska MW, Sutama IK, Putu IG, Chaniago TO. 1991. Reproduksi, Tingkah laku dan Reproduksi Ternak Indonesia. Gramedia Pustaka Utama. Jakarta.
Wllson PR. 1984. Reproduction In Deer. Proceedings No. 72. Deer Refresher Course 10–14 December.
Windsor DP. 1994. Does postpartum interval influence the success of transcervical uterine insemination in Merino ewes. A preliminary study. Proc Aust Soc Anim Prod 20. (In press).
Bulan ke
Kegiatan 0 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12
Des Jan Feb Mar Apr Mei Jun Jul Agt Sep Okt Nop Des
Rancangan kandang percobaan x
Seleksi rusa percobaan x
Adaptasi rusa x x x x x x x x x
Sinkronisasi dan pengamatan estrus x x
Pelaksanaan IB x
Pemeriksaan USG x
Koleksi sampel feses, kering beku dan ekstaksi
x
Analisa metabolit hormon progesteron x
Lampiran 1 Jadwal kegiatan pelaksanaan IB di Taman Margasatwa Ragunan Jakarta selama 12 bulan dari bulan Desember 2005 sampai dengan Desember 2006
Lampiran 2 Adaptasi rusa betina percobaan dalam lingkungan kandang kelompok
1
2 3
4
Lampiran 3 Pengamatan gejala estrus dari mulai CIDR-G dicabut sampai awal muncul estrus (onset) dan lama berlangsung gejala estrus sampai
gejala estrus tidak tampak lagi (hilang) pada rusa timor hasil sinkronisasi
Jumlahh rusa (ekor) Implan CIDR-G Pengamatan estrus (jam) Keterangan R1 (W1) R2 (W1) R3 (W1) R1 (W2) R2 (W2) R3 (W2) 09.00-10.00 Cabut CIDR 0 0 0 0 0 0 0 10.00–18.00 06.00 Mulai terlihat respon 1 1 0 0 0 0 08.00 Mulai terlihat respon 2 2 1 1 1 1 09.00 Respon meningkat 4 4 2 2 2 2 10.00 Respon terus meningkat 5 5 4 4 4 4 11.00 5 5 4 4 4 4 12.00 5 5 4 4 4 4 13.00 5 8 5 5 4 4 14.00 8 8 5 5 4 4 15.00 Semua tanda estrus muncul 8 10 5 8 4 5 16.00 10 10 5 8 5 5 17.00 10 10 5 5 8 8 I 18.00 Respon estrus menurun 9 9 5 5 5 8 06.00 9 9 5 5 5 8 07.00 9 9 8 5 5 8 08.00 IB 24 jam setalah onset 9 9 9 5 5 8 09.00 8 9 5 5 5 8 10.00 Respon estrus menurun 5 8 5 5 5 8 11.00 Respon estrus terus menurun 5 8 5 5 5 8 12.00 5 8 5 5 5 8 13.00 5 8 4 4 5 9 14.00 IB 30 jam setalah onset 5 8 4 0 0 7 15.00 5 5 0 0 0 6 16.00 5 5 0 0 0 0 17.00 Tanda estrus hilang 5 5 0 0 0 0 II 18.00 4 5 0 0 0 0
Keterangan: Rusa 1 dan 2 ( W1) = dosis PMSG 300 IU, Rusa 3 (W1) dan Rusa 1 (W2) = CIDR-G
Lampiran 4 Inventarisasi gejala estrus yang ditampakkan oleh enam ekor rusa timor betina perlakuan selama tiga hari berturut-turut dari jam 06.00-18.00 wib
Rusa 1 (W1)
Hari ke (jam) I II III Gejala-gejala estrus yang ditampakkan
setelah CIDR-G dicabaut (24) (48) (72)
+ + - + + - + - - + + - + + - + + - + + - + + - - + - 1. Nafsu makan menurun
2. Mendekati sesama rusa betina lain (gelisah) 3. Mengeluarkan suara khas
4. Urinasi
5. Mengintip rusa lain di kandang sebelah 6. Vulva merah, bengkak dan basah
7. Lendir transparan (menggunakan spekulum) 8. Menaiki sesama rusa betina lain
9. Tidak menolak vulva dipegang di dalam kandang jepit
10.Diam dinaiki sesama rusa betina lain + - -
Keterangan: - Perlakuan pemberian implan CIDR-G selama 14 hari + PMSG 300 IU (H-2) terhadap Rusa 1 (W1).
- Tanda (+) = menampakkan gejala estrus, (-) = tidak menampakkan gejala estrus.
Rusa 2 (W1)
Hari ke (jam) I II III Gejala-gejala estrus yang ditampakkan
setelah CIDR-G dicabaut (24) (48) (72)
+ + - + + - + - - + + - + + - + + - - + - + + - - + - 1. Nafsu makan menurun
2. Mendekati sesama rusa betina lain (gelisah) 3. Mengeluarkan suara khas
4. Urinasi
5. Mengintip rusa lain di kandang sebelah 6. Vulva merah, bengkak dan basah
7. Lendir transparan (menggunakan spekulum) 8. Menaiki sesama rusa betina lain
9. Tidak menolak vulva dipegang di dalam kandang jepit
10.Diam dinaiki sesama rusa betina lain + - -
Keterangan: - Perlakuan pemberian implan CIDR-G selama 14 hari + PMSG 300 IU (H-2) terhadap Rusa 2 (W1).
Rusa 3 (W1)
Hari ke (jam) I II III Gejala-gejala estrus yang ditampakkan
setelah CIDR-G dicabaut (24) (48) (72)
+ + - + + - - - - + + - + + - - - - - - - - - - - + - 1. Nafsu makan menurun
2. Mendekati sesama rusa betina lain (gelisah) 3. Mengeluarkan suara khas
4. Urinasi
5. Mengintip rusa lain di kandang sebelah 6. Vulva merah, bengkak dan basah
7. Lendir transparan (menggunakan spekulum) 8. Menaiki sesama rusa betina lain
9. Tidak menolak vulva dipegang di dalam kandang jepit
10.Diam dinaiki sesama rusa betina lain - - -
Keterangan: - Perlakuan pemberian implan CIDR-G selama 14 hari terhadap Rusa 3 (W1). - Tanda (+) = menampakkan gejala estrus, (-) = tidak menampakkan gejala estrus.
Rusa 1 (W2)
Hari ke (jam) I II III Gejala-gejala estrus yang ditampakkan
setelah CIDR-G dicabaut (24) (48) (72)
+ + - + + - - - - + + - + + - - - - - - - - - - - - - 1. Nafsu makan menurun
2. Mendekati sesama rusa betina lain (gelisah) 3. Mengeluarkan suara khas
4. Urinasi
5. Mengintip rusa lain di kandang sebelah 6. Vulva merah, bengkak dan basah
7. Lendir transparan (menggunakan spekulum) 8. Menaiki sesama rusa betina lain
9. Tidak menolak vulva dipegang di dalam kandang jepit
10.Diam dinaiki sesama rusa betina lain - - -
Keterangan: - Perlakuan pemberian implan CIDR-G selama 14 hari terhadap Rusa 1 (W2). - Tanda (+) = menampakkan gejala estrus, (-) = tidak menampakkan gejala estrus.
Rusa 2 (W2)
Hari ke (jam) I II III Gejala-gejala estrus yang ditampakkan
setelah CIDR-G dicabaut (24) (48) (72)
+ + - + + - - - - + + - + + - - - - - - - - - - - - - 1. Nafsu makan menurun
2. Mendekati sesama rusa betina lain (gelisah) 3. Mengeluarkan suara khas
4. Urinasi
5. Mengintip rusa lain di kandang sebelah 6. Vulva merah, bengkak dan basah
7. Lendir transparan (menggunakan spekulum) 8. Menaiki sesama rusa betina lain
9. Tidak menolak vulva dipegang di dalam kandang jepit
10.Diam dinaiki sesama rusa betina lain - - -
Keterangan: - Perlakuan pemberian implan CIDR-G selama 14 hari + PMSG 150 IU (H-2) terhadap Rusa 2 (W2).
- Tanda (+) = menampakkan gejala estrus, (-) = tidak menampakkan gejala estrus.
Rusa 3 (W2)
Hari ke (jam) I II III Gejala-gejala estrus yang ditampakkan
setelah CIDR-G dicabaut (24) (48) (72)
+ + - + + - - - - + + - + + - - + - - + - + + - - + - 1. Nafsu makan menurun
2. Mendekati sesama rusa betina lain (gelisah) 3. Mengeluarkan suara khas
4. Urinasi
5. Mengintip rusa lain di kandang sebelah 6. Vulva merah, bengkak dan basah
7. Lendir transparan (menggunakan spekulum) 8. Menaiki sesama rusa betina lain
9. Tidak menolak vulva dipegang di dalam kandang jepit
10.Diam dinaiki sesama rusa betina lain - - -
Keterangan: - Perlakuan pemberian implan CIDR-G selama 14 hari + PMSG 150 IU (H-2)
terhadap Rusa 3 (W2).
Lampiran 5 Prosedur pelaksanaan IB, waktu 24 jam dan 30 jam setelah onset estrus 1 2 3 4 5 6 7 8
Lampiran 6 Hasil pemeriksaan dengan menggunakan USG
Rusa 1 (W1) = Uterus negatif, ovari + folikel.
Rusa 3 (W1) = Uterus negatif, ovari + CL
Lampiran 7 Hasil uji iP4 pada rusa percobaan tidak estrus dan rusa betina estrus sebagai pembanding level progesteron
Hasil analisa (ng/ml)
Hewan Uji .1 .2 Keterangan
iP4 17,80 - Fase folikuler (estrus)
Rusa estrus 1
Rusa estrus 2 iP4 18,00 - Fase folikuler (estrus)
iP4 15,80 29,00 Fase folikuler
iP4 35,40 36,80 Fase luteal
Rusa 1 W1 Rusa 2
Rusa 3 iP4 40,00 66,50 Bunting trimester kesatu
iP4 14,40 16,20 Fase folikuler
iP4 42,00 43,00 Bunting trimester kesatu Rusa 1
W2 Rusa 2
Rusa 3 iP4 92,50 121,00 Bunting trimester kedua
Keterangan : Hasil uji P4 rusa betina percobaan (perlakuan); bunting trimester kedua hasil IB,
Lampiran 8 Hasil perhitungan konsentrasi hormon progesteron feses kering dalam satuan ng/ml dikonversikan menjadi µg/g pada rusa timor tidak estrus dan rusa timor estrus sebagai pembanding level P4
Keterangan : Hasil konsentrasi P4 lebih dari 40 ng/ml atau lebih dari 2 µg/g, menunjukkan kebuntingan.
Titik Ekstaksi MeOH 80 % Eff. Dilution [20α-HP]/50µl Total [20α-HP]
Pengambilan Kode (gr) (ml) Extract. to (ng/50µl) (mg/g dry fec.)
31/10/2006 W1 Rusa 1 0,0506 3 95 25 15,8 0,83 Rusa 2 0,0503 3 95 25 35,4 1,88 Rusa 3 0,0503 3 95 25 40 2,12 09-11-2006 W1 Rusa 1 0,0505 3 95 25 29 1,53 Rusa 2 0,0509 3 95 25 36,8 1,93 Rusa 3 0,0505 3 95 25 66,5 3,51 31-10-2006 W2 Rusa 1 0,0503 3 95 25 14,4 0,76 Rusa 2 0,0502 3 95 25 42 2,23 Rusa 3 0,05 3 95 25 92,5 4,93 09-11-2006 W2 Rusa 1 0,0503 3 95 25 16,2 0,86 Rusa 2 0,0507 3 95 25 43 2,26 Rusa 3 0,0511 3 95 25 121 6,31
Rusa Estrus Kontrol 1 0,0505 3 95 25 17,8 0,94