Affandi R, Suhenda N. 2003. Teknik budidaya ikan sidat (Anguilla bicolor). Prosiding Sumberdaya Perikanan Sidat Tropik. UPT Baruna Jaya. BPPT-DKP. Jakarta. Hal 47-54.
Affandi R, Tang UM. 2002. Fisiologi Hewan Air. Riau (ID): Unri Press Pekanbaru.
Affandi R. 2005. Strategi pemanfaatan sumberdaya ikan sidat, Anguilla spp. di Indonesia. Jurnal lktiologi Indonesia. 5(2): 77-81.
Affandi R. 2010. Strategi Pemanfaatan Sumberdaya Ikan Sidat, Anguilla spp. di Indonesia. Fakultas Perikanan dan Ilmu Kelautan Institut Pertanian Bogor. Prosiding Seminar Riptek Kelautan Nasional. FPIK IPB.
Anderson DP, Siwicki AK. 1993. Basic hematology and serology for fish health programs. Paper presented in second symposium on diseases in Asian
Aquaculture “Aquatic Animal Health and the Evironment”.
Phuket,Thailand.25-29 th October 1993. 17 hlm.
Anggorodi HR. 1990. Ilmu Makanan Ternak Umum. Jakarta (ID): Gramedia Pustaka Utama.
Aoyama J. 2009. Life history and evolution of migration in catadromous eels (Anguilla sp.). Aqua-Bio Science Monograph (AMSM). 2(1): 1-42.
Barham D, Trinder P. 1972. An Improved colour reagent for the determination of blood glucose by the oxidase system. Analyst . 97:142-5
Bombeo-Tuburan I. 1988. The effect of stunting on growth, survival and production of milkfish (Chanos chanos Forsskal). Aquaculture 75: 97-104. Boyd CE. 1988. Water Quality in Warm Water Fish Ponds. Alabama (US):
Fourth Printing. Auburn University Agriculture Experiment Station.
Brown JA. 1993. Endocrine Responses to Environmental Pollutions. Journal Fish: 276-292.
18
Darsudi. 2011. Analisis Kandungan Proksimat Bahan Baku Dan Pakan Buatan/ Pelet Untuk Kepiting Bakau. Balai Besar Riset Perikanan Budidaya Laut. Degani GA, Horowitz, Levanon D. 1985. Effect of protein level in purified diet
and density ammonia and O2on growth of juvenil europan eels Anguilla Anguilla L. Aquaculture (46):193-200.
Djajasewaka H. 1985. Pakan Ikan. Jakarta (ID): PT. Yasaguna.
Effendi MI. 1997. Metode Biologi Perikanan. Bogor (ID): Yayasan Dewi Sri. Effendi MI. 2007. Biologi Perikanan. Yogyakarta (ID). Yayasan Pustaka
Nusatama.
Evans DH, Claiborne JB. 2006. The Physiology of Fishes. Third Edition. Taylor and Francis.
Floyd RFC, Watson DP, Deborah BP. 2005. Ammonia in Aquatic System. University of Florida.
Gbore FA, Oginni AM, Adewole, Aladetan JO. 2006. The effect of transportation and handling stress on hematology and plasma biochemistry in fingerlings of Clarias gariepinus and Tilapia zilli. World Journal of Agricultural Science 2(2): 208-212.
Haryono. 2008. Sidat, belut bertelinga: potensi dan aspek budidayanya. Fauna Indonesia, 8(1): 22-26
Hasbullah. 1996. Pengaruh tingkat salinitas (0, 3, 6 dan 9‰) dan suhu (23, 26, 29
dan 320C) terhadap kelangsungan hidup dan pertumbuhan benih ikan sidat (Anguilla bicolor McClelland) pada masa pemeliharaan 0-2 minggu setelah penangkapan dari alam [skripsi]. Bogor (ID): Institut Pertanian Bogor.
Hastuti S, Supriyono E, Mokoginta I, Subandiyono. 2003. Blood Glukose Response of Giant Gouramy (Osphronemus gaouramy, Lac.) to the Stress of Environmental Temperature Changes. JurnaI Akuakultur Indonesia, 2(2): 73 -77
Herianti I. 2005. Rekayasa lingkungan untuk memacu perkembangan ovarium ikan sidat(Anguilla bicolor). Oseanologi dan Limnologi. 37: 25-41.
Johnny F, Zafran, Rosa D, Mahardika K. 2003. Hematologis beberapa pesies ikan laut budidaya. Jurnal Penelitian Perikanan Indonesia. 9 (4): 34–38.
Knosche R. 1994. An Effective Biofilter Type For Eel Culture In Resirculation System. Aquaculture engineering. Elsevier applied science. 13.
Komarawidjaja W. 2006. Pengaruh perbedaan dosis oksigen terlarut (DO) pada degradasi amonium kolam kajian budidaya udang. Jurnal Teknologi Lingkungan. BPPT. 1(1): 32–37.
Kubilay A, Ulukoy G. 2002. The effects of acute stress on rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Turk J Zool. 26 (2002) 249 – 254.
Kwon, Jeremiah. 2012. Sel Darah Merah (Eritrosit), Sel Darah Putih (Leukosit) dan Keping Darah (Trombosit). http://asiabussinescenter.blogspot.com. [15 Januari 2014].
Lagler KF, Bardach JE, Miller RR, Passino DRM. 1977. Ichthyology. John Wiley and Sonc Inc. New York-London.
Mahi II. 2000. Pengaruh kadar protein dan imbangan energi pakan berbeda terhadap retensi protein dan pertumbuhan benih ikan sidat (Anguilla bicolor bicolor) [tesis]. Bogor (ID): Institut Pertanian Bogor.
19 Mattjik AA, Sumertajaya M. 2000. Perancangan Percobaan dengan Aplikasi SAS
dan MINITAB. Edisi Kesatu. Bogor (ID): IPB Press.
Mazeaud MM, Mazeaud F. 1981. Andrenergic Responses to Stress in Fish. In A.D. Pickering. (Ed.): Shess and Fish. London (GB): Academic Press. Nabib R, Pasaribu FH. 1989. Patologi dan Penyakit Ikan. Departemen Pendidikan
dan Kebudayaan. Direktorat Jendral Pendidikan Tinggi. Pusat Antar Universitas Bioteknologi, Institut Pertanian Bogor. Bogor (ID): UPT Produksi Media Informasi LSI-IPB.
Noercholis A, Aziz M, Muslim, Maftuch. 2013. Ekstraksi fitur roundness untuk menghitung jumlah leukosit dalam citra sel darah ikan. Jurnal EECCIS. 7(1): 35-40.
Paulo CFC, Pedro HSK, Elaine A, Correia S, Bernardo B. 2009. Transport of jundia (Rhamdia quelen) juveniles at different loading densities: water quality and blood parameters. JournalNeotropical Ichthyology, 7(2): 283-288.
Porchas MM, Córdova LRM, Enriquez RR. 2009. Cortisol and glucose: reliable indicators of fish stress?. Pan-American Journal of Aquatic Sciences. 4(2): 158-178
Ricker WE. 1979. Growth Rates and Models. In: W.S. Hoar, D.J. Randall and J.R. Brett (Editors). Fish Physiology. Vol. VIII. Bioenergetics and Growth. New York (US): Academic Press.
Ritonga T. 2014. Respon benih ikan sidat (Anguilla bicolor bicolor) terhadap derajat keasaman (pH) [skripsi]. Bogor (ID): Institut Pertanian Bogor. Rovara O. 2007. Karakteristik reproduksi, upaya maskulinisasi dan pematangan
gonad ikan sidat betina (Anguilla bicolor bicolor) melalui penyuntikan ekstrak hepofisis [disertasi]. Bogor (ID): Institut Pertanian Bogor.
Rudiyanti S, Ekasari AD. 2009. Growth and survival rate of cyprinus carpio linn juvenile on different concentration of regent 0.3 g pesticide. Jurnal Saintek Perikanan. 5(1): 39 – 47.
Sacks DB. 1999. Carbohydrates, In : Burtis CA, Ashwood ER, editors. Tietz Textbook of clinical Chemistry, 3rd ed Philadelpihia (US): W,B Saunders Company.
Safitri D, Sugito, Suryaningsih S. 2013. Hemoglobin levels of Tilapia fish (Oreochromis niloticus) treated by heat stress and supplemented with willow (Salix tetrasperma Roxb) leaves powder supplementation. Jurnal Medika Veterinaria. 7(1): 39-41.
Sasongko A, Purwanto J, Mu’minah S, Arie U. 2007. Sidat Panduan Agribisnis Penangkapan, Pendederan dan Pembesaran. Jakarta (ID). Penebar Swadaya.
Setiawati M, Mokoginta I, Suprayudi MA, Manulu W. 2007. Pengaruh penambahan mineral fe pada pakan ikan terhadap status kesehatan ikan kerapu bebek. Jurnal Perikanan dan Ilmu Kelautan. 121:55-63.
Siakpere OK. 1985. Haematological characteristics of clarias fisheriensis. S.J. Fish Biology. 27 (3): 259-264.
Sniezko SF. 1960. Microhematocrite as a tool in fishery research and management. US. Wildi. Serv. Sci.Ref. Fish, 341:15.
Steel GD, Torrie JH. 1981. Prinsip-prinsip dan Prosedur Statistika. Terjemahan. Jakarta (ID): PT. Gramedia Pustaka Utama.
20
Subiakto S. 2012. Budidaya Sidat Janjikan Omzet Menggiurkan. http://indonesia.go.id/in/kementerian/kementerian/kementerian-kelautan-dan-perikanan/823-perikanan/10997-budidaya-sidat-janjikan-omzet- menggiurkan.html. [15 Januari 2014].
Sugita H, Nakamura H, Shimada T. 2005. Microbial communities associated with filter materials in recirculating aquaculture systems of freshwater fish. Aquaculture. 243:403-409.
Suhenda N, Affandi R, Ulum B. 2003. Pengaruh Tingkat Penambahan Campuran Vitamin Pada Pakan Buatan Terhadap Pertumbuhan Banih Ikan Sidat, Anguilla bicolor dalam Aplikasi Teknologi Pakan dan Peranannya Bagi Perkembangan Usaha Perikanan Budidaya. Prosiding Semiloka Pusat Riset Perikanan Budidaya. Hal 73-79.
Sutrisno. 2008. Penentuan salinitas air dan jenis pakan alami yang tepat dalam pemeliharaan benih ikan sidat (Anguilla bicolor). Jurnal Akuakultur Indonesia, 7(1): 71–77.
Syawal H, Ikhwan YS. 2011. Respon fisiologis ikan jambal siam (Pangasius hypopthalamus) pada suhu pemeliharaan yang berbeda. Berkala Perikanan Terubuk. 39(1): 51-57.
Thomas L. 1998. Clinical Laboratory Diagnostics, 1st ed. Frankfurt (DE): TH-Books Verlagsgesellschaft.
Tillman AD, Hartadi H, Reksohadiprodjo S, Prawiro KS, Lebdosoekoekojo S. 1998. Ilmu Makanan Ternak Dasar. Yogyakarta (ID): Gadjah Mada University Press.
Wedemeyer GA, Yasutake WT. 1977. Clinical Methods for Assesment of the Effect of Environmental Stress on Fish Health. Thechnical papers of the U.S Fish and Wildlife Service, Fish and Wildlife Service 89:1-17.
Well RMG, Baldwin J, Seymour RS, Christian K, Britain T. 2005. Blood cell function and haematology in two tropical freshwater fishes from Australia. Comparative Biochemistry and Physiology. 141(1):87-93.
Wiesman U, Choi IS, Dombrowski M. 2007. Fundamental of Biological Wastewater Treatment. Germany (DE): WILEY-VCH Verlag GmbH & Co. KgaA, Weinheim.
Yamagata Y, Niwa M. 1982. Acute and chronic toxicity of amonia to eel (Anguilla japonica). Bull. Jap. Soc. Sci. Fish. 48 (2), 171-176.
21 Lampiran 1. Dokumentasi penelitian
Pakan benih ikan sidat (pelet komorsil merek KRA, kandungan protein 46%)
22
Pengukuran lebar bukaan mulut benih ikan sidat
23 Media pemeliharaan benih ikan sidat
24
Keragaman bobot benih ikan sidat selama stunting 1 bulan
Keragaman bobot benih ikan sidat selama stunting 2 bulan
25 Pembersihan media pemeliharaan benih ikan sidat
26
Lampiran 2. Prosedur kerja penentuan kadar amonia
Menurut Floyd dan Watson (2005) bahwa amonia adalah produk sisa metabolisme yang utama dari ikan, dikeluarkan melalui insang dan urine. Sumber utama amonia sebenarnya berasal dari protein pada pakan ikan yang dimakan oleh ikan untuk kebutuhan energi dan nutrien, deaminasi asam amino menjadi energi menghasilkan amonia yang dikeluarkan sebagai sisa metabolisme.
Analisa NH3-N (Amonia)
Metode fenat digunakan untuk menentukan kadar amonia pada sample air dan air limbah. Amonia bereaksi dengan hipoklorit dan fenol yang dikatalisis oleh natrium nitroprusida membentuk senyawa biru indofenol. Absorbansi indofenol ini sebanding dengan konsentrasi ammonia yang diukur dengan spektrofotometer pada panjang gelombang 640 nm dengan menggunakan kuvet 1 cm.
Peralatan dan Bahan
Peralatan
Spectrofotometer dengan panjang gelombang 640 nm. Pipet ukur 10 mL, 25 mL Pipet volum 1 mL Labu ukur 100 mL, 1000 mL Gelas ukur 100 mL Erlenmeyer 50 mL Analitycal balance Bahan
1. Larutan Fenol (C6H5OH)
Campurkan 11,1 mL fenol cair ( ≥ 89%) dengan etil alkohol 95% sampai
volume 100 mL(Catatan : larutan ini harus disiapkan setiap minggu) 2. Latutan Natrium Nitroprusida (C5FeN6Na2O) 0,5%
3. Larutkan 0,5 gram natrium nitroprusida dengan akuades dan encerkan sampai volume 100 mL. Simpan pada botol amber dan dapat disimpan selama 1 bulan.
4. Larutan Natrium Hipoklorit (NaClO) 5% 5. Larutan Alkalin Sitrat (C6H5Na3O7)
6. Larutkan 200 gram trinatrium sitrat dan 10 gram NaOH dengan akuades, kemudian encerkan sampai volume 1000 mL.
7 Larutan Pengoksidasi
8. Larutkan 100 ml larutan alkalin sitrat dengan 25 ml natrium hipoklorit. 9. Larutan Standar Induk Amonia (1000 mg N/L)
10. Larutkan 3,819 gram amonium klorida (NH4Cl) (yang telah dikeringkan pada suhu 100oC) dengan akuades, kemudian encerkan sampai dengan volume 1000 mL
11. Larutan Standar Baku Amonia (10 mg N/L)
12. Larutan 10 ml standar induk amonia dengan akuades, kemudian encerkan sampai volume 1000 mL.
27 Prosedur Kalibrasi
Buat larutan standar kerja amonia masing-masing dari larutan standar baku 10 mg N/L menjadi volume 100 ml dengan konsentrasi sbb. :
No Konsentrasi Larutan Standar Kerja(mg/L)
Volume Penambahan Larutan Standar Induk (ml) 1 Blanko 0,0 2 0,1 1,0 3 0,2 2,0 4 0,3 3,0 5 0,5 5,0
Lakukan analisa absorbansi sesuai dengan prosedur. Buat kurva kalibrasi antara konsentrasi larutan standar dengan hasil pembacaan absorbansinya.
Yakinkan bahwa koefesien korelasi (R2) dari kurva kalibrasi adalah ≥ 0,995
Catat nilai R2, slope dan intersep dalam kertas kerja. Prosedur Analisa
1. Pipet 25 mL sample, kemudian masukkan ke dalam erlenmeyer 50 mL 2. Tambahkan 1 mL larutan fenol, kemudian homogenkan.
3. Tambahkan 1 mL larutan natrium nitroprusida, kemudian homogenkan 4. Tambahkan 2,5 mL larutan pengoksidasi, kemudian homogenkan 5. Tutup Erlenmeyer dengan paraffin film.
6. Diamkan selama t 1 jam, untuk pembentukan warna.
7. Kemudian masukkan sample ke dalam kuvet, dan ukur absorbansi pada panjang gelombang 640 nm.
Semua alat uji amonia (spektrometer) hanya mengukur TAN , fraksi NH3
28
Hasil laboratorium analisis TAN yang di hitung berdasarkan Boyd (1988) dengan memperhatikan nilai pH dan temperatur yang berbeda, disajikan pada tabel berikut: pH TEMPERATUR (' C) 16,0 18,0 20,0 22,0 24,0 26,0 28,0 30,0 7,0 0,30 0,34 0,40 0,46 0,52 0,60 0,70 0,95 7,2 0,47 0,54 0,63 0,72 0,82 0,95 1,10 1,50 7,4 0,74 0,86 0,99 1,14 1,30 1,50 1,72 2,36 7,6 1,17 1,35 1,56 1,79 2,05 2,35 2,72 3,69 7,8 1,84 2,12 2,45 2,80 3,21 3,68 4,24 5,72 8,0 2,88 3,32 3,83 4,37 4,99 5,71 6,55 8,77 8,2 4,49 5,16 5,94 6,76 7,68 8,75 10,00 13,22 8,4 6,93 7,94 9,09 10,30 11,65 13,20 14,98 19,68 8,6 10,58 12,03 13,68 15,40 17,28 19,42 21,83 37,68 8,8 15,76 17,82 20,08 22,38 24,88 27,64 30,68 37,76 9,0 22,87 25,57 28,47 31,37 34,42 37,71 41,23 49,02 9,2 31,97 35,35 38,69 42,01 45,41 48,96 52,65 60,36 9,4 42,68 46,32 50,00 53,45 56,86 60,33 63,79 70,22 9,6 54,14 57,77 61,31 64,54 67,63 70,67 73,63 79,29 9,8 65,17 68,43 71,53 74,25 76,81 79,25 81,57 85,85 10,0 74,78 77,46 79,92 82,05 84,00 85,82 87,52 90,56 10,2 82,45 84,48 82,32 87,87 89,27 90,56 91,75 93,84 Sumber: Boyd (1988)
29 Lampiran 3. Prosedur kerja penentuan kadar nitrit
Analisis kadar nitrit pada sampel air bersih dengan tahapan sebagai berikut:
1. Sebanyak 50 mL sampel air dengan salah satu sampel dibuat secara duplo dipipet dan dimasukkan ke dalam labu erlenmeyer 100 mL.
2. Sebanyak 1 mL larutan asam sulfanilat ditambahkan dan dibiarkan larutan tersebut bereaksi selama 2-8 menit.
3. Sebanyak 1 mL larutan NED dihidroklorida ditambahkan,diaduk dan dibiarkan paling sedikit 10 menit, tetapi tidak lebih dari 2 jam.
4. Larutan sampel dimasukkan ke dalam kuvet pada alat spektrofotometer, dibaca dan dicatat serapannya pada panjang gelombang 543 nm.
5. Apabila perbedaan hasil pengukuran secara duplo lebih besar dari 2 %, periksa keadaan alat dan diulangi tahapan 1 sampai dengan 4, apabila perbedaanya lebih kecil atau sama dengan 2 %, rata-ratakan hasilnya (SNI-06-2484-1991).
Rumus Perhitungan:
mg/L NO2-sebagai N = C × fp Dimana:
C = konsentrasi yang didapat dari hasil pengukuran (mg/L) Fp = faktor pengenceran
30
Lampiran 4. Prosedur kerja uji gambaran darah 1) Prosedur Kerja Pengambilan Darah
Pengambilan darah ikan yaitu terlebih dahulu syringe dengan antikoagulan agar tidak terjadi pembekuan darah dalam penyaringan. Darah di ambil pada bagian belakang sirip anal, syringe ditusukkan hingga mengenai tulang belakang, kemudian darah disedot perlahan. Kemudian darah dimasukkan ke dalam ependorf yang telah dibilas antikoagulan, sentrifus sampai homogen. Amati kadar glukosa darahhemoglobin, kadar hematokrit, sel darah merah, sel darah putih. 2) Pengukuran Kadar Glukosa Darah
Uji glukosa darah dengan cara, ambil reagent glukosa sebanyak 1000 μl tabung reaksi kedalam mikrotube 2 ml (2000 μl ), tambahkan plasma darah yang akan diuji sebanyak 10 μl harus menggunakan mikropipet, biarkan selama 15
menit amati sampai terjadi perubahan warna merah muda atau jingga, kemudian pindahkan kedalam cuvet kapasitas 1,5 ml dan dilakukan pengukuran dengan spektropotometer, dilakukan dengan panjang gelombang 546 nm, yang secara otomatis dapat langsung terbaca, sebagai perhitungan perlu dibuatkan larutan standar dari reagent glukosa 1000 μl ditambahkan 10 μl larutan standar,
bandingkan larutan warna sampel dan larutan standar yang telah ditentukan, kemudian larutan standar masukkan kedalam spektrofotometer, untuk mengetahui kadar larutan standar gunakan panjang gelombang yang sama, kemudian sudah
dapat dihitung kadar glukosa darah dengan rumus berdasarkan metode ”GOD –
PAP ” Enzymatic photometric test (Thomas L, 1998; Sacks DB, 1999; Barham D,
Trinder P., 1972). Dibaca dengan panjang gelombang 546 nm. 3) Pengukuran Kadar Hemoglobin
Dalam penghitungan kadar hemoblobin, darah dihisap menggunakan pipet Sahli sampai 20 m3/0.2 ml. Kemudian pipet dimasukkan ke dalam tabung Hb-meter yang telah diisi dengan HCl 0.1 N sampai mencapai skala 10. Diaduk selama 3-5 menit secara perlahan. Ditambahkan akuades sedikit demi sedikit sampai warna larutan sama dengan warna larutan standar. Kadar hemoglobin yang diperoleh merupakan skala yang ditunjukkan.
4) Penentuan Nilai Hematokrit
Perhitungan hematokrit dilakukan dengan cara salah satu ujung tabung hematokrit dicelupkan kedalam tabung yang berisi darah sehingga darah naik ke tabung hematokrit sampai bagian. Setelah itu, ujung tabung ditutup dengan crystoseal dengan cara ujung tabung ditancapkan kedalam crystoseal sampai 1 mm. Selanjutnya, disentrifus dengan kecepatan 3000 rpm selama 5 menit, kemudian bagian yang mengendap dan total endapan dengan cairan diukur dalam 100% sebagai berikut:
Hematokrtit = (bagian yang mengendap)/(bagian yang mengendap +cairan ) x 100 %
31 5) Penghitungan Jumlah Sel Darah Merah
Perhitungan sel darah merah dilakukan dengan cara darah dihisap dengan menggunakan pipet yang berisi bulir sampai skala 1, kemudian ditambahkan larutan hayems sampai skala 101, serta diaduk selama 3-5 menit. Setelah itu, darah diteteskan pada hemasitometer (2 tetesan yang pertama dibuang) dan ditutup dengan cover glass untuk diamati dan dihitung jumlah sel darah merahnya di bawah mikroskop. Cara perhitungannya adalah 5 kotak besar pada hemasitometer, jumlah sel darah merahnya dihitung menggunakan rumus:
SDM = Rataan sel terhitung x (1)/(volume kotak besar) x pengenceran 6) Penghitungan Jumlah Sel Darah Putih
Perhitungan sel darah putih dilakukan dengan cara darah dihisap dengan menggunakan pipet yang berisi bulir sampai skala 0.5, kemudian ditambahkan larutan turks sampai skala 11, serta diaduk selama 3-5 menit. Setelah itu, darah diteteskan pada hemasitometer (2 tetesan yang pertama dibuang) dan ditutup dengan cover glass untuk diamati dan dihitung jumlah sel darah putihnya di bawah mikroskop. Cara perhitungannya adalah hanya 25 kotak kecil yang terdapat pada kotak besar dihemasitometer, jumlah sel darah putihnya dihitung menggunakan rumus :
32
Lampiran 5. Prosedur kerja analisis proksimat tubuh ikan
Analisis proksimat atau analisis Weende dikembangkan dari Weende Experiment Station di Jerman oleh Henneberg dan Stokman pada tahun 1865, yaitu suatu metode analisis dan menggolongkan komponen yang ada pada makanan. Cara ini dipakai hampir di seluruh dunia dan disebut “analisis proksimat” (proximate analysis). Analisis ini didasarkan atas komposisi susunan kimia dan kegunaannya (Tillman et al., 1998).
1) Penentuan kadar air
Air yang terkandung di dalam tepung ikan akan menguap seluruhnya apabila bahan tersebut dipanaskan selama beberapa waktu pada suhu 105 sampai 110 0C dengan tekanan udara bebas. Alat yang digunakan adalah silica disk yang berfungsi sebagai tempat sampel yang tidak mudah rusak karena memiliki titik leleh lebih dari 1000oC sehingga dapat digunakan dalam menentukan analisis proksimat dan merusak sampel pada suhu yang tinggi, desikator yang berfungsi sebagai penstabil suhu, silica gel berfungsi menyerap air. Alat lain yang digunakan adalah oven (105 sampai 110 0C), yang berfungsi untuk menguapkan seluruh air yang terdapat dalam sampel, tang penjepit untuk mengeluarkan silica disk dari dalam oven, dan timbangan analitik yang digunakan untuk menimbang sampel baik yang belum atau sudah di oven ataupun untuk menimbang silica disk. Berdasarkan data-data yang diperoleh, maka kadar air dapat dihitung dengan mejumlah bobot gelas timbang dan bobot cuplikan kemudian dikurangi bobot gelas timbang dan cuplikan setelah dioven 105 sampai 110oC, kemudian dikali 100% dan dibagi bobot cuplikan pakan.
Sampel makanan ditimbang dan diletakan dalam cawan khusus dan dipanaskan dalam oven pada temperatur 105 0C. Pemanasan berjalan hingga sampel sudah tidak lagi turun beratnya. Setelah pemanasan tersebut sampel
makanan disebut “sampel bahan kering” dan pengurangannya dengan sampel
makanan tadi disebut persen air atau kadar airnya (Tillman et al., 1998) 2) Penentuan kadar abu.
Menurut Anggorodi (1990), abu merupakan zat-zat mineral sebagai suatu golongan dalam bahan makanan atau jaringan hewan ditentukan dengan membakar zat-zat organik dan kemudian menimbang sisanya. Suatu bahan pakan bila dibakar pada suhu 550 sampai 600OC selama beberapa waktu maka semua zat organiknya akan terbakar sempura menghasilkan oksida yang menguap yaitu berupa CO2, H2O dan gas-gas lain, sedangkan yang tertinggal tidak menguap adalah oksida mineral atau yang disebut abu. Berdasarkan data-data yang diperoleh, maka kadar abu dapat dihitung dengan menghitung bobot sampel dan silica disk setelah ditanur 550 sampai 600oC, kemudian dikurangi bobot silica disk kosong sebelum ditenur dan dikali 100% dan dibagi bobot sampel sebelum ditanur.
Alat yang digunakan adalah silica disk, desikator, tang penjepit, oven pengering, timbangan analitik, dan tanur (550oC sampai 600oC ) yang berfungsi untuk membakar bahan organik secara sempurna. Menurut Rasyaf (1992), proses
33 pengeringan pada pembuatan tepung ikan yaitu pengeringan matahari, pengeringan vacuum, pengeringan dengan uap panas dan pengeringan dengan api pijar sesaat. Pengeringan dan lama pengeringan mempengaruhi kualitas tepung ikan. Seluruh senyawa organiknya akan terbakar menjadi CO2 dan H2O dan gas lain yang menguap, sedang sisanya adalah abu atau campuran dari berbagai oksida mineral sesuai dengan macam mineral yang terkandung di dalamnya. Abu hasil pembakaran dapat digunakan sebagai titik tolak untuk determinasi persentase zat-zat tertentu yang terdapat dalam bahan pakan (Anggorodi, 1990).
3) Penentuan kadar protein kasar.
Penentuan protein kasar dengan alat Kjeldahl. Analisis ini menggunakan asam sulfat dengan suatu katalisator dan pemanasan (Tillman et al., 1998). Alat yang digunakan dalam praktikum ini adalah timbangan analitik, labu kjeldahl 650 ml yang berfungsi sebagai tempat sampel pada saat destruksi dan destilasi, labu erlenmeyer sebagai tempat penampung sampel pada saat titrasi, gelas ukur 100 ml untuk mengukur reagensia yang digunakan, buret yang berfungsi sebagai tempat HCl pada saat titrasi, pipet volume 25 atau 50 ml untuk mengambil larutan reagensia yang digunakan, corong yang berfungsi untuk mempermudah dalam memasukkan larutan HCl ke dalam buret, alat destruksi yang berfungsi untuk melepaskan N-organik sampel, dan alat destilasi yang berfungsi untuk mendestilasi sampel.
Bahan yang digunakan adalah H2SO4 pekat yang berfungsi untuk melepas N-organik dari sampel, CuSO4, K2SO4, dan kjeltab yang berfungsi sebagai katalisator, NaOH 50% yang berfungsi sebagai pensuasana basa, HCl 0,1 N, H3BO3 0,1 N yang berfungsi menangkap NH3 yang terlepas pada saat destilasi, indikator mix yang berfungsi sebagai indikator warna, dan Zn logam yang berfungsi untuk mencegah terjadinya superheating ataupun pemercikan cairan atau timbulnya gelembung gas yang besar. Protein kasar asal ikan herring yang tertinggi dan yang terendah dari ikan tuna. Kandungan protein kasar yang menengah berasal dari ikan menhaden dan sarden.
4) Penentuan kadar lemak kasar.
Lemak kasar merupakan campuran dari berbagai senyawa yang larut dalam pelarut lemak. Menurut Tillman et al., (1998), sampel bahan kering diekstrasi dengan etil eter selama beberapa jam, maka bahan yang didapatkan adalah lemak, eter akan menguap. Alat yang digunakan dalam praktikum ini adalah timbangan analitik, tang penjepit, oven pengering, desikator, seperangkat alat ekstraksi dan selongsong dari soxhlet yang berfungsi untuk ekstraksi lemak, labu penampung yang berfungsi menampung sisa petroleum benzene yang jatuh dari soxhlet , alat pendingin yang berfungsi untuk mengkondensari uap hasil penguapan petroleum benzen agar tidak mencemari lingkungan, dan kertas saring bebas lemak yang berfungsi untuk menyaring ekstrak.
Berdasarkan data-data yang diperoleh, maka kadar lemak kasar dapat dihitung dengan menghitung bobot sampel dan kertas saring bebas lemak setelah oven 105°C (sebelum diekstraksi), kemudian dikurangi bobot sampel dan kertas saring bebas lemak setelah oven 105°C (setelah diekstraksi) dan dikali 100% dan
34
dibagi bobot sampel sebelum ditanur. Bahan yang digunakan dalam praktikum ini adalah petroleum benzene yang berfungsi sebagai pelarut lemak. Menurut Darsudi (2011), besar kadar lemak kasar pada tepung ikan 6,89%. Perbedaan penghitungan dengan literatur karena kualitas tepung ikan bervariasi, tergantung dengan macam ikan, bagian mana yang digunakan dalam pembuatan tepung ikan dan proses pembuatan tepung ikan.
5) Penentuan Kadar karbohidrat by difference (Winarno 2004)
Pengukuran karbohidrat dilakukan dengan cara by difference, yaitu dihitung
dengan menggunakan rumus :
35 Lampiran 6. Data tahap 1 tentang SR dan SGR yang diolah dengan
program SPSS 16 Survival Rate
ANOVA
Sum of Squares Df Mean Square F Sig.
Between Groups .250 3 .083 1.000 .441
Within Groups .667 8 .083
Total .917 11
Spesific Growth Rate (SGR)
ANOVA
Sum of Squares df Mean Square F Sig.
Between Groups 5.616 3 1.872 517.561 .000 Within Groups .029 8 .004 Total 5.644 11 Homogeneous Subsets SGR sgr perlakuan N
Subset for alpha = 0.05
1 2 3 4 Tukey HSDa 0 3 -1.07 15 3 .19 5 3 .41 10 3 .73 Sig. 1.000 1.000 1.000 1.000
36
Lampiran 7. Data tahap 2 tentang SR, SGR dan KK yang diolah dengan program SPSS 16
Survival Rate
ANOVA
Sum of Squares df Mean Square F Sig.