[Anonim]. 2006. Jeroan ikan. http://www.google.com. [04 Juli 2008].
[Anonim]. 2008. Ikan bandeng-image. http://www.google-image.com. [10 Mei 2008].
Affandi R, Syafei DS, Rahardjo MF, Sulistiono. 2005. Fisiologi ikan. Bogor: Departemen Manajemen Sumberdaya Perairan. Fakultas Perikanan dan Ilmu Kelautan. Institut Pertanian Bogor.
Atjo dan Syahrun . 2005. Ikan bandeng potensial dibudidayakan dalam KJA di laut. www.dkp.go.id . [05 April 2008].
Apriyantono A, Fardiaz D, Puspitasari NL, Sedarnawati Y, Budianto S. 1989. Petunjuk Laboratorium Analisis Pangan. Bogor: Pusat Antar Universitas. Institut Pertanian Bogor.
Apriyanti M. 2007. Peranan inhibitor katepsin dalam menghambat proses kemunduran mutu ikan nila (Oreochromis niloticus). [skripsi]. Bogor: Program Studi Teknologi Hasil Perikanan. Fakultas Perikanan dan Ilmu Kelautan. IPB.
Bihan Estelle L, Zatylny C, Perrin A, Koueta N. 2006. Post mortem in viscera of Cuttlefish Sepia officinalis L. during storage at two different temperatures. Food Chemistry 98: 39-51.
[BSN] Badan Standarisasi Nasional. Standar Nasional Indonesia 01-2345.2006. Uji Organoleptik Ikan Segar. Jakarata: Badan Standarisasi Nasional Indonesia.
Bradford MM. 1976. A rapid and sensitive for the quantitation of mocrogram quantities of protein utilization the principles of protein-dye binding. Analytical Biochemistry 72: 248-254.
Bramsted F, Auerbach M. 1961. The spoilage of-fresh-water fish. Di dalam: Fish as Food Vol. 1. Borgstorm G, editor. New York: Academic Press.
Chung L, Dinakarpandian D, Yoshida N, Laurel-Fields JL, Fields GB, Visse R, Nagase H. 2004. Collagenase unwinds triple helical collagen prior to peptide bond hydrolysis. EMBO Journal 23: 3020-3030.
Dinu D, Dumitru IF, Nichifor MT. 2002. Isolation and characterization of two chatepsins from muscle of Carasiuss auratus gibelio. Romania: Faculty of Biology, Universitay of Bucharest, 91-95 Spl. Independentei , 76201 Bucharest.
Ditjen Perikanan Tangkap. 2007. Kebijakan dan program prioritas tahun 2008. Makalah disampaikan dalam Rakornas Departemen Kelautan dan Perikanan tahun 2007. Departemen Kelautan dan Perikanan. http://bp2tp.litbang.deptan.go.id. [05 Juli 2008].
Ditjen Perikanan Budidaya. 2007. Kebijakan dan program prioritas tahun 2008. Makalah disampaikan dalam Rakornas Departemen Kelautan dan Perikanan tahun 2007. Departemen Kelautan dan Perikanan. http://bp2tp.litbang.deptan.go.id. [05 Juli 2008].
Eskin NAM. 1990. Biochemistry of Foods. Second edition. San Diegor Academic Press. Inc.
Farber L. 1965. Freshness Test. Borgstorm G, editor. Di Dalam: Fish as Food Vol IV. New York: Academic Press.
Fardiaz S. 1987. Penuntun Praktek Mikrobiologi Pangan. Bogor: LSI. IPB. [FAO] Food and Agriculture Organization. 1995. Quality and quality changes in
fresh fish. Hush HH, editor. Rome: FAO Fisheris Technical Paper No.331.75 pp. 0-65.
Gildberg A . 1978. Proteolytic activity and the frequency of burst bellies in Capelin. J. Fd. Technol 13: 409-416.
Gill Tom. 2000. Nucleotide-Degrading Enzymes. Di dalam: Haard NF dan Simpson BK, editor. Seafood Enzymes Utilization and Influence on Postharvest Seafood Quality. New York: Marcel Dekker, Inc. Hlm 191-207.
Gopakumar K. 2000. Enzymes and Enzymes Product as Quality Indices. Di dalam: Haard NF dan Simpson BK, editor. Seafood Enzymes Utilization and Influence on Postharvest Seafood Quality. New York: Marcel Dekker, Inc. Hlm 337-363.
Hadiwiyoto S. 1993. Teknologi Pengolahan Hasil Perikanan Jilid I. Jakarta: Liberty.
Hames D dan Hooper N. 2005. Biochemistry Third edition. Leeds UK: University of Leeds.
Hultmann L, dan Rustad T. 2004. Iced storage of Atlantic salmon (Salmon salar)-effects on endogenous enzymes and their impact on muscle proteins and texture. Food chemistry 87: 31-41.
Ibrahim B, Salamah E. 1991. Pengaruh glukosa dan garam dalam fermentasi bakteri asam laktat jeroan ikan tuna (Thunnus sp.). [laporan penelitian].
Bogor: Jurusan Pengolahan Hasil Perikanan. Fakultas Perikanan dan Ilmu Kelautan. Institut Pertanian Bogor.
Ilyas S. 1983. Teknologi Refrigrasi Hasil Perikanan. Jakarta: CV. Paripurna. Jiang ST. 2000. Enzymes and Their Effects on Seafood Texture. Di dalam: Haard
NF dan Simpson BK, editor. Seafood Enzymes Utilization and Influence on Postharvest Seafood Quality. New York: Marcel Dekker, Inc. Hlm 411-450.
Karungi C, Byaruhanga YB, Muyonga JH. 2003. Effect of pre-icing duration on quality deterioration of iced nile perch (Lates niloticus). J. Food Chemistry 85: 13-17.
Kim S, Park P, Kim J, Shahidi F. 2002. Purification and characterization of the collagenase from the tissue of filefish, Novoden modestrus. Journal of Biochemistery and Molecular Biology 35 (2): 165-171.
Kreuzer R. 1965. The Technology of Fish Utilization. England: Fishing News (Books) Ltd. Ludgate House 110 Fleet Street London EC4.
Ladrat CD, Bagnis VV, Noel J, Fleurence J. 2004. Relative contribution of calpain and cathepsin to protein degradation in muscle sea bass (Dicentrarcus Labrax L.). J. Food Chemistry 88: 389-395.
Lan NT, Dallsgaard A, Cam PD, Mara D. 2007. Microbiological quality of fish grown in wastewater-fed and non wastewater-fed fishpond in Hanoi, Vietnam: influence of hygiene practices in local retail markets. J. Water and Health 5: 209-218.
Lawrie RA. 1985. Meat Science. 4th Edition. Lowa: MC Brown Comp. Publisher. Lehninger AL. 1993. Dasar-dasar Biokimia Jilid I. Thenawidjaya M, penerjemah.
Jakarta: Erlangga. Terjemahan dari : The Foundations of Biochemistry. Lestari SD. 2005. Analisis sifat fisika, kimiawi, dan rheologi gelatin kulit hiu
gepeng (Alopis sp.) dengan penambahan MgSO4, sukrosa dan gliserol. [skripsi]. Bogor: Program Studi Teknologi Hasil Perikanan. Fakultas Perikanan dan Ilmu Kelautan. IPB.
Martinez . 2006. The Search for causes of belly bersting in pelagic fish. www.sintef.com . [05 April 2008].
Mudjiman. 1983. Budidaya Ikan Bandeng di Tambak. Jakarta: Penebar Swadaya. Naiola E, Widhiyastuti N. 2007. Semi purifikasi dan karakteristik enzim protease
Nutrition Data. 2007. Nutrition Raw Milkfish. http://www.nutritiondata.com. [05 April 2008].
Ozogul F. 1999. Comparison of methods used for determination of total volatile basic nitrogen (TVB-N) in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Turk J. Zool 24:113-120.
Park PJ, Lee SH, Byun HG, Kim SH, Kim SK. 2002. Purification and characteristization of a collagenase from the Mackerel, Scomber japonicus. Journal of Biochemistry and Moleculer Biology 35 (6): 576-682.
Price JF, Schweigert BS. 1971. The Science of Meat and Meat Product. San Fransisco: W.H Freeman and Company.
Ratna. 2001. Usaha Perikanan Di Indonesia. Jakarta: Mutiara Sumber Widya. Robb D. 2002. The Killing of Quality: The Impact of Slaughter Procedures on
Fish Flesh. Dalam Alasalvar C dan Taylor T (eds): Seafood-Quality, Technology and Nutraceutical Applications. New York. Springer. Hal 7. Saanin H. 1984. Taksonomi dan Kunci Identifikasi Ikan. Jakarta: Bina Cipta. Saito M, Sato K, Kunisaki N, Kimura S. 2000. Characterization of a rainbow trout
matrix metalloproteinase capable of degrading type I collagen. Journal Biochem 267 : 6943-6950.
Sentandreu MA, Aubry L, Ouali A. 2003. Purification of bovine cathepsin B: proteomic characterization of the different forms and production of specific antibodies. Journal Biochem, Cell Biol 1: 317-326.
Shahidi F, Botta JR. 1994. Seafood: Chemistry, Processing Technology and Quality. Glasgow: Blackie Academic and Professional.
Sikorski ZE dan Kolakowski ZE. 2000. Endegenous Enzymes Activity and Seafood Quality: Influence of Chilling, Freezing, and Other Environmental factors. Di dalam: Haard NF dan Simpson BK, editor. Seafood Enzymes Utilization and Influence on Postharvest Seafood Quality. New York: Marcel Dekker, Inc. Hlm 451-487.
Simpson BK. 2000. Digestives Proteinases from Marine Animals. Di dalam: Haard NF dan Simpson BK, editor. Seafood Enzymes Utilization and Influence on Postharvest Seafood Quality. New York: Marcel Dekker, Inc. Hlm 191-207.
Snedecor GW dan Cochran WG. 1967. Statistical Methods. New Delhi: Oxford and IBH Publishing Co.
Steel RGD, Torrie JH. 1989. Prinsip dan Prosedur Statistika. Suatu Pendekatan Biometrik. Sumantri B, penerjemah. Jakarta: PT.Gramedia Pustaka Utama. Terjemahan dari : The Principle and Procedure of Statistic. A Biometrics Approach.
Suhartono MT. 1989. Enzim Dan Bioteknologi. Bogor: Departemen pendidikan Dan Kebudayaan. Direktorat Jendral Pendidikan Tinggi. Antar Universitas Bioteknologi. Institut Pertanian Bogor.
Susanto . 2006. Budidaya Ikan Di Pekarangan. Jakarta: Penebar Swadaya.
Warta Penelitian Perikanan Budidaya. (2005). Budidaya ikan kaya gizi. www.google.com . [05 April 2008].
Wang D, Jang T, Correia L.R, Gill T.A.1998. Postmortem changes of cultivated atlantic Salmon and their effects on salt uptake. Journal of Food Science. Vol 63. No.4: 635.
Lampiran 1a. Format uji organoleptik ikan segar (SNI 01-2346-2006)
Nama Panelis : Tanggal :
Cantumkan kode contoh pada kolom yang tersedia sebelum melakukan pengujian.
Berilah tanda V pada nilai yang dipilih sesuai kode contoh yang diuji.
Spesifikasi Nilai Kode contoh
1 2 3 4 5 A. Kenampakan
1. Mata
- Cerah, bola mata menonjol, kornea jernih.
9
- Cerah, bola mata rata, kornea jernih. 8 - Agak cerah, bola mata rata, pupil agak
keabu-abuan, kornea agak keruh.
7 - Bola mata agak cekung, pupil berubah
keabu-abuan, kornea agak keruh.
6 - Bola mata agak cekung, pupil keabu-abuan,
kornea agak keruh.
5 - Bola mata cekung, pupil mulai berubah
menjadi putih susu, kornea keruh.
3 - Bola mata sangat cekung, kornea agak
kuning.
1 2. Insang
- Warna merah cemerlang, tanpa lendir.
9 - Warna merah kurang cemerlang, tanpa
lendir.
8 - Warna merah agak kusam, tanpa lendir. 7
- Merah agak kusam, sedikit lendir. 6
- Mulai ada perubahan warna, merah kecoklatan, sedikit lendir, tanpa lendir.
5
- Warna merah coklat, lendir tebal. 3
- Warna merah coklat ada sedikit putih, lendir tebal.
1 3. Lendir permukaan badan
- Lapisa lendir jernih, transparan, mengkilat cerah, belum ada perubahan warna.
9
- Lapisan lendir jernih, transparan, cerah, belum ada perubahan warna.
8 - Lapisan lendir mulai agak keruh, warna agak
putih, kurang transparan.
7 - Lapisan lendir mulai keruh, warna putih agak
kusam, kurang transparan.
6 - Lendir tebal menggumpal, mulai berubah
warna putih, keruh.
5 - Lendir tebal menggumpal, warna putih
kuning.
3 - Lendir tebal menggumpal, warna kuning
kecoklatan
4. Daging (warna dan kenampakan)
- Sayatan daging sangat cemerlang, spesifik jenis, tidak ada perubahan sepanjang tulang belakang, dinding perut daging utuh.
9
- Sayatan daging cemerlang, spesifik jenis, tidak ada pemerahan sepanjang tulang belakang, dinding perut utuh.
8
- Sayatan daging sedikit kurang cemerlang, spesifik jenis, tidaka ada pemerahan sepanjang tulang belakang, dinding perut daging utuh.
7
- Sayatan daging mulai pudar, banyak pemerahan sepanjang tulang belakang, dinding perut lunak.
5
- Sayatan daging kusam, warna merah jelas sekali sepanjang tulang belakang, dinding perut lunak.
3
- Sayatan daging kusam sekali, warna merah jelas sekali sepanjang tulang belakang, dinding perut sangat lunak.
1
II. Bau
- Bau sangat segar, spesifikasi jenis.
9
- Segar, spesifik jenis. 8
- Netral. 7
- Bau amoniak mulai tercium, sedikit bau asam.
5 - Bau amoniak kuat, ada bau H2S, bau asam
jelas dan busuk.
3
- Bau busuk jelas. 1
III. Tekstur
- Padat, elastis bila ditekan dengan jari, sulit menyobek daging dari tulang belakang.
9
- Agak padat, elastis bila ditekan dengan jari, sulit menyobek daging dari tulang belakang.
8 - Agak padat, agak elastis bila ditekan dengan
jari, sulit menyobek daging dari tulang belakang.
7
- Agak lunak, kurang elastis bila ditekan dengan jari, agak mudah menyobek daging dari tulang belakang.
5
- Lunak, bekas jari terlihat bila ditekan, mudah menyobek daging dari tulang belakang.
3 - Sangat lunak, bekas jari tidak hilang bila
ditekan, mudah sekali menyobek daging dari tulang belakang.
Lampiran 1b. Format uji organoleptik dinding perut dan isinya (Intestine)
Score sheet organoleptik dinding perut dan isinya (Intestine) ikan segar (Laporan Penelitian Lembaga Teknologi Perikanan, No.2 (1973) diacu dalam Ilyas (1983))
Nama Panelis : Tanggal :
Cantumkan kode contoh pada kolom yang tersedia sebelum melakukan pengujian.
Berilah tanda V pada nilai yang dipilih sesuai kode contoh yang diuji.
Spesifikasi Nilai Kode contoh
1 2 3 4 5
- Susunan isi perut teratur, kompak, cemerlang, amis segar, selaput hitam mengkilat, lekat erat, dinding perut merah muda (pink) perak cemerlang.
9
- Gejala seperti diatas tetapi mulai redup. 8 - Susunan berubah, amis keras, selaput
keabu-abuan, mudah lepas, redup.
7 - Bau amis rancid, pucat, selaput abu-abu,
mudah lepas.
6 - Susunan tidak teratur, pucat, bau amis
alkali, dinding lembek, rusak menonjol.
5 - Bau rancid-alkali keras, dinding perut
mudah rusak.
3 - Susunan hancur berantakan, busuk, tulang
rusuk lepas dan dinding.
Lampiran 2a. Bahan-bahan untuk ekstraksi enzim katepsin (Dinu et al. 2002) 1. Buffer Tris-HCl 0,1 M (pH 7,4)
Tris base (Mr = 121,14) sebanyak 12,114 gram dilarutkan ke dalam 995 ml akuades. Lalu ditepatkan pH nya hingga 7,4 dengan penambahan HCl pekat (1 N) sedikit demi sedikit. Kemudian ditepatkan volumenya hingga satu liter.
Lampiran 2b. Bahan-bahan untuk ekstraksi enzim kolagenase (Moore dan Stein (1954) diacu dalam Kim et al. (2002))
1. Buffer Tris-HCl 100 mM (pH 8,0) yang terdiri dari 0,25 % Triton-X 100 dan 10 mM CaCl2
Tris base (Mr = 121,14) sebanyak 12,114 gram ditambah 1,4702 gram CaCl2 dan 2,5 ml Triton-X 100 dilarutkan ke dalam 995 ml akuades. Lalu ditapatkan pH nya hingga 8,0 dengan penambahan HCl (4 N) pekat sedikit demi sedikit. Kemudian ditepatkan volumenya hingga satu liter.
2. Buffer Tris-HCl 20 mM (pH 8,0) yang terdiri dari 0,36 mM CaCl2
Tris base (Mr = 121,14) sebanyak 2,4228 gram ditambah 0,0529 gram CaCl2 dilarutkan ke dalam 995 ml akuades. Lalu ditapatkan pH nya hingga 8,0 dengan penambahan HCl (4 N) pekat sedikit demi sedikit. Kemudian ditepatkan volumenya hingga satu liter.
Lampiran 2c. Bahan-bahan untuk pengukuran aktivitas enzim katepsin (Dinu et al. 2002)
1. Hemoglobin 2 % dengan pH 2,0
Hemoglobin 8 % sebanyak 50 ml dilarukan ke dalam 145 ml akuades (perbandingan hemoglobin : akuades adalah 1:3). Kemudian pH dibuat menjadi 2,0 dengan penambahan HCl 1 N dan volume akhir ditepatkan menjadi 150 ml.
2. TCA 5 %
Sebanyak 5 gram TCA dilarutkan diacu dalam akuades hingga volume akhir 100 ml.
Lampiran 2d. Bahan-bahan untuk pengukuran aktivitas enzim kolagenase (Moore dan Stein (1954) diacu dalam Park et al. (2002))
1. Buffer Tris-HCl 0,05 M pH 7,5 yang terdiri dari 5 mM CaCl2
Tris base sebanyak 6,057 gram ditambahkan CaCl2 sebanyak 1,4702 gram. Kemudian bahan tersebut dilarutkan ke dalam 995 ml akuades. Lalu ditepatkan pH nya hingga 7,5 dengan penambahan HCl pekat sedikit demi sedikit. Kemudian ditepatkan volumenya hingga satu liter.
2. Tirosin standar
Tirosin sebanyak 0,2 g dilarutkan ke dalam 220 ml buffer Trsi-HCl 0,2 M pH 8,0. Selanjutnya larutan diaduk perlahan dengan magnetic stirrer. Larutan ini disimpan pada suhu 0-4 0C dan dapat digunakan selama satu minggu.
3. Asam trikloro asetat (TCA) 50 % (w/v)
Sebanyak 50 gram TCA dilarutkan dalam akuades hingga volume akhirnya 100 ml. Selanjutnya diaduk dengan magnetic stirrer hingga larut dan disimpan pada suhu 0-4 0C.
4. Larutan nynhydrin 0,1 % (w/v)
Sebanyak 0,1 gram larutan nynhidrin dilarutkan dalam akuades hingga volume akhirnya 100ml. Selanjutnya diaduk dengan magnetic stirrer hingga larut dan disimpan pada suhu 0-4 0C.
5. 1-propanol 50 % (v/v)
Sebanyak 50 ml 1-propanol dilarutkan dalam akuades hingga volume akhirnya sebanyak 100 ml. Selanjutnya diaduk dengan magnetic stirrer hingga larut dan disimpan pada suhu 0-4 0C.
Lampiran 3. Hasil pengujian tingkat kesegaran ikan bandeng pada penentuan pola kemunduran mutu
Keterangan :
A = Dipuasakan, Suhu Ruang 1= Rata-rata Nilai Organoleptik Ikan Bandeng Utuh
B = Tidak dipuasakan, Suhu Ruang 2= Rata-rata Nilai Organoleptik Isi Perut (Jeroan)
C = Dipuasakan, Suhu Chilling 3= Rata-rata Nilai pH
D = Tidak dipuasakan, Suhu Chilling 4= Rata-rata Nilai TVB (mg N/100 g) 5= Rata-rata Nilai Log TPC (CFU/ml)
Sa mp el
Pre Rigor Rigor Mortis Post Rigor Busuk Sangat Busuk
1 2 3 4 5 1 2 3 4 5 1 2 3 4 5 1 2 3 4 5 1 2 3 4 5 A 9 9 6,82 11,5 9 3,69 8 7 6,70 38,92 4,82 6 5 6,36 66,36 6,77 3 3 6,92 1 6 5 , 2 7 , 7 B 9 9 6,53 14,2 8 3,82 8 7 6,44 48,44 4,87 6 5 6,27 66,36 6,87 3 3 7,19 1 9 8 , 8 7 , 4 2 C 9 9 6,82 11,5 9 3,69 8 8 6,60 54,6 4,86 5 5 6,48 82,04 6,77 3 3 7,2 1 1 2 8 , 1 9 1 1 7 , 4 1 9 8 , 8 8 , 9 9 D 9 9 6,53 14,2 8 3,82 6 7 6,33 53,2 5,16 5 5 6,2 82,6 6,88 3 3 7 1 0 9 , 2 7 , 8 6 1 1 7 , 3 1 6 5 , 2 9
Lampiran 4. Hasil pengujian aktivitas enzim selama kemunduran mutu
1. Hasil pengujian aktivitas enzim katepsin
2. Hasil pengujian aktivitas enzim kolagenase
Sampel Pre Rigor Rigor Mortis Post Rigor Busuk Sangat Busuk
Aktifita s (U/ml) Konsentra si Protein (mg/ml) Aktifitas (U/ml) Konsentras i Protein (mg/ml) Aktifitas (U/ml) Konsentras i Protein (mg/ml) Aktifitas (U/ml) Konsentras i Protein (mg/ml) Aktifitas (U/ml) Konsent rasi Protein (mg/ml) A 0,0208 0,3566 0,0375 0,5355 0,0792 0,7697 0,0583 0,4579 B 0,0208 0,3408 0,0417 0,6816 0,0667 0,8039 0,0583 0,5329 C 0,0125 0,3276 0,0333 0,5066 0,0708 0,8553 0,0542 0,4461 0,0375 0,4316 D 0,0208 0,3526 0,0375 0,5961 0,0708 0,7224 0,05 0,4868 0,0417 0,4171 Keterangan :
A = Dipuasakan, Suhu Ruang C = Dipuasakan, Suhu Chilling B = Tidak dipuasakan, Suhu Ruang D = Tidak dipuasakan, Suhu Chilling
Ssampel Pre Rigor Rigor Mortis Post Rigor Busuk Sangat Busuk
Aktifitas (U/ml) Konsent rasi Protein (mg/ml) Aktifitas (U/ml) Konsentra si Protein (mg/ml) Aktifitas (U/ml) Konsentr asi Protein (mg/ml) Aktifitas (U/ml) Konsentra si Protein (mg/ml) Aktifitas (U/ml) Konsentra si Protein (mg/ml) A 0,3066 0,2317 0,4821 0,5537 0,5714 0,8658 0,5 0,6998 B 0,1964 0,1911 0,3571 0,5118 0,5 0,6603 0,3929 0,5685 C 0,3036 0,2408 0,3393 0,4371 0,6607 0,5655 0,5357 0,5085 0,0464 0,0538 D 0,1964 0,2568 0,625 0,4456 1,1071 0,6675 0,6964 0,5111 0,3166 0,2602
Lampiran 5. Kurva standar penentuan konsentrasi protein (1) Penentuan konsentrasi protein enzim katepsin
(a) Standar BSA (ekstrak kasar enzim katepsin) Konsentrasi Absorbansi 0.025 0.011 0.05 0.035 0.075 0.0421 0.1 0.063 0.125 0.075 0.15 0.089 0.175 0.093 0.2 0.097 0.225 0.145 0.25 0.153
(b) Kurva standar BSA (ekstrak kasar enzim katepsin)
Contoh perhitungan konsentrasi protein akstrak kasar enzim katepsin : Y = 0.588X - 0
0.1315 = 0.588X - 0.000 X = 0.1315+0.000
0. 588 = 0.2236
(2) Penentuan konsentrasi protein enzim kolagenase (a) Standar BSA (ekstrak kasar enzim kolagenase)
Konsentrasi Absorbansi 0.025 0.0211 0.05 0.043 0.075 0.063 0.1 0.078 0.125 0.085 0.15 0.089 0.175 0.097 0.2 0.103 0.225 0.109 0.25 0.115
(b) Kurva standar BSA (ekstrak kasar enzim kolagenase)
Contoh perhitungan konsentrasi protein akstrak kasar enzim katepsin :
Y = 0.380X + 0.028 0.1650 = 0.380X + 0.028 X = 0.1650 - 0.028
0.380 = 0.3605
Lampiran 6. Dokumentasi Kondisi Jeroan Sampel Bandeng Pemecahan perut
a. Sampel C b. Sampel D
Kondisi isi perut (1) Sampel A
a. Fase pre rigor b. Fase rigor mortis
c. Fase post rigor d. Fase busuk
(2) Sampel B
a. Fase pre rigor b. Fase rigor mortis
c. Fase post rigor d. Fase busuk
(3) Sampel C
a. Fase pre rigor b. Fase rigor mortis
c. Fase post rigor d. fase busuk
(4) Sampel D
a. Fase pre rigor b. Fase rigor mortis
c. Fase post rigor d. Fase busuk
Lampiran 7. Hasil analisis dan uji statistik (ANOVA) 1. pH
Tabel Sidik Ragam
SK db JK KT F Pr>F
Model 7 5,8758 0,8394 20,78 <,0001
Galat 28 1,1309 0,0403
Total 35 7,0068
2. TVB
Tabel Sidik Ragam
SK db JK KT F Pr>F
Model 7 122287,6137 17469,6591 40,16 <,0001
Galat 28 12180,6199 435,0221
Total 35 134468,2336
3. TPC
Tabel Sidik Ragam
SK db JK KT F Pr>F
Model 7 122,6005 17,5143 129,45 <,0001
Galat 28 3,7882 0,1352
Total 35 126,3887
4. Aktivitas katepsin
Tabel Sidik Ragam
SK db JK KT F Pr>F Model 7 0,0500 0,0071 2,31 <,0001 Galat 28 0,0868 0,0031 Total 35 0,1369 SK db JK KT F Pr>F Perlakuan 3 0,0296 0,0098 3,18 0,0392* Kelompok 4 0,0204 0,0051 1,65 <.0001* SK db JK KT F Pr>F Perlakuan 3 0,2410 0,0803 1,99 0,1385 Kelompok 4 5,7234 1,4308 35,42 <.0001* SK db JK KT F Pr>F Perlakuan 3 1772,2827 7609,7609 1,36 0,2759 Kelompok 4 120205,0590 30051,2647 69,08 <.0001* SK db JK KT F Pr>F Perlakuan 3 0,7003 0,2334 1,73 <.0001* Kelompok 4 115,7929 28,9482 213,97 <.0001*
5. Konsentrasi protein katepsin
Tabel Sidik Ragam
SK db JK KT F Pr>F
Model 7 1,7537 0,2505 31,18 <,0001
Galat 28 0,2250 0,0080
Total 35 1,9787
6. Aktivitas kolagenase Tabel Sidik Ragam
SK db JK KT F Pr>F
Model 7 0,0153 0,0021 4,79 0,0012
Galat 28 0,0128 0,0004
Total 35 0,0282
7. Konsentrasi protein kolagenase Tabel Sidik Ragam
SK db JK KT F Pr>F Model 7 0,9091 0,1298 41,82 <,0001 Galat 28 0,0869 0,0031 Total 35 0,9960 Keterangan: SK : sumber keragaman db : derajat bebas JK : jumlah kuadrat KT : kuadrat tengah
Perlakuan : kombinasi kondisi ikan sebelum dipanen dan suhu penyimpanan
Kelompok : fase kemunduran mutu (pre rigor, rigor, post rigor, busuk dan sangat
busuk) * : berbeda nyata SK db JK KT F Pr>F Perlakuan 3 0,2025 0,0675 8,40 0,0004* Kelompok 4 1,3435 0,3358 41,80 <.0001* SK db JK KT F Pr>F Perlakuan 3 0,0037 0,0012 2,74 0,0497* Kelompok 4 0,011 0,0028 6,17 0,0011* SK db JK KT F Pr>F Perlakuan 3 0,0186 0,0062 2,00 0,0276* Kelompok 4 0,8762 0,2190 70,54 <.0001*
