Affandi, R., Sjafei, D.S., Rahardjo, M,F., Sulistiono. 2004. Fisiologi ikan: Pencernaan dan penyerapan makanan. Jurusan MSP, FPIK IPB. 215 hal Allen, P.G., L.W. Botsford., A.M. Schuur., W.E. Johnston. 1984. Bioeconomics of
aquaculture. Elsevier. Amsterdam. 351 p
Ayuningsih, B. 1994. Pengaruh penggunaan biji kapuk (Ceiba petandra) terhadap produksi dan komposisi susu kambing perah. Tesis. Program Pascasarjana. IPB. Bogor.
Apriyantono, A., Dedi, F., Ni Luh, P., Sedarnawati., Slamet, B., 1989. Analisis pangan. Petunjuk Laboratorium. IPB Press. 229 p
Badan Penelitian Tanaman Rempah dan Obat. 2009. Biji kapuk sumber bahan baku
minyak diesel dan nabati. http://www.pustaka-
deptan.go.id/publikasi/wr24202.pdf,01 [Juni 2010].
Bell, T.A., Lightner, D.V. 1988. A Handbook of normal Penaeid Shrimp histology. World Aquaculture Society. Aquaculture Development Program, State of Hawaii. 114 p
[BPS] Biro Pusat Statistik. 1989. Statistika Perkebunan Indonesia tahun 1984-1989. Kapuk.
Bray, W.A., and Lawrence, A.L. 1992. Reproduction of penaeus species in capacity 93-170 p. In Marine shrimp culture : Principles and practices. Elsevier Science, New York
Budi-Saroso. 1992. Identifikasi asam lemak pada beberapa minyak nabati. Buletin Tembakau dan Serat No. 1/12/1992.
Cai Y., Zhang H., Zeng ,Y., Mo, J., Miao, C., Bai, J., Yann, F., Chen, F.2004. An optimazed gossypol high-performance liquid chromatography assay and its application in evaluation of different gland genotypes of cotton. Jounal Biosci 29 : 67-71.
Cater, C.M and Lyman, C.M., 1969. Effect of baoud gossypol in cottonseed meal on enzymic degradation. LIPIDS Vol . 5 No. 9.
Ceccaldi, H.J., 1990. Anatomy and physiology of digestive tract of Crustaceans Decapods reared in aquaculture, In Advances in tropical aquaculture Tahiti, Feb 20-March 4, 1989. Aquacop IFREMER Actes de Colloque 9, pp 243-259. Ceccaldi, H.J. 1997. Anatomy and physiology of the digestives system. In Crustacean
Nutrition. World Aquaculture Society, USA. pp 261-281
Ckeeke, P.R. 1989. Toxicants of plant origin. CRC. Press, Inc.Boca Raton. Florida. IV : 2-22
Cook, L.J., T.W. Scott., S.C. Mills. 1976. Effect of protected cyclopropene fatty acid on the compotition of ruminant milk fat. Lipids 11 : 705-711
Cruz-Suarez, L.E., Ricque-Marie.D., Tapia-Salazar, M., McCallum, I.M., Hickling, D. 2001. Assesment of differently processed feed pea (Pisum sativum) meals and canola meal (Brassica sp.) in diets for blue shrimp (Litopenaeus stylirostris). Aquaculture 196 (1-2), 87-104
Cuzon, G., A. Lawrence, G. Gaxiola. 2004. Nutritionof Litopenaeus vannamei reared in tanks or in ponds. Aquaculture : XX (2004) XXX-XXX.
Davis, D.A., Arnold, C.R., McCallum, I. 2002. Nutritional value of feed peas (Pisum sativum) in practical diet formulations for Litopenaeus vannamei. Aquaculture Nutrition 8 (2a), 87-94
Effendi, R. 1992. Pengaruh Tingkat Energi Ransum Terhadap Pertumbuhan Pascalarva Udang Windu (Penaeus monodon). Tesis. Program Pasacasarjana IPB. Bogor
El-Sayed, A-F.M. 1990. Long-term evaluation of cottonseed meal as a protein source for Nile tilapia Oreochromis niloticus (Linn.). Aquaculture 84, 315-320
FAO. 2010. Fisheries and aquaculture statistic.
http://www.fao.org/docrep/015/ba0058t/ba0058t.pdf [15 Februari 2011].
Francis, G., Harinder P.S.M., K.Becker. 2001. Antinutrisional factors present in plant-derived alternate fish feed ingredients and their effects in fish. Aquaculture. 199 : 197-227
Goenarso, D., Suripto., Zulfiani. 2004. Efek gosipol terhadap kontraksi usus mencit (Mus musculus) Swiss Webster jantan secara in vitro. Jurnal Matematika dan Sains. Vol. 1. Hal. 183-188
Gratraud, P., E. Huws., B. Falkard., S. Adjalley., D.A. Fidock., L. Berry., W.R. Jacobs Jr., M. S. Baird., H. Vial., L. Kremer. 2009. Oleic acid biosynthesis in Plasmodium falciparum: Characterization of the stearoyl-coA desaturase and invertigation as a potential therapeutic target. Plos One, vol. 4, Issue 9. 15 p Halver, J. E., R.W. Hardy. 2002. Fish Nutrition. Third edition. 822 p. Academic
Press, California
Hamsah. 2004. Peran pakan alami dalam penularan white spot syndrome virus pada benur udang windu (Penaeus monodon. Fabr.). Tesis. Sekolah Pascasarjana IPB.
Hartadi, H., S. Reksohadiprodjo dan A.D. Tillman. 1990. Tabel Komposisis Pakan untuk Indonesia. Cetakan ke 2. Gadjah Mada University Press. Yogyakarta. Hartutik. 2000. Evaluasi nilai nutrisi bungkil biji kapuk randu (Ceiba petandra,
Gaertn) dalam ransum ruminansia. Disertasi, Pascasarjana UGM. Jogyakarta. 464 hal.
Hendricks, J.D., and Bailey, G.S. 1989. Adventitious Toxins. P 605-651. In : J.E. Halver (Editor), Fish Nutrition (Second Edition), Academic Press Inc., New York, USA
Herman,R.L. 1970. Effect of gossypol on rainbow trout Salmo gairdneri. J.Fish Biol., 2:293-303
Hertrampf, J.W., Felicitas, P. 2000. Handbook on ingredients for aquaculture feeds. Kluwer Academic Publishers. Dordrecht/Boston/London. 573 p.
Kanazawa, A. 1989. Microparticulate feeds for Penaeid larvae. In : Advances in tropical aquaculture. Workshop, Tahiti.
Kardivel, R., R. Nataman., K. Udayasurian. 1984. Use of kapok as a poultry feed. Poultry Sci. 65 : 2363
Karim MY. 1998. Aplikasi pakan alami (Brachionus plicatilis dan nauplius artemia) yang diperkaya dengan asam lemak omega-3 dalam pemeliharaan larva kepiting bakau (Scylla serrata forskal). (Tesis): Bogor. PPS Institut Pertanian Bogor. Kartono. G. 1990. Peranan gosipol dalam ketahanan kapas terhadap Helicoverpa
armigera Hubner. Disertasi. Pascasarjana, UGM. Jogyakarta
Kategile, J.A., M. Ishengoma., A.M. Katule. 1978. The use of kapok (Ceiba petandra) seed cake as a source of protein in broiler rations. J. Sci. Food. Agriculture. 29 : 317.
KKP. 2010. Impor bahan baku pakan. Dirjen perikanan budidaya, Kementrian Kelautan dan Perikanan
Kureshy, N., Davis, D.A. 2002. Protein requirement for maintenence and maximum weight gain for the Pasific white shrimp, Litopenaeus vannamei. Aquaculture 204 (1-2), 125-143
Lawrence, A.L., Aranyakananda, P., Castille, F.I. 1995. Estimation of dietary protein and energy requirements for shrimp. Proceed. American Oil ChemistsAssociation. Conference San Antonio, Texas. LSU, Baton Rouge, Louisiana, USA, p. 520
Lim, C. 1996. Substitution of cottonseed meal for marine animal protein in diets for
Penaeus vannamei (abst). Jurnal of the world aquaculture society. Vol. 27. Issue 4. p 402-409
Lim, C., Ako, H., Brown, C.I., Hahn, K. 1997. Growth response and fatty acid composition of juvenile Penaeus vannamei fed different sources of dietary lipid. Aquaculture 151 (1-4), 143-153
Mazida, A.N. 2007. Penggunaan protein nabati dengan dan tanpa penambahan enzim fitase sebagai bahan baku pakan ikan lele dumbo (Clarias sp). Tesis. Sekolah Pascasarjana IPB. Bogor
Mbahizireki, G.B., Dabrowski, K.J., EL-Saidy, D., Wisner, E.R. 2001. Growth, feed utilization and body composition of tilapia (Oreochromis sp.) fed cottonseed meals-based diets in a recirculating system. Aquaculture Nutrition 7. 189-200. Morgan, S.E. 1989. Gossypol as a toxicant in livestock.. p 251-263. In : Burrows
G.E. (ed). The veterinary clinics of North America : Food Animal Practice. Philadelphia.
NRC National Research Council. 1983. Subcommite on Warmwater Fish Nutrition. Nutrient Requirements of Fish. Washington DC : National Academy of Science NRC National Research Council. 1993. Antinutrients and adventitious toxin. P34- 40. In : Nutrioent requirement of fish. National Academy of Science. Commite on Animal Nutrition. Washington DC.
Nwanna, L.C., A, Fagbenro., A.O. Adeyo. 2005. Effects of different treaments of dietary soybean meal and phytase ongrowth and mineral deposition in African catfish (Clarias gariepinus). Journal of Animal and Veterinary Advances, 4(12) : 980-987.
Nurdjana, M.L.1986. Pengaruh ablasi mata terhadap perkembangan telur dan embrio serta kualitas larva udang windu (Penaeus monodon Fab). Disertasi.Fakultas Pascasarjana UGM. Jogyakarta. 355 hal.
Osche, J.J., M.J. Soule Jr.,M.J. Dijkman., C. Wehlberg. 1961. Tropical and subtropical agriculture. Vol II. The Macmillan Company. New York.
Peres, H., Teles, A.O. 1979. Effect of dietary lipid level on growth performance and feed utilization by European sea bas juvenile (Dicentrachus labrax). Aquaculture 179
Phelps, R.A., F.S. Shenstone, A.R., A.R. Kemmerer., R.J. Evans. 1964. A review pf cyclopropenoid compounds : Biological effect of some derivatives. Poultry Sci. 44 : 358.
Raju, P.K. and R. Reiser. 1966. Inhibition of acyl desaturase by cyclopropene fatty acids. Journal of biological chemistry, vol 242, No. 34, pp 379-384
Robinson, E.H. , Brent, J.R. 1989. Use of cottonseed mealprotein with supplemental lysine in feeds for channel catfish. J. Appl. Aquaculculre, 1(2) : 1-14.
Robinson, E. H., Li, M.H. 1994. Use of plant proteins in catfish feed : Replacement of soybean meal with cottonseed meal and replacement of fish meal with soybean meal and cottonseed meal.J. World Aquaculture. Society. 25 : 271- 276.
Roehm, J.N., Lee, D.J., Sinnhuber, R.O. 1967. Accumulation and elimination of dietary gossypol in the organ of rainbow trout. Lipids, 5(1) : 80-81
Saoud, I.P., Davis, D.A., Rouse, D.B. 2003. Suitability studies of inland well waters for Litopenaeus vannamei culture. Aquaculture, 217 : 373-378
Sedgwick, R.W. 1979. Effects of ratio size and feeding frequency on the growth and food conversion of juvenile Penaeus merguienses de Man. Aquacultur, 16: 279- 298
Shone, G.G., 1966. Adverse effects of cyclopropenoid fatty acids. Nutrition and toxicity problems associated with fats, vol 25 : 37-43
Setiadi. 1983. Bertanam kapuk randu. PT. Penerbit Swadaya. Jakarta
Sihombing, D.T.H. 1974. Pemanfaatan bungkil biji kapuk dan bungkil biji jarak sebagai bahan makanan ternak. Fakultas Peternakan. IPB.
Sihombing, D.T.H., S. Simamora. 1979. Penelitian bungkil biji kapuk untuk makanan ternak babi. Proceding seminar dan penunjang pengembangan peternakan. Lembaga Penelitian Peternakan. Badan Penelitian dan Pengembangan Pertanian. Departemen Pertanian
Suprayudi MA. 2010. Pengembangan penggunaan bahan baku lokal untuk pakan ikan/udang: status terkini dan prospeknya. Makalah disajikan pada Semi-Loka Nutrisi dan Teknologi Pakan Ikan/Udang, Bogor 26 Oktober 2010. Badan Litbang Kelautan dan Perikanan, KKP bekerjasama dengan ISPIKANI, Jakarta. Sutardi, T. 1981. Sapi perah dan pemberian makanannya. Departemen Ilmu Nutrisi
dan Makanan Ternak. Fakultas Peternakan,IPB. Bogor.
Sutikno, A.I. (2000). Tanaman kapas dan kaitannya dengan gosipol. Wartazoa. Vol. 10 No. 1. hal 7-12
Tacon, A.G.J. 1995. Fishmeal replacers : Review of antinutrients within oilseeds and pulses- A limiting factor for the aquafeed Green Revolution?. In : Feed Ingredients Asia. Singapore.
Thanu, K., R. Kardivel., Ayyaluswami. 1983. The effect of nutrient sumpplementation on the feeding value of kapok seed for poultry. Animal feed Science and Tecnology, 9. 2 : 263
Thalib, A., S. Irawan., S. Dadang., S. Ernie. 1990. Perbaikan kualitas bungkil biji kapuk dengan proses sulfikasi. Hasil-hasil Penelitian Tahun Anggaran 1987- 1988. Balai Penelitian Ternak Ciawi. Bogor.
Utami, D.S.N. 2008. Kecernaan dan pertumbuhan juvenil udang putih (Litopenaeus vannamei) yang diberi pakan dengan pemakaian bungkil kelapa sawit, biji kapuk, dan bungkil kedelei masing-masing sebanyak 30 %. Skripsi. Program Studi Manajemen Akuakultur, FPIK. IPB.
Velasco, M., Lawrence, A.L., Obaldo, L.G. 2000. Dietary protein requirement for
Litopenaeus vannamei. 19-22 p. In : Cruz-Suarez L.E., Ricque-Marie D., Tapia- Salazar M., Olvera-Novoa M.A., Civera-Cerecedo R (ed). Avances and Nutrition Acuicola. Noviembre, 2000. Merida, Yucatan, Mexico.
Wahyunto, W.B. 1989. Pengaruh ekstrasi minyak biji kapas dan ekstrusi campuran tepung biji kapas, kedele serta beras terhadap nilai gizinya. Thesis. Fakultas Pascasarjana, IPB. Bogor
Watanabe, T. 1988. Fish nutrition and mariculture. Departement of Aquatic Biosciences. Tokyo University of Fisheries. 233 p
Wickins, J.P. 1976. The tolerance of warmwater prawns to recirculated water. Aquaculture, 9 : 19-37
Wickins, J.P. 1982. Opportunisties for farming crustaceans in western temperate regions. P. 87-177. In: J.F. Muir and R.J. Robets (Eds). Recent advances in aquaculture. Westview Press, Colorado.
Xincai, C., Yongquan, S. 2001. Shrip Culture. China International Training Course on Tecnology of Marineculture (Precious Fishes). China, Yiamen Municipal Science and Tecnology Commission. P. 107-113.
Yang, C. H. 1990. Effects of some environmental factors on the growth of the Chinese shrimp, Penaeus chinensis. In : The culture of Cold-tolerant shrimp. Proceeding of an Asian-US Workshop on shrimp culture. Honolulu. The Oceanic Institute. p. 92-101.
Yue, Yi-Rong and Qi-Cum Zhou. 2008. Effect of replacing soybean meal with cottonseed meal on growth, feed utilization, and hematological indexes for juvenile hybrid tilapia Oreochromis niloticus x O. aureus. Aquaculture. 18 p Zahirma, U. 1986. Analisis asam siklopropenat dari bungkil biji kapuk dengan tehnik
kromatografi gas. Skripsi. Fakultas MIPA. Universitas Indonesia. Jakarta. Zain, M. 1994. Pengaruh taraf bungkil biji kapuk (Ceiba petandra) dalam ransum
kambing perah laktasa terhadap kecernaan danpopulasi mikroba rumen. Tesis. Program Pascasarjana. IPB. Bogor.
Lampiran 1. Hasil analisis proksimat pakan komersial dan tepung biji kapuk (%)
Proksimat Pakan komersial Tepung Biji Kapuk
Protein 38,9 25,5 Lemak 8,1 22,93 Abu 15,9 7,62 Serat kasar 5,4 16,84 Air 9,7 10,25 BETN 22,1 16,86
Lampiran 2. Jumlah sampel udang (ekor) yang diambil berdasarkan waktu pengambilan dari setiap perlakuan untuk analisis ALS dan gosipol penelitian tahap pertama
No. Perlakuan Waktu (hari ke…)
3* 4 5 6 7 8 9 10 1. 0% TBK ts ts ts ts ts ts ts ts 2. 10% TBK ts 2 ts 2 ts 2 ts 2 3. 20% TBK 2 ts 2 ts 2 ts 2 ts 4. 30% TBK 2 ts 2 ts 2 mt mt mt 5. 40% TBK 2 ts 2 ts 2 mt mt mt
Keterangan : * adalah pengambilan sampel dimulai hari ke-3 saat udang mulai moribunb; ts adalah tanpa pengambilan sampel; mt adalah mati total
Lampiran 4. Metode Pengukuran Asam Lemak Siklopropenat
Metode pengukuran kadar asam siklopropenoat yaitu dengan cara test Halpen. Prosedur test halpen yaitu menambahkan satu volume karbon disulfida yang mengandung 1 % sulfur terlarut dan satu volume pentanol (amyl alkohol) ke dalam contoh yang akan dianalisis. Karbon disulfidanya akan didestilasi secara lambat dari tube yang terbuka dan larutan residu alkoholnya dipanaskan sampai suhu 110oC. Reaksi positif akan ditandai dengan terbentuknya warna pink (merah muda) atau merah. Intensitasnya dapat dipakai untuk analisis kuantitatif dengan menggunakan gas kromatografi
Lampiran 5. Jumlah sampel udang (ekor) yang diambil berdasarkan waktu pengambilan dari setiap perlakuan untuk analisis aktivitas enzim penelitian tahap pertama
No. Perlakuan Waktu (hari ke…)
1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 1. 0% TBK 2 2 2 2 2 2 2 2 2 2 2. 10% TBK 2 2 2 2 2 2 2 2 2 2 3. 20% TBK 2 2 2 2 2 2 2 2 2 2 4. 30% TBK 2 2 2 2 2 2 2 2 2 2 5. 40% TBK 2 2 2 2 2 2 2 2 2 2
Lampiran 6. Metode analisis aktivitas enzim
a. Enzim protease (Metode Bergmeyer dan Grassi, 1983)
Blanko (ml) Standar (ml) Sampel (ml)
Bufer borat (0,01 M) pH 8 1,0 1,0 1,0
Substrat kasein 2 % 1,0 1,0 1,0
Enzim dalam CaCl2 (2mmol/l) - - 0,2
Tirosin standar (5 mmol/l - 0,2 -
Aquades 0,2 - -
Inkubasi pada suhu 37oC selama 10 menit
TCA (0,1 M) 2,0 2,0 2,0
Air - - 0,2
Enzim dam CaCl2 (2mmol/l) 0,2 0,2 -
Incubasi pada suhu 37oC selama 10 menit, sentrifus 4000 rpm selama 10 menit
Filtrat 1,5 1,5 1,5
Na2CO3 5,0 5,0 5,0
Reagen Follin (1 : 2) 1,0 1,0 1,0
Biamkan selama ± 10 menit (37oC), kemudian dibaca pada spektrofotometer dengan absorbansi pada 578 nm
b. Enzim amilase (Metode Bernfeld, 1955)
DNS = Dinitro Salycylic Acid
c. Enzim lipase(Quin et al, 1982), Shirai dan Jackson,1982)
Lampiran 7. Jumlah sampel udang (ekor) yang diambil berdasarkan waktu pengambilan dari setiap perlakuan untuk analisis asam lemak tubuh penelitian tahap pertama
No. Perlakuan Waktu (hari ke…)
1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 1. Kontrol* 1 ts ts ts ts ts ts ts ts ts ts ts 2. 0% TBK ts ts ts ts ts ts ts ts ts ts ts 1 3. 10% TBK ts ts ts ts ts ts ts ts ts ts 1 mt 4. 20% TBK ts ts ts ts ts ts ts ts 1 mt mt mt 5. 30% TBK ts ts ts ts ts ts ts 1 mt mt mt mt 6. 40% TBK ts ts ts ts ts ts 1 mt mt mt mt mt
Keterangan : *udang sebelum dilakukan perlakuan ; ts adalah tanpa pengambilan sampel; mt adalah mati total
Cairan enzim 1ml
Tambahkan 1 ml larutan pati 1 % dalam buffer sitrat pH 5,7
Inkubasi pada 20oC selama 30 menit
Tambahkan 2 ml DNS dan didihkan selama 5 menit
Dinginkan dan dibaca pada spektofotometer dengan absorbansi pada 550 nm
2 gram minyak kelapa ditimbang dalam erlemeyer 25 ml
Tambahkan 4 ml buffer asetat 0,05 M pH 5,6
Tambahkan 1 ml enzim
Inkubasi pada suhu 30oC selama 60 menit
(diaktifkan dengan campuran aseton : etanol 1 : 1. sebanyak 10 ml dan digoyang secara sempurna)
Dinginkan dan dibaca pada spektofotometer dengan absorbansi pada 410 nm
Lampiran 8. Kondisi Gas Chromatografi saat melakukan pengukuran asam lemak siklopropenat
Merek : GC : Shimadzu tipe GC-17A; Detektor : Flame Ionization Detector (FID); Gas Carrier : Nitrogen (N2); Column : Supelco SP2560; Temp. Injector : 250 oC; Temp. Detector : 250 oC; Oven Temp. program :
1. Initial temp : 195 oC hold for 0.5 minute
2. Ramp 1 : 220 oC (rate 10 oC/min) hold for 6 minutes 3. Final temp : 245 oC (rate 15 oC/min) hold for 20 minutes 4. Total run time : 30.67 minutes
Column flow : 1.57 mL/min Linier velocity : 24.9 cm/sec
Lampiran 9. Prosedur analisis proksimat a. Kadar air (Takeuchi, 1988)
1. Cawan dipanaskan dalam oven (110 oC) selama 1 jam kemudian dimasukan dalam eksikator selama 30 menit dan ditimbang (A)
2. Bahan ditimbang 2-3 gram (B)
3. Cawan dan bahan dipanaskan didalam oven (110 oC) selama 4 jam kemudian dimasukan kedalam eksikator selama 30 menit lalu ditimbang ( C)
Kadar air = x 100 %
b. Kadar protein (metode semimicro-kjedahl : Takeuchi,1988)
1. Sampel ditimbang seberat 0,5-1,0 g dan dimasukan kedalam labu Kjeldahl
2. Katalis berupa K2SO45H2O dengan rasio 9:1 ditimbang sebanyak 3 g, dan dimasukan kedalam labu Kjeldahl
3. Selanjutnya ditambahkan 10 ml H2SO4 kedalam labu tersebut dan kemudian labu dipanaskan selama 3-4 jam sampai cairan dalam labu berwarna hijau
4. Larutan didinginkan, lalu ditambahkan air destilasi 30 ml, kemudian masukan larutan tersebut kedalam labu takar dan diencerkan dengan akuades sampai larutan tersebut mencapai volume 100 ml (larutan A) 5. Labu erlemeyer diisi 10 ml H2SO4 0,05 N dan ditambahkan 2-3 tetes
indicator methylen blue atau methyl red (larutan B)
6. Larutan A diambil sebanyak 5 ml da ditambahkan sebanyak 10 ml NaOH 30% yang dimasukan kedalam labu Kjeldahl. Kemudian dilakukan pemanasan dan kondensasi selama 10 menit mulai tetesan pertama pada larutan B
7. Larutan dalam labu erlemeyer dititrasi dengan o,o5 N larutan NaOH sampai terjadi perubahan warna dari merah menjadi hijau muda
Kadar protein = x 100%
Keterangan : Vs = ml 0,05 N nitran NaOH untuk sampel; Vb = ml 0,05 n nitran NaoH untuk blanko; F = factor koreksi dari 0,05 N larutan NaOH; S = bobot sampel (g); 0,0007 = setiap ml 0,05 N NaOH ekuivalen dengan 0,0007 g nitrogen; 6,25 = factor nitrogen
c. Kadar lemak (metode ether ekstraksi : Takeuchi, 1988)
1. Labu ekstraksi dipanaskan didalam oven (110 oC) selama 1 jam kemudian didinginkan dalam eksikator selama 30 menit lalu ditimbang bobot labu tersebut (A)
2. Sampel ditimbang sebanyak 1-2 g (B) dan dimasukan kedalam tabung filter lalu dipanaskan pada suhu 90-100 oC selama 2-3 jam
3. Tabung filter ditempatkan kedalam ekstrak dari alat soxlet. Kemudian disambungkan kondensor dengan labu ekstraksi yang telah diisi 100 ml petroleum eter
4. Eter dipanaskan pada labu ekstraksi dengan menggunakan water bath pada suhu 70 oC selama 16 jam
5. Labu ekstraksi dipanaskan pada suhu 100 oC kemudian ditimbang (C)
Kadar lemak = x 100 % d. Kadar abu (Takeuchi, 1988)
1. Cawan dipanaskan didalam oven (110 oC) selama 1 jam kemudian dimasukan kedalam eksikator selama 30 menit dan ditimbang (A)
2. Bahan ditimbang 2-3 g (B)
3. Cawan dan bahan dipanaskan kedalam tanur (600 oC) sampai bahan menjadi abu, kemudian dimasukan kedalam eksikator selama 30 menit lalu ditimbang (C)
Kadar abu = x 100 % e. Serat kasar (Takeuchi, 1988)
1. Kertas filter dipanaskan dalam oven selama 1 jam pada suhu 110 oC. Setelah itu didinginkan dalam eksikator lalu ditimbang (A)
2. Sampel ditimbang sebanyak 0,5 g (B) dan dimasukan kedalam erlemeyer 250 ml
3. Sebanyak 50 ml H2SO4 0,3 N dimasukan kedalam erlemeyer kemudian dipanaskan selama 30 menit. Setelah itu dimasukan 25 ml NaOH 1,5 N kedalam erlemeyer lagi, kemudian dipanaskan selama 30 menit
4. Larutan dan bahan yang telah dipanaskan kemudian disaring dalam corong buchner dan dihubungkan pada vacuum pump untuk mempercepat filtrasi
5. Larutan dan bahan yang ada dalam corong buchner dibilas secara berturut- turut 50 ml air panas, H2SO4 0,3 N, 50 ml air panas dan 25 ml aseton 6. Kertas saring dan isinya dimasukan kedalam cawan porselin, kemudian
dikeringkan selama 1 jam dan kemudian didinginkan dalam eksikator dan ditimbang (C)
7. Setelah itu dipanaskan dalam tanur 600 oC hingga berwarna putih, kemudian didinginkan dalam eksikator dan ditimbang (D)
Kadar serat = x 100 %
Lampiran 10. Jumlah sampel udang (ekor) yang diambil berdasarkan waktu pengambilan dari setiap perlakuan untuk histologi penelitian tahap pertama
No. Perlakuan Waktu (hari ke…)
1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 1. 0% TBK ts ts ts ts ts ts 1 ts ts ts ts ts 2. 10% TBK ts ts ts ts ts 1 ts ts ts ts ts mt 3. 20% TBK ts ts ts ts 1 ts ts ts ts mt mt mt 4. 30% TBK ts ts ts 1 ts ts ts ts mt mt mt mt 5. 40% TBK ts ts 1 ts ts ts ts mt mt mt mt mt
Lampiran 11. Prosedur pembuatan preparat histologi
UDANG UJI
FIKSASI :
Organ diambil dan dicuci dengan NaCl fisiologis, kemudian direndam dalam larutan fiksasi Davidson selama 24-72 jam
DEHIDRASI :
Organ direndam dalam alkohol dengan konsentrasi 70 %, 80 %, 90 %, 95 % I, 95 % II, masing-masing selama 2 jam. Lalu dalam alkohol 100 % I selama 12
jam, alkohol 100 % II selama 1 jam