Hasil
Dari hasil analisis data yang dilakukan, diperoleh bahwa pemberian kombinasi BAP dan NAA berpengaruh sangat nyata terhadap persentase munculnya tunas, jumlah tunas, panjang tunas, dan umur munculnya tunas dan hingga 6 MST, sedangkan pemberian BAP dan NAA yang tidak berpengaruh nyata terhadap peubah amatan jumlah daun dan persentase terbentuknya daun.
Persentase Munculnya Tunas (%)
Data pengamatan dan sidik ragam persentase umur munculnya tunas dapat dilihat pada Lampiran 1-3. Dari tabel sidik ragam diketahui bahwa perlakuan dari kombinasi konsentrasi BAP dan NAA secara keseluruhan berpengaruh nyata terhadap persentase munculnya tunas. Rataan persentase munculnya tunas dari perlakuan kombinasi BAP dan NAA dapat dilihat pada Tabel 1.
Tabel 1. Persentase munculnya tunas (%) dalam medium MS + kombinasi BAP dan NAA dari eksplan nodus 6 minggu setelah pengkulturan
Perlakuan Ulangan Rataan
(%)
1 2 3 4 5 6
A1 (0.5mg/l BAP+0mg/l NAA) 100 100 100 100 100 100 100a
A2 (0.5mg/l BAP+0.1mg/l NAA) 100 100 0 100 100 100 83.3a
A3 (0.5mg/l BAP+0.25mg/l NAA) 100 0 100 100 100 100 83.3a
A4 (0,5mg/l BAP+0.5mg/l NAA) 0 100 0 0 0 0 16.7b
A5 (1 mg/l BAP+0 mg/l NAA) 100 100 100 100 100 100 100a
A6 (1 mg/l BAP+0.1 mg/l NAA) 100 100 100 100 100 100 100a A7 (1 mg/l BAP+0.25 mg/l NAA) 100 100 100 0 100 100 83.3a
A8 (1 mg/l BAP+0.5 mg/l NAA) 0 0 0 0 100 100 33.3b
A9 (1.5 mg/l BAP+0 mg/l NAA) 100 100 0 0 0 0 33.3b
A10 (1.5 mg/l BAP+0.1 mg/l NAA) 100 100 100 0 100 100 83.3a
A11(1.5 mg/l BAP+0.25 mg/l NAA) 0 0 0 0 100 100 33.3b
A12 (1.5 mg/l BAP+0.5 mg/l N/AA) 100 0 0 0 0 0 16.7b
A13 (2 mg/l BAP+0 mg/l NAA) 100 100 0 100 0 0 50ab
A14 (2 mg/l BAP+0.1 mg/l NAA) 100 100 100 100 100 100 100a A15 (2 mg/l BAP+0.25 mg/l NAA) 100 100 100 100 100 100 100a
A16 (2 mg/l BAP+0.5 mg/l NAA) 0 0 0 0 0 100 16.7b
Rataan 75 68.75 50 50 68.75 75 64.58
Keterangan: Angka-angka yang diikuti huruf yang sama pada baris yang sama menunjukkan tidak berbeda nyata pada Uji Jarak Berganda Duncan pada taraf 5 %.
a. b.
Gambar 2. Induksi tunas dari eksplan buku pada media MS dengan perlakuan
(a) A10 (1.5 mg/l BAP + 0.1 mg/l NAA) dan (b) A12 (1.5 mg/l BAP + 0.5 mg/l NAA) setelah 6 MST.
Tabel 1. dapat dilihat bahwa persentase munculnya tunas pada pemberian kombinasi BAP dan NAA terdapat pada perlakuan A1, A2, A3, A5, A6, A7, A10, A14, A15 berbeda nyata dengan perlakuan A4, A8, A9, A11, A12, A16 dan tidak berpengaruh nyata terhadap perlakuan A13.
Jumlah Tunas (tunas)
Data pengamatan dan sidik ragam jumlah tunas dapat dilihat pada Lampiran 4-6. Dari tabel sidik ragam diketahui bahwa perlakuan kombinasi BAP dan NAA memiliki pengaruh yang nyata namun dengan tingkat pengaruh konsentrasi yang berbeda-beda. Rataan jumlah tunas dari perlakuan konsentrasi BAP dan NAA dapat dilihat pada Tabel 2.
Tabel 2. Jumlah tunas (tunas) dalam medium MS + kombinasi BAP dan NAA dari eksplan nodus 6 minggu setelah pengkulturan
Perlakuan Ulangan Rataan
(tunas)
1 2 3 4 5 6
A1 (0.5mg/l BAP+0mg/l NAA) 1.00 1.00 1.00 1.00 1.00 1.00 1.00a A2 (0.5mg/l BAP+0.1mg/l NAA) 1.00 1.00 0.00 1.00 1.00 1.00 0.83a A3 (0.5mg/l BAP+0.25mg/l NAA) 1.00 0.00 1.00 1.00 1.00 1.00 0.83a A4 (0,5mg/l BAP+0.5mg/l NAA) 0.00 1.00 0.00 0.00 0.00 0.00 0.17b A5 (1 mg/l BAP+0 mg/l NAA) 1.00 1.00 1.00 1.00 1.00 1.00 1.00a A6 (1 mg/l BAP+0.1 mg/l NAA) 1.00 1.00 1.00 1.00 1.00 1.00 1.00a A7 (1 mg/l BAP+0.25 mg/l NAA) 1.00 1.00 1.00 0.00 1.00 1.00 0.83a A8 (1 mg/l BAP+0.5 mg/l NAA) 0.00 0.00 0.00 0.00 1.00 1.00 0.33b A9 (1.5 mg/l BAP+0 mg/l NAA) 1.00 1.00 0.00 0.00 0.00 0.00 0.33ab A10 (1.5 mg/l BAP+0.1 mg/l NAA) 1.00 1.00 1.00 0.00 1.00 1.00 0.83a A11(1.5 mg/l BAP+0.25 mg/l NAA) 1.00 1.00 0.00 1.00 1.00 1.00 0.83a A12 (1.5 mg/l BAP+0.5 mg/l NAA) 1.00 0.00 0.00 0.00 0.00 1.00 0.33b A13 (2 mg/l BAP+0 mg/l NAA) 1.00 1.00 0.00 1.00 0.00 0.00 0.50a A14 (2 mg/l BAP+0.1 mg/l NAA) 1.00 1.00 1.00 1.00 1.00 1.00 1.00a A15 (2 mg/l BAP+0.25 mg/l NAA) 1.00 1.00 1.00 1.00 1.00 1.00 1.00a A16 (2 mg/l BAP+0.5 mg/l NAA) 0.00 0.00 0.00 0.00 0.00 1.00 0.17b
Rataan 0.81 0.75 0.50 0.56 0.69 0.81 0.69
Keterangan: Angka-angka yang diikuti huruf yang sama pada baris yang sama menunjukkan berbeda nyata pada Uji Jarak Berganda Duncan pada taraf 5 %.
Tabel 2. dapat dilihat bahwa jumlah tunas dalam pemberian kombinasi BAP dan NAA terdapat pada perlakuan A1, A2, A3, A5, A6, A7, A10, A11, A13, A14, A15 berbeda nyata dengan perlakuan A4, A8, A12, A16 dan tidak berpengaruh nyata terhadap perlakuan A9.
Panjang Tunas (cm)
Data pengamatan dan sidik ragam panjang tunas dapat dilihat pada Lampiran 7-9. Dari tabel sidik ragam diketahui bahwa perlakuan dari kombinasi BAP dan NAA secara keseluruhan berpengaruh sangat nyata terhadap panjang tunas. Rataan panjang tunas dari perlakuan kombinasi BAP dan NAA dapat dilihat pada Tabel 3.
Tabel 3. Panjang tunas (cm) dalam medium MS + kombinasi BAP dan NAA dari eksplan nodus 6 minggu setelah pengkulturan
Perlakuan Ulangan Rataan
(cm) 1 2 3 4 5 6 A1 (0.5mg/l BAP+0mg/l NAA) 0.30 0.10 0.20 0.10 0.10 0.20 0.17b A2 (0.5mg/l BAP+0.1mg/l NAA) 1.10 0.40 0.00 0.30 0.20 0.30 0.38b A3 (0.5mg/l BAP+0.25mg/l NAA) 0.10 0.00 0.10 0.30 0.20 0.20 0.15b A4 (0.5mg/l BAP+0.5mg/l NAA) 0.00 0.10 0.00 0.00 0.00 0.00 0.02c A5 (1 mg/l BAP+0 mg/l NAA) 0.80 0.60 0.40 0.20 0.10 0.40 0.42b A6 (1 mg/l BAP+0.1 mg/l NAA) 0.10 0.10 0.30 0.20 0.20 0.10 0.17b A7 (1 mg/l BAP+0.25 mg/l NAA) 0.10 0.10 0.20 0.00 0.90 0.50 0.30b A8 (1 mg/l BAP+0.5 mg/l NAA) 0.00 0.00 0.00 0.00 0.10 0.10 0.03b A9 (1.5 mg/l BAP+ 0 mg/l NAA) 0.10 0.10 0.10 0.00 0.00 0.00 0.05b A10 (1.5 mg/l BAP+0.1 mg/l NAA) 3.50 0.80 5.50 0.00 0.60 3.80 2.37a A11(1.5 mg/l BAP+0.25 mg/l NAA) 0.10 0.10 0.10 0.20 0.90 0.20 0.27b A12 (1.5 mg/l BAP+0.5 mg/l NAA) 0.20 0.00 0.00 0.00 0.00 0.00 0.03b A13 (2 mg/l BAP+0 mg/l NAA) 0.40 0.20 0.00 0.20 0.00 0.00 0.13b A14 (2 mg/l BAP+0.1 mg/l NAA) 0.30 0.10 0.20 0.10 0.10 0.30 0.18b A15 (2 mg/l BAP+0.25 mg/l NAA) 0.50 0.10 0.50 0.40 0.20 0.10 0.30b A16 (2 mg/l BAP+0.5 mg/l NAA) 0.00 0.00 0.00 0.00 0.00 0.70 0.12b
Rataan 0.48 0.18 0.48 0.13 0.23 0.43 0.32
Keterangan: Angka-angka yang diikuti huruf yang sama pada baris yang sama menunjukkan tidak berbeda nyata pada Uji Jarak Berganda Duncan pada taraf 5 %.
a. b.
Gambar 3. Induksi tunas dari eksplan buku pada media MS dengan perlakuan
(a) A10 (1.5 mg/l BAP + 0.1 mg/l NAA) dan (b) A15 (2 mg/l BAP + 0.25 mg/l NAA) setelah 6 MST.
Tabel 3. dapat dilihat bahwa panjang tunas tertinggi pada pemberian kombinasi BAP dan NAA terdapat pada perlakuan A10 (2.37 cm) dan berbeda
nyata dengan perlakuan lainnya. Selain dari perlakuan A10, semua perlakuan lainnya tidak berbeda nyata.
Persentase Terbentuknya Daun (%)
Data pengamatan persentase terbentuknya daun dapat dilihat pada Lampiran 10-12. Dari hasil pengamatan ditandai dengan terbentuknya daun dari setiap eksplan. Rataan persentase terbentuknya daun dari perlakuan kombinasi BAP dan NAA dapat dilihat pada Tabel 4.
Tabel 4. Persentase terbentuknya daun (%) dalam medium MS + kombinasi BAP dan NAA dari eksplan nodus 6 minggu setelah pengkulturan
Perlakuan Ulangan Rataan
(%) 1 2 3 4 5 6 A1 (0.5mg/l BAP+0mg/l NAA) 0 0 0 0 0 0 0 A2 (0.5mg/l BAP+0.1mg/l NAA) 0 0 0 0 0 0 0 A3 (0.5mg/l BAP+0.25mg/l NAA) 0 0 0 0 0 0 0 A4 (0.5mg/l BAP+0.5mg/l NAA) 0 0 0 0 0 0 0 A5 (1 mg/l BAP+0 mg/l NAA) 1 0 0 0 0 0 16.7 A6 (1 mg/l BAP+0.1 mg/l NAA) 0 0 0 0 0 0 0 A7 (1 mg/l BAP+0.25 mg/l NAA) 0 0 0 0 1 0 16.7 A8 (1 mg/l BAP+0.5 mg/l NAA) 0 0 0 0 0 0 0 A9 (1.5 mg/l BAP+0 mg/l NAA) 0 0 0 0 0 0 0
A10 (1.5 mg/l BAP+0.1 mg/l NAA) 1 0 1 0 0 0 33.3
A11(1.5 mg/l BAP+0.25 mg/l NAA) 0 0 0 0 0 0 0
A12 (1.5 mg/l BAP+0.5 mg/l NAA) 0 0 0 0 0 0 0
A13 (2 mg/l BAP+0 mg/l NAA) 0 0 0 0 0 0 0
A14 (2 mg/l BAP+0.1 mg/l NAA) 0 0 0 0 0 0 0
A15 (2 mg/l BAP+0.25 mg/l NAA) 0 0 0 0 0 0 0
A16 (2 mg/l BAP+0.5 mg/l NAA) 0 0 0 0 0 0 0
Rataan 12.5 0 6.25 0 6.25 0 66.67
Jumlah Daun (helai)
Data pengamatan dan sidik ragam jumlah daun dapat dilihat pada Lampiran 13-15. Hasil analisis sidik ragam menunjukkan bahwa perlakuan kombinasi BAP dan NAA tidak berpengaruh nyata terhadap seluruh jumlah daun, rataan jumlah daun dapat dilihat pada Tabel 5.
Tabel 5. Jumlah daun (helai) dalam medium MS + kombinasi BAP dan NAA dari eksplan nodus 6 minggu setelah pengkulturan
Perlakuan Ulangan Rataan
1 2 3 4 5 6 A1 (0.5mg/l BAP+0mg/l NAA) 0 0 0 0 0 0 0 A2 (0.5mg/l BAP+0.1mg/l NAA) 0 0 0 0 0 0 0 A3 (0.5mg/l BAP+0.25mg/l NAA) 0 0 0 0 0 0 0 A4 (0.5mg/l BAP+0.5mg/l NAA) 0 0 0 0 0 0 0 A5 (1 mg/l BAP+0 mg/l NAA) 1 0 0 0 0 0 0.167 A6 (1 mg/l BAP+0.1 mg/l NAA) 0 0 0 0 0 0 0 A7 (1 mg/l BAP+0.25 mg/l NAA) 0 0 0 0 1 0 0.167 A8 (1 mg/l BAP+0.5 mg/l NAA) 0 0 0 0 0 0 0 A9 (1.5 mg/l BAP+0 mg/l NAA) 0 0 0 0 0 0 0
A10 (1.5 mg/l BAP+0.1 mg/l NAA) 1 0 4 0 0 0 0.833
A11(1.5 mg/l BAP+0.25 mg/l NAA) 0 0 0 0 0 0 0
A12 (1.5 mg/l BAP+0.5 mg/l NAA) 0 0 0 0 0 0 0
A13 (2 mg/l BAP+0 mg/l NAA) 0 0 0 0 0 0 0
A14 (2 mg/l BAP+0.1 mg/l NAA) 0 0 0 0 0 0 0
A15 (2 mg/l BAP+0.25 mg/l NAA) 0 0 0 0 0 0 0
A16 (2 mg/l BAP+0.5 mg/l NAA) 0 0 0 0 0 0 0
Rataan 0.125 0 0.25 0 0.0625 0 0.0729
Gambar 4. Induksi ketiga tunas dari eksplan buku (nodus) pada media MS dengan perlakuan A10 (1.5 mg/l BAP + 0.1 mg/l NAA) setelah 6 MST.
Umur Munculnya Tunas(hari)
Data pengamatan dan sidik ragam umur munculnya tunas dapat dilihat pada Lampiran 16. Rataan umur munculnya tunas dari perlakuan kombinasi BAP dan NAA dapat dilihat pada Tabel 6.
Tabel 6. Umur munculnya tunas (hari) dalam medium MS + kombinasi BAP dan NAA dari eksplan nodus 3 minggu setelah pengkulturan
Perlakuan Ulangan Rataan
(hari) 1 2 3 4 5 6 A1 (0.5mg/l BAP+0mg/l NAA) 20 20 20 20 20 20 20 ± 0 A2 (0.5mg/l BAP+0.1mg/l NAA) 21 21 0 21 21 21 21 ± 0 A3 (0.5mg/l BAP+0.25mg/l NAA) 21 0 21 21 21 21 21 ± 0 A4 (0.5mg/l BAP+0.5mg/l NAA) 21 21 21 21 21 21 21 ± 0 A5 (1 mg/l BAP+0 mg/l NAA) 21 21 22 22 21 21 21 ± 0.52 A6 (1 mg/l BAP+0.1 mg/l NAA) 21 21 21 21 21 21 21 ± 0 A7 (1 mg/l BAP+0.25 mg/l NAA) 21 21 21 0 21 21 21 ± 0 A8 (1 mg/l BAP+0.5 mg/l NAA) 0 0 0 0 21 21 21 ± 0 A9 (1.5 mg/l BAP+ 0 mg/l NAA) 22 22 0 0 0 0 22 ± 0
A10 (1.5 mg/l BAP+0.1 mg/l NAA) 21 21 21 0 21 21 21 ± 0
A11(1.5 mg/l BAP+0.25 mg/l NAA) 0 0 0 0 20 20 20 ± 0
A12 (1.5 mg/l BAP+0.5 mg/l NAA) 22 0 0 0 0 0 22 ± 0
A13 (2 mg/l BAP+0 mg/l NAA) 21 21 20 20 0 0 21 ± 0.58
A14 (2 mg/l BAP+0.1 mg/l NAA) 20 21 21 21 20 20 21 ± 0.55 A15 (2 mg/l BAP+0.25 mg/l NAA) 21 21 21 21 21 21 21 ± 0
A16 (2 mg/l BAP+0.5 mg/l NAA) 0 0 0 0 0 22 22 ± 0
a. b.
Gambar 5. Induksi tunas dari eksplan buku (a) pada media MS dengan perlakuan
A6 (1 mg/l BAP + 0.1 mg/l NAA) dan (b) A10 (1.5 mg/l BAP + 0.2 mg/l NAA) pada umur 3 MST.
Pembahasan
Pengaruh pemberian BAP dan NAA terhadap induksi tunas tanaman karet Dari hasil analisis data statistik dapat diketahui bahwa perlakuan kombinasi BAP dan NAA berbeda nyata terhadap peubah amatan persentase munculnya tunas, jumlah tunas, panjang tunas, umur munculnya tunas dan tidak berbeda nyata terhadap peubah amatan persentase terbentuknya daun dan jumlah daun. Hal ini terlihat dari rataan setiap peubah amatan.
Dari hasil penelitian yang telah dilakukan dapat diperoleh bahwa persentase munculnya tunas pada tanaman karet bervariasi pada setiap perlakuan.
Pada peubah amatan ini, rataan tertinggi terdapat pada perlakuan A1 (0,5 mg/l BAP+ 0 mg/l NAA), A5 (1 mg/l BAP + 0 mg/l NAA), A6 (1 mg/l BAP + 0.1 mg/l NAA), A14 (2 mg/l BAP + 0.1 mg/l NAA), A15 (2 mg/l BAP + 0.25 mg/l NAA) yaitu sebanyak 100% dan rataan terendah
terdapat pada perlakuan A4 (0.5 mg/l BAP + 0.5 mg/l NAA), A12 (1.5 mg/l BAP + 0.5mg/l NAA), A16 (2 mg/l BAP + 0.5 mg/l NAA). Hal ini
menunjukkan bahwa tingginya persentase munculnya tunas pada sebagian perlakuan terdapat pada konsentrasi BAP yang beragam dan NAA yang lebih rendah dimungkinkan karena secara fisiologis dari kandungan endogen dari eksplan tanaman karet sudah terpenuhi untuk mendorong munculnya tunas walaupun BAP dan NAA dalam kondisi yang relatif rendah, eksplan karet tetap dapat membentuk tunas secara bertahap dan rendahnya pada sebagian perlakuan diduga terlalu tingginya salah satu hormon sehingga menyebabkan kelebihan senyawa sintetik untuk mendorong kemunculan tunas. Hal ini didukung oleh pernyataan Manurung (1995) yang menyatakan bahwa pertumbuhan tanaman secara alami dikendalikan oleh hormon endogen dan hormon ini terdapat pada
tanaman dalam jumlah yang kecil. Pemberian senyawa-senyawa sintetik tersebut akan mengubah keseimbangan hormon dalam tanaman hingga menimbulkan suatu respon tertentu.
Pada peubah amatan jumlah tunas dengan pemberian kombinasi konsentrasi BAP dan NAA pada perlakuan A1 (0,5 mg/l BAP + 0 mg/l NAA),
A5 (1 mg/l BAP + 0 mg/l NAA), A6 (1 mg/l BAP + 0.1 mg/l NAA), A14 (2 mg/l BAP + 0.1 mg/l NAA), A15 (2 mg/l BAP + 0.25 mg/l NAA)
memiliki rataan jumlah tunas sebanyak 1 tunas. Dari seluruh perlakuan tersebut diketahui bahwa seluruh konsentrasi BAP (sitokinin) berpengaruh terhadap pembentukan tunas dan didukung dengan konsentrasi NAA (auksin) yang tidak terlalu tinggi, karena auksin biasanya bersifat menghambat kehadiran tunas. Menurut Wattimena, et al, (1992) bahwa sitokinin berfungsi sebagai perangsang pertumbuhan tunas, berpengaruh terhadap metabolisme sel. Dan yang diungkapkan oleh Fereol, et al, (2002) auksin umumnya menghambat pertumbuhan tunas, sedangkan kombinasi konsentrasi sitokinin yang tinggi dengan auksin yang rendah penting dalam pembentukan tunas dan daun. Sehingga kedua golongan zat pengatur tumbuh ini berperan dalam menunjang pertumbuhan jaringan apabila pada konsentrasi yang tepat.
Dari hasil penelitian yang telah dilakukan dapat diperoleh bahwa panjang tunas tanaman karet pada pemberian kombinasi BAP dan NAA memiliki rasio pertumbuhan yang cukup berbeda. Rataan tertinggi terdapat pada perlakuan A10 (1.5 mg/l BAP + 0.1 mg/l NAA) yaitu 2.37 cm dan berbeda nyata pada seluruh perlakuan lainnya. Hal ini diduga level sitokinin dan auksin yang diserap oleh eksplan tepat serta tidak dalam level yang berlebihan untuk pertumbuhan
panjang tunas. Karena menurut Gunawan (1985) level auksin dalam eksplan tergantung bagian tanaman yang diambil dan jenis tanamannya. Sehingga sulit menetukan formula terbaik pada setiap penggunaan. Armini, et al, (1991) menambahkan bahwa sitokinin dan auksin memiliki peranan yang sangat penting dalam menginduksi tunas adventif. Nisbah keduanya akan menentukan pembentukan tunas adventif dan akar.
Dari hasil analisis data secara statistik diketahui bahwa persentase terbentuknya daun pada kombinasi BAP dan NAA belum meunjukkan pengaruh yang nyata. Hal ini diduga akibat pemberian zat pengatur tumbuh belum sesuai untuk mendukung proses terbentuknya daun.Walaupun Gunatilleke dan Chandra (1988) telah menyatakan bahwa tumbuhnya tunas terminal lebih cepat dari tunas aksilar, daun membuka dan berubah menjadi hijau. Namun pada perlakuan yang diberikan belum ada yang mendukung terbentuknya daun secara sempurna. Karena dalam penetuan kombinasi zpt bukanlah hal yang mudah. Fereol, et al, (2002) menyatakan bahwa kombinasi konsentrasi sitokinin tinggi dengan auksin yang rendah penting dalam pembentukan tunas dan daun. Dalam kultur jaringan kedua golongan zpt ini terbukti berperan dalam menunjang pertumbuhan jaringan apabila digunakan dalam konsentrasi yang tepat.
Dari hasil analisis data diketahui bahwa pemberian kombinasi BAP dan NAA belum menunjukkan pengaruh yang nyata terhadap peubah amatan jumlah daun. Hal ini memliki dugaan yang tidak jauh berbeda dengan persentase terbentuknya daun yaitu belum sesuainya taraf konsentrasi yang diberikan pada eksplan tanaman karet dan perlunya kegiatan subkultur yang berulang untuk meningkatkan penyerapan senyawa sintetik pada fisiologis dan morfologis
eksplan karet. Menurut Davies (1987) bahwa pengaruh auksin dan hormon tumbuhan lainnya dalam mengatur pertumbuhan atau pembentukan daun belum diketahui dengan jelas. Sedangkan kerja atau peranan sitokinin sendiri belum dimengerti dan tidak cukup bukti-bukti yang jelas untuk menguatkan hasil dari suatu proses biokima.
Dari hasil analisi data secara statistik pada peubah amatan umur munculnya tunas diperoleh rataan munculnya tunas berkisar 20-22 hari setelah tanam atau pada umur 3 MST. Menurut Gunatilleke dan Chandra (1988) pada penelitiannya bahwa tumbuhnya tunas aksilar dilihat dalam waktu satu minggu pada semua media dan tunas terminal tumbuh lebih cepat dari tunas aksilar. Namun pengaruh kombinasi konsentrasi BAP dan NAA juga sangat mempengaruhi umur munculnya tunas tersebut, karena Gunawan (1995) menyatakan bahwa BAP merupakan salah satu sitokinin sintetik yang aktif dan memiliki daya rangsang yang lama karena tidak mudah dirombak oleh enzim dalam tanaman.
Dari hasil analisis data secara statistik diketahui bahwa terdapat beberapa kombinasi perlakuan BAP dan NAA yang efektif dalam menumbuhkan tunas pada eksplan tanaman karet sehingga menunjukkan pengaruh nyata. Hal ini dikarenakan tingkat kombinasi konsentrasi pemberian auksin dan sitokinin tidak keseluruhannya tersedia di dalam eksplan tanaman karet dan adanya konsentrasi yang belum efektif untuk penginduksian tunas. Hal ini menurut Gunawan (1995) yang mengemukakan bahwa level auksin dalam eksplan tergantung dari bagian tanaman yang diambil dan jenis tanamannya. Oleh karena itu sulit untuk menetukan suatu formula terbaik pada setiap penggunaan. Ditambahkan oleh
Hendaryono dan Wijayani (1994) bahwa ZPT bila diberikan dalam konsentrasi tinggi akan menghambat pertumbuhan tanaman.
Dari hasil analisis data secara statistik diketahui bahwa pada pemberian
konsentrasi BAP yang rendah (0,5 mg/l) yang dikombinasikan dengan NAA (0 mg/l, 0.1 mg/l, 0.25 mg/l, 0.5 mg/l) cenderung memberikan pengaruh
yang nyata terhadap jumlah tunas. Pada konsentrasi BAP (1 mg/l) yang dikombinasikan dengan NAA (0 mg/l, 0.1 mg/l, 0.25 mg/l, 0.5 mg/l) memberikan pengaruh yang nyata terhadap persentase munculnya tunas dan jumlah tunas.
Pada konsentrasi BAP (1.5 mg/l) yang yang dikombinasikan dengan NAA (0 mg/l, 0.1 mg/l, 0.25 mg/l, 0.5 mg/l) menunjukkan hasil pada panjang
tunas yang lebih tinggi dan berpengaruh nyata dibandingkan pada peubah amatan yang lain. Begitu pula pada persentase terbentuknya daun serta jumlah daun yang menunjukkan pengaruh penginduksian namun pada kedua peubah amatan ini belum menunjukkan pengaruh yang nyata pada seluruh eksplan. Sedangkan pada konsentrasi BAP (2 mg/l) yang dikombinasikan dengan NAA (0 mg/l, 0.1 mg/l, 0.25 mg/l, 0.5 mg/l) memberikan pengaruh yang nyata untuk sebagian perlakuan pada peubah amatan persentase munculnya tunas dan jumlah tunas. BAP termasuk ZPT dari golongan sitokinin yang digunakan sebagai perangsang pertumbuhan tunas dan morfogenesis dalam kultur jaringan. Namun penggunaan BAP dalam rasio konsentrasi yang tinggi akan menyebabkan masa penginduksian lebih lama. Menurut Wattimena, et al., (1992) bahwa sitokinin (BAP) berfungsi sebagai perangsang pertumbuhan tunas, berpengaruh terhadap metabolisme sel, merangsang sel. Aktivitas sitokinin tergantung juga dari aktivitas fitohormon
lainnya, termasuk auksin baik dalam efek menghambat maupun efek yang mendorong pembelahan sel.
Dari hasil analisis data secara statistik diketahui bahwa pada pemberian konsentrasi NAA (0.5 mg/l) dengan seluruh kombinasi BAP memberikan pengaruh yang tidak nyata terhadap seluruh peubah amatan. Hal ini dikarenakan auksin umumnya menghambat pertumbuhan tunas bila dalam konsentrasi yang terlalu tinggi. Sehingga antara sitokinin dan auksin tidak saling menunjang pertumbuhan jaringan. Menurut Zulkarnain (2009) auksin disintesis secara alamiah di dalam tubuh tanaman, namun senyawa ini mudah mengalami degradasi akibat pengaruh cahaya dan oksidasi enzimatik. Sehingga menyebabkan NAA ini tidak menunjukkan pengaruh yang baik pada seluruh perlakuan.
Dari hasil penelitian didapat bahwa teknik microcutting menggunakan jaringan meristem mendapatkan hasil yang baik. Teknik ini mempermudah pemulia tanaman dalam mempercepat pencapaian hasil tanaman dan sistem perakaran tanaman pada teknik ini menyerupai sistem perakaran tanaman karet secara konvensional. Hal ini didukung oleh literatur Hendaryono dan Wijayani (1994) menyatakan kultur jaringan lebih besar persentase keberhasilannya bila menggunakan jaringan meristem yang merupakan jaringan muda yang selalu membelah, dindingnya tipis belum mempunyai penebalan dari zat pectin, sehingga diperkiran mempunyai zat hormon yang mengatur pembelahan.
Dari hasil penelitian diketahui bahwa lingkungan in vitro mempunyai peranan penting serta bahan dan alat, bahan sterilisasi yang digunakan juga mempengaruhi pertumbuhan eksplan yang akan dikulturkan. Pada tanaman karet
memiliki zat phenolat yang tinggi, sehingga dianjurkan setelah pemotongan eksplan tidak dibiarkan dalam jangka waktu yang lama karena akan merusak jaringan tanaman karet. Pengaturan pH dan temperatur merupakan faktor utama dari lingkungan in vitro sebagai pemicu kebehasilan. Hal ini didukung oleh literatur Hendaryono dan Wijayani (1994) menyatakan sel-sel tanaman membutuhkan pH sedikit asam antara 5,5-5.8 dengan temperatur yang dibutuhkan berkisar 20o-30o C. dengan temperatur optimum untuk pertumbuhan kalus adalah sekitar 25oC. Faktor lain diperkuat dengan pernyataan Yusnita (2003) cahaya
dinyatakan dengan dimensi lama penyinaran, intensitas dan kualitasnya. Prof Murashige menyarankan untuk mengasumsikan kebutuhan lama penyinaran.
Kualitas cahaya mempengaruhi arah diferensiasi jaringan.
Berdasarkan hasil penelitian diketahui bahwa pemberian BAP (0.5 mg/l, 1 mg/l, 1.5 mg/l, 2 mg/l) pada media MS dengan kombinasi NAA (0 mg/l, 0.1 mg/l, 0.25 mg/l, 0.5 mg/l) belum menghasilkan pengaruh yang efektif untuk menginduksi tunas mikro tanaman karet. Pada konsentrasi 1 mg/l BAP dan 0 mg/l NAA merupakan perlakuan yang tergolong memberikan respon yang cukup optimal terhadap kemunculan tunas. Menurut Dickson, dkk (2011) pada percobaannya dalam medium MS untuk kultur embrio tanaman karet dengan perlakuan BAP (0.025 mg/l, 0.05 mg/l. 0.075 mg/l, 0.1 mg/l, 0.15 mg/l) dengan kombinasi 0.01 mg/l NAA menghasilkan planlet yang tumbuh dengan baik begitupula pada produksi tunas dan akar lateral. Tanaman karet dapat tumbuh tanpa hormon namun tidak dapat memproduksi akar tunggang. Untuk hasil yang optimum pada propagasi tanaman karet digunakan 30 g/l sukrosa dan 7gr/l difco agar. Dari kelima kombinasi ini dihasilkan pertumbuhan tunas dan akar yang baik
pada perlakuan 0.075 mg/l BAP dan 0.01 mg/l NAA, Dickson, dkk menyatakan harus lebih banyak lagi penemuan yang dilakukan untuk mendapatkan paduan yang tepat dalam propagasi karet serta penggunaan sitokinin dan auksin yang tidak terlalu tinggi pada media MS.
Dari hasil penelitian diperoleh kombinasi BAP dan NAA yang terbaik dalam induksi tunas tanaman karet yang terdapat pada konsentrasi BAP 1 mg/l + NAA 0 mg/l pada medium MS. Kombinasi ini menghasilkan jumlah tunas dengan rataan yaitu 1 buah tunas, panjang tunas dengan rataan yaitu 0.42 cm, serta umur munculnya tunas yang tepat dengan rataan ±21 hari.. Hal ini menunjukkan bahwa pada pemberian konsentrasi BAP yang tidak terlalu tinggi dan tanpa pemberian auksin memberikan hasil yang baik. Terbukti bahwa tidak diperlukan konsentrasi auksin yang tinggi guna mencegah terjadinya hambatan pertumbuhan tunas dan daun. Hal ini sesuai dengan pernyataan Fereol, et al., (2002) yang menyatakan bahwa auksin umumnya menghambat pertumbuhan tunas, sedangkan kombinasi konsentrasi sitokinin yang tinggi dengan auksin rendah penting dalam pembentukan tunas dan daun. Dalam kultur jaringan kedua golongan zat pengatur tumbuh ini terbukti berperan dalam menunjang pertumbuhan jaringan apabila digunakan pada konsentrasi yang tepat. Ditambah pernyataan Wattimena, et al, (1992) yang menyatakan bahwa aktivitas sitokinin tergantung juga dari aktivitas fitohormon lainnya, terutama auksin, baik dalam efek menghambat maupun efek mendorong pembelahan sel.
Dari hasil penelitian yang dihasilkan terdapat pernyataan bahwa tunas tanaman karet dengan menggunakan media MS cenderung stabil untuk keseluruhan perlakuan dilihat dari persentase munculnya tunas, jumlah tunas
yang berimbang dari setiap perlakuan, serta umur munculnya tunas dengan rataan ± 21 hari. Hal ini diduga kombinasi konsentrasi auksin dan sitokinin yang tidak berlebihan serta homogennya eksplan yang digunakan dan tanaman karet merupakan tanaman keras berkayu yang cenderung sulit untuk ditembus jaringannya. Respon ini tergolong tepat berdasarkan variabel yang digunakan. Menurut Gunatilleke dan Chandra (1988) tumbuhnya tunas aksilar dilihat dalam waktu seminggu pada semua media dan tunas terminal tumbuh lebih cepat dari tunas aksilar. Daun membuka dan berubah menjadi hijau. Respon yang berulang pada setiap perlakuan yaitu pada variabel yang digunakan. Namun pada penelitian cenderung lebih lambat dalam pembentukan daun. Hal ini dinyatakan pula oleh Paranjothy dan Gandhimati (1975) yang menyatakan bahwa upaya pertama mereka pada kultur pucuk karet. Mereka mampu mengkulturkan ujung tunas dari bibit yang tumbuh dalam kultur aseptik pada modifikasi media MS dan pada tunas tidak didapatkan hasil apapun oleh mereka.
KESIMPULAN DAN SARAN Kesimpulan
BAP dan NAA menunjukkan bahwa zat pengatur tumbuh pada golongan ini tepat dengan interval konsentrasi yang sesuai.
Kombinasi konsentrasi BAP 0.5 mg/l, 1 mg/l, 1.5 mg/l, dan 2 mg/l dengan NAA 0 mg/l, 0.1 mg/l, 0.25 mg/l, dan 0.5 mg/l pada media MS menunjukkan pengaruh yang berbeda nyata terhadap persentase munculnya tunas, jumlah tunas, panjang tunas dan umur munculnya tunas, dengan hasil terbaik pada perlakuan A5 (BAP 1 mg/l + NAA 0 mg/l).
Pemberian kombinasi perlakuan BAP 1.5 mg/l dan NAA 0.1 mg/l memberikan respon panjang tunas yang baik dan terjadinya pertumbuhan daun.
Saran
Sebaiknya dilakukan penelitian lanjutan dengan menggunakan kombinasi konsentrasi BAP (1-1.5 mg/l) dan NAA (<0.5 mg/l) untuk mendapatkan pengaruh induksi eksplan tanaman karet yang lebih optimum.
