Kesimpulan
Keragaman spesies cendawan entomopatogen yang ditemukan pada sumber inokulum serangga hama mati terinfeksi di lapangan lebih tinggi dibandingkan yang ditemukan dari sumber inokulum yang berasal dari tanah dan pasir. Spesies cendawan yang ditemukan pada berbagai inang dan inokulum di alam adalah:
Metarhizium anisopliae (Metsch.) Sorok, Metarhizium brunneum Petch,
Beauveria bassiana (Bals.) Vuill., Myrothecium roridum Tode ExFR,Aspergillus flavus Link., Penicillium citrinum Thom., Fusarium oxysporum Link, Fusarium solani Link., Verticilium lecanii (Zimmermann) dan Paecilomyces fumosoroseus (Wize) Brown dan Smith. Uji patogenisitas mengindikasikan umumnya cendawan
yang ditemukan bersifat patogen terhadap rayap tanah C. gestroi. Spesies M.
anisopliae dari inang penghisap polong, M. brunneum dari pasir, B. bassiana dari
walang sangit, M. roridum dari tanah, F. oxysporum dari ulat grayak, dan A. flavus
dari rayap tanah, pada kerapatan 107 konidia/ml dapat menyebabkan mortalitas
100 % dalam waktu 6 hari.
Pada uji keefektifan dengan perlakuanbeberapa kerapatan konidia, ternyata
M. brunneum mampu menyebabkan mortalitas lebih dari 80% pada kerapatan
5.105 konidia/ml dan memiliki LC50 paling rendah (1.8 x 105 konidia/ml)
kemudian diikuti oleh M. anisopliae, B. bassiana, F. oxysporum dan A. flavus.
Metode kontak lebih cepat mematikan rayap tanah Coptotermes spp.
dibandingkan metode pengumpanan; metode kontak mempunyai LT50 2,01 hari
sedangkan metode pengumpanan mempunyai LT50 = 4,83 hari.
Pada uji laboratorium dengan penularan pada rayap C. gestroi, mortalitas
meningkat seiring dengan meningkatnya proposi vektor di dalam unit percobaan dan lamanya pengamatan. Dengan penggunaan rayap vektor sampai dengan 10%
dalam 15 hari pengamatan, M. anisopliae, M. brunneum dan B. bassiana mampu
menyebabkan mortalitas C. gestroi lebih dari 90% sedangkan kontrol hanya
sebesar 5%. Perlakuan dengan 10% vektor diinokulasi dengan M. brunneum
89
13.25%) dan penurunan berat contoh uji 11,27% (kontrol 47,82%) setelah 15 hari inokulasi.
Serangkaian penelitian yang telah dilakukan dapat diarahkan pada pengujian yang potensial sebagai langkah awal untuk mencapai paket teknologi pemanfaatan
cendawan entomopatogen untuk pengendalian rayap tanah Coptotermes spp. di
Indonesia.
Saran
Penelitian ini perlu dilanjutkan pada uji semi lapangan dengan populasi rayap yang lebih banyak dan pada koloni rayap di lapangan, karena hasil penelitian pada laboratorium sering menunjukkan hasil yang tidak stabil jika diterapkan di lapangan. Sehubungan dengan keragaman virulensi antar isolat
dalam spesies yang sama, perlu dilakukan pengujian terhadap isolat Metarhizium
spp. dan Beauveria bassiana yang berasal dari berbagai sumber inokulum dengan
kondisi iklim dan topografi yang berbeda di Indonesia. Untuk tujuan komersil perlu penelitian yang intensif tentang pembuatan formulasi biotermitisida
berbasiskan isolat cendawan entomopatogen Metarhizium brunneum, Metarhizium
anisopliae dan Beauveria bassiana. Metode pengendalian dengan menggunakan individu vektor dapat dikembangkan.
and Intra-Specific Variation in Destruxin Production by Insect Pathogenic Metharhizium spp., and Its Significance to Pathogenesis. Crop Protection Unit, University of Reading United Kingdom Mycopathologia, 104(4): 447-452
Ansari MA, Vestergaard S, Tirry L, Moens M. 2004. Selection of a Highly
Virulent Fungal Isolat, Metarhizium anisopliae CLO 53, for Controlling
Hoplia philanthus, J. Invertebr Pathol 95:89-96.
Bakti D. 2004. Pengendalian Rayap Coptotermes curvignathus Holmgren
Menggunakan Nematoda Steinernema carpocapsae Weiser dalam Sekala
Laboratorium. Jurnal Natur Indonesia 6 (2):81-83.
Barnett HL, Hunter BB. 1972. Ilustrated Genera of Imperfect Fungi. Ed ke-4.
New York: Macmillan Publishing Company.
Barron, George L. 1968. The Genera of Hyphomycetes from Soil. New York:
Robert E. Krieger Publishing Company.
Bayon IL, Ansard D, Brunet C, Girardi S, Paulmier I. 2000. Biocontrol of Reticulitermes santonensis by Entomopathogenic Fungi Improvement of the Contamination Process. Stockholm Sweden, IRG Secretariat KTH SE-100 44 Becnel JJ. 1997. Complementary Techniques: preparations of entomopathogens and diseased specimens for more detailed study using microscopy. Di dalam:
Lacey LA, editor. Biological Techniques, Manual of Techniques in Insect
Pathology. San Diego: Academic Press.
Behle RW, Tames-Guerra P, Shasha BS, McGuire MR. 1999. Formulating Bioinsecti-cides to Improve Residual Activity, Presented at the Formulations Forum Symposium USDA-ARS-NCAUR 18 15 N. University Peoria, Illinois Benson EP. 2005. Termites Identification Workshop on Urban Pests
Management, Center for Integrated Pest Management (CIPM) Department of Plant Protection, Faculty of Agriculture - Bogor Agricultural University
Collaboration with Clemson University; Bogor, July 19th - 21st.
Berretta MF, Lecuona RE, Zandomeni RO, Grau O. 1998. Genotyping Isolates of
the Entomopathogenic Fungus Beauveria bassiana by RAPD with
Fluorescent Labels. J. invertebr pathol 71: 145–150.
Boucias DG, Pendland JC. 1998. Principles of Insect Pathology. London: Kluwer
91
Butt TM, Jackson C, Magan N. 2001. Fungi as Biocontrol Agents: progress,
problems and potential. United Kingdom: CABI Publishing.
CABI Bioscience (1998) Entomopathogenic Fungi from Various Host in the World. CABI Genetic Resourse Collection. 375 hal.
Cates J. 2007. Termite Control without Chemicals. [terhubung berkala]
http://www.bugsinthenews.com/Chemical%20Free%20Termite%20Interdicti on.htm.[7 Mei 2007]
Cloyd RA. 2003. Know Your Friends The Entomopathogenic Fungus Metarhizium anisopliae. University of Illinois VI (7): [terhubung berkala]
http://www.entomology.wisc.edu/mbcn/nbcn607html [7 Januari 2005]
Delate KM, Grace JK, Tome CHM. 1995. Potential Use of Pathogenic Fungi in Baits to Control Formoson Subterranean Termite (Isoptera: Rhinotermitidae). J. Appl Entomol 119: 429-433.
Desyanti, Santoso T, Hadi YS, Yusuf S. 2005. Virulence of Various Isolates of
Entomopathogenic Fungi Beauveria bassiana (Balls.) Vuill. Against
Subterranean Termite Coptotermes sp. (Isoptera: Rhinotermitidae),
Proceedings of 1st International Conference Crop Security (ICCS); Malang,
September 19th - 22nd
Domsch KH, Gams W, Anderson T-H. 1980. Compendium of Soil Fungi.
London: Academic Press.
Eaton RA, Hale MDC. 1993. Wood Decay, Pests and Protection. London:
Chapman & hall, 2-6 Boundary Row.
Ekesi S, Maniania NK, Lux SA. 2003. Effect of Soil Temperature and Moisture
on Survival and Infectivity of Metarhizium anisopliae to Four Tephritid Fruit
Fly Puparia. J. Invertebr. Pathol. 83: 157-167.
Ellis D. 2007. Mycology Online, [terhubung berkala ] http://www.mycology.adelaide.edu.au/ Maret 2007.
Ellis MB. 1993. Dematiaceous Hyphomycetes. United Kingdom: CAB
International.
Falah S, Syafii W, Katayama T. 2005. Antitermic of Extracts from the Bark of Some Tropical Hardwoods di dalam Sustainable Production and Effective
Utilization of Tropical Forest Resources, Proceedings of the 5th International
Wood Science Symposium JSPS-LIPI Core University Program in the Field of Wood Science; Kyoto, September 17-19
Hajek AE, Leger RJ. 1994. Interactions Between Fungal Pathogens and Insect
Hosts. Annu. Rev. Entomol 39: 293-322.
Inglis GD, Goettel MS, Butt TM, Strasser H. 2001. Use of Hyphomycetous Fungi for Managing Insect Pests. Di Dalam: Butt TM, Jackson CW, Magan N,
editor. Fungi as Biocontrol Agents: progress, problems and potential.
London: CABI Publishing.
Jones WE, Grase JK, Tamashiro M. 1996. Virulens of Seven Isolates of Beauveria bassiana and Metarhizium anisopliae to Coptotermes formosanus
(Isoptera : Rhinotermitidae). J. biol contr 25(2): 481-487.
Keller, Zimmermann.1989. Mycopathogens of Soil Insects. Di dalam: Wilding N,
Collins NM, Hammond PM, Webber JF, Editor. Insect-Fungus Interactions,
14th Symposium of the Royal Entomological Society of London in
Collaboration with the British Mycological Society 16-17 September 1987, London: Academic Press.
Khan K, Jayaraj, Gopalan M. 1991. Mycophatogenes for Biological Control of Odontotermes brunneus (Hagen). J. biol contr 5: 32-35.
Krishna K, Weesner FM. 1969. Biologi of Termites. New York: Academic Press.
Kubota S, Shono Y, Matsunaga T. 2007. Termitisidal Efficacy of Bistrifluron to the Japanese Subterranean Termite. The Fourth Conference of Pacific Rim Termite Research Group (TRG 4); Kaohsiung, Taiwan 26 and 27 Februari 2007.
Lay BW, Hastowo S. 1992. Mikrobiologi. Jakarta: Rajawali Peres
Lewis V. 2006. Termite Damage and Detection: an American Perspective. The Third Conference of Pacific Rim Termite Research Group (TRG 3); Guangzhou, P. R. China 6 and 7 March.
Maniania NK, Ekesi S, Songa JM. 2002. Managing Termites in Maize With the
Entomopathogenic Fungus Metarhizium anisopliae. T-Space Univ. of
Toranto 22(1): 41-46. [terhubung berkala]. http://hdl.handle.net/1807/129 [23 maret 2004].
Mattjik AA, Sumertajaya. 2002. Perancangan Percobaan dengan Aplikasi SAS
dan Minitap. IPB Press. Bogor.
Milner RJ, Staples JA, Lenz M. 1996. Option for Termite Management Using the
Insect Pathogenic Fungus M. anisopliae. The International Research Group
93
Moslem R, Wahid MB, Kamarudin N, Sharma M, Ali SRA. 1999. Impact of Metarhizium anisopliae (Deuteromycotina: Hyphomycetes) Applied by Wet
and Dry Inoculum on Oil Palm Rhinoceros Beetles, Oryctes rhinoceros
(Coleoptera: Scarabaeidae). J. Oil Palm Research II (2): 25 - 40.
Nandika D. 1999. Status Bahaya Serangan Rayap pada Bangunan Gedung. Makalah Seminar Nasional Pemantapan Sistim Pengendalian Rayap pada Bangunan Gedung. Jakarta, 12 Mei.
Nandika D, Rismayadi Y, Diba F. 2003. Rayap: biologi dan pengendaliannya.
Surakarta: Muhammadiyah University Press.
Neves PMOJ, Alves SB. 2004. External events related to the infection process of
Cornitermes cumulans (Kollar) (Isoptera: Termitidae) by the
Entomopathogenic fungi Beauveria bassiana and Metarhizium anisopliae.
Neotropical Entomol 33(1): 051-056.
Oliveira CN de, Neves PMOJ, Kawazoe LS. 2003. Compatibility Between the
Entomopathogen Fungus Beauveria bassiana and Insecticides Used in Coffee
Plantations. Sci. agric 60(4). [terhubung
berkala].mailto:[email protected] [24 Januari 2004].
Olsson S. 1997. Nutrient Translocation and Electrical Signalling in Mycelia di
Dalam The Fungal Colony Edited oleh Gow NAR, Robson GD, Gadd GM,
British Mycological Society, Cambridge University Press (1): 25-48.
Pearce MJ. 1997. Termite: biologi and management. New York: CAB
International Publisher.
Richard D. 1996. Insect Societies. United Kingdom: CABI Publishing.
Rombach. 1988. Entomogenous Fungi. Laporan Kursus Singkat Isolasi Pencirian dan Pengawetan Biakan Murni Mikroorganisme. Pusat Antar Universitas Bioteknologi IPB.
Salleh B. 2005. Plant Diseases Caused By Fusarium Species in the Tropics,
Proceedings of 1st International Conference Crop Security (ICCS). Malang,
September 19th - 22nd
Samuels R I, Corocini DLA, Santos CAM dos, Gava CAT. 2002. Infection of Blissus antillus (Hemiptera: Lygaeidae) eggs by entomophatogenic fungi Metarhizium anisopliae and Beauveria bassiana. J. bio contr 23: 269-273. Sari K, Syafii W, Sofyan K, Hanafi M. 2004. Sifat Antirayap Resin Damar Mata
kucing dari Shorea javanica K.et V. J. Ilmu dan Teknologi Kayu Tropis 2
Scholte E-J, Knols BGJ, Samson RA, Takken W. 2004. Entomopathogenic Fungi for Mosquito Control: A Review. J Sci 4(19): 1-24 [terhubung berkala]: insectscience.org/4.9 [3 April 2006]
Singh K, Frisvad JC, Thrane U, Mathur SB. 1991. An Illustrated Manual on Identification of Some Seed-borne Aspergilli, Fusaria, Penicillia and their Mycotoxins. Danish Government Institute of Seed Pathology for Developing Countries and Department of Biotechnology the Technical University of Denmark.
Sornnuwat Y. 1996. Studies on Damage of Construction Caused by Subterranean Termites and its Control in Thailand. Phd Disertation of Kyoto Yuniversity .
Steel RGD, Torrie JH. 1993. Prinsip dan Prosedur Statistik: suatu pendekatan
biometrik. Sumantri B, penerjemah: Jakarta: PT Gramedia Pustaka Utama. Strack BH. 2003. Biological Control of Termites by the Fungal Entomopathogen
Metarrhizium anisopliae, Urban Entomology Laboratory University of
Toranto. [terhubung berkala].
http://C:\NC\My%20Dokumens\Internet\Fungal%20control%20of%20termite s.htm [4 Mei 2003].
Sudiyani Y, Horisawa S, Chen K, Doi S, Imamura Y. 2002. Changes in Surface Properties of Tropical Wood Species Exposed to the Indonesian Climate in
Relation to Mold Colonies; J. Wood Sci 48: 542-547.
Suratmo G. 1974. Perlindungan Hutan. Bogor: Proyek Peningkatan Mutu
Perguruan Tinggi Institut Pertanian Bogor.
Suzuki K. 1991. Laboratory Trial of Biological Control Agents Subterranean Termite. International Research Group on Wood Preservation. IRC/WP/1476. Kyoto, May 20-24
Tambunan B, Nandika D. 1987. Deteriorasi Kayu oleh Faktor Biologis. Bogor:
Pusat Antar Universitas Bioteknologi Institut Pertanian Bogor.
Tanada Y, Kaya HK.1993. Insect Pathology. Sandiago: Academic Press, INC.
Harcourt Brace Jovanovich Publisher.
Tarumingkeng RC. 1971. Biologi dan Pengendalian Rayap Perusak Kayu
Indonesia. Bogor: Lap LPPK .
Tarumingkeng RC. 2000. Manajemen Deteriorasi Hasil Hutan, Topik-topik
terpilih. Jakarta: Ukrida Press.
Tarumingkeng RC. 2001. Biologi dan Perilaku Rayap (Biology and ethology of
termites). [terhubung berkala]
95
Tarumingkeng RC. 2004. Pengenalan Rayap Perusak Kayu yang Penting di Indonesia, Manajemen Deteriorasi Hasil Hutan, [terhubung berkala]
http://tumoutou.net/dethh/4_termite_identification.htm [7 Maret 2007]
Teetor-Barsch GH, Roberts DW. 1993. Entomogenous Fusarium Species.
Mycopathologia 1;84(1):3-16 [terhubung berkala]
http://www.nlm.nih.gov/contacts/contact-pubmed.html [13 Februari 2006].
Tefera T, Pringle KL. 2003. Effect of Exposure Method to Beauveria bassiana
and Conidia Concentration on Mortality, Mycosis, and Sporulation in
Cadavers of Chilo partellus (Lepidoptera: Pyralidae); J. Invertebr Pathol 84:
90-95.
Thapa RS. 1981. Termites of Saba. India: Entomology Branch Forest Research
Institute and Colleges Dehradun.
Trizelia. 2005. Cendawan Entomopatogen Beauveria bassiana (Bals.) Vuill.
(Deuteromycotina: Hyphomycetes): keragaman genetic, karakterisasi
fisiologis, dan virulensinya terhadap Croccidolomia pavonana (F.)
(Lepidoptera: Pyralidae). Disertasi Sekolah Pascasarjana IPB
Varela A, Morales E. 1995. Characterization of Some Beauveria bassiana Isolate
and Their Virulence Toward the Coffee Berry Borer Hypothenemus hampei,
L. J. Invertebr pathol 67: 147-152.
Yanagawa A, Shimizu S. 2007. Resistance of the termite, Coptotermes
formosanus Shiraki to Metarhizium anisopliae due to Grooming. J. BioControl 52: 75-85.
Yoshimura T, Tsunoda K, Takahashi M, Katsuda Y. 1992. Pathogenicity of An
Entomopathogenous Fungus, Conidiobolus coronatus TYRRELL. and
MACLEOD, to Coptotermes formosanus SHIRAKI; Jpn. J.
Environ.Entomol.Zool, 4(1): 11-16.
Yoshimura T, Takahashi M. 1998. Termiticidal Performance of An
Entomogenous Fungus, Beauveria brongniartii (SACCARDO) PETCH in
Laboratory Tests; Jpn. J. Environ, Entomol. Zool. 9(1): 16 – 22.
Yusuf S. 2001a. Pengujian Meganium 200 EC Terhadap Rayap Tanah Coptotermes sp. untuk Keperluan “Bait System”. Serpong: LIPI.
Yusuf S. 2001b. Pengujian Meganium Duster 10 Terhadap Rayap Tanah. Serpong: LIPI.
Yusuf S. 2004. Current Termite Management in Indonesia.TRG 1, Pacific Rim
Yusuf S, Desyanti, Santoso T, Hadi YS. 2005. The Application of
Entomopathogenic Fungi as Biocontrol for Subterranean Termites. TRG 2,
Lampiran. Koloni dan Deskripsi Mikroskopik Cendawan Entomopatogen pada
Media Saboraud Dextrose Agar with Yeast extract (SDAY) yang
Digunakan pada Penelitian
2. Metarhizium brunneum Petch
Warna koloni brunneum kuning sampai coklat dan pudar. Sedangkan secara mikroskopik M. brunneum danM. anisopliae sangat mirip ( Latch 1965 dalam Barron dan George 1968; Tulloch 1976 dalam Tanada dan Kaya 1993).
3. Penicilliumcitrinum Thom.
Warna koloni hijau, biru keabu-abuan, tangkai konidiofora (stipe) panjang rata, biverticillate, divergent, metulae sering spathulate, pialit ampulliform dengan collula pendek, konidia bulat rata (Singh et al. 1991)
4. Fusariumoxysporum Link
Pertumbuhan koloni cepat, bewarna orange keputihan, sporodochia orange pucat, mono-pialit, makro konidia 3-septa dengan foot cell dan mikro konidia 0-septa berada didalam kepala palsu (false heads), sering berkelom-pok pada mono-pialit pendek, chlamydospores berlimpah biasanya tunggal pada hifa (Singh et al. 1991).
5. Myrothecium roridum Tode ExFR.
Mycelium putih-kemerahan, sporodochia bertangkai seperti synnemata diameter 60-750 µm, padat muncul dari perkembangan stroma. konidiofora hyaline, olivaceous ramping, muncul percabangan berulang dengan beberapa cabang pada setiap nodus. Cabang terahir merupakan pialit dengan lapisan parallel, berukuran 11-16 X 1.5-2.0 µm. Ada zona melingkar olivaceous-hitam, konidia ellipsoidal sempit dengan ujung membulat berukuran 5.5-7.0 X 1.5-2 µm (Tulloch et al. 1970 dalam Domsch et al. 1980).
1. Metarhizium anisopliae (Metsch.)Sorokin.
Bewarna putih diwaktu muda, setelah konidia matang warna berubah menjadi hijau gelap. Konidiofora bercabang, dan konidium awal dihasilkan oleh untaian sederhana di ujung konidiofora, untaian konidia dibentuk pada masing-masing konidiofora dengan konidia paling muda berdekatan dengan konidiofora, masa untaian konidia menjadi zigzag melekat satu sama lain yang masing-masingnya menghasilkan massa prismatic dari colum untaian konidia. (Latch 1965 dalam Barron dan George 1968; Tulloch 1976 dalam Tanada dan Kaya 1993).
99
img
6. Paecilomyces fumosoroseus (Wize) Brown dan Smith.
Pertumbuhan koloni agak lambat, mencembung, pink, kadang-kadang memproduksi synnemata pada agar, konidiofora muncul beberapa dengan dasar pialit mencembung, tersusun seperti daun melingkar, konidia cylindrical-fusiform berukuran 3-4 x 1-2 µm (Brown, Smith dan Samson 1979 dalam Domsch et al. 1980).
7. Aspergillus flavus Link.
Warna koloni hijau kekuningan dan semakin hijau dengan bertambahnya umur, bersinar, kepala konidia radiate kehilangan colum konidia dengan bertambahnya umur, stipe panjang, verrucose dan hyaline. Vesicle berbentuk kubah. Ada metula berukuran kecil, pialit berukuran kecil langsung pada vesicle, konidia globose - subglobose, biasanya kasar. (Singh et al. 1991).
8. Beauveria bassiana (Bals) Vuillemin
konidiofora tidak begitu jelas; sel sporogenous sympodulae, muncul langsung dari hifa vegetatif, sederhana, hyaline - sub hyaline, secara berulang menghasilkan kuntum konidia berkelompok atau zigzag, terdiri dari satu sel basal yang sering mengembung, dan menghasilkan sympodulospores pada suksessi acropetal; muncul sporapada ujung, seperti rachis, kadang-kadang berliku; spora sangatkecil, bundar atau oval, hyaline - sub hyaline (Barron 1968).
9. Verticilium lecani (Zimmermann),
Koloni bewarna putih – kuning pucat, hifa fasciculate, reverse tidak bewarna - kuning. Pialit tunggal atau sangat sedikit melingkar muncul pada konidiofora dengan posisi tegak dan sedikit berbeda dengan kedudukan hifa. Konidia di ujung atau parallel berkelompok, silender, ujung membulat atau berbentuk ellip berukuran 2.3-10 x 1.0-2.6 µm (Domsch et al. 1980)
10. Fusariumsolani Link.
Pertumbuhan koloni cepat, berbentuk wol-cattun bewarna cream – putih. Hifa bersepta dan hyaline. konidiofora tidak bercabang dan bercabang. monophialides. Macroconidia melengkung, gemuk, biasanya 3-5 septate, berukuran 4-6 x 65 µm, muncul pada konidiofora pendek yang segera membentuk sporodochia. Microconidia muncul dari monophialides panjang, satu - dua cel, cylindrical – oval, berbentuk kuntum di ujung pialit. Ada Chlamydoconidia tunggal dan berpasangan. Mudah dikenal berdasarkan warnanya cream, mono pialit panjang dengan microkonidia hanya di false heads. (http://www.doctorfungus.org/index.htm