DESTIEKA AHYUN
SEKOLAH PASCASARJANA INSTITUT PERTANIAN BOGOR
BOGOR 2014
25 selanjutnya dari data yang diperoleh dapat dilakukan penelitian lebih lanjut terkait dengan faktor yang mempengaruhi pertumbuhan tanaman sagu hingga fase pembentukan batang.
DAFTAR PUSTAKA
Ai NS, Banyo Y. 2011. Konsentrasi klorofil daun sebagai indikator kekurangan air pada tanaman. J Ilmiah Sains. 11(2):166-173.
AOAC. 1970. Official Methods of Analysis of the Association of Official Analytical Chemist, Washington D.C.
AOAC. 1971. Official Methods of Analysis of the Association of Official Analytical Chemist, Maryland.
[BPS] Badan Pusat Statistik (ID). 2011. Jumlah Penduduk Indonesia. [Bps.go.id]. 1 Maret 2012.
Ahyuni D. 2011. Pengelolaan sagu (Metroxylon spp.) di PT National Sago Prima, Selat Panjang Kab. Kepulauan Meranti, Riau dengan aspek khusus pertumbuhan bibit di lapang [skripsi]. Bogor (ID): Institut Pertanian Bogor. Amarillis S, Khumaida N, Bintoro MH, Miftachorraman, Kumaunang J. 2011. Stomata characterization on several accessions of sago palm (Metroxylon sagu Rottb.). Di dalam: Siregar IZ, Sudaryanto T, Ehara H, Suwardi, Lubis I, Ardie SW, editor. Sago for Food Security, Bio-energy, and Industry, from Research to Market. The 10th International sago symposium; 2011 Oktober 29-31; Bogor, Indonesia. Bogor (ID); IPB. Hlm 138-140.
Amarillis S. 2013. Perbanyakan tanaman sagu (Metroxylon spp.) secara ex vitro (di persemaian polibag dan rakit) dan in vitro melalui kultur jaringan [tesis]. Bogor (ID): Institut Pertanian Bogor.
Andany RK. 2009. Pengelolaan jumlah anakan tanaman sagu (Metroxylon spp.) di PT. National Timber And Forest Product Unit HTI Murni Sagu, Selat Panjang, Riau [skripsi]. Bogor (ID): Institut Pertanian Bogor.
Ando H, Hirabayashi D, Kakuda K, Watanabe A, Jong FS and Puruwanto BH. 2007. Effect of chemical fertilizer aplication on the growth and nutrient content in leaflet of sago palm at the rosette stage. Japan J Trop Agr. 51 (3): 102-108.
Balai Penelitian Tanah. 2011. Pengelolaan lahan gambut berkelanjutan. Balai Besar Litbang Sumberdaya Lahan Pertanian Badan Penelitian dan Pengembangan Pertanian.
Bintoro MH, Herodian S, Ngadiono, Thoriq A, Amarillis S. 2014. Sagu untuk kesejahteraan masyarakat Papua, suatu kajian dalam upaya pengembangan sagu sebagai komoditas unggulan di Provinsi Papua dan Provinsi Papua Barat. Unit Percepatan Pembangunan Provinsi Papua dan Provinsi Papua Barat (UP4B). Bogor.
Bintoro MH, Mashud N, Novarianto H. 2007. Status teknologi sagu (Metroxylon spp). Di dalam: Pusat Penelitian dan Pengembangan Perkebunan, editor. Lokakarya Pengembangan Sagu di Indonesia; 2007 Juli 25-26; Batam, Indonesia. Batam (ID); Badan Penelitian dan Pengembangan Pertanian. Hlm 76-94.
26
Bintoro MH, Purwanto YJ, Amarilis S. 2010. Sagu di Lahan Gambut. Bogor (ID): IPB Press.
Bintoro MH. 2002. Sago in Indonesia. Di dalam: Kainuma K, Okazaki M, Toyoda Y, Cecil JE, editor. New Frontiers of Sago Palm Studies; 2002 Oktober 17; Tokyo, Jepang. Tokyp (JP); IPB. Hlm 247-250.
Bintoro MH. 2008. Bercocok Tanam Sagu. Bogor (ID). IPB Press.
Bintoro MH. 2009. Some efforts to rehabilitate sago palm plantation at Meranti Distric, Riau Province, Indonesia. The 1st ASEAN Sago Symposium; 2009; Kuching, Malaysia. Kuching (MY); hlm 5-8.
Botanri S. 2010. Distribusi spasial, autekologi, dan biodiversitas tumbuhan sagu (Metroxylon spp.) di pulau Seram, Maluku [disertasi]. Bogor (ID): Institut Pertanian Bogor.
Ehara H, Susanto S, Mizota C, Hirose S, Matsuno T. 2000. Sago Palm (Metroxylon sagu, Arecaceae) production in the eastern archipelago of Indonesia: Variation in Morphological characteristics and pith-dry matter yield. Econ Bot 54: 197-206.
Fairhurst TH, Mutert E. 1999. Interpretation and management of oil palm leaf analysis data. Better Crops International. 13(1):48-51.
Flach M, Schuiling DL. 1991. Growth and yield of sago palms in relation to their nutritional needs. Di dalam Yamada dan Kainuma K, editor. The 4th International Sago symposium, Kucing Malaysia; 1990 Agustus 6-9. Hlm 102-110.
Flach M. 1995. Research priorities for sago palm development in Indonesia and Sarawak. Di dalam: Subhadraban dhu S, Shoodeo S, editor. International Society for Horticultural Science. Fifth International Sago symposium; 1995 Juni; Hat Yai Songkhla, Thailand. Hat Yai Songkhla (TH); Acta Horticulturae. 19-39.
Flach M. 1997. Sago Palm (Metroxylon sagu Rottb.)Promoting the Conservation and Use of Underutilized and Neglected Crops.13.Institute of Plant Genetics and Crop Plant Research, International Plant Genetic Resources Institute, Rome, Italy (IT). 76p.
Gusmayanti E, Machida T, Yoshida M. 2008. Observation of leaf characteristics of spineless sago palm (Metroxylon sagu) at different phenological stages. Sago Palm. 16:95-101.
Haryanto B. 2014. Pengolahan dan Pengembangan Sagu Terpadu di Kabupaten Meranti. Lokakarya Pembinaan Peningkatan Mutu Hasil Perkebunan: Selat Panjang 11 November 2014. Badan Pengkajian dan Penerapan Teknologi. Haryanto B, Pangloli P. 1992. Peranan sagu dalam kehidupan masyarakat Riau.
Di dalam tim Fakultas Pertanian UNPATTI, editor. Simposium Sagu Nasional; 1992 Oktober 12-13; Ambon, Indonesia. Ambon (ID): Fakultas Pertanian UNPATTI.
Hertanti D. 2013. Keterkaitan sifat tanah gambut terhadap konsentrasi hara dan keragaman mikrob serta makrofauna tanah di areal penanaman sagu [tesis]. Bogor (ID): Institut Pertanian Bogor.
Irawan AF, Yamamoto Y, Miyazaki A, Yoshida T, Jong FS. 2009. Characteristics of suckers from sago palm (Metroxylon sagu Rottb.) grown in different soil types in Tebing Tinggi Island, Riau, Indonesia. Trop Agr Develop. 53(4):103-111.
27 Irawan AF, Yamamoto Y, Miyazaki A, Yoshida T, Jong FS. 2012. Growth performance of the transplanted sago palm (Metroxylon sagu Rottb.) suckers with different earliness of trunk formation. Trop Agr Develop. 56(3):81-87.
Irawan AF. 2010. Agrophysiologi studies on the early establishment of suckers and seedlings in sago palm (Metroxylon sagu Rottb.) [disertasi]. Japan (JP): Bioresource production sciences, United Graduate School of Agricultural Science Ehime University.
Jong FS, Watanabe A, Hirabayashi D, Matsuda S, Purwanto B, Kakuda K, Ando H. 2006. Growth performance of sago palms (Metroxylon sagu Rottb.) in peat of different depth and soil water table. Sago Palm. 14:59-64.
Jong FS. 1995. Research for the Development of Sago Palm (Metroxylon sagu Rottb.) Cultivation in Sarawak, Malaysia. Sarawak (MY): Sadong Press. Jong FS. 2007. The commercial sago palm (Metroxylon sagu Rottb.). Di dalam:
Pusat Penelitian dan Pengembangan Perkebunan, editor. Lokakarya Pengembangan Sagu di Indonesia; 2007 Juli 25-26; Batam, Indonesia. Batam (ID); Badan Penelitian dan Pengembangan Pertanian.
Junaidi. 2005. Pengelolaan Perkebunan Sagu (Metroxylon spp.) aspek budidaya tanaman di PT. National Timber and Forest Product, Selat Panjang, Riau [skripsi]. Bogor (ID): Institut Pertanian Bogor.
Levitt J. 1980. Response of Plants to Environmental Stresses: Water, Radiation, Salt and Other Stress.Vol II.London (GB): Academic Press.
Makino A, Sato T, Nakano H, Mae T. 1997. Leaf photosynthesis, plant growth and nitrogen allocation in rice under different irradiances. Planta 203:390- 398.
Manaroinsong E. 2014. Tanggap pertumbuhan tanaman sagu (Metroxylon sagu Rottb.) terhadap pemberian pupuk N, P, K dan Pemangkasan [tesis]. Bogor (ID): Institut Pertanian Bogor.
Mattjik AA, Sumertajaya M. 2000. Perancangan Percobaan. Jilid I. Bogor (ID): IPB Press.
Mattjik AA, IM Sumertajaya. 2006. Perancangan Percobaan dengan Aplikasi SAS dan Minitab. Bogor (ID): IPB Press.
Maulana A. 2011. Pengelolaan perkebunan sagu (Metroxylonspp) di PT National Sago Prima, Selat Panjang, Riau: seleksi bibit sagu berdasarkan jenis, tinggi pohon induk dan bobot bibit sagu terhadap pertumbuhan bibit sagu di persemaian [skripsi]. Bogor (ID): Institut Pertanian Bogor.
Munawar A. 2011. Kesuburan Tanah dan Nutrisi Tanaman. Bogor (ID): IPB Press.
Naito H, H Ehara, H Shibata, T Mishima, C Mizota. 2005. Morphological characteristics of leaf surface in Metroxylon palm. Proceeding of the Eighth International Sago Symposium. Jayapura. p 177-187.
Nakamura S, Nitta Y, Goto Y. 2004. Leaf characteristics and shape of sago palm (Metroxylon sagu Rottb.) for developing a method of estimating leaf area. Plant Production Sciences. 7:198-203.
Nakamura S, Nitta Y, Watanabe M, Goto Y. 2005. Analysis of leaflet shape and area for improvement of leaf area estimation method for sago palm (Metroxylon sagu Rottb.). Plant Prod. Sci. 8(1):27-31.
28
Nitta Y, Asagi N, Homma T, Matsuda T, Warashina S, Goto Y, Nakamura S, Nakamura T, Watanabe M, Yamamoto Y, Yoshida T. 2010. Morphological character of sago palm starch. Sago palm 18:1.
Nitta Y, Matsuda T, Miura H, Nakamura S, Goto Y, Watanabe M. 2005. Anatomical leaf structure related to photosynthetic and conductive activities of sago palm. Di dalam: Karafir YP, Jong FS, Fere VE, editor. Sago Palm Development and Utilization. The Eighth International Sago Symposium; 2005 Agustus 4-6; Jayapura, Indonesia. Jayapura (ID): Universitas Negeri Papua Press. hlm 105-111.
Notohadiprawiro T, Lohenapessy JE. 1992. Potensi sagu dalam penganekaragaman bahan pangan pokok ditinjau dari persyaratan lahan. Di dalam tim Fakultas Pertanian UNPATTI, editor. Simposium Sagu Nasional; 1992 Oktober 12-13; Ambon, Indonesia. Ambon (ID): Fakultas Pertanian UNPATTI.
Nurulhaq MI. 2012. Pengaruh jumlah daun bibit tanaman sagu (Metroxylon sp) terhadap pertumbuhan awal di lapangan [skripsi]. Bogor (ID): Institut Pertanian Bogor.
Ochs R, Olvin J. 1977. Le Diagnostic foliare pour le controle de la nutrition des
plantations de palmier’s a huile: prelevement des echantilions foliares.
Oleagineux. 32(5):211-216.
Omori K, Yamamoto Y, Nitta Y, Yoshida T, Kakuda K, Jong FS. 2000. Stomatal density of sago palm (Metroxylon sagu Rottb.) with special reference to positional differences in leaflets and leaves, and change by palm age. Sago Palm. 8:2-8.
Papilaya EC. 2009. Sagu untuk Pendidikan Anak Negeri. Bogor (ID): IPB Press. [PPT] Pusat Penelitian Tanah. 1983. Jenis dan Macam Tanah di Indonesia untuk
Keperluan Survei dan Pemetaan Tanah Daerah Transmigrasi. Bogor (ID): PPT.
Schuiling DL. and M Flach. 1985. Guidenies for The Cultivation of Sago Palm. Dep. of Trop. Crop. Sci. Agri .Univ. Wageningen. The Netherlands.
Sumargono B. 1992. Pengaruh kepadatan lalu lintas terhadap jumlah dan ukuran stomata daun rambutan (Nephelium lappaceum. [skripsi]. Semarang (ID): Universitas Diponegoro.
Taiz L, Zeiger E. 2002. Plant Physhiology Third Edition. Massachusetts (US):Sinauer Associates, Inc, Publishers.
Taiz L, Zeiger E. 2010. Plant Physiology Fifth Edition. Sunderland, Massachusetts (US): Sinauer Associates.
Takemori N，Y Yamamoto，T Yoshida，FS Ranbon, YB Pasolon, FS Jong, A A Arsy, D Fadjry, H Ishima And A Miyazaki. 2013. Varietal Differences in Biomass Production and Contents of Total Sugar and Starch in Each Part of Shoot in Sago Palm (Metroxylon sagu Rottb.) Grown around Lake Sentani near Jayapura, Papua Province, Indonesia. Proceeding of the 22th Japanese Symposium. Japan.
Tanimo AJP, Ehara H, Naito, Bintoro MH, Takamura TY. 2005. Sago palm (Metroxylon sagu Rottb.) cultivation trial in Tanzania, Africa. Di dalam: Karafir YP, Jong FS, Fere VE, editor. Sago Palm Development and Utilization. The Eighth International Sago Symposium; 2005 Agustus 4-6; Jayapura, Indonesia. Jayapura (ID): Universitas Negeri Papua Press.
29 Tenda ET, Hutapea RTP, Syakir M. 2009. Tanaman Perkebunan Penghasil
Bahan Bakar Nabati (BBN). Bogor (ID): IPB Press.
Uchida N. 1990. Photosynthetic characteristics of sago palm Metroxylon rumphii M. Japan. J. Trop. Agr. 34 (3):15.
Wahid AS. 1987. Pengaruh besar anakan, naungan dan penyimpanan terhadap keberhasilan bibit sagu (Metroxylon sagu Rottb) [tesis]. Bogor (ID): Institut Pertanian Bogor.
Wibisono MA. 2011. Pengelolaan sagu (Metroxylon sagu Rottb.) di PT National Sago Prima, Kab. Kepulauan Meranti, Riau, dengan studi kasus pengaruh teknik persemaian dan jenis tanaman induk terhadap pertumbuhan bibit sagu. [skripsi]. Bogor (ID): Institut Pertanian Bogor.
Yamamoto Y, Omori K, Nitta Y, Miyazaki A, Jong FS, Wenston T. 2007. Efficiency of starch extraction from the pith of sago palm: a case study of the traditional method in Tebing Tinggi Island, Riau, Indonesia. Sago Palm 15: 9-15
30
31 Lampiran 1. Kriteria penilaian beberapa sifat kimia tanah
No. Sifat Tanah Sangat Rendah
Rendah Sedang Tinggi Sangat Tinggi 1. C (%) < 1.00 1.00-2.00 2.01-3.00 3.01-5.00 > 5.0 2. N (%) < 0.10 0.11-0.20 0.21-0.50 0.51-0.75 > 0.75 3. C/N < 5 5-10 11-15 16-25 > 25 4. P2O5 HCl (mg/100g) < 10 10-20 21-40 41-60 > 60 5. P2O5 Bray I (ppm) < 10 10-15 16-25 26-35 > 35 6. P2O5 Olsen (ppm) < 10 10-25 26-45 46-60 >60 7. K2O HCl 25% (mg/100g) <10 10-20 21-40 41-60 >60 7. KTK (me/100g) < 5 5-16 17-24 25-40 > 40 8. Susunan Kation K (me/100 g) < 0.1 0.1-0.2 0.3-0.5 0.6-1.0 > 1.0 Na (me/100 g) < 0.1 0.1-0.3 0.4-0.7 0.8-1.0 > 1.0 Mg (me/100 g) < 0.4 0.4-1.0 1.1-2.0 2.1-8.0 > 8.0 Ca (me/100 g) < 0.2 0.2-5 5-10 11-20 > 20 9. Kejenuhan Basa (%) < 20 20-35 36-50 51-70 > 70 10. Kejenuhan Al (%) <10 10-20 21-30 31-60 >60 11. Al-dd (me/100 g) < 2.0 2.0-10 > 10 12. pH H2O
Sangat masam Masam Agak
Masam
Netral Agak
Alkalis
Alkalis
< 4,5 4.5-5.5 5.6-6.5 6.6-7.5 7.6-8.5 > 8.5 Sumber : Pusat Penelitian Tanah dan Agriklimat, 1994 (Laporan Teknis No. 7, Versi 1,0 April 1994: LREP-II/C
Lampiran 2. Analisis Tanah
Model analisis tanah yang dilakukan berdasarkan dengan model analisis tanah yang dilakukan oleh Manaroinsong (2014).
pH
Nilai pH menunjukkan konsentrasi ion H+ dalam larutan tanah. Konsentrasi H+ yang diekstrak dengan air menyatakan kemasaman aktif (aktual).
Cara kerja di laboratorium yaitu contoh tanah ditimbang sebanyak 10 gram dengan dua kali ulangan, masing-masing bahan dimasukkan ke dalam botol kocok. Setelah itu di dalam botol kocok ditambahkan 50 ml air bebas ion ke botol yang pertama (pH H2O) dan 50 ml KCl 1 M ke dalam botol lainnya (pH KCl). Larutan kemudian dikocok dengan mesin pengocok selama 30 menit. Suspensi tanah diukur dengan pH meter yang telah dikalibrasi menggunakan larutan buffer pH 7.0 dan pH 4.0. Nilai pH dalam 1 desimal.
C-organik
Karbon sebagai senyawa organik akan mereduksi Cr6+ yang berwarna jingga menjadi Cr3+ yang berwarna hijau dalam suasana asam. Intensitas warna hijau yang terbentuk setara dengan kadar karbon dan dapat diukur dengan spektrofotometer pada panjang gelombang 561 nm.
32
Cara kerja yang dilakukan yaitu menimbang 0.5 gram contoh tanah ukuran <0.5 mm, kemudian dimasukkan ke dalam labu ukur 100 ml. setelah itu ditambahkan 5 ml K2Cr2O7 1 N, lalu dikocok. 7.5 ml H2SO4 pekat ditambahkan ke dalam labu ukur, kemudian dikocok lalu diamkan selama 30 menit. Larutan diencerkan dengan air bebas ion dan dibiarkan dingin. Keesokan harinya diukur absorbansi larutan jernih dengan spektrofotometer pada panjang gelombang 561 nm. Sebagai pembanding, dibuat standar 0 dan 250 ppm yaitu dengan memipet 0 dan 5 ml larutan standar 5000 ppm ke dalam labu ukur 100 ml dengan perlakuan yang sama dengan pengerjaan contoh.
Perhitungan:
Kadar C-organik (%)
= ppm kurva x ml ekstrak 1000 ml – 1 x 100 mg contoh – 1 x fk = ppm kurva x 100 1000 – 1 x 100 500 – 1 x fk
= ppm kurva x 10 500 – 1 x fk Keterangan:
ppm kurva = kadar contoh yang didapat dari kurva hubungan antara kadar deret standar dengan pembacaannya setelah dikoreksi blanko
100 = konversi ke %
fk = faktor koreksi kadar air = 100/(100 - % kadar air) N-total
Senyawa nitrogen organik dioksidasi dalam lingkungan asam sulfat pekat dengan katalis campuran selen membentuk (NH4)2SO4. Penetapan N dilakukan dengan cara destilasi, ekstrak dibasakan dengan penambahan larutan NaOH. NH3 yang dibebaskan diikat oleh asam borat dan dititar dengan larutan baku H2SO4 menggunakan penunjuk Conway.
Cara kerja dilakukan yaitu dengan menimbang 0.5 gram contoh tanah ukuran <0.5 mm, lalu dimasukkan ke dalam tabung digest. 1 gram campuran stelen dan 3 ml asam sulfat pekat ditambahkan kedalamnya, kemudian didestruksikan hingga suhu 350 0C (3-4 jam). Setelah destruksi selesai apabila keluar uap putih maka didapat ekstrak jernih (sekitar 4 jam). Tabung diangkat, diinginkan dan ekstrak diencerkan dengan air bebas ion hingga tepat 50 ml. Larutan dikocok sampai homogen, dibiarkan semalam agar partikel mengendap. Ekstrak digunakan untuk pengukuran N dengan cara destilasi atau cara kolorimetri.
Perhitungan
Kadar nitrogen (%) = (Vc – Vb) x N x bst N x 100 mg contoh – 1 x fk = (Vc – Vb) x N x 14 x 100 500 -1 x fk
= (Vc – Vb) x N x 2.8 x fk Penetapan P tersedia dengan metode Bray
Cara kerja dilakukan dengan menimbang 2.5 gram contoh tanah <2 mm, kemudian ditambahkan pengekstrak Bray dan Kurt I sebanyak 25 ml, kemudian dikocok selama 5 menit. Larutan disaring dan apabila larutan keruh dikembalikan ke atas saringan semula (proses penyaringan maksimum 5 menit). Ekstrak jernih dipipet 2 ml ke dalam tabung reaksi. Contoh dan deret standar masing-masing ditambah pereaksi pewarna fosfat sebanyak 10 ml, kemudian dikocok dan
33 dibiarkan 30 menit. Contoh diukur absorbansinya dengan spektrofotometer pada panjang gelombang 693 nm.
Perhitungan :
Kadar P2O5 tersedia (ppm)
= ppm kurva x ml ekstrak/1000 ml x 1000 gram /gram contoh x fp x 142/190 x fk = ppm kurva x 25/1000 x 1000/2.5 x fp x 142/190 x fk
=ppm kurva x 10 x fp x 142/190 x fk Keterangan :
Ppm kurva = kadar contoh yang didapat dari kurva hubungan antara kadar deret standar dengan pembacaannya setelah dikoreksi blanko
Fp = faktor pengenceran (bila ada)f
142/190 = faktor konversi bentuk PO4 menjadi P2O5 Fk = faktor koreksi kadar air
Lampiran 3. Analisis kandungan hara pada daun
Analisis kandungan hara pada daun berdasarkan Manaroinsong (2014). Persiapan sampel daun dipisahkan antara daun dengan lidi, kemudian daun dipotong-potong dengan ukuran sekitar satu cm. Potongan daun kemudian dioven pada suhu 70 0C. Contoh daun kering kemudian digiling dengan menggunakan grinder mesin dengan filter kehalusan 0.5 mm.
Cara kerja yang dilakukan yaitu menimbang 0.250 g contoh tanaman <0.5 mm ke dalam tabung digestion dan ditambahkan 2.5 ml H2SO4 p.a. ke dalam tabung, lalu dibiarkan satu malam. Keesokan harinya dipanaskan dalam blok digestion selama satu jam pada suhu 100 0C kemudian angkat dan dinginkan. 2 ml H2O2 p.a. ditambahkan ke dalam tabung kembali, kemudian dipanaskan kembali dan suhu ditingkatkan menjadi 200 0C, setelah dipanaskan selama 1 jam kemudian angkat dan didinginkan. H2O2 ditambahkan kembali sebanyak 2 ml kemudian panaskan kembali hingga suhu 350 0C. Pengerjaan diulang hingga keluar uap putih dan didapatkan sekitar 1 ml ekstrak jernih. Pembuatan blanko, ekstrak diencerkan dengan air bebas ion hingga tepat 50 ml. contoh dikocok sampai homogen dengan pengocok tabung, biarkan hingga mengendap. Ekstrak jernih digunakan untuk pengukuran N-Kjeldahl, P, dan K.
Pengukuran N (n-Kjeldahl)
Ekstrak contoh dipipet 10 ml kedalam labu didih kemudian ditambahkan sedikit serbuk batu didih dan air bebas ion hingga setengah volume labu. penampung NH3 disiapkan yaitu Erlenmeyer yang berisi 10 ml asam borat 1% yang ditambah dua tetes indikator Conway dan dihubungkan dengan alat destilasi. NaOH 40% ditambahkan menggunakan gelas ukur, sebanyak 10 ml kedalam labu didih yang berisi contoh dan secepatnya ditutup. Larutan kemudian didestilasi hingga volume penampung mencapai 50-75 ml. Destilat dititrasi dengan asam standar (H2SO4 0.050 N). Volume titrasi (ml) untuk contoh (Vc) dan blanko (Vb) dicatat.
34
Pengukuran P
Ekstrak contoh dipipet masing-masing 1 ml dengan deret standar PO4 kedalam tabung kimia. 9 ml air bebas ion ditambahkan dan dikocok (pengenceran 10x), kemudian masing-masing 2 ml ekstrak encer contoh dipipet ke dalam tabung reaksi. Kemudian 10 ml pereaksi warna P ditambahkan ke dalam tabung. Larutan dalam tabung dikocok dengan pengocok tabung sampai homogen dan biarkan 30 menit. Kandungan P dalam larutan diukur dengan alat spektrofotometer pada panjang gelombang 693 nm.
Pengukuran K
Ekstrak contoh dipipet 1 ml dengan deret standar masing-masing ke dalam tabung kimia kemudian ditambahkan 9 ml larutan La 0.25%. Contoh dikocok dengan menggunakan pengocok tabung sampai homogen. K diukur dengan alat fotometer nyata dengan deret standar sebagai pembanding.
Perhitungan
Kadar N (%) = (Vc - Vb) x N x bst N x 50 ml 10 ml – 1 x 100 mg contoh – 1 x fk = (Vc - Vb) x N x 14 x50/10 x 100/250 x fk
= (Vc - Vb) x N x 28 x fk
Kadar P (%)= ppm kurva x ml ekstrak 1 000 ml – 1 x 100 mg contoh – 1 x B.A.P/B.M. PO4 x fp xfk
= ppm kurva x 50/1000 x 100/250 x 31/95 x 10 x fk = ppm kurva x 0.2 x 31/95 x fk
Kadar K (%) = ppm kurva x ml ekstrak 1000 ml – 1 x 100 mg contoh – 1 x fp x fk = ppm kurva x 50/1000 x 100/250 x 10x fk
= ppm kurva x 0.2 x fk Lampiran 4. Denah Percobaan
35 Lampiran 5. Cara analisis gula dan pati pada anak daun bagian tengah
Analisis gula
Analisis gula menggunakan metode AOAC 1970. Proses kerja yang dilakukan pada analisis ini yaitu dengan menimbang sampel daun sebanyak 2.0 gram di beakerglass 100 ml. Kemudian 100 ml aquadest ditambahkan dalam beakerglass. Lalu larutan di stirrer dengan kecepatan 150 rpm selama 10 menit, kemudian diencerkan pada labu ukur 100 ml hingga batas tera. Setelah selesai, larutan disaring menggunakan kertas saring whatman 41. Ekstrak contoh dipipet 0.5 ml filtrat kedalam tabung reaksi yang sudah diberi DNS 5 ml. Kemudian larutan divortex dan panaskan pada air mendidih selama 10 menit. Larutan yang telah selesai divortex segera didinginkan dan tera di spectrophotometer pada panjang gelombang 570 nm (AOAC, 1970).
Analisis pati
Analisis pati di laboratorium menggunakan metode AOAC 1971. Proses kerja yang dilakukan yaitu menimbang sampel daun sebanyak 2 gram di Erlenmeyer asa 250 ml, kemudian 100 ml HCl 0.309 N ditambahkan dalam erlenmeyer. Larutan tersebut kemudian dihidrolisis selama 1 jam, lalu dinginkan pada air mengalir. Larutan yang telah dingin kemudian dinetralkan hingga pH 7.00. Setelah netral maka larutan diencerkan pada labu ukur 250 ml hingga batas tera. Larutan hasil hidrolisis kemudian disaring pada kertas saring whatman 41. DNS yang telah disiapkan yaitu dengan memipet 5 ml pada tabung reaksi, kemudian 0.5 ml filtrate hasil penyaringan ditambahkan ke dalamnya. Contoh yang ada kemudian divortex dan dipanaskan pada air mendidih selama 10 menit, dan selanjutnya didinginkan dan vortex. Setelah dingin kemudian di tera pada spektro 570 nm (AOAC, 1971).
36
Lampiran 6. Kegiatan pengamatan di lapangan, pengukuran peubah morfologi dan membersihkan piringan
Pengukuran Tinggi Tanaman Pengukuran Panjang Anak Daun
37 Lampiran 7. Rata-rata curah hujan, banyaknya hari hujan pada bulan Juli 2012-Desember 2013.
Bulan, tahun Curah hujan (mm) Hari hujan (hari) Juli 2012 Agustus 2012 September 2012 Oktober 2012 November 2012 Desember 2012 Januari 2013 Februari 2013 Maret 2013 April 2013 Mei 2013 Juni 2013 Juli 2013 Agustus 2013 September 2013 Oktober 2013 November 2013 Desember 2013 124.9 22.48 141.55 197.2 229.3 103.7 73.1 174.1 134.75 79.9 139.6 17 51.7 115.5 180.6 252.8 305.93 135.6 7 4 9 14 14 15 9 13 8 8 12 2 2 6 12 7 19 5
Lampiran 8. Perbedaan bibit sebelum dipindahtanam ke lapangan
*: Dokumentasi Ahyuni (2011)
Umur 2 minggu Umur 4 minggu
RINGKASAN
DESTIEKA AHYUNI. Hubungan Bobot Anakan dan Waktu Pembibitan yang Berbeda terhadap Pertumbuhan Bibit Sagu (Metroxylon sagu Rottb.). Dibimbing oleh MOCHAMAD HASJIM BINTORO DJOEFRIE dan SUDRADJAT.
Tanaman sagu merupakan tanaman asli Indonesia yang memiliki potensi karbohidrat yang tinggi. Keanekaragaman jenis sagu Indonesia tertinggi di dunia. Pembudidayaan tanaman sagu masih terdapat beberapa kendala terutama dalam perbanyakan dan pindah tanam dari pembibitan ke lahan. Percobaan dilaksanakan di PT. National Sago Prima, Selat Panjang, Riau. Penelitian dilaksanakan mulai Februari 2011 hingga Desember 2013. Tujuan dari percobaan yaitu untuk mempelajari tentang pengaruh bobot anakan dan periode pembibitan terhadap pertumbuhan bibit di lahan.
Percobaan menggunakan rancangan petak terbagi (Split Plot) dengan dua faktor yaitu faktor bobot anakan sebagai petak utama dan periode pembibitan sebagai anak petak dengan tiga ulangan. Perlakuan bobot anakan terdiri atas anakan sagu dengan bobot 2-4 kg dan 4-8 kg. Perlakuan periode pembibitan terdiri atas anakan sagu 2, 4, 8 dan 12 minggu di pembibitan. Total seluruh tanaman yang ditanam dan diamati sebanyak 216 tanaman. Peubah pengamatan morfologi yang diamati adalah jumlah tanaman yang hidup, jumlah pelepah daun, jumlah anak daun, lebar anak daun, panjang anak daun dan tinggi tanaman. Peubah fisiologi yang diamati yaitu analisis daun, analisis gula, pati, kehijauan daun dan kerapatan stomata.
Rata-rata penambahan pelepah pada setiap bulan sebanyak satu pelepah pada setiap bibit. Persentase hidup tanaman pada percobaan berkisar 31.48- 61.11%. Penggunaan anakan dengan bobot 2-4 kg dapat digunakan, tanpa harus menggunakan anakan yang lebih berat. Tanaman memiliki kandungan gula pada daun antara 21.12-26.14%, sedangkan kandungan pati 2.99-5.80%. Kerapatan stomata pada tanaman saat tanaman berumur 2 tahun setelah tanam didapatkan bahwa permukaan adaxial (atas) 50.88–101.76 mm-2, sedangkan kerapatan stomata pada abaxial (bawah) yaitu 251.4 - 369.2 mm-2. Perawatan bibit dibawah satu tahun sangat penting dilakukan, karena masa kritis tanaman sagu yaitu saat tanaman pindah tanam hingga berumur satu tahun.
SUMMARY
DESTIEKA AHYUNI. The growth of sago palm suckers after transplanting using different weight of suckers and duration of nursery period. Supervised by MOCHAMAD HASJIM BINTORO DJOEFRIE and SUDRADJAT.
Sago palm is origin plants in Indonesia which has the potential of high carbohydrate. Sago cultivation there are still has some problems, such as sucker