Perlakuan 1 Derajat Kristalinitas (%) Tipe Kristalin
V. SIMPULAN DAN SARAN
V. SIMPULAN DAN SARAN
5.1 Simpulan
Pati garut yang diperoleh dengan cara ekstraksi basah memiliki kadar ami-losa 24,64% dan amilopektin 73,46%. Hasil pengukuran dengan RVA menunjuk-kan bahwa pati garut alami memiliki profil gelatinisasi tipe A yang ditandai dengan nilai viskositas puncak yang cukup tinggi dan viskositas breakdown yang cukup tajam.
Berdasarkan parameter kadar RS3 dan daya cerna pati in vitro, proses autoclaving-cooling yang terbaik dilakukan dengan pemanasan awal pada 80oC dan dilanjutkan dengan 3 siklus proses autoclaving pada suhu 121oC selama 15 menit dan pendinginan pada suhu 4oC selama 24 jam. Proses hidrolisis asam dilakukan dengan HCl 2,2N selama 2 jam pada suhu 35oC. Proses debranching dengan enzim pullulanase dengan konsentrasi 10,4 U/g pati pada 50oC selama 24 jam.
Analisis GPC menunjukkan bahwa perlakuan modifikasi pati garut dengan cooling (AC), hidrolisis (H2), kombinasi hidrolisis dan autoclaving-cooling (H2AC), kombinasi debranching 1,3 U/g pati atau 10,4 U/g pati dan autoclaving-cooling (D1AC dan D10AC), serta kombinasi hidrolisis, debranching dan autoclaving-cooling (H2D1AC dan H2D10AC) menyebabkan penurunan fraksi amilopektin dan peningkatan fraksi amilosa. Distribusi rantai linear baik dari hasil debranching amilopektin maupun hidrolisis amilosa yang diukur dengan menggunakan FACE menunjukkan empat rentang derajat polimerisasi (DP), yaitu 6-8; 9-12; 13-24 dan 25-30.
Perlakuan modifikasi pati garut (AC, H2AC, D1AC, dan H2D1AC) mening-katkan DP 25-30 yang berkontribusi pada pembentukan RS3. Pada perlakuan debranching dengan konsentrasi enzim pullulanase 10,4 U/g pati (D10AC dan H2D10AC), peningkatan terjadi pada DP 11-12. Proses autoclaving-cooling dapat meningkatkan DP 6-8 dengan peningkatan yang cukup besar ditemukan pada pati garut dengan proses debranching konsentrasi tinggi (H2D10AC).
132
Semua perlakuan modifikasi pati garut di atas dapat meningkatkan kadar RS3 dan menurunkan daya cerna patinya. Kadar pati resisten tertinggi (39,30%) hasil modifikasi pati garut yang mendekati kadar pati resisten komersial (Nove-lose 330) diperoleh dari perlakuan hidrolisis asam, debranching dengan konsen-trasi tinggi (10,4 U/g pati) dan autoclaving-cooling.
Hasil analisis dengan menggunakan difraksi sinar X menunjukkan bahwa pati garut alami memiliki kristalin tipe A dan berubah menjadi kristalin tipe B setelah mengalami modifikasi untuk semua perlakuan kecuali pati garut yang hanya mengalami hidrolisis asam selama 2 jam. Perubahan tipe kristalinitas terse-but menyebabkan penurunan derajat kristalinitas. Hasil analisis kestabilan panas dengan DSC menunjukkan bahwa modifikasi pati garut dapat meningkatkan entalpi endotermik dan derajat retrogradasi. Analisis FTIR juga memperlihatkan bahwa modifikasi pati garut dapat meningkatkan bagian amorf melalui pening-katan nisbah bilangan gelombang 1022/995.
Berdasarkan penelitian ini, maka dapat direkomendasikan bahwa kadar pati resisten (RS3) pati garut dapat ditingkatkan dengan proses modifikasi sebagai berikut: suspensi pati (20%b/b) dihidrolisis asam dengan HCl 2,2N selama 2 jam pada suhu 35oC, kemudian dilakukan pemanasan awal pada suhu 80oC selama 5 menit, perlakuan debranching dengan menggunakan enzim pullulanase 10,4 U/g pati. Selanjutnya pati garut tersebut diautoklaf pada suhu 121oC selama 15 menit dan pendinginan pada suhu 4oC selama 24 jam (proses autoclaving-cooling dila-kukan sebanyak 3 kali siklus). Proses modifikasi tersebut dapat menghasilkan kadar pati resisten sebesar 39,3% dan daya cerna pati sebesar 54,81%.
5.2 Saran
Penelitian ini belum menghubungkan antara pati garut hasil modifikasi dengan indeks glikemik secara in vitro sebagai landasan dalam melakukan peng-ujian secara in vivo. Sampel pati garut yang dimodifikasi dengan cara hidrolisis asam, debranching (10,4 U/g) dan autoclaving-cooling berpotensi untuk diuji.
Proses debranching pati garut dalam penelitian ini belum menggunakan enzim pullulanase yang optimum. Oleh karena itu, masih diperlukan penelitian lanjutan untuk memastikan konsentrasi enzim pullulanase yang dapat memotong
133
ikatan percabangan α-1,6 yang maksimal untuk menghasilkan amilosa rantai pendek yang lebih banyak.
Peningkatan kadar RS3 dapat dilakukan melalui hidrolisis asam dan debranching dengan tahapan proses pencucian dengan air deionisasi atau etanol 80% sebelum dilakukan proses autoclaving-cooling. Hal tersebut dilakukan untuk mengurangi atau menghilangkan rantai linier glukan dengan DP<10 sehingga kemungkinan kadar RS3 dapat lebih meningkat.
Pada penelitian ini distribusi rantai linear glukan hasil degradasi amilosa dan debranching amilopektin dianalisis dengan menggunakan FACE yang hanya dapat mendeteksi DP 6-30. Sebagian rantai B2 dengan DP 31-36 dan rantai B3 dengan DP>37 pada pati garut dapat diketahui dengan analisis menggunakan HPAE-PAD (High Performance Anion Exchange Chromatography-Pulse Ampe-rometric Detection). Selain itu, bobot molekul amilosa dan amilopektin dapat diketahui dengan menggunakan SEC (Size Exclusion Chromatography). Peru-bahan bobot molekul baik amilosa maupun amilopektin selama proses modifikasi pati garut dengan hidrolisis asam dan atau debranching dan proses autoclaving-cooling dapat diketahui dengan metode SEC tersebut.
Hasil penelitian ini menunjukkan bahwa RS3 dari hasil modifikasi hidrolisis asam dengan HCl selama 2 jam masih lebih rendah bila dibandingkan dengan debranching. Penelitian lain melaporkan bahwa hidrolisis asam pada pati dapat juga dilakukan dengan menggunakan asam sitrat, asam laktat atau asam asetat untuk meningkatkan kadar RS3.
Beberapa penelitian menunjukkan bahwa kombinasi hidrolisis asam, debranching dan autoclaving-cooling yang dikombinasikan dengan modifikasi heat moisture treatment (HMT) dapat meningkatkan kadar RS3 yang sangat tinggi hingga mencapai 84% (Lehmann et al. 2002). Penelitian lanjutan diperlukan untuk mengetahui pengaruhnya pada pati garut.
Penelitian ini belum dapat menjelaskan mekanisme penghambatan rantai linear glukan dengan DP<10 terhadap pembentukan RS3 dan mekanisme kompe-tisi antara kecepatan hidrolisis pati secara enzimatis dengan kecepatan pemben-tukan RS3 atau pati teretrogradasi selama proses pengukuran RS3 secara in vitro.
134
Analisis dengan NMR, difraksi sinar X, FTIR dan DSC dapat membantu untuk menjelaskan mekanisme tersebut.
Hasil penelitian pengembangan R3 diharapkan dapat memberikan manfaat bagi peningkatan nilai tambah berbagai sumber pati lokal sebagai ingredien pangan, terutama untuk menghasilkan pati yang dapat memberikan sifat fisiko-kimia yang sesuai untuk proses pengolahan pangan dan sekaligus memberikan sifat fungsional bagi kesehatan. Adanya potensi pengembangan industri pati termodifikasi (RS3) diharapkan dapat mendorong usahatani sumber karbohidrat lokal yang dapat berdampak pada peningkatan kesejahteraan petani. Dukungan pemerintah dalam bentuk bantuan modal, pembinaan petani, dukungan kebijakan dan terbangunnya kemitraan antara petani dan produsen pati sangat diperlukan.
Industri pati termodifikasi (RS3) dari umbi garut berpotensi untuk dikem-bangkan, karena umbi garut mengandung pati yang cukup tinggi sehingga dapat menghasilkan rendemen RS3 yang tinggi pula. Walaupun umur panen umbi garut cukup lama (9-10 bulan), tetapi tanaman garut dapat dibudidayakan sebagai tanaman tumpang sari. Berdasarkan hasil penelitian sebelumnya, pati kacang merah pun dapat diproses menjadi RS3. Dengan kondisi modifikasi pati (hidrolisis asam, debranching dan autoclaving-cooling) yang mirip, pati garut dan kacang merah dapat menghasilkan konsentrasi RS3 yang hampir sama. Kacang merah memiliki umur panen yang relatif pendek (3-4 bulan), namun mengandung pati yang lebih rendah sehingga akan dihasilkan rendemen pati dan RS3 yang lebih rendah dibandingkan dengan umbi garut.
135 DAFTAR PUSTAKA
AOAC. 1998. Official Methods of Analysis of the Association Analytical Chemistry Inc, Washington D.C.
Anderson AK, Guraya HS, James C, Salvaggio L. 2002. Digestibility and pasting properties of rice starch heat-moisture treated at the melting Temperature
(tm). Starch/Stärke 54: 401–409.
Aparicio-Saguilan, Flores-Huicochea E, Tovar J, García-Suárez F, Gutiérrez-Meraz F, Bello-Pérez LA. 2005. Resistant starch-rich powders prepared by autoclaving of native and lintnerized banana starch: partial characterization. Starch/ Starke 57: 405-412.
Apriyadi, MS. 2009. Modifikasi Pati Garut (Marantha arundinaceae L.) dengan
Perlakuan Hidrolisis Asam dan Siklus Pemanasan-Pendinginan untuk Menghasilkan Pati Resisten Tipe III [Skripsi]. Departemen Ilmu dan Tekno-logi Pangan. Fakultas TeknoTekno-logi Pertanian. Institut Pertanian Bogor, Bogor. Ariesta E, Setyono N, Ardiati, Rahmat S, Sofyan. 2004. Umbi-umbian yang
Berjasa dan Terlupa. Simpul Pangan Yogja. Yayasan KEHATI. Yogyakarta. Bauer BA, Wiehie T, Knorr D. 2005. Impact of high hydrostatic pressure
treat-ment on the resistant starch content of wheat starch. Starch/Starke 57:
124-133.
Belitz HD, Grosch W. 1999. Food Chemistry. Berlin: Springer Verlage.
Bello-Perez LA, Ottenhof MA, Agama-Acevedo E, Farhat IA. 2005. Effect of
storage time on the retrogradation of banana starch extrudate. Journal of
Agriculture and Food Chemistry 53:1081-1086.
Bird AR, Brown IL, Topping DL. 2000. Starches, resistant starches, the gut
microflora and human health. Current Issues Intest. Microbial. 1(1): 25-37.
Bjorck I, Nyman M, Pedersen P, Siljestrom M, Asp NG, Eggum BO. 1987. For-mation of enzyme resistant starch during autoclaving of wheat starch:
studies in vitro and in vivo. Journal of Cereal Science 6: 159–72.
Buleon A, Colonna P, Planchot V, Ball S. 1998. Starch granules: structure and
biosynthesis. International Journal of Biological Macromolecules 23:
85-112.
Champ M. 2004. Resistant Starch. Di dalam: Starch in Food. Woodhead
Pub-lishing Limited dan CEC Press LLC. Boca Raton. USA.
Chen Z. 2003. Physicochemical Properties of Sweet Potato Starches and Their Application in Noodle Products [Thesis]. The Netherland Wageningen Uni-versity.
ChungYL, Lai HM. 2007. Properties of cast films made of HCl-methanol
modi-fied corn starch. Starch/Starke 59: 583-592.
Chung HJ, Liu Q, Hoover R. 2009. Impact of annealing and heat-moisture treatment on rapidly digestible, slowly digestible and resistant starch levels
136
in native and gelatinized corn, pea and lentil starches. Carbohydrate
Poly-mers 75: 436-447.
Collado LS, Mabesa LB, Oates CG, Corke H. 2001. Bihon-type of noodles from
heat-moisture treated sweet potato starch. Journal of Food Science 66(4):
604-609.
Cooke D, Gidley MJ. 1992. Loss of crystalline and molecular order during starch
gelatinization: origin of the enthalpy transition. Carbohydrate Research
227: 103-112.
Cullity BD. 1978. Elements of X-ray Diffraction (Edisi 2). Reading, Massa-chusetts: Addison-Wesley Publishing Company, Inc.
Donald AM, Waigh TA, Jenkins PJ, Gidley MJ, Debet M, Smith A. 1997. Internal structure of starch granules revealed by scattering studies. Di dalam: Frazier
PJ, Donald AM, Richmond P. (Editor). Starch: Structure and Functionality.
The Royal Society of Chemistry, Cambridge, hlm. 172–179.
Dubois M, Gilles KA, Hamilton JK, Rebers PA, Smith F. 1956. Calorimetric
method for determination of sugars and related substance. Analytical
Chemistry 28: 350-356.
Edmonton TV, Saskatoon RSB. 1998. Enhancement of resistant starch III in
amylomaize barley, field pea and lentil starches. Food Chemistry 4:
527-532.
Edwards A, Fulton DC, Hylton, CM, Jobling SA, Gidley M, Rossner U, Martin C, Smith M. 1999. A combined reduction in activity of starch synthases II and
III of potato has novel effects on the starch of tubers. The Plant Journal 17:
251-261.
Eerlingen RC, Crombez M, Delcour JA. 1993. Enzyme resistant starch I: quanti-tative and qualitiquanti-tative influence of inhibition time and temperature of
auto-claved starch on resistant starch formation. Cereal Chemistry 70(3):
339-334.
Eerlingen RC, Delcour JA. 1995. Formation, analysis, structure and properties of
type III enzyme resistant starch. Journal of Cereal Science 22: 129–38.
Englyst HN, Kingman SM, Cummings JH. 1992. Classification and measurement
of nutritionally important starch fractions. European Journal of Clinical
Nutrition 46: 533-550.
Espinosa-Solis V, Jaylin J, Bello-Perez LA. 2009. Physicochemical characteristics of starches from unripe fruits of mango and banana. Starch/Stärke 61: 291– 299.
Faridah DN, Prangdimurti E, Adawiyah DR. 2008. Pangan Fungsional dari Umbi Suweg dan Garut: Kajian Daya Hipokolesterolemik dan Indeks Glike-miknya. Laporan Penelitian Hibah Bersaing, LPPM-IPB, Bogor.
Ferrini LMK, Rochaa TS, Demiate IM, Franco CLM. 2008. Effect of acid-metha-nol treatment on the physicochemical and structural characteristics of
137 Franco CML, Cabral RAF, Tavares DQ. 2002. Structural and physicochemical
characteristics of lintnerized native and sour cassava starches. Starch /Starke
54: 469-475.
French AD. 1972. Fine structure of starch and its relationship to the organization
of the granules. Journal of Japanese Society Starch Science 19: 8-25.
Frost K, Kaminski D, Kirwan G, Lascaris E, Shanks R. 2009. Crystallinity and
structure of starch using wide angle X-ray scattering. Carbohydrate
Poly-mers 78: 543–548.
Gallant D, Bouchet B, Baldwin P. 1997. Microscopy of starch: evidence of a new
level of granule organization. Carbohydrate Polymers 32: 177-191.
García-Rosas M, Bello-Pérez A, Yee-Madeira H, Ramos G, Flores-Morales A, Mora-Escobedo R. 2009. Resistant starch content and structural changes in maize (Zea mays) tortillas during storage. Starch/Stärke 61: 414-421.
Goñi L, García-Diaz L, Mañas E, Saura-Calixto F. 1996. Analysis of Resistant
Starch : A Method for Food and Food Products. Elsevier Science Ltd. 56(4): 445-449.
Gonzales-Soto RA, Agama-Acevedo E, Solorza-Feria J, Rendón-Villalobos R, Bello-Pérez LA. 2004. Resistant starch made from banana starch by
auto-claving and debranching. Starch/Stärke 56: 495–499.
Gonzales-Soto RA, Mora-escobedo R, Hernandez-Sanchez H, Sanchez-Rivera M, Bello-Perez LA. 2007. The influence of time and storage temperature on
resistant starch formation from autoclaved debranched banana starch. Food
Research International 40: 304–310.
Goodfellow BJ, Wilson RH. 1990. A fourier transform IR study of the gelation of
amylose and amylopectin. Biopolymers 30: 1183-1189.
Gudmundsson M. 1994. Retrogradation of starch and the role of its components. Thermochimica Acta 246: 329-341.
Hanashiro I, Takeda Y. 1998. Examination of number – average degree of poly-merization and molar-based distribution of amylose by fluorescent labeling
with 2-aminopyridine. Carbohydrate Research 306: 421-426.
Hanashiro I, Tagawa M, Shibahara S, Iwata K, Takeda Y. 2002. Examination of molar-based distribution of A, B and C chains of amylopectin by fluorescent
labeling with 2-aminopyridine. Carbohydrate Research 337: 1211-1215.
Haralampu SG. 2000. Resistant starch—a review of the physical properties and
biological impact of RS3. Carbohydrate Polymer 41: 285–92.
Herawati D. 2009. Modifikasi Pati Sagu dengan Teknik Heat Moisture Treatment
(HMT) dan Aplikasinya dalam Memperbaiki Kualitas Bihun [Tesis]. Seko-lah Pasca Sarjana, IPB.
Hickman BE, Janaswamy S, Yao Y. 2009. Autoclave and β-amylolysis lead to
reduced in vitro digestibility of starch. Journal of Agriculture and Food
138 Hizukuri S, Kaneko T, Takeda Y. 1983. Measurement of the chain length of
amy-lopectin and its relevance to the origin of crystalline polymorphism of starch
granules. Biochimica et Biophysicia Acta. 760: 188–191.
Hizukuri S. 1986. Polymodal distribution of the chain lengths of amylopectin and
its significance. Carbohydrate Research 147: 342-347.
Htoon A, Shrestha AK, Flanagan BM, Lopez-Rubio A, Bird AR, Gilbert EP, Gidley MJ. 2009. Effects of processing high amylose maize starches under controlled conditions on structural organisation and amylase digestibility. Carbohydrate Polymers 75: 236–245.
Hoover R, Vasanthan T. 1994a. Effect of heat-moisture treatment on the structure
and physicochemical properties of cereal, legume and tuber starches.
Carbo-hydrate Research 252: 33-53.
Hoover R, Vasanthan T. 1994b. The effect of annealing on the physicochemical
properties of wheat, oat, potato and lentil starches. Journal of Food
Bio-chemistry 17: 303-325.
Imberty A, Bule´on A, Tran V, Perez S. 1991. Recent advances in knowledge of
starch structure. Starch/Starke 43: 375–384.
Jacobash G, Dongowski G, Schiemidl D, Schmehl KM. 2006. Hydrothermal treat-ment of novelose 330 results in high yield of resistant starch type 3 with beneficial prebiotic properties and decreased secondary bile acid formation
in rats. British Journal of Nutrition 95: 1063-1074.
Jane JI. 2004. Starch: Structure and Properties. CRC Press LLC.
Jayakody L, Hoover R. 2002. The effect of lintnerization on cereal starch
gra-nules. Food Research International 35: 665-680.
Jayakody L, Hoover R. 2008. Effect of annealing on the molecular structure and physicochemical properties of starches from different botanical origins – a
review. Carbohydrate Polymers 74: 691–703.
Karim AA, Norziah MH, Seow CC. 2000. Methods for the study of starch
retro-gradation. Food Chemistry 71: 9-36.
Kay DE. 1973. Root Crops Tropical Product Institute. London: Foreign and Com-monwealth Office.
Kim, SK, Kwok JK, Kim WK. 2003. A simple method for estimation of
enzyme-resistant starch content. Starch/Starke 55: 366-368.
Kim SK, Kwak JE. 2009. Formation of resistant starch in corn starch and
estimation of its content from physicochemical properties. Starch/Stärke 61: 514–519.
Koksel H, Masatcioglu T, Kahraman K, Ozturk S, Basman A. 2008a. Improving effect of lyophilization on functional properties of resistant starch
prepa-rations formed by acid hydrolysis and heat treatment. Journal of Cereal
Science 47(2): 275-282.
Koksel H, Ozturk S, Kahraman K, Basman A, Ozbas OZ, Ryu GH. 2008b. Eva-luation of molecular weight distribution, pasting and functional properties,
139
and enzyme resistant starch content of acid-modified corn starches. Food
Science and Biotechnology 17(4): 755-760.
Lehmann U, Jacobasch G, Schmiedl D. 2002. Characterization of resistant starch
type III from banana (Musa acuminata). Journal of Agriculture and Food
Chemistry 50: 5236-5240.
Lehmann U, Rossler C, Schmiedl D, Jacobash G. 2003. Production and physico-chemical characterization of resistant starch type 3 derived from pea. Starch/Nahrung/Food 43: 60-63.
Leong YH, Karim AA, Norziah MH. 2007. Effect of pullulanase debranching of
sago (Metroxylon sagu) starch at subgelatinization temperature on the yield
of resistant starch. Starch/Starke 59: 21-32.
Leu RKL, Brown IL, Hu Y, Young GP. 2003. Effect of resistant starch on geno-toxin-induced apoptosis, colonic epithelum, and luminal contents in rats. Carcinogenesis. 24(8): 1347-1352.
Lingga PB, Sarwono F, Rahadi PC, Raharja JJ, Afistini, Rini W, Apriadi WH. 1986. Bertanam Umbi-umbian. Penebar swadaya. Jakarta.
Liu Q, Thompson DB. 1998. Effects of moisture content with different initial
heating temperature on retrogradation from different maize starches.
Carbo-hydrate Research. 314: 221-235.
Liu Q. 1997. Characterization of Physicochemical Properties of Starch from Various Potatoes and Other Sources, University Laval, Quebec City, Canada.
Liu Q. 2005. Understanding Starches and their Role in Foods. Di dalam: Food
Carbohydrates: Chemistry, Physical Properties and Applications. Cui SW (editor). RC Taylor & Francis, Boca Ratn FL.
Longton J, LeGrys GA. 1981. Differential scanning calorimetry studies on the
crystallinity of ageing wheat starch gels. Starch/Starke 33: 410-414.
Lopez-Rubio A, Flanagan BM, Shrestha AK, Gidley MJ, Gilbert EP. 2008. Mole-cular rearrangement of starch during in vitro digestion: toward a better understanding of enzyme resistant starch formation in processed starches. Biomacromolecules 9: 1951–1958.
Mahadevamma MS, Harish KVP, Tarathanan RN. 2003. Resistant starch derived from processed legumes: purification and structural characterization. Journal of Carbohydrate Polymers 54: 215-219.
Meyer LH. 2003. Food Chemistry. Textbook Publisher, New York.
Miao M, Jiang B, Zhang T. 2009. Effect of pullulanase debranching and
recrys-tallization on structure and digestibility of waxy maize starch. Carbohydrate
Polymers 76: 214–221.
Moorthy SN. 2002. Physicochemical and functional properties of tropical tuber
140 Morell MK, Samuel, MS, O’Shea MG. 1998. Analysis of starch structure using
fluorophore-assisted carbohydrate electrophoresis. Electrophoresis 19:
2603-2611
Muchtadi D, Palupi NS, Astawan M. 1992. Petunjuk Laboratorium Metode Kimia Biokimia dan Biologi dalam Evaluasi Nilai Gizi Pangan Olahan. Depar-temen Pendidikan dan Kebudayaan, Direktorat Jendral Pendidikan Tinggi, Pusat Antar Universitas, Institut Pertanian Bogor.
Muhr AH, Blanshard JMV, Bates DR. 1984. The effect of lintnerization on wheat
and potato starch granules. Carbohydrate Polymers 4: 399–425.
Mujoo R and Ali SZ.1999. Molecular degradation of rice starch during processing
to flakes. Journal of the Science of Food and Agriculture 79:941-949.
Mumny P. 2000. Starch. Di dalam : Phillips GO, William PA (Editor). Handbook
of Hydrocolloids. Boca Raton : CRC Press. Hlm. 41-65.
Mun SH, Shin M. 2006. Mild hydrolysis of resistant starch from maize. Food
Chemistry 96:115–121.
Mutungi C, Rosta F, Onyangob C, Jarosa D, Rohma H. 2009. Crystallinity, ther-mal and morphological characteristics of resistant starch type III Produced
by hydrothermal treatment of debranched cassava starch. Starch/Starke 61:
1-12.
Nakamura Y, Sakurai A, Inaba Y, Kimura K, Iwasawa N, Nagamine T. 2002. The fine structure of amylopectin in endosperm from asian cultivated rice can be
largely classified into two classes. Starch/Starke 54: 117-131.
Naraya S, Moorthy. 2002. Physicochemical and functional properties of tropical
tuber starches : A review. Starch/Starke 54: 559-592.
Onyango C, Bley T, Jacob A, Henle T, Rohm H. 2006. Influence of incubation temperature and time on resistant starch type III formation from autoclaved
and acid hydrolysed cassava starch. Carbohydrate Polymers 66: 494–499.
Oostergetel GT, Bruggen EFJV. 1993. The Crystalline domains in potato starch
granules are arranged in a helical fashion. Carbohydrate Polymers 21: 7–12.
O'Shea MG, Samuel MS, Konik CM, Morell MK. 1998. Fluorophore-assisted carbo-hydrate electrophoresis (FACE) of oligosaccharides: effeciency of
labelling and high-resolution separation. Carbohydrate Research 307: 1-12.
Ottenhof MA, Hill SE, Farhat IA. 2005. Comparative study of the retrogradation
of intermediate water content waxy maize, wheat, and potato starches.
Journal of Agriculture and Food Chemistry 53: 631-638
Ozturk S, H Koksel, Kahraman K. 2009. Effect of debranching and heat treat-ments on formation and functional properties of resistant starch from
high-amylose corn starch. Eur Food Tes Technol 229: 115-125.
Orford PD, Ring SG, Carroll V, Miles MJ, Morries V. 1987. The effect of concen-tration and botanical source on the gelation and retrogradation of starch. Journal of the Science of Food and Agriculture 39: 169-173.
141 Parker R. 2003. Introduction to Food Science. United States of America: Delmar,
Thomson Learning.
Perez E, Lares M. 2005. Chemical composition, mineral profile, and functional
properties of canna (Canna edulis) and arrowroot (Maranta spp.) starches.
Plant Foods for Human Nutrition. 60: 113–116.
Pomeranz Y, Meloan CE. 2000. X-ray methods. In: Food Analysis: Theory and Practice (3rd ed). hlm. 158-171. Gaithersburg, Maryland: Aspen Publishers, Inc.
Pongjanta J, Utaipattanaceep O, Naivikul, Piyachomkwan K. 2009a. Effect of preheated treatments on physicochemical properties of resistant starch type
III from pullulanase hydrolysis of high amylose rice starch. American
Journal of Food Technology 4(2): 79-89.
Pongjanta J, Utaipattanaceep O, Naivikul, Piyachomkwan K. 2009b. Debranching
enzyme concentration effected on physicochemical properties and α
-amylase hydrolysis rate of resistant starch type III from amylose rice starch. Carbohydrate Polymers 78: 5–9.
Raja MKC, Shindu P. 2000. Properties of starch-treated arrowroot (Marantha
arundinacea) starch. Starch/Starke 52: 471-476.
Ranhotra GS, Gelroth JA, Astroth K, Eisenbraun GJ. 1991. Effect of resistant
starch on intestinal responses in rats. Cereal Chemistry 68(2): 130–132.
Ratnayake WS, Hoover R, Warkentin T. 2002. Pea starch: composition, structure
and properties: a review. Starch/Starke 54: 217-234.
Ridal S. 2003. Karakterisasi Sifat Fisikokimia Tepung dan Pati Talas (Colocasia
escilenta Crantz.) dan Kimpul (Xanthosoma Sp.) dan Uji Penerimaan α -Amilase terhadap Patinya [Skripsi]. Fakultas Teknologi Pertanian IPB. Bogor.
Robin JP, Mercier C, Charbonniere R, Guilbot. A. 1974. Lintnerized starches gel