Isolasi Komponen Bioaktif Flavonoid dari Tanaman Daun Dewa (Gynura pseudochina (Lour) DC)

ISOLASI KOMPONEN BIOAKTIF

FLAVONOID

DARI TANAMAN DAUN DEWA

Gynura pseudochina

(Lour) DC

RAMLAH ZAINI

SEKOLAH PASCASARJANA

INSTITUT PERTANIAN BOGOR

PERNYATAAN MENGENAI TESIS DAN

SUMBER INFORMASI

Dengan ini saya menyatakan bahwa tesis Isolasi Komponen Bioaktif Flavonoid dari Tanaman Daun Dewa (Gynura pseudochina (Lour) DC) adalah karya saya sendiri dan belum diajukan dalam bentuk apapun kepada perguruan tinggi manapun. Sumber informasi yang berasal atau dikutip dari karya yang diterbitkan dari penulis lain telah disebutkan dalam teks dan dicantumkan dalam Daftar Pustaka di bagian akhir tesis ini.

Bogor, Agustus 2006

Ramlah Zaini

ABSTRAK

RAMLAH ZAINI. Isolasi Komponen Bioaktif Flavonoid dari Tanaman Daun Dewa Gynura pseudochina (Lour) DC. Dibimbing oleh LATIFAH K. DARUSMAN dan PURWANTININGSIH SUGITA.

Penelitian ini meliputi isolasi komponen flavonoid dari daun dan umbi tanaman daun dewa, diikuti dengan uji bioassay mortalitas larva Artemia salina

Leach dan antikhamir terhadap Saccaromyces cerevisiae. Proses ekstraksi flavonoid antosianin dilakukan secara maserasi dengan pelarut HCl dalam MeOH, sedangkan golongan flavonoid lainnya juga dilakukan secara maserasi, tetapi dengan dua tahap pelarut yaitu, tahap I pelarut MeOH-H2O (9:1) dan tahap

II MeOH-H2O (1:1). Filtrat dari kedua tahapan disatukan dan dikeringkan

dengan rotavapor. Ekstrak yang diperoleh dipartisi berturut-turut dengan pelarut n-heksan, kloroform, dietil eter, etil asetat dan n-butanol. Sedangkan residunya disoxhletasi dengan petroleum eter dan metanol. Dalam penelitian ini ditelusuri keberadaan flavonoid dengan uji fitokimia dan bioaktivitasnya dengan uji toksisitas menggunakan larva A. salina Leach (Uji BSLT) dan uji aktivitas antikhamir terhadap S. cerevisiae. Karakterisasi fraksi yang diperoleh dilakukan dengan spektrometer UV-Vis dan FTIR, GC-MS dan KCKT.

Hasil uji fitokimia terhadap ekstrak daun segar tanaman daun dewa tidak terdeteksi adanya golongan flavonoid antosianin. Hasil uji BSLT untuk ekstrak serbuk daun, fraksi butanol menunjukkan nilai LC50 tertinggi yaitu 832,12297

ppm, dan untuk ekstrak serbuk umbi, fraksi etil asetat menunjukkan nilai LC50

tertinggi yaitu 723,44205 ppm, tetapi kedua ekstrak tersebut tidak menunjukkan aktivitas antikhamir terhadap khamir S. cerevisiae. Pemisahan fraksi butanol dengan KLT preparatif mengunakan fase diam silika gel 60 F254 dan fase gerak

BAA menghasilkan 7 fraksi. Fraksi 4 dan 7 memiliki nilai LC50 7,80408 dan

208,51563 ppm.

ABSTRACT

RAMLAH ZAINI. Isolation of Bioactive Component Flavonoid from Daun Dewa Plant Gynura pseudochina (Lour) DC. Under the direction of LATIFAH K. DARUSMAN and PURWANTININGSIH SUGITA.

This research was including of isolation of flavonoid component from leaf and rhizoma of daun dewa plant, followed by bioassay test of larvae mortality of

Artemia salina Leach and antikhamir to Saccharomyces cerevisiae. Extraction process of antocyanin flavonoid was done by maceration using HCl in MeOH solvent, whereas another flavonoid was done maceration too, but with two steps, first, using MeOH – H2O (9:1) and second, using MeOH – H2O (1:1). Filtrate

obtained from these steps was collected together and dried using rotavapour. Extract that obtained from this process was partitied using n-hexan, chloroform, diethylether, ethylacetic and n-buthanol solvent, respectively. Its residue was soxhletated using petroleum ether and methanol. The existency of flavonoid was traced by phytochemical test, its bioavailabiolity was traced by toxicity test using

A. salina Leach larvae (BSLT test) and antikhamir activity test to Saccharomyces cerevisiae with spectrometer UV-Vis and FTIR, GC-MS and HPLC.

The result of phitochemical test of fresh leaf extract of daun dewa plant could not detect the anthocyanin flavonoid group. The result of BSLT test of leaf powder extract showed that buthanol fraction has the highest value of LC50 =

832.12297 ppm, in rhizoma powder extract, the ethylacetic showed the highest value of LC50 was 723.44205 ppm, but in those both extract did not show

antikhamir activity to S. cerevisiae khamir. Separation of buthanol fraction was using TLC preparative with silica gel 60 F254 as a stationer phase and BAW as a

mobile phase. It was resulted 7 fractions. Fraction 4 and 7 had LC50 value

7.80408 and 208.51563 ppm, respectively.

©

Hak cipta milik Institut Pertanian Bogor, tahun 2006 Hak cipta dilindungi

ISOLASI KOMPONEN BIOAKTIF FLAVONOID

DARI TANAMAN DAUN DEWA

Gynura pseudochina

(Lour) DC

RAMLAH ZAINI

Tesis

sebagai salah satu syarat untuk memperoleh gelar Magister Sains pada

Departemen Kimia

SEKOLAH PASCASARJANA

INSTITUT PERTANIAN BOGOR

Judul Tesis : Isolasi Komponen Bioaktif Flavonoid dari Tanaman Daun Dewa (Gynura pseudochina (Lour) DC)

Nama : Ramlah Zaini

NIM : G452030051

Disetujui Komisi Pembimbing

Prof. Dr. Ir. Latifah K. Darusman, MS Dr. Purwantiningsih Sugita, MS Ketua Anggota

Diketahui

Ketua Program Studi Kimia Dekan Sekolah Pascasarjana

Prof. Dr. Ir. Latifah K. Darusman, MS Dr. Ir. Khairil Anwar Notodiputro, MS

Tanggal Ujian : 14 Agustus 2006

PRAKATA

Puji dan syukur penulis panjatkan ke hadirat Allah SWT, karena dengan limpahan rahmat dan petunjukNya penulis dapat menyelesaikan tesis ini, yang merupakan salah satu syarat untuk memperoleh gelar magister sains pada Program Studi Kimia, Sekolah Pascasarjana Institut Pertanian Bogor.

Tesis dengan judul “Isolasi Komponen Bioaktif Flavonoid dari Tanaman Daun Dewa (Gynura pseudochina (Lour) DC)” dapat diselesaikan berkat bantuan, dorongan dan sumbangan pemikiran dari berbagai pihak. Untuk itu penulis ucapkan terimakasih dan penghargaan, terutama kepada Ibu Prof. Dr. Ir. Latifah K. Darusman, MS, selaku ketua komisi pembimbing, Ketua Program Studi Kimia dan Kepala Pusat Studi Biofarmaka LPPM-IPB, dan Ibu Dr. Purwantiningsih Sugita, MS, selaku anggota komisi pembimbing. Terimakasih juga disampaikan kepada om Eman, teh Nung serta seluruh Staf Laboratorium Kimia Analitik Departemen Kimia atas keramahtamahan serta rasa kekeluargaan dan bantuannya, seluruh Staf Laboratorium Mikrobiologi Departemen Biologi FMIPA IPB, dan terimakasih juga buat Bu Nunuk, Salina, Zaim dan Endik serta seluruh Staf Laboratorium Pusat Studi Biofarmaka LPPM-IPB Bogor, dan kepada teman-teman keluarga besar S2-Kimia serta terimakasih yang tak terhingga kepada ayah, mamak, suami dan anak-anak yang telah memberikan dukungan dan kasih sayang, beserta handai taulan atas segala bantuannya.

Semoga karya ilmiah ini bermanfaat.

Bogor, Agustus 2006

RIWAYAT HIDUP

Penulis dilahirkan di Desa Upak Kecamatan Bendahara Kabupaten Aceh Tamiang pada tanggal 2 Desember 1966. Penulis merupakan anak kedua dari empat bersaudara dari bapak H. Djailani AR dan ibu Hj. Safiah.

Penulis lulus dari SMA Negeri Kuala Simpang tahun 1985 dan pada tahun yang sama diterima pada Program Studi Pendidikan Kimia, Jurusan Pendidikan Matematika dan Ilmu Pengetahuan Alam, Fakultas Keguruan dan Ilmu Pendidikan Universitas Syiah Kuala melalui jalur seleksi Penelusuran Minat dan Kemampuan (PMDK) untuk Program Sarjana (S1) dan lulus pada tahun 1990. Kesempatan untuk melanjutkan ke Program Magister (S2) pada Program Studi Kimia Sekolah Pascasarjana Institut Pertanian Bogor, penulis peroleh pada tahun 2003 atas izin dari Gubernur Provinsi Nanggroe Aceh Darussalam.

Penulis bekerja sebagai guru mata pelajaran kimia di SMA Negeri 2 Kuta Cane Kabupaten Aceh Tenggara dari tahun 1992 sampai 1993. Kemudian sejak tahun 1993 sampai sekarang menjadi guru mata pelajaran kimia di SMA Negeri 3 Banda Aceh Kota Banda Aceh Provinsi Nanggroe Aceh Darussalam.

DAFTAR ISI

Halaman

DAFTAR TABEL ……….. vii

DAFTAR GAMBAR ..………...………… viii

DAFTAR LAMPIRAN ... ix

PENDAHULUAN ... 1

TINJAUAN PUSTAKA ………..………... 5

Flavonoid ………..………... 5

Tanaman Daun Dewa ... ...…....…... 8

Ekstraksi Flavonoid dari Tanaman Daun Dewa ...…………...…... 11

Uji Bioaktivitas ………..…………. 11

BAHAN DAN METODE ……. ………..…………... 14

Tempat Penelitian ... 14

Bahan dan Alat ………..………. 14

Metode Penelitian ………...……….… 15

HASIL DAN PEMBAHASAN ………...……… 23

Penapisan Sampel ………...…………. 23

Ekstraksi Senyawa Flavonoid ………..……….... 25

Penapisan Fraksi Terpilih ... 30

Karakterisasi Komponen ... 34

SIMPULAN DAN SARAN…....………...……….. 48

DAFTAR PUSTAKA ……… ………... 49

ISOLASI KOMPONEN BIOAKTIF

FLAVONOID

DARI TANAMAN DAUN DEWA

Gynura pseudochina

(Lour) DC

RAMLAH ZAINI

SEKOLAH PASCASARJANA

INSTITUT PERTANIAN BOGOR

PERNYATAAN MENGENAI TESIS DAN

SUMBER INFORMASI

Dengan ini saya menyatakan bahwa tesis Isolasi Komponen Bioaktif Flavonoid dari Tanaman Daun Dewa (Gynura pseudochina (Lour) DC) adalah karya saya sendiri dan belum diajukan dalam bentuk apapun kepada perguruan tinggi manapun. Sumber informasi yang berasal atau dikutip dari karya yang diterbitkan dari penulis lain telah disebutkan dalam teks dan dicantumkan dalam Daftar Pustaka di bagian akhir tesis ini.

Bogor, Agustus 2006

Ramlah Zaini

ABSTRAK

RAMLAH ZAINI. Isolasi Komponen Bioaktif Flavonoid dari Tanaman Daun Dewa Gynura pseudochina (Lour) DC. Dibimbing oleh LATIFAH K. DARUSMAN dan PURWANTININGSIH SUGITA.

Penelitian ini meliputi isolasi komponen flavonoid dari daun dan umbi tanaman daun dewa, diikuti dengan uji bioassay mortalitas larva Artemia salina

Leach dan antikhamir terhadap Saccaromyces cerevisiae. Proses ekstraksi flavonoid antosianin dilakukan secara maserasi dengan pelarut HCl dalam MeOH, sedangkan golongan flavonoid lainnya juga dilakukan secara maserasi, tetapi dengan dua tahap pelarut yaitu, tahap I pelarut MeOH-H2O (9:1) dan tahap

II MeOH-H2O (1:1). Filtrat dari kedua tahapan disatukan dan dikeringkan

dengan rotavapor. Ekstrak yang diperoleh dipartisi berturut-turut dengan pelarut n-heksan, kloroform, dietil eter, etil asetat dan n-butanol. Sedangkan residunya disoxhletasi dengan petroleum eter dan metanol. Dalam penelitian ini ditelusuri keberadaan flavonoid dengan uji fitokimia dan bioaktivitasnya dengan uji toksisitas menggunakan larva A. salina Leach (Uji BSLT) dan uji aktivitas antikhamir terhadap S. cerevisiae. Karakterisasi fraksi yang diperoleh dilakukan dengan spektrometer UV-Vis dan FTIR, GC-MS dan KCKT.

Hasil uji fitokimia terhadap ekstrak daun segar tanaman daun dewa tidak terdeteksi adanya golongan flavonoid antosianin. Hasil uji BSLT untuk ekstrak serbuk daun, fraksi butanol menunjukkan nilai LC50 tertinggi yaitu 832,12297

ppm, dan untuk ekstrak serbuk umbi, fraksi etil asetat menunjukkan nilai LC50

tertinggi yaitu 723,44205 ppm, tetapi kedua ekstrak tersebut tidak menunjukkan aktivitas antikhamir terhadap khamir S. cerevisiae. Pemisahan fraksi butanol dengan KLT preparatif mengunakan fase diam silika gel 60 F254 dan fase gerak

BAA menghasilkan 7 fraksi. Fraksi 4 dan 7 memiliki nilai LC50 7,80408 dan

208,51563 ppm.

ABSTRACT

RAMLAH ZAINI. Isolation of Bioactive Component Flavonoid from Daun Dewa Plant Gynura pseudochina (Lour) DC. Under the direction of LATIFAH K. DARUSMAN and PURWANTININGSIH SUGITA.

This research was including of isolation of flavonoid component from leaf and rhizoma of daun dewa plant, followed by bioassay test of larvae mortality of

Artemia salina Leach and antikhamir to Saccharomyces cerevisiae. Extraction process of antocyanin flavonoid was done by maceration using HCl in MeOH solvent, whereas another flavonoid was done maceration too, but with two steps, first, using MeOH – H2O (9:1) and second, using MeOH – H2O (1:1). Filtrate

obtained from these steps was collected together and dried using rotavapour. Extract that obtained from this process was partitied using n-hexan, chloroform, diethylether, ethylacetic and n-buthanol solvent, respectively. Its residue was soxhletated using petroleum ether and methanol. The existency of flavonoid was traced by phytochemical test, its bioavailabiolity was traced by toxicity test using

A. salina Leach larvae (BSLT test) and antikhamir activity test to Saccharomyces cerevisiae with spectrometer UV-Vis and FTIR, GC-MS and HPLC.

The result of phitochemical test of fresh leaf extract of daun dewa plant could not detect the anthocyanin flavonoid group. The result of BSLT test of leaf powder extract showed that buthanol fraction has the highest value of LC50 =

832.12297 ppm, in rhizoma powder extract, the ethylacetic showed the highest value of LC50 was 723.44205 ppm, but in those both extract did not show

antikhamir activity to S. cerevisiae khamir. Separation of buthanol fraction was using TLC preparative with silica gel 60 F254 as a stationer phase and BAW as a

mobile phase. It was resulted 7 fractions. Fraction 4 and 7 had LC50 value

7.80408 and 208.51563 ppm, respectively.

©

Hak cipta milik Institut Pertanian Bogor, tahun 2006 Hak cipta dilindungi

ISOLASI KOMPONEN BIOAKTIF FLAVONOID

DARI TANAMAN DAUN DEWA

Gynura pseudochina

(Lour) DC

RAMLAH ZAINI

Tesis

sebagai salah satu syarat untuk memperoleh gelar Magister Sains pada

Departemen Kimia

SEKOLAH PASCASARJANA

INSTITUT PERTANIAN BOGOR

Judul Tesis : Isolasi Komponen Bioaktif Flavonoid dari Tanaman Daun Dewa (Gynura pseudochina (Lour) DC)

Nama : Ramlah Zaini

NIM : G452030051

Disetujui Komisi Pembimbing

Prof. Dr. Ir. Latifah K. Darusman, MS Dr. Purwantiningsih Sugita, MS Ketua Anggota

Diketahui

Ketua Program Studi Kimia Dekan Sekolah Pascasarjana

Prof. Dr. Ir. Latifah K. Darusman, MS Dr. Ir. Khairil Anwar Notodiputro, MS

Tanggal Ujian : 14 Agustus 2006

PRAKATA

Puji dan syukur penulis panjatkan ke hadirat Allah SWT, karena dengan limpahan rahmat dan petunjukNya penulis dapat menyelesaikan tesis ini, yang merupakan salah satu syarat untuk memperoleh gelar magister sains pada Program Studi Kimia, Sekolah Pascasarjana Institut Pertanian Bogor.

Tesis dengan judul “Isolasi Komponen Bioaktif Flavonoid dari Tanaman Daun Dewa (Gynura pseudochina (Lour) DC)” dapat diselesaikan berkat bantuan, dorongan dan sumbangan pemikiran dari berbagai pihak. Untuk itu penulis ucapkan terimakasih dan penghargaan, terutama kepada Ibu Prof. Dr. Ir. Latifah K. Darusman, MS, selaku ketua komisi pembimbing, Ketua Program Studi Kimia dan Kepala Pusat Studi Biofarmaka LPPM-IPB, dan Ibu Dr. Purwantiningsih Sugita, MS, selaku anggota komisi pembimbing. Terimakasih juga disampaikan kepada om Eman, teh Nung serta seluruh Staf Laboratorium Kimia Analitik Departemen Kimia atas keramahtamahan serta rasa kekeluargaan dan bantuannya, seluruh Staf Laboratorium Mikrobiologi Departemen Biologi FMIPA IPB, dan terimakasih juga buat Bu Nunuk, Salina, Zaim dan Endik serta seluruh Staf Laboratorium Pusat Studi Biofarmaka LPPM-IPB Bogor, dan kepada teman-teman keluarga besar S2-Kimia serta terimakasih yang tak terhingga kepada ayah, mamak, suami dan anak-anak yang telah memberikan dukungan dan kasih sayang, beserta handai taulan atas segala bantuannya.

Semoga karya ilmiah ini bermanfaat.

Bogor, Agustus 2006

RIWAYAT HIDUP

Penulis dilahirkan di Desa Upak Kecamatan Bendahara Kabupaten Aceh Tamiang pada tanggal 2 Desember 1966. Penulis merupakan anak kedua dari empat bersaudara dari bapak H. Djailani AR dan ibu Hj. Safiah.

Penulis lulus dari SMA Negeri Kuala Simpang tahun 1985 dan pada tahun yang sama diterima pada Program Studi Pendidikan Kimia, Jurusan Pendidikan Matematika dan Ilmu Pengetahuan Alam, Fakultas Keguruan dan Ilmu Pendidikan Universitas Syiah Kuala melalui jalur seleksi Penelusuran Minat dan Kemampuan (PMDK) untuk Program Sarjana (S1) dan lulus pada tahun 1990. Kesempatan untuk melanjutkan ke Program Magister (S2) pada Program Studi Kimia Sekolah Pascasarjana Institut Pertanian Bogor, penulis peroleh pada tahun 2003 atas izin dari Gubernur Provinsi Nanggroe Aceh Darussalam.

Penulis bekerja sebagai guru mata pelajaran kimia di SMA Negeri 2 Kuta Cane Kabupaten Aceh Tenggara dari tahun 1992 sampai 1993. Kemudian sejak tahun 1993 sampai sekarang menjadi guru mata pelajaran kimia di SMA Negeri 3 Banda Aceh Kota Banda Aceh Provinsi Nanggroe Aceh Darussalam.

DAFTAR ISI

Halaman

DAFTAR TABEL ……….. vii

DAFTAR GAMBAR ..………...………… viii

DAFTAR LAMPIRAN ... ix

PENDAHULUAN ... 1

TINJAUAN PUSTAKA ………..………... 5

Flavonoid ………..………... 5

Tanaman Daun Dewa ... ...…....…... 8

Ekstraksi Flavonoid dari Tanaman Daun Dewa ...…………...…... 11

Uji Bioaktivitas ………..…………. 11

BAHAN DAN METODE ……. ………..…………... 14

Tempat Penelitian ... 14

Bahan dan Alat ………..………. 14

Metode Penelitian ………...……….… 15

HASIL DAN PEMBAHASAN ………...……… 23

Penapisan Sampel ………...…………. 23

Ekstraksi Senyawa Flavonoid ………..……….... 25

Penapisan Fraksi Terpilih ... 30

Karakterisasi Komponen ... 34

SIMPULAN DAN SARAN…....………...……….. 48

DAFTAR PUSTAKA ……… ………... 49

DAFTAR TABEL

Halaman

1. Hasil Uji Fitokimia Umum dan Golongan Flavonoid Sampel ... 24

2. Hasil Uji Fitokimia Flavonoid Ekstrak Hasil Isolasi Antosianin ... 26

3. Hasil KLT Analitik Ekstrak EAD dengan Eluen BAA … ... 28

4. Data Uji Toksisitas Ekstrak EAD dengan Larva A. salina Leach ... 28

5. Keberadaan Golongan Flavonoid dalam Fraksi Hasil Partisi Ekstrak Sampel, Jumlah Rendemen, Nilai Total Fenol dan Nilai LC50 ... 30

6. Hasil KLT Analitik Ekstrak D-FB dan U-FE dengan Eluen BAA ... 31

7. Pergeseran Spektrum UV dan Tampak pada F4-DB ... 36

8. Pergeseran Spektrum UV dan Tampak pada F7-DB ... 37

9. Pergeseran Spektrum UV dan Tampak pada Kuersetin ... 37

10. Absorbsi Infra Merah Gugus Fungsi F4-DB dan F7-DB ... 39

11. Konsentrasi Kuersetin dan Luas Puncak Kromatogram Hasil Analisa KCKT ... 41

12. Waktu Retensi Puncak Hasil GC dari F4-DB dan F7-DB ... 44

13. Pola Fragmentasi Spektrum Massa Hasil GC-MS ... 45

DAFTAR GAMBAR

Halaman 1. Konfigurasi C6-C3-C6 Kerangka Dasar Flavonoid ... 5

2. Resonansi pada Molekul Flavonoid ... 8 3. Tanaman Daun Dewa ... 9 4. Spektrum Ekstrak EAD, Konsentrasi Ekstrak 8000 ppm ... 27 5. Hasil Uji Antikhamir Ekstrak EAD terhadap Khamir S. cerevisiae ... 28 6. Spektrum Ekstrak D-FB, U-FE dan Kuersetin dalam Etanol ... 31 7. Spektrum Ekstrak D-FB, U-FE dan Kuersetin dalam Metanol ... 32 8. Hasil Uji Antikhamir Fraksi D-FB dan U-FE terhadap Khamir

DAFTAR LAMPIRAN

Halaman 1. Hasil determinasi tanaman daun dewa Gynura pseudochina (L.) DC. 55 2. Bagan Penapisan Sampel ……… 56 3. Bagan Ekstraksi Antosianin .……..……….……… 57 4. Bagan Ekstraksi Serbuk Daun dan Umbi Tanaman Daun Dewa ... 58 5. Contoh Hasil Penentuan Kadar Air ... 59 6. Contoh Pengukuran Total Fenol ... 60 7. Data Uji Toksisitas Ekstrak dengan Larva A. salina setelah 24 jam ... 61 8. Contoh Perhitungan nilai LC50Ekstrak F4-DB dan F7-DB (hasil uji

toksisitas larva A. salina) menggunakan Analisis Probit ... 62 9. Hasil Uji Antikhamir ………... 64 10. Jalur Biosintesa Flavonoid ... 65 11. Kromatogram KCKT Larutan Standar Kuersetin dan Perhitungan

PENDAHULUAN

Latar Belakang

Berkembangnya prinsip back to nature dewasa ini, meningkatkan kecenderungan manusia untuk memanfaatkan bahan alam terutama yang berasal dari tumbuh-tumbuhan sebagai obat bagi kesehatannya. Kecenderungan ini meningkat karena beberapa alasan, antara lain kearifan tradisional yaitu pengetahuan turun temurun tentang pemanfaatan tumbuhan obat untuk mengatasi penyakit, lebih aman untuk dikonsumsi dengan efek samping yang lebih kecil dibandingkan obat-obatan modern yang diproduksi secara kimia sintetik, juga seiring dengan krisis ekonomi yang melanda Indonesia beberapa tahun belakangan ini, menyebabkan harga obat-obatan modern tidak terjangkau oleh masyarakat umum, karena bahan baku obat-obatan, bahan pembantu dan teknologi hampir semuanya berasal dari luar negeri.

Hasil penelitian menunjukkan bahwa senyawa-senyawa fitokimia yang terdapat di dalam tanaman sangat bermanfaat bagi kesehatan. Kadar fitokimia di dalam tanaman umumnya sangat rendah, tetapi senyawa ini tetap saja dibutuhkan, misalnya sebagai pemberi warna daun, buah dan bunga, pemberi aroma serta pencegah kerusakan akibat bakteri atau virus.

Fitokimia amat beragam jenisnya, beberapa diantaranya sudah mulai dikenal oleh masyarakat. Misalnya β-karoten, kurkumin, gingerol, asam elegat, isoflavon, antosianin, kuersetin dan flavonoid. Jenis sayuran maupun buah-buahan yang berwarna biasanya memiliki kandungan fitokimia yang tinggi.

Berbagai macam tumbuhan telah digunakan oleh masyarakat sebagai ramuan penyembuh kanker, diantaranya tumbuhan tapak dara, tabat barito, teh hijau, temu putih, keladi tikus, sambiloto, sambung nyawa dan daun dewa serta banyak lagi tumbuhan lainnya. Melalui berbagai penelitian yang disarikan oleh Zee-Cheng dari Pusat Medik Universitas Kansas diketahui senyawa bioaktif yang berperan sebagai antikanker adalah peptida, oligosakarida, alkaloid, dan polifenol (Winarno 2003). Polifenol meliputi beberapa golongan senyawa, salah satu diantaranya adalah golongan flavonoid.

Banyak penelitian yang membuktikan bahwa beberapa senyawa golongan flavonoid yang diperoleh dari tumbuh-tumbuhan mempunyai kandungan bioaktivitas yang berpotensi sebagai obat, diantaranya dapat membantu mencegah kanker dengan menghambat pertumbuhan sel-sel kanker pada jaringan tubuh yang dikenainya, seperti mirisetin, kuersetin, luteolin, apigenin, rutin, kaemferol, dan antosianin (Miller 1996; Madhavi et al. 1998; Katsube et al. 2003; Knekt et al. 2002; Yoshie 2002; Abdel-Aal ESM dan P Hucl. 2003; Zhang

et al. 2005; dan Liu et al. 2005).

Diantara tumbuhan obat yang digunakan masyarakat sebagai bahan ramuan obat alternatif untuk menghambat pertumbuhan sel-sel kanker adalah tanaman daun dewa. Beberapa senyawa aktif yang terdapat dalam tanaman ini antara lain flavonoid, saponin, terpenoid, tanin, alkaloid, dan minyak atsiri (Ratnaningsih et al. 1985; Depkes RI 1989; Wijayakusuma et al. 1992; Siregar dan Utami 2000; Winarto 2003). Penelitian Soetarno et al. (2000) menunjukkan bahwa, senyawa flavonoid yang terkandung dalam daun dewa termasuk golongan glikosida kuersetin. Permukaan bagian belakang daun yang berwarna ungu memungkinkan adanya senyawa antosianin yang tergolong senyawa flavonoid.

Kuersetin merupakan senyawa flavonoid golongan flavonol, yang berpotensi sebagai antikanker. Lamson et al. (2000) melaporkan pemberian kuersetin dengan dosis 60-1700 mg/m2 pada pasien penderita kanker dapat menghambat kerja tirosin kinase, juga menghambat produksi heat shock proteins

delfinidin 27 dan 64% pertumbuhan kanker payudara pada pemberian 100 dan 200 μg/mL. Malvidin menghambat proliferasi sel kanker usus dan payudara 75,7 dan 74,7% pada pemberian 100 μg/mL. Pada pemberian 200 μg/mL pelargonidin berpotensi menghambat 62 dan 63% kanker usus dan payudara.

Hasil penelitian antikanker menggunakan parameter volume kanker dan pengamatan histopatologi jaringan kanker menunjukkan pada dosis 11,6 dan 23,2 mg/mL dari ekstrak daun dewa dapat menghambat pertumbuhan kanker. Kemampuan tersebut didukung oleh data histopatologi adanya nekrosis (matinya sel-sel akibat adanya serangan penyakit) sel-sel kanker. Hasil penelitian Winarto (2003) menunjukkan fraksi dari ekstrak etanol dan n-heksan tanaman daun dewa memiliki toksisitas yang tinggi terhadap larva udang.

Uji toksisitas merupakan uji pendahuluan untuk mengamati aktivitas farmakologi suatu senyawa. Metode Brine Shrimp Lethality Test (BSLT) merupakan suatu metode uji pendahuluan dengan mengamati tingkat kematian larva Artemia salina Leach yang disebabkan oleh ekstrak tumbuhan. Hasil penelitian menunjukkan bahwa kebanyakan tanaman yang mempunyai toksisitas tinggi terhadap larva A. salina Leach adalah tanaman yang mengandung komponen antineoplastik (Leswara et al. 1986). Tirosin kinase memiliki peranan vital dalam pengaturan pertumbuhan sel dan diferensiasi. Aktivitas tirosin kinase sebagai reseftor faktor pertumbuhan dan produk protein onkogen sangat penting bagi perbanyakan sel. Kanker atau tumor ganas merupakan penyakit genetik. Kerusakan dasar yang menyebabkan timbulnya sel kanker adalah perbanyakan sel yang tidak teratur akibat akumulasi perubahan genetik dan epigenetik yang berlangsung sedikit demi sedikit (Wang 2000). Saccharomyces cerevisiae

merupakan salah satu mikroorganisme penghasil enzim tirosin kinase (Adamikova et al. 1996). Dengan mengetahui pengaruh ekstrak tanaman terhadap pertumbuhan S. cerevisiae akan memberikan informasi mengenai kecenderungan penghambatan enzim tirosin kinase oleh ekstrak tanaman tersebut.

dewa, namun belum banyak diketahui tentang khasiat senyawa flavonoid yang terkandung di dalamnya. Untuk itu diperlukan penelitian lebih mendalam tentang senyawa aktif flavonoid tersebut, agar pemanfaatannya terutama di bidang obat-obatan lebih sesuai dengan peruntukkannya.

Berdasarkan uraian di atas, maka dilakukan isolasi terhadap senyawa golongan flavonoid dari tanaman daun dewa, dan ditelusuri potensi bioaktivitas senyawa tersebut sebagai bahan antitumor melalui uji toksisitasnya terhadap larva A. salina Leach, dan uji antikhamir terhadap khamir S. cerevisiae. Standar kuersetin digunakan sebagai senyawa pembanding pada karakterisasi komponen yang didapat.

Tujuan Penelitian

Penelitian ini bertujuan mengisolasi senyawa bioaktif golongan flavonoid dari daun dan umbi tanaman daun dewa (Gynura pseudochina (Lour) DC) dengan uji kematian larva A. salina Leach atau Brine Shrimp Lethality Test

(BSLT) dan uji antikhamir terhadap khamir S. cerevisiae. Manfaat Penelitian

Hasil penelitian ini diharapkan dapat memberikan informasi tentang golongan senyawa flavonoid dari daun dan umbi tanaman daun dewa, yang diharapkan dapat memberikan alternatif yang baik dalam pencegahan atau pengobatan penyakit kanker.

Hipotesis

TINJAUAN PUSTAKA

Flavonoid

Flavonoid merupakan salah satu golongan fenol alam terbesar yang banyak terdapat dalam tumbuh-tumbuhan hijau. Diperkirakan 2% dari seluruh karbon yang difotosintesis oleh tumbuhan diubah menjadi flavonoid atau senyawa yang berkaitan dengannya (Markham 1988). Lebih lanjut disebutkan bahwa sebenarnya flavonoid terdapat dalam semua tumbuhan hijau, sehingga pastilah ditemukan pula pada setiap telaah ekstrak tumbuhan. Flavonoid terdiri atas beberapa kelas antara lain; antosianin, flavonol, flavon, glikoflavon, biflavonil, flavanon, kalkon dan auron, serta isoflavon (Harborne 1988), yang masing-masing kelas terdiri atas beberapa senyawa.

Flavonoid mempunyai kerangka dasar karbon yang terdiri dari 15 atom karbon di mana dua cincin benzen (C6) terikat pada suatu rantai propan (C3),

membentuk konfigurasi C6-C3-C6, yang dapat menghasilkan 3 jenis struktur,

yakni 1,2-diaril propan atau flavonoid, 1,2-diaril propan atau isoflavonoid dan 1,1 diaril propan atau neoflavonoid. Senyawa-senyawa flavonoid dapat mempunyai kerangka 2-fenilkroman, dimana posisi orto dari cincin A dan atom karbon yang terikat pada cincin B dari 1,3-diaril propan dihubungkan oleh jembatan oksigen, sehingga membentuk suatu cincin heterosiklik yang baru (cincin C) seperti pada gambar 1..

C1 C₂ C3 A

B

C₁C2 C₃ A

B

C1 C2 C₃

A

B

C

C C O

A

B

C 1

2

3 4

Flavonoid Isoflavonoid Neoflavonoid 2-fenilkroman Gambar 1 Konfigurasi C6-C3-C6 Kerangka Dasar Flavonoid.

sedangkan cincin B dan tiga atom karbon dari rantai propan berasal dari jalur fenilpropanoid (jalur shikimat).

Telah banyak penelitian yang dilaksanakan tentang penggunaan senyawa flavonoid. Diantara senyawa-senyawa antioksidan alami, yang terpenting adalah senyawa golongan flavonoid. Menurut Bartolone et al. (2005) antigenotoksisitas sampel tanaman adalah bagian yang mendukung adanya senyawa polifenol dalam tanaman dan kapasitas antioksidan mereka. Beberapa studi in vitro

menunjukkan aktivitas antioksidan flavonoid, yaitu mencegah bergabungnya oksigen dengan zat lain sehingga tidak menimbulkan kerusakan pada sel-sel tubuh (Polagruto et al. 2003; Liu dan Guo 2006). Senyawa flavonoid bersifat antibakteri, antiinflamasi, antialergi, antimutagen, antineoplastik dan antitrombosit (Miller 1996; Nakamura et al. 2000; Trouilas et al. 2006; Lin et al. 2006). Senyawa flavonoid juga dapat meningkatkan aktivitas enzim lipase (Darusman et al. 2001)

Antosianin termasuk golongan flavonoid dan merupakan pigmen warna pada tumbuhan. Warnanya sangat dipengaruhi oleh perubahan pH. Ciri umum antosianin, yaitu berwarna merah dalam larutan asam, violet dalam larutan netral dan biru dalam larutan basa. Choung et al. (2001) melaporkan bahwa antosianin memiliki efek farmakologi dan telah digunakan di dalam perawatan berbagai penyakit inflamasi serta dapat mengurangi resiko serangan jantung karena sifat antioksidannya. Suprapta (2004) juga melaporkan bahwa antosianin dapat berfungsi sebagai pencegah tumbuhnya bibit penyakit kanker.

Nikolova et al. (2004) melaporkan bahwa senyawa aglikon flavonoid, apigenin dan kuersetin dapat berfungsi sebagai senyawa antioksidan dan antifungi. Kuersetin memiliki aktivitas biologi pelindung kardiovaskular, anti-kanker, antiinflamasi dan memiliki kapasitas sebagai pengkelat ion logam (Nakamura et al. 2000; Liu et al. 2006). Kuersetin merupakan salah satu zat aktif yang memiliki aktivitas antioksidan tinggi. Jika vitamin C mempunyai aktivitas antioksidan 1, maka kuersetin memiliki aktivitas antioksidan 4,7.

kepada tikus secara oral yang diamati selama 22 hari memperlihatkan sifat antioksidan, tetapi tidak menunjukkan gejala toksikologi (Nakamura et al. 2000). Ekstrak etanolik daun jambu biji (yang telah dikeringkan) menunjukkan sifat seperti morfina dalam menghambat pelepasan asetilkolina karena adanya kandungan kuersetin dan kuersetin 3-arabinosida dimulai dari kadar 1,6 μg/mL. Selain itu ekstrak metanolik atau fraksi ekstrak metanolik daun jambu biji yang mengandung glikosida kuersetin memiliki efek spamolitik terhadap ileum tikus atau marmut terisolasi (Hargono 2003).

Di lingkungan farmasi senyawa-senyawa isoflavon mempunyai kegunaan cukup banyak, antara lain sebagai bahan obat yang berfungsi menghambat pertumbuhan sel kanker, karena sifat antioksidan yang dimilikinya (Swanson et al. 2004). Data studi epidemiologi dan in vitro menunjukkan isoflavonoid genistein dan daidzein juga flavonol kuersetin dan kaemferol dapat bersifat melindungi tulang punggung setelah menopause, meskipun efek mekanisme secara fisiologi tidak dipahami dengan baik (Pang et al. 2006).

Flavonoid mengandung sistem aromatik yang terkonyugasi sehingga menunjukkan pita serapan kuat pada daerah spektrum UV dan spektrum tampak. Data spektrum UV-tampak dapat digunakan untuk membantu mengidentifikasi jenis flavonoid dan menentukan pola oksigenasi. Disamping itu, kedudukan gugus hidroksil fenol bebas pada inti flavonoid dapat ditentukan dengan menambahkan pereaksi geser ke dalam larutan cuplikan dan mengamati pergeseran puncak serapan yang terjadi, yang berarti secara tidak langsung berguna untuk menentukan kedudukan gula atau metil yang terikat pada salah satu gugus hidroksil fenol (Markham, 1988).

O

R O A

B

O

R O A

B O

R O A

B

+

-+

_

Gambar 2 Resonansi pada Molekul Flavonoid.

Penambahan gugus fungsi yang dapat menyumbangkan elektron seperti gugus hidroksil atau gugus metoksil pada cincin B akan meningkatkan peranan sinamoil terhadap resonansi molekul sehingga mengakibatkan perpindahan batokromik atas pita I. Penambahan gugus hidroksil atau gugus metoksil pada cincin A akan menaikkan panjang gelombang dari serapan maksimum serta intensitas dari serapan pita II (Achmad 1986).

Tanaman Daun Dewa

Tanaman daun dewa mempunyai nama latin Gynura pseudochina (Lour) DC. Tanaman ini mempunyai beberapa sinonim, yaitu Gynura segetum (Lour) Merr, dan Gynura sarmentosa BI. Menurut Heyne (1987), tanaman ini berasal dari Birma dan Cina. Di Indonesia tanaman ini dikenal dengan nama daerah beluntas cina (Sumatera), daun dewa (Melayu), tigel kio (Jawa).

Klasifikasi dan Morfologi

Menurut Winarto (2003), tanaman daun dewa diklasifikasikan sebagai berikut:

Divisi : Spermatophyita Sub divisi : Angiospermae Kelas : Dicotyledonae Bangsa : Asterales

Suku : Asteraceae (Compositae) Marga : Gynura

Jenis : Gynura pseudochina (Lour) DC

[image:32.595.259.373.581.737.2]

Berdasarkan penggolongan secara taksonomi, tanaman daun dewa termasuk famili Asteraceae (Compositae), marga Gynura yang merupakan tanaman terna, tinggi mencapai 40-75 cm dan tumbuh tegak. Batang pendek dan lunak, berbentuk segi lima, penampang lonjong, berambut halus dan berwarna ungu kehijauan. Daunnya termasuk tunggal, tersebar mengelilingi batang, bertangkai pendek, berbentuk bulat lonjong, berbulu halus, ujung lancip, tepi bertoreh, pangkal meruncing, pertulangan menyirip, berwarna hijau, panjang daun sekitar 20 cm dan lebar 10 cm. Bunganya termasuk bunga majemuk yang tumbuh di ujung batang, bentuk bongkol, berbulu, kelopak hijau berbentuk cawan, benang sari kuning dan berbentuk jarum. Akarnya merupakan akar serabut, berwarna kuning muda, membentuk umbi sebagai tempat cadangan makanan (Winarto 2003; Heyne 1987).

Tanaman daun dewa dapat dikembangbiakkan melalui umbi atau setek batang. Bagian tanaman ini yang paling banyak dimanfaatkan untuk bahan baku obat-obatan adalah daun dan umbi.

Kandungan Kimia Daun Dewa

Daun dan umbi tanaman daun dewa mengandung bahan aktif seperti flavonoid, saponin, terpenoid, tanin, alkaloid, dan minyak atsiri (Ratnaningsih et al. 1985; Depkes RI 1989; Wijayakusuma 1992; Siregar dan Utami 2000; Winarto 2003). Hasil penelitian Agusta et al. (1998) menunjukkan daun dewa mengandung 0,05% minyak atsiri dari bagian daunnya yang terdiri atas 22 komponen dan didominasi oleh senyawa seskuiterpena. Di samping itu, penelitian Soetarno et al. (2000) menunjukkan senyawa flavonoid yang terkandung dalam daun dewa termasuk golongan glikosida kuersetin. Selain itu, juga ditemukan ada delapan asam fenolat, diantaranya asam klorogenat, asam kafeat, asam p-kumarat, asam p-hidroksi benzoat dan asam vanilat, sedangkan tiga asam fenolat lainnya belum teridentifikasi.

Winarto (2003) menyatakan kandungan kimia yang terdapat pada tanaman daun dewa diantaranya berupa senyawa flavonoid, asam fenolat, asam kafeat, asam klorogenat, asam p-kumarat, asam p-hidroksibenzoat dan asam vanilat. Kandungan dan manfaat senyawa flavonoid, saponin dan minyak atsiri diindikasikan dapat menurunkan kolesterol darah. Minyak atsiri pada daun dewa diduga dapat merangsang sirkulasi darah, juga bersifat analgetik dan antiinflamasi. Di samping itu, minyak atsiri dan flavonoid juga dapat bersifat sebagai antiseptik. Selain senyawa di atas, pada daun dewa juga ditemukan senyawa alkaloid, tanin, dan polifenol.

Ekstraksi flavonoid dari Tanaman Daun Dewa

Flavonoid merupakan salah satu komponen yang terdapat dalam tanaman daun dewa. Flavonoid terutama berupa senyawa yang larut dalam air terdapat dalam tumbuhan sebagai campuran yang sering terdiri atas flavonoid yang berbeda kelas. Flavonoid termasuk antosianin, merupakan senyawa polar, sehingga dapat larut dalam pelarut polar seperti etanol, metanol, butanol, air dan pelarut polar lainnya. Adanya gula yang terikat pada flavonoid cenderung menyebabkan flavonoid menjadi mudah larut dalam air, sehingga campuran pelarut di atas dengan air merupakan pelarut yang lebih baik untuk glikosida (Markham 1988).

Menurut Markham (1988), ekstraksi paling baik untuk flavonoid dari bahan tumbuhan yang telah digiling dilakukan dua tahap. Pertama kali dengan pelarut MeOH:H2O (9:1) dan kedua kali dengan MeOH:H2O (1:1), ekstrak yang didapat

disatukan dan diuapkan sampai hampir semua MeOH menguap. Cara ekstraksi ini cocok untuk kebanyakan senyawa flavonoid, tetapi tidak untuk antosianin atau flavonoid yang kepolarannya rendah.

Ekstraksi antosianin biasanya dilakukan dengan air, air yang mengandung SO2 dan alkohol yang diasamkan, tetapi pelarut metanol yang diasamkan dengan

HCl lebih efektif (Markakis 1982). Ekstraksi antosianin dari bahan nabati umumnya dilakukan dengan menggunakan larutan pengekstrak asam klorida dalam metanol (Francis 1982; Markham 1988; Jackman dan Smith 1996). Asam klorida dalam pelarut metanol akan mendenaturasi membran sel, kemudian melarutkan pigmen antosianin keluar dari sel. Francis (1982) mengemukakan untuk kepentingan penelitian dan pangan, konsentrasi HCl 1% dalam larutan pengekstrak sudah mencukupi jika proses ekstraksi dilakukan selama 24 jam pada suhu 4 oC.

Uji Bioaktivitas

kehidupan manusia. Beberapa bioindikator yang lazim digunakan yaitu A. salina

Leach, Calandra oryzae Linn, Epilachna sparsa dan Sitophyllus oryzae Linn (McLaughin et al. 1991)

Uji BSLT

Metode Brine Shrimp merupakan metode uji hayati yang banyak digunakan untuk mengetahui potensi bioaktivitas suatu sampel. Sebagai hewan uji digunakan larva udang A. salina Leach. Keuntungan metode ini adalah cepat, tidak mahal, tidak membutuhkan peralatan yang rumit, mudah dilakukan, hasilnya dapat dipercaya, dan memiliki spektrum aktivitas farmakologi yang luas (Meyer et al. 1982). Uji ini merupakan uji pendahuluan dengan mengamati tingkat kematian larva udang yang disebabkan oleh ekstrak sampel. Data yang diperoleh diolah untuk mendapatkan nilai LC50 pada selang kepercayaan 95%.

Menurut Meyer et al. (1982), senyawa yang mempunyai nilai LC50 lebih kecil

dari 1000 ppm dikatakan memiliki potensi sebagai senyawa bioaktif.

Hasil uji assay untuk mendeteksi sitotoksisitas secara in vitro terhadap 20 spesies organisme laut (marine natural products), menunjukkan hasil yang konsisten, antara uji toksisitas (penghambatan pertumbuhan) terhadap sel lung karsinoma A-549 dan kolon karsinoma HT-29 dengan uji terhadap kematian larva A. salina. Hasil penelitian sebelumnya menunjukkan korelasi yang konsisten antara sitotoksitas dan brine shrimp lethality dalam ekstrak tanaman, sehingga metode BSLT dapat digunakan pada uji bioassay untuk mengetahui aktivitas farmakologi dalam marine natural products (Carballo et al. 2002).

Metode BSLT telah lama digunakan dalam berbagai riset ilmiah, seperti Lembaga Kanker Nasional (The National Cancer Institute) Indonesia dalam menapis komponen antineoplastik dari berbagai jenis tanaman. Hasil penyelidikannya menunjukkan bahwa kebanyakan tanaman yang mempunyai toksisitas tinggi terhadap larva A. salina adalah tanaman yang mengandung komponen antineoplastik (Leswara et al. 1986).

yang dilakukan oleh Sukardiman et al. (2006) membuktikan bahwa pada dosis 12,2 mg/mL isolat flavonoid dari herba benalu mangga mampu menghambat pertumbuhan sel kanker pada mencit betina yang menderita kanker di daerah interskapuler (tengkuk) berdasarkan hasil induksi dengan benzopirena.

Uji Antikhamir Saccharomyces cerevisiae

S. cerevisiae tergolong khamir yang biasa dikenal dengan ragi kue, dan sebagai produsen utama penghasil alkohol. Khamir ini dapat digunakan sebagai salah satu model sel eukariot di mana sekuens genom lengkapnya sangat bermanfaat sebagai referensi bagi sekuens gen manusia dan makhluk eukariot lainnya (Rempola et al. 2001).

S. cerevisiae merupakan suatu genus khamir Saccharomyces dengan famili Endomicetaceae sub famili Saccharomycoideae, berkembang biak dengan tunas, tetapi dapat juga berkembangbiak dengan askuspora yang terbungkus dalam askus (Frankin 2002). S. cerevisiae memiliki warna krem sehingga dapat dilihat secara visual pada permukaan media tumbuh.

S. cerevisiae dapat digunakan sebagai sel eukariot untuk uji antikanker, karena dapat dimanipulasi sehingga merupakan model yang sempurna untuk mempelajari permasalahan pada eukariot. Pembentukan sel S. cerevisiae

BAHAN DAN METODE

Tempat Penelitian

Penelitian dilakukan di Laboratorium Kimia Analitik Departemen Kimia, Laboratorium Mikrobiologi Departemen Biologi FMIPA Institut Pertanian Bogor, dan Laboratorium Pusat Studi Biofarmaka-LPPM IPB.

Bahan dan Alat

Bahan baku yang digunakan pada penelitian ini ialah daun dan umbi tanaman daun dewa yang diambil dari Balai Penelitian Tanaman Rempah dan Obat (Balitro) dan Pusat Studi Biofarmaka-LPPM IPB (PSB). Serbuk daun dan umbi dibuat dengan mengeringkan daun dan umbi tanaman tersebut di dalam oven, pada suhu kurang dari 60 oC. Bahan-bahan kimia yang digunakan untuk keperluan analisa memiliki standar mutu pa, antara lain metanol, n-heksana, kloroform, dietil eter, etil asetat, n-butanol, amonium hidroksida, asam sulfat, petroleum eter, asam asetat anhidrat, natrium karbonat, asam formiat, HCl, NH3, pereaksi fitokimia, pereaksi folin-ciocalteau, telur A. salina Leach, air laut,

perangkat uji antikhamir S. cerevisiae, akuades, metanol HPLC grade, air HPLC grade, buffer KH2PO4, serta standar murni asam galat dan kuersetin dihidrat

yang diperoleh dari Sigma Chemical Co. St. Louis, USA.

Peralatan untuk ekstraksi antara lain blender, Soxhlet, alat pengocok (Shaker), refrigerator, termometer, dan seperangkat alat gelas. Untuk uji fitokimia dan uji bioaktif digunakan spot plate, oven, penangas air, rotavapor, laminar, autoklaf, vial uji, petri disk dan peralatan gelas. Untuk kromatografi lapis tipis (KLT) digunakan silika gel 60 F254 plat aluminium (20 x 20 cm, tebal

0,2 mm E. Merck). Untuk KLT preparatif digunakan silika gel 60 F254 (5x10 cm,

tebal 0,2 mm K GaA. Merck). Sedangkan untuk analisa menggunakan peralatan spektrofotometer UV-Vis Hitachi U-2800 dengan piranti lunak UV Solution

Metode Penelitian

Penelitian ini dilakukan mulai dari persiapan bahan, uji pendahuluan (uji fitokimia) untuk penentuan pemilihan sampel, ekstraksi, pemisahan komponen dan identifikasi komponen. Pada tahap awal daun dan umbi tanaman daun dewa dibersihkan dengan air. Selanjutnya daun dan umbi yang sudah diiris-iris dikeringkan di dalam oven, Setelah daun dan umbi kering, lalu dijadikan serbuk untuk kemudian diekstraksi.

Uji Fitokimia

Uji Alkaloid. Sedikit sampel ditambah 10 mL CHCl3 dan beberapa tetes

NH4OH, lalu digerus. Kemudian di saring dan ekstrak dikocok dengan 10 tetes

H2SO4 2M. Lapisan asamnya diambil dan ditambah pereaksi Mayer, Wagner dan

Dragendorf. Hasil uji akan positif apabila terbentuk endapan putih ketika direaksikan dengan pereaksi Mayer, endapan coklat dengan pereaksi Wagner, dan endapan merah jingga dengan pereaksi Dragendorf (Harborne 1988).

Uji flavonoid. Sedikit daun atau umbi tanaman daun dewa segar ataupun 1 gram serbuk daun atau serbuk umbi tanaman tersebut ditambahkan metanol sampai terendam, lalu dipanaskan. Filtratnya diuji pada spot plate. Jika ditambahkan NaOH 10% terbentuk warna merah, positif mengandung fenol hidrokuinon. Jika ditambahkan H2SO4 pekat terbentuk warna merah, maka

positif mengandung flavonoid (Harborne 1988).

Sebanyak 3 gram serbuk daun atau umbi tanaman daun dewa ataupun sedikit daun dewa segar ditambahkan 10 mL HCl 2 N dan dipanaskan dalam labu erlenmeyer pada suhu 100 oC selama 30 menit. Setelah itu didinginkan dan disaring, filtratnya diekstraksi dengan etil asetat. Fasa asamnya dipanaskan kembali lalu diekstraksi dengan amil alkohol. Ekstrak amil alkohol dipakai untuk penentuan antosianin dan ekstrak etil asetat untuk penentuan adanya flavonoid yang lain (Suradikusumah et al. 1998).

Sebanyak 1 mL ekstrak amil alkohol ditambah natrium asetat lalu diamati, kemudian ditambah lagi 3 tetes FeCl3 dan diamati lagi. Sianidin dengan natrium

biru. Malvidin dengan natrium asetat memberikan warna biru dan bila ditambah FeCl3 warna tetap biru.

Sebanyak 1 ml ekstrak amil alkohol ditambah natrium karbonat lalu diamati. Pelargonidin memberikan warna ungu, sianidin memberikan warna biru muda, dan malvidin memberikan warna hijau biru.

Sebanyak 2 mL ekstrak etil asetat ditambah 0,1 gram serbuk Mg dan 0,5 mL HCl pekat, lalu diamati warna yang terjadi. Agar warna terlihat jelas dapat diencerkan dengan air. Flavon memberikan warna jingga sampai merah, flavonol memberikan warna merah sampai krem, dan kalkon serta auron tidak memberikan warna.

Sebanyak 1 mL ekstrak etil asetat ditambah beberapa tetes Pb-asetat lalu diamati warnanya. Flavon memberikan warna jingga sampai krem, kalkon memberikan warna jingga tua, dan auron memberikan warna merah.

Sebanyak 1 mL ekstrak etil asetat ditambah beberapa tetes NaOH 0,1 N lalu diamati warnanya. Flavonol dan flavon memberikan warna kuning, sedangkan kalkon serta auron memberikan warna merah sampai ungu.

Sebanyak 1 mL ekstrak etil asetat ditambah beberapa tetes H2SO4 pekat

lalu diamati warnanya. Flavonol dan flavon memberikan warna jingga sampai krem, dan kalkon memberikan warna krem sampai merah tua.

Ekstraksi Sampel

Ekstraksi dilakukan terhadap sampel tanaman terpilih dengan dua metode yang berbeda sesuai dengan kelas golongan senyawa flavonoid yang ingin didapatkan.

Ekstraksi Antosianin

Ekstraksi antosianin dilakukan merujuk pada Choung et al. (2001). Sebanyak 500 g daun dewa segar diekstrak 3 kali dengan 1 L larutan HCl 1%-metanol 40% dalam H2O dan disimpan dalam refrigerator selama 24 jam pada

ekstrak dilakukan uji antosianin dan flavonoid lainnya, penentuan total fenol serta diuji bioaktivitasnya terhadap larva A. salina Leach. Jika ekstrak mempunyai potensi bioaktivitas terhadap larva tersebut, lalu dilanjutkan dengan uji aktivitas antikhamir terhadap khamir S. cerevisiae.

Ekstrak kasar tanaman daun dewa difraksinasi dengan kolom Sephadex LH-20, lalu dielusi berturut-turut dengan 200 mL HCl 1%-H2O, 200 mL HCl

1%-CH3OH 10%, 200 mL HCl 1%-CH3OH 20%, dan 400 mL HCl 1%-CH3OH

30%. Fraksi-fraksi yang didapat dipekatkan menggunakan rotavapor. Selanjutnya masing-masing fraksi dimurnikan lebih lanjut dengan kromatografi kolom terbuka, dan dielusi berturut-turut dengan kombinasi pereaksi 200 mL HCl 1%-H2O, 200 mL HCl 1%-CH3OH 20%, 200 mL HCl 1%-CH3OH 30%,

dan 200 mL HCl 1%-CH3OH 40%.

Fraksi-fraksi dari kromatografi kolom diperiksa dengan KLT analitik. Fraksi dengan retention frontier (Rf) yang sama digabung, kemudian dilakukan

uji kualitatif untuk flavonoid. Fraksi yang mengandung komponen sama disatukan dan dikeringkan. Kemudian fraksi terpilih diuji toksisitasnya terhadap mortalitas larva udang A. salina Leach untuk mengetahui potensi bioaktivitasnya, dan yang mempunyai potensi bioaktivitas terhadap larva tersebut dilakukan uji aktivitas antikhamir terhadap khamir S. cerevisiae, dan diidentifikasi kemungkinan rumus strukturnya.

Ekstraksi Flavonoid lainnya

sedangkan ekstraknya diuapkan dengan rotavapor sampai semua pelarut metanol menguap dengan sempurna.

Ekstrak air yang diperoleh dipartisi bertahap dengan corong pisah menggunakan n-heksan, kloroform, dietil eter, etil asetat, dan n-butanol. Ekstrak yang didapat diuapkan sampai kering pada tekanan rendah menggunakan rotavapor. Ampas dari perlakuan maserasi yang telah dikeringkan dalam oven diekstraksi kembali menggunakan Soxhlet selama satu jam menggunakan petroleum eter. Kemudian ampas dikeringkan pada suhu kamar untuk menghilangkan sisa petroleum eter, dan diekstraksi kembali dengan cara 2x pengulangan dengan 500 mL metanol. Masing-masing ekstrak dilakukan uji flavonoid, penentuan total fenol serta diuji bioaktivitasnya terhadap larva A. salina Leach. Ekstrak yang mempunyai potensi bioaktivitas dengan larva tersebut diuji aktivitas antikhamirnya terhadap khamir S. cerevisiae.

Langkah berikutnya dilakukan analisa KLT terhadap larutan ekstrak kasar untuk melihat pola kromatogram dari masing-masing ekstrak dengan menggunakan fase diam lempeng KLT aluminium silika gel 60 F254 ukuran 1,50

x 10,00 cm dan fase gerak campuran dengan perbandingan n-butanol-asam asetat-air = 4:1:5 (v/v/v, fase organik). Spot yang didapat divisualisasikan dengan lampu UV, dengan penampak bercak uap amoniak.

Fraksi ekstrak terpilih difraksinasi lebih lanjut menggunakan KLT preparatif dengan fase diam silika gel 60 F254 untuk memperoleh pemisahan

komponen untuk uji lanjutannya. Fraksi-fraksi terpilih diuji toksisitasnya terhadap mortalitas larva A. salina Leach dan uji antikhamir menggunakan S. cerevisiae. Selanjutnya diidentifikasi kemungkinan senyawanya.

Pengukuran Rendemen

Pengukuran rendemen diperlukan untuk mengetahui dan membandingkan jumlah senyawa yang dapat terambil oleh pelarut. Banyaknya rendemen hasil ekstraksi dihitung berdasarkan :

Rendemen (%) = x100%

sampel bobot

ekstrak bobot

Penentuan Total Fenol

Analisis total fenol dilakukan dengan melarutkan sejumlah ekstrak kering sampel dalam etanol 95%, kemudian ditambahkan akuades dan reagen folin-ciocalteau 50%, lalu didiamkan dan ditambahkan Na2CO3 5% lalu

dihomogenisasikan dan diinkubasi dalam gelap. Kemudian dihomogenisasi kembali dan diukur pada panjang gelombang 765 nm. Konsentrasi larutan ekstrak dihitung berdasarkan persamaan regresi yang diperoleh dari kurva larutan standar. Sebagai larutan standar digunakan asam galat.

Penentuan Total Antosianin

Pengukuran kadar antosianin dilakukan menggunakan spektrofotometer pada panjang gelombang maksimum bahan baku yang digunakan (rentang absorbsi senyawa antosianin berkisar antara 500-535 nm). Ektrak hasil ekstraksi di atas, dilarutkan dalam larutan etanol 95%-HCl 1,5 N (85:15) dan ditutup dengan parafilm, lalu disimpan pada suhu 4 oC. Campuran didekantasi dan residu dicuci sampai didapat filtrat dengan volume 500 mL. Total antosianin dihitung dengan rumus :

Total antosianin =

2 , 98

) (absorbanx faktorpengenceran

Faktor 98,2 adalah nilai serapan molar dari pigmen antosianin dalam pelarut etanol 95% dan larutan asam klorida 1,5 N (85 : 15) (Lees dan Francis, 1972).

Uji flavonoid ekstrak sampel

Ekstrak sebanyak 10 mL ditambah 0,5 gram serbuk Mg dan 2 mL alkohol klorhidrat, lalu campuran dikocok kuat. Jika terbentuk warna merah, kuning atau jingga maka positif menunjukkan senyawa flavonoid (Harborne, 1988). Sedikit ekstrak dilarutkan dalam etanol 80% kemudian diuji dengan KLT menggunakan fasa diam kiesel gel 60 F254 (E. Merck), fasa gerak butanol-asam asetat-air

Uji Bioaktivitas Uji BSLT

Untuk uji BSLT dilakukan beberapa tahapan yaitu penetasan telur, persiapan contoh dan uji bioaktivitasnya. Penetasan telur dilakukan dengan cara menempatkan telur udang dalam gelas piala yang berisi air laut, lalu diaerasi dan diberi penerangan. Telur akan menetas dalam 48 jam dan siap untuk digunakan sebagai target uji bioaktivitas.

Proses persiapan contoh dilakukan dengan cara, di mana larutan ekstrak yang akan diuji bioaktivitasnya dibuat dengan konsentrasi 2000, 200 dan 20 ppm. Sedangkan untuk uji bioaktivitas sebanyak 10 ekor larva udang dan 100 μL air laut dimasukkan ke dalam tiap vial uji diikuti dengan penambahan 100 μL larutan ekstrak, sehingga konsentrasi akhir dalam vial uji adalah 1000, 100, dan 10 ppm. Untuk kontrol (air laut) dilakukan tanpa penambahan larutan ekstrak. Setiap perlakuan konsentrasi dilakukan 4 kali pengulangan. Pengamatan dilakukan setelah 24 jam. Jumlah larva udang yang masih hidup dan yang sudah mati dihitung. Data yang diperoleh diolah dengan menggunakan Probit Analysis Method untuk menentukan LC50 dengan selang kepercayaan 95% dengan soft

ware SPSS versi 12.

Uji Antikhamir S. cerevisiae

Media Potato Dextrose Agar (PDA). Sebanyak 39 gram bubuk PDA dilarutkan dalam 1 L air destilata, kemudian dipanaskan sambil diaduk sampai rata. Filtrat dituang kedalam Erlenmeyer, lalu distrerilisasi dengan autoklaf pada suhu 121 oC selama 15 menit pada tekanan 1 atm. Filtrat yang steril dituang ke cawan petri yang sudah disterilisasi. Untuk agar miring, sebanyak 5 mL larutan PDA ditempatkan dalam tabung reaksi dan ditutup dengan kapas. Tabung reaksi diletakkan pada rak agar miring dan didiamkan sampai mengeras.

Isolasi dan Peremajaan S. cerevisiae. Fermipan sebanyak seujung sudip dimasukkan dalam 5 mL air steril dan didiamkan selama 2 jam. Sebanyak satu

ose larutan fermipan tersebut digoreskan pada media agar cawan dengan metode kuadran dan didiamkan selama 3 hari. Koloni khamir yang terpisah ditandai dengan spidol. Pada hari ke-3, kolom khamir yang terpisah diambil menggunakan ose dan diremajakan dalam media agar miring. Semua pekerjaan yang berhubungan dengan penggunaan khamir dilakukan secara aseptik dalam laminar.

Penentuan Kurva Pertumbuhan S. cerevisiae. Sebanyak satu ose khamir

S. cerevisiae diinokulasikan ke dalam 50 mL media PDB. Selanjutnya diukur kerapatan optisnya pada panjang gelombang 436 nm setiap 3 jam sekali.

Uji Anti Khamir Contoh terhadap S. cerevisiae. Sebanyak 1 mL biakan S. cerevisiae dimasukkan ke dalam 200 mL media semisolid PDA (Metoda two layer). Setelah media kering dimasukkan kertas cakram yang telah disterilkan dalam autoklaf, lalu diteteskan ekstrak sampel ke dalam cakram sebanyak 20 µL. Selanjutnya cawan petri diinkubasi selama 2 hari. Lalu diamati diameter hambatan yang terbentuk.

Pencirian Senyawa Aktif

Identifikasi dan karakterisasi senyawa untuk fraksi terpilih dilakukan dengan menggunakan spektrometer UV-Vis, FTIR, KCKT dan GC-MS.

Identifikasi menggunakan spektrometer UV-Vis dilakukan dengan metode pergeseran panjang gelombang maksimum berdasarkan pengamatan spektrum UV-tampak senyawa dalam metanol, metanol dengan penambahan pereaksi NaOMe, Na-asetat, Na-asetat + Asam borat, AlCl3, dan AlCl3 + HCl. Fraksi

yang sama dikeringkan, digerus bersama KBr, lalu dibaca dengan alat spektrometer IR Bruker Tensor 37.

Identifikasi dengan KCKT dilakukan dengan beberapa tahap, yaitu persiapan larutan stok standar kuersetin, persiapan larutan standar kuersetin, dan persiapan larutan ekstrak sampel. Kondisi KCKT mengacu pada Hertog et al.

(1993), menggunakan kolom Li chrospher(R)100 RP-18, eluen metanol-buffer KH2PO4 0,025 M pH 2,4 (45:55), isokratik dengan laju alir 0,8 mL/menit, dan

detektor UV-Vis pada panjang gelombang 370 nm.

Persiapan Larutan Stok Standar Kuersetin. Larutan stok standar kuersetin dibuat dengan menimbang 0,0050 g standar kuersetin lalu dilarutkan dalam MeOH 50% sampai volumenya 10 mL. Larutan tersebut diambil 2 mL dan diencerkan sampai volumenya 10 mL. Konsentrasi larutan stok standar yang diperoleh yaitu 100 ppm.

Persiapan Larutan Standar Kuersetin. Larutan stok standar kuersetin 100 ppm diambil sebanyak 50, 250, 500, 750, dan 1000 μL dan diencerkan dengan MeOH 50% sampai volumenya 10 mL. Konsentrasi standar yang diperoleh sebesar 0,5; 2,5; 5; 7,5; dan 10 ppm. Masing-masing ekstrak kemudian diambil 4 mL dan ditambahkan 1 mL HCl 2M dan dikocok sampai homogen. Kemudian campuran disaring dengan filter 0,2 μm.

HASIL DAN PEMBAHASAN Penapisan Sampel

Tanaman daun dewa yang digunakan pada penelitian ini berasal dari Balitro dan PSB. Hasil Identifikasi yang dilakukan oleh Pusat Penelitian Biologi Lembaga Ilmu Pengetahuan Indonesia di Bogor, menunjukkan tanaman daun dewa yang digunakan pada penelitian ini termasuk ke dalam suku Asteraceae, dengan spesies Gynura pseudochina (L.) DC.

Tanaman yang digunakan dalam penelitian ini adalah tanaman daun dewa yang telah cukup umur, yaitu 6-8 bulan, sehingga diharapkan zat-zat yang terkandung dalam umbi dan daun telah terbentuk sempurna. Daun yang digunakan adalah daun yang berwarna hijau tua dan ukuran daun cukup besar serta berkualitas baik. Kualitas daun yang baik adalah bentuk daun utuh, tidak rusak dimakan hama dan tidak terserang penyakit, yaitu yang tidak terkena infeksi virus, bakteri atau jamur. Umbi yang digunakan pada penelitian ini adalah umbi yang telah berusia 8 bulan. Untuk menghindari pencemaran yang diakibatkan oleh zat pengotor seperti debu dan tanah, maka daun dan umbi sebelum dianalisa ataupun dikeringkan, terlebih dahulu dicuci. Pencucian daun dan umbi dilakukan dalam waktu singkat dan tidak diulang untuk mencegah berkurangnya rendemen pigmen antosianin terlalu banyak karena sebagian kecil antosianin akan larut bersama air pencuci.

[image:47.595.122.507.223.741.2]

Penapisan fitokimia umum dan golongan flavonoid dilakukan terhadap sampel daun dan umbi tanaman daun dewa, baik yang masih segar maupun yang telah dikeringkan menjadi serbuk, untuk menelusuri golongan senyawa metabolit sekunder yang dikandungnya. Hasil uji fitokimia dapat dilihat pada Tabel 1.

Tabel 1 Hasil Uji Fitokimia Umum dan Golongan Flavonoid Sampel Asal dan Jenis Sampel

Balitro PSB

Keberadaan Golongan Senyawa

DDS SDD UDS SUD DDS SDD UDS SUD

Meyer - + - + - + - +

Wagner - ++ + ++

+

- ++ - ++

Alkaloid

Dragendorf - ++ + +++ - ++ + ++

Flavonoid H2SO4/p + + + + + + + +

CH3COONa +

FeCl3

- + - - - - - - Sianidin

Na2CO3 - - -

CH3COONa +

FeCl3

- - - - - - - - Malvidin

Na2CO3 - - -

Pelargonidin Na2CO3 - - -

Mg + HCl/p - - + + - - - -

(CH3COO)2Pb + + - - - -

NaOH - - - + + +

Flavon

H2SO4/p + + - - + + + +

Mg + HCl/p - + - - - + + -

(CH3COO)2Pb - - - - - - - -

NaOH - - - + - -

Flavonol

H2SO4/p + + - - - + + -

Mg + HCl/p - - - -

(CH3COO)2Pb - - - + - - - -

NaOH + + + + - - - -

Kalkon

H2SO4/p - - + + - - - -

Mg + HCl/p - - - -

(CH3COO)2Pb - - + - - - - -

NaOH + + + + - - - -

F l a v o n o i d Auron

H2SO4/p - - -

Fenolhidrokuinon - + - - - +

Triterpenoid - - + + - - + +

Steroid + +++ - + + + - +

Tanin + + - + + + + +

Saponin + + ++ + + + + +

Keterangan : DDS = Daun Dewa Segar SDD = Serbuk Daun Dewa UDS = Umbi Dewa Segar SUD = Serbuk Umbi Dewa

- = hasil uji negatif

Data pada Tabel 1 menunjukkan bahwa beberapa golongan senyawa metabolit sekunder yang ada dalam tanaman daun dewa tidak teridentifikasi pada keadaan segar, tetapi hampir semuanya dapat teridentifikasi pada keadaan kering/serbuk. Hal ini juga menunjukkan bahwa proses pengeringan oven dengan suhu 40-60 oC tidak merusak kandungan metabolit sekunder tanaman. Senyawa flavonoid yang terdapat dalam daun dan umbi tanaman daun dewa termasuk golongan senyawa flavon, flavonol, kalkon dan auron. Sedangkan untuk senyawa flavonoid yang termasuk kelas antosianin yaitu sianidin, malvidin dan pelargonidin tidak teridentifikasi pada daun dan umbi baik dalam keadaan segar maupun serbuknya, kecuali sianidin teridentifikasi hanya pada serbuk daun dewa untuk sampel yang berasal dari Balitro. Dari hasil pengeringan sampel tanaman daun dewa segar, sampel yang berasal dari Balitro menghasilkan rendemen yang lebih tinggi, selain itu hasil uji fitokimia juga menunjukkan sampel dari Balitro memiliki kandungan jenis metabolit sekunder yang lebih banyak, sehingga dalam penelitian ini digunakan sampel yang berasal dari Balitro.

Ekstraksi Senyawa Flavonoid

Proses ekstraksi senyawa flavonoid dilakukan menggunakan pelarut metanol. Hasil penapisan fitokimia daun dewa segar menunjukkan hasil negatif untuk kelas senyawa antosianin, namun isolasi senyawa antosianin dari daun dewa tetap dilakukan, karena hasil penapisan terhadap serbuk daunnya ada yang menunjukkan hasil positif (Tabel 1) dan dari penampakan daun yang permukaan bagian belakangnya berwarna ungu, sehingga diduga kemungkinan ada senyawa antosianin di dalam daun dewa.

Ekstraksi Antosianin dari Daun Dewa

Isolasi dilakukan terhadap sampel tanaman daun dewa yang berasal dari Balitro. Jumlah total rendemen yang diperoleh dari hasil ekstraksi adalah 4,6692 % dengan nilai total fenol adalah 0,6587 mg/g.

Pengamatan secara visual terhadap filtrat hasil ekstraksi daun dewa segar menunjukkan warna kuning kemerahan. Pemeriksaan secara kualitatif sederhana menggunakan larutan HCl 2M dan NaOH 2M, menunjukkan bahwa pemanasan filtrat hasil ekstraksi daun dewa segar dalam larutan HCl 2M selama 5 menit (100 oC) menghasilkan warna yang tetap tidak berubah yaitu warna kuning kemerahan. Penambahan larutan NaOH 2 M ke dalam filtrat hasil ekstraksi merubah warna menjadi lebih pekat. Jika filtrat mengandung antosianin, filtrat akan berubah warna menjadi hijau biru dan memudar perlahan-lahan. Ekstraksi filtrat dengan amilalkohol, memberikan warna jingga dengan penambahan CH3COONa dan FeCl3, dan bening dengan penambahan Na2CO3. Hal ini tidak

sesuai dengan ciri-ciri warna jika ekstrak mengandung antosianin.

Penapisan fitokimia flavonoid yang dilakukan untuk mengetahui keberadaan senyawa flavonoid dalam ekstrak kasar antosianin (EAD) memberikan hasil (Tabel 2) golongan antosianin dalam ekstrak EAD sampel tidak terdeteksi, tetapi senyawa flavonoid golongan lainnya, yaitu flavon, dan flavonol serta kalkon dan auron menunjukkan hasil uji positif.

Tabel 2 Hasil Uji Fitokimia Flavonoid Ekstrak Hasil Isolasi Antosianin

No. Golongan Flavonoid Keberadaan Senyawa

1 Sianidin -

2 Malvidin -

3 Pelargonidin -

4 Flavon +

5 Flavonol +

6 Kalkon +

7 Auron +

merupakan ciri senyawa antosianin. Ekstrak EAD menunjukkan λmaks pada 239,

346,5 dan 415 nm dalam larutan HCl 0,4 M dengan pelarut MeOH dan menunjukkan λmaks pada 239,5 dan 412 nm dalam larutan HCl 1,5 N dengan

pelarut EtOH 95% (15:85).

1 -0,495 0,01 0,515 1,02 1,525 2,03 2,535

200 240 280 320 360 400 440 480 520 560 600 panjang gelombang (nm)

A

b

s

or

b

ans

[image:50.595.126.497.210.472.2]

HCl-MeOH HCl-EtOH

Gambar 4 Spektrum Ekstrak EAD di dalam HCl 0,4 M dalam MeOH dan di dalam HCl 1,5 N-EtOH 95% (15:85) pada Konsentrasi Ekstrak 8000 ppm.

Analisa KLT terhadap ekstrak EAD menggunakan fase diam silika gel 60 F254 plat aluminium dengan eluen BAA (n-butanol–asam asetat–air = 4:1:5)

penampak bercak uap amonia (Harborne 1988) menghasilkan kromatogram dengan perhitungan nilai Rf seperti pada Tabel 3. Hasil analisa menunjukkan bahwa ekstrak EAD menghasilkan spot lebih dari satu. Hal ini berarti terdapat keragaman senyawa metabolit yang terkandung di dalam ekstrak tersebut. Di samping itu, adanya spot yang berwarna kuning, jika diuapi dengan amoniak dapat menunjukkan adanya senyawa flavon atau flavonol di dalam ekstrak.

239

346,5

Tabel 3 Hasil KLT Analitik Ekstrak EAD dengan Eluen BAA Warna

Kromatogram Jumlah Spot

UV-365 NH3

Rf

6 violet

violet violet violet violet violet

coklat coklat kuning (samar)

- kuning kuning (samar)

0,10 0,29 0,40 0,53 0,62 0,74

Hasil uji toksisitas ekstrak terhadap larva A. salina Leach menunjukkan ekstrak memiliki potensi bioaktivitas (Tabel 4). Karena berdasarkan hasil uji tersebut diperoleh nilai LC50 <1000 ppm.

Tabel 4 Data Uji Toksisitas Ekstrak EAD dengan Larva A. salina Leach. Jumlah larva yang mati

Jenis Konsentrasi

(ppm) 1 2 3 4 Rata-rata

LC50

(ppm)

Kontrol 0 0 0 0 0 0 -

10 2 5 1 2 2,5

100 12 12 10 12 11,5

Ekstrak EAD

1000 15 15 15 15 15

61,35737

Dilihat dari nilai LC50 yang lebih kecil dari 1000 ppm menunjukkan ekstrak

memiliki potensi bioaktivitas. Namun dari hasil uji antikhamir ekstrak terhadap khamir S. cerevisiae ternyata ekstrak EAD dengan konsentrasi 1000 ppm tidak menunjukkan aktivitas antikhamir, karena dari hasil uji tidak terbentuk zona bening pada media uji, berarti ekstrak tidak menghambat pertumbuhan khamir S. cerevisiae. Hasil uji ditunjukkan pada gambar 5.

Berdasarkan hasil uji fitokimia pada Tabel 2 dan hasil pembacaan spektrum ekstrak yang tidak menunjukkan terdeteksinya senyawa antosianin, maka tahapan lanjutan untuk isolasi antosianin tidak diteruskan.

Ekstraksi Flavonoid

Serbuk daun dan umbi yang digunakan sebagai sampel pada penelitian ini adalah hasil pengeringan daun dan umbi tanaman daun dewa yang berasal dari Balitro. Kadar air serbuk daun 10,25% dan umbi 12,35%. Sampel serbuk daun dan umbi masing-masing direndam dalam pelarut metanol-air (9:1) selama 12 jam dan dilakukan penyaringan. Selanjutnya ampas dimaserasi kembali dengan pelarut metanol-air (1:1) selama 12 jam dan dilakukan penyaringan. Ekstrak yang diperoleh dikumpulkan dan dirotavapor, lalu dipartisi berturut-turut dengan n-heksan, kloroform, dietil eter, etil asetat dan n-butanol. Hasil uji flavonoid, perhitungan total rendemen dan nilai total fenol serta nilai LC50 yang diperoleh

dari hasil uji bioassay menggunakan larva A. salina terhadap hasil ekstraksi dan partisi dapat dilihat pada Tabel 5.

Data Tabel 5 menunjukkan fraksi yang memiliki nilai total fenol tertinggi dari keseluruhan ekstrak uji adalah fraksi metanol, tetapi nilai LC50 jauh di atas

1000 ppm. Fraksi yang memiliki nilai LC50 lebih kecil dari 1000 ppm untuk

ekstrak ESD adalah fraksi D-FK dan D-FB. Dari hasil uji kualitatif D-FK tidak mengandung senyawa golongan flavonoid, sehingga untuk ekstrak ini, fraksi yang mungkin diteruskan untuk pemurnian lebih lanjut adalah fraksi D-FB. Sedangkan untuk ekstrak ESU, fraksi yang memiliki nilai LC50 lebih kecil dari

Tabel 5 Keberadaan Golongan Flavonoid dalam Fraksi Hasil Partisi Ekstrak Sampel, Jumlah Rendemen, Nilai Total Fenol dan Nilai LC50

Ekstrak Sampel

Fraksi Uji Flavonoid

Total Rendemen

(%)

Total Fenol (mg/g)

LC50 (ppm)

ESD kasar + 22,0456 0,02467

D-FH - 1,2995

D-FK - 0,4664 0,0077 972,69909

D-FD + 0,0520 0,0059 1586,61372

D-FE + 0,0964 0,0028 2209,79950

D-FB + 0,7947 0,0101 832,12297

D-FA + 5,0472 0,0109 1082,68283

ESD

D-FM + 0,6727 0,0682 3041,63585

ESU kasar + 8,6645 0,0589

U-FH - 0,1982 0,0293 -

U-FK + 0,1044 0,0142 -

U-FD - 0,0492 0,0036 1306,5619

U-FE + 0,0742 0,0282 723,44205

U-FB + 0.1341 0,0166 -

U-FA + 0,8542 0,0246 -

ESU

U-FM + 0,9031 0,3863 -

Keterangan: ESD = ekstrak serbuk daun ESU = ekstrak serbuk umbi D-FH = fraksi n-heksan U-FH = fraksi n-heksan D-FK = fraksi kloroform U-FK = fraksi kloroform D-FD = fraksi dietil eter U-FD = fraksi dietil eter D-FE = fraksi etil asetat U-FE = fraksi etil asetat D-FB = fraksi n-butanol U-FB = fraksi n-butanol D-FA = fraksi air U-FA = fraksi air D-FM = fraksi metanol U-FM = fraksi metanol

Penapisan Fraksi Terpilih

Analisa KLT menggunakan fase diam silika gel 60 F254 plat aluminium

Tabel 6 Hasil KLT Analitik Ekstrak D-FB dan U-FE dengan Eluen BAA Warna

Kromatogram Fraksi

UV-254 UV-365 NH3

Rf D-FB

(7 spot)

coklat (samar) coklat (samar) coklat (samar) coklat gelap coklat (samar) coklat (samar) coklat gelap berpendar putih tidak tampak berpendar putih coklat gelap berpendar ungu tidak tampak berpendar merah kuning (samar) kuning kuning (samar)

hijau 0,28 0,36 0,46 0,53 0,67 0,81 0,95 U-FE (3 spot) kuning coklat (samar) coklat gelap violet violet gelap violet gelap Kuning Hijau hijau 0,59 0,75 0,89

Hasil pembacaan spektrum kedua jenis ekstrak dalam etanol maupun dalam metanol memiliki pola spektrum yang sama, tetapi jika dibandingkan antara spektrum ekstrak fraksi n-butanol serbuk daun dengan fraksi etil asetat serbuk umbi, ada perbedaan panjang gelombang maksimum antara kedua jenis ekstrak. Gambar spektrum masing-masing ekstrak seperti pada gambar 6 dan 7.

-1 -0,5 0 0,5 1 1,5 2 2,5 3

200 250 300 350 400 450 500 550 600

panjang gelombang (nm)

Ab s o rb a n s D-FB EtOH U-FE EtOH Kuersetin

0 0,5 1 1,5 2 2,5 3 3,5 4

200 250 300 350 400 450 500 550 600 650 700

panjang gelombang (nm)

Ab

s

F4-DB F7-DB Kuersetin

Gambar 7 Spektrum Ekstrak D-FB, U-FE dan Kuersetin dalam metanol. Berdasarkan spektrum UV, fraksi D-FB menunjukkan panjang gelombang maksimum pada 234 (dalam metanol) dan 232,5 nm (dalam etan