commit to user
PENGARUH INFUSA DAUN JAMBU BIJI (Psidium guajava, Linn) TERHADAP KEMATIAN Ascaris suum, Goeze IN VITRO
SKRIPSI
Untuk Memenuhi Persyaratan Memperoleh Gelar Sarjana Kedokteran
RISANG GALIH S G 0006146 FAKULTAS KEDOKTERAN UNIVERSITAS SEBELAS MARET
SURAKARTA 2010
commit to user
ii
PENGESAHAN SKRIPSI
Skripsi dengan judul : Pengaruh Infusa Daun Jambu Biji (Psidium guajava, Linn) terhadap Kematian Ascaris suum, Goeze In vitro
Risang Galih S, G.0006146, Tahun 2010
Telah diuji dan sudah disahkan di hadapan Dewan Penguji Skripsi Fakultas Kedokteran Universitas Sebelas Maret
Pada Hari Kamis, 4 November 2010
Pembimbing Utama
Nama : Sri Haryati, Dra., MKes.
NIP : 19610120 198601 2 001 ( )
Pembimbing Pendamping
Nama : Sutartinah Sri Handayani, Dra.
NIP : 19600709 198601 2 001 ( )
Penguji Utama
Nama : Murkati, dr., MKes., Sp.ParK
NIP : 19501224 197603 2 001 ( )
Anggotan Penguji
Nama : Moch.Arief Tq., dr., MS., PHK
NIP : 19500913 198003 1 002 ( )
Surakarta,...
Ketua Tim Skripsi Dekan FK UNS
Muthmainah, dr., M.Kes Prof. Dr. AA Subijanto, dr., MS.
commit to user
iii
PERNYATAAN
Dengan ini menyatakan bahwa dalam skripsi ini tidak terdapat karya yang pernah diajukan untuk memperoleh gelar kesarjanaan di suatu perguruan tinggi, dan sepanjang pengetahuan saya juga tidak terdapat karya atau pendapat yang pernah ditulis atau diterbitkan oleh orang lain. Kecuali yang secara tertulis diacu dalam naskah dan disebutkan adalah daftar pustaka.
Surakarta, November 2010
RISANG GALIH S NIM. G 0006146
commit to user
iv
ABSTRAK
Risang Galih S., G0006146, 2010. Pengaruh Infusa Daun Jambu Biji terhadap Kematian Ascaris suum, Goeze In vitro. Fakultas Kedokteran
Universitas Sebelas Maret Surakarta.
Tujuan Penelitian : Untuk mengetahui pengaruh infusa Daun Jambu Biji
(Psidium guajava, Linn) terhadap kematian Ascaris suum, Goeze In vitro.
Metode Penelitian : Eksperimental laboratorik dengan post test only controlled
group design, menggunakan cacing Ascaris suum dewasa, dibagi dalam 5 kelompok (kelompok kontrol negatif, infusa 60%, infusa 80%, infusa 100%, kelompok obat pembanding, yaitu pyrantel pamoate dengan konsentrasi 5mg/ml). Teknik pengambilan sampel dengan metode purposive sampling. Cacing
direndam dalam larutan uji sebanyak 25 ml, diinkubasi pada suhu 370C.
Pengamatan dilakukan tiap 1 jam selama 7 jam dan dihitung jumlah cacing yang mati tiap jam. Data dinalisis dengan uji one way ANOVA dilanjutkan uji Post Hoc Least Significance Difference (LSD) dengan tingkat kemaknaan p<0,05.
Hasil Penelitian : Terdapat peningkatan jumlah kematian cacing yang sebanding
dengan peningkatan konsentrasi infusa daun jambu biji pada konsentrasi 60% hingga 100%. Pada uji One Way ANOVA yang kemudian dilanjutkan dengan uji Post Hoc LSD dapat disimpulkan bahwa infusa daun jambu biji dengan konsentrasi 100% mempunyai efektivitas yang sebanding atau hampir sama dengan pyrantel pamoate yang merupakan drug of choice untuk askariasis.
Simpulan Penelitian : Berdasarkan hasil penelitian dapat disimpulkan bahwa infusa daun jambu biji mempunyai pengaruh terhadap kematian Ascaris suum, Goeze In vitro.
commit to user
v
ABSTRACT
Risang Galih S, G0006146, 2010. Effect of Guava Leaf Infusa (Psidium
guajava, Linn) Toward Ascaris suum, Goeze In vitro. Medical Faculty
University of Sebelas Maret Surakarta
Objective: To understand the effect of guava leaf infusa (Psidium guajava, linn) toward Ascaris suum, goeze In vitro.
Methods : Experimental laboratoric, with post-test only control group design
using adult Ascaris suum, Goeze divided into five groups. NaCl 0,9% for negative
control, intervention using 60%, 80%, and 100% concentration of guava leaf
infusa, and pyrantel pamoate 5mg/ml solution for positive control. Observation is done in every hour until 7 hours and the death worm is counted. Data is analyzed with One Way ANOVA test continued with Post Hoc Least Significance Difference (LSD) significant (p<0,05).
Result : The number of death worm is increase in proportion to the increase of guava leaf infusa consentration, start at 60% to 100%. From statistical analysis, this can be concluded that 100% guava leaf infusa has an equivalent effectiveness to pyrantel pamoate that is drug of choice for askariasis.
Conclusion : From the research result, it can be concluded that guava leaf infusa has effect toward Ascaris suum, Goeze In vitro.
Keywords: Guava Leaf Infusa, Ascaris suum, In vitro
commit to user
vi
PRAKATA
Puji dan syukur penulis panjatkan kehadirat Allah SWT karena limpahan nikmat, rahmat, hidayah, serta ridhonya sehingga penulis dapat menyelesaikan skripsi dengan judul “Pengaruh Infusa Daun Jambu Biji terhadap Kematian Ascaris suum, Goeze In vitro”. Skripsi ini diajukan sebagai salah satu syarat untuk memperoleh gelar Sarjana Kedokteran di Fakultas Kedokteran Universitas Sebelas Maret Surakarta.
Dalam menyelesaikan skripsi ini, penulis bahyak mendapatkan pengarahan, bimbingan, bantuan dan dukungan dari berbagai pihak, oleh karena itu perkenankanlah dengan setulus hati penulis menyampaikan terima kasih kepada :
1. Prof. Dr. A.A. Subijanto, dr., MS, selaku Dekan Fakultas Kedokteran Universitas Sebelas Maret Surakarta.
2. Muthmainah, dr., M.Kes. selaku Ketua Tim Skripsi Fakultas Kedokteran Universitas Sebelas Maret Surakarta.
3. Sri Haryati, Dra., M.Kes. selaku pembimbing utama yang telah memberikan nasehat, koreksi, kritik dan saran untuk menyempurnakan penyusunan skripsi.
4. Murkati, dr., M.Kes., SpPark sebagai penguji utama yang telah berkenan memberikan waktu bimbingan, saran dan motivasi bagi penulis.
5. Sutartinah Sri Handayani, Dra. sebagai pembimbing pendamping yang telah berkenan memberikan waktu bimbingan, saran dan motivasi bagi penulis.
6. Moch Arief Tq., dr., MS., PHK. Selaku anggota penguji yang telah memberikan nasihat, koreksi, kritik dan saran untuk menyempurnakan penyusunan skripsi.
7. Bapak dan ibu yang selalu memberikan dukungan, doa, semangat, dan selalu mengorbankan segalanya demi kebahagiaan putra-putranya.
8. Reza, Udin, Irfan, Rani, Indi, Teguh, Sahid, atas bantuan yang diberikan untuk penyusunan skripsi ini.
9. Semua pihak yang telah memberi bantuan secara langsung maupun tidak langsung sehingga membantu selesainya skripsi ini.
Penulis menyadari sepenuhnya bahwa dalam penyusunan skripsi ini tidak lepas dari kekurangan karena kerterbatasan waktu, tenaga dan pengetahuan penulis. Oleh karena itu, dibutuhkan saran dan masukkan untuk menyempurnakan skripsi ini. Semoga skripsi ini bermanfaat bagi ilmu kedokteran pada khususnya dan masyarakat pada umumnya.
Surakarta, 25 Oktober 2010
commit to user
vii DAFTAR ISI Halaman PRAKATA………... viDAFTAR ISI ……….. vii
DAFTAR TABEL ………... ix
DAFTAR GAMBAR……….. x
DAFTAR LAMPIRAN……… xi
BAB I. PENDAHULUAN A. Latar Belakang Masalah………. 1
B. Perumusan Masalah……… 3
C. Tujuan Penelitian……… 4
D. Manfaat Penelitian……….. 4
BAB II. LANDASAN TEORI A. Tinjauan Pustaka……… 5
B. Kerangka Pemikiran………. 13
C. Hipotesis……… 14
BAB III. METODE PENELITIAN A. Jenis Penelitian……….. 15
B. Lokasi dan Waktu Penelitian………. 15
C. Subyek Penelitian………. 15
D. Teknik Sampling………. 15
E. Identifikasi Variabel Penelitian……….. 16
F. Definisi Operasional Variabel Penelitian……… 16
G. Rancangan Penelitian………. 19
H. Alat dan Bahan……… 21
I. Cara Kerja………... 21
J. Teknik Analisis Data……… 24
BAB IV. HASIL PENELITIAN A. Data Hasil Penelitian……….………. 25
commit to user
viiiB. Analisis Data……… 27 BAB V. PEMBAHASAN……….. 32 BAB VI. SIMPULAN DAN SARAN
A. Simpulan……… 35 B. Saran……….. 35 DAFTAR PUSTAKA……… 36 LAMPIRAN
commit to user
ix
DAFTAR TABEL
Tabel 1. Karakteristik Morfologi 3 Tipe Tanaman Jambu Biji ... 10
Tabel 2. Hasil Pengamatan Kematian Ascaris suum pada Penelitian Pendahuluan... 26
Tabel 3. Hasil pengamatan Kematian Ascaris suum, Goeze dalam Berbagai Konsentrasi pada Penelitian Akhir... 27
Tabel 4 Nilai Probabilitas (p) Uji Normalitas... 29
Tabel 5 Nilai Probabilitas (p) Uji Homogenitas... 29
Tabel 6 Hasil Uji One Way ANOVA... 30
commit to user
x
DAFTAR GAMBAR
Gambar 1 Berbagai Jenis Jambu Biji... 11
Gambar 2 Skema Kerangka Pemikiran... 13
Gambar 3 Skema Rancangan Penelitian Pendahuluan ... 19
Gambar 4 Skema Rancangan Penelitian Akhir... 20
Gambar 5 Grafik Jumlah Rata-rata Kematian Cacing dalam Berbagai Konsentrasi pada Penelitian Akhir... 28
commit to user
xi
DAFTAR LAMPIRAN
Lampiran 1. Uji One Way ANOVA Lampiran 2. Uji Post Hoc LSD Lampiran 3. Analisis Probit
Lampiran 4. Foto-foto Alat, Bahan, dan Proses Penelitian
Lampiran 5. Surat Keterangan Permintaan Bahan Tanaman
Lampiran 6. Surat Keterangan Determinasi Tanaman
Lampiran 7. Surat Keterangan Pengambilan Sampel dari Dinas Pertanian
Kota Surakarta
commit to user
1BAB I
PENDAHULUAN
A. Latar Belakang Masalah
Askariasis adalah penyakit parasit yang disebabkan oleh cacing gelang Ascaris lumbricoides, Linn (Rasmaliah, 2001). Penyakit ini merupakan salah satu manifestasi penyakit cacing yang paling sering ditemukan dan merupakan penyakit kedua terbesar yang disebabkan oleh parasit (Wikipedia, 2009; David, 2008). Prevalensinya di dunia diperkirakan berkisar 25% atau sekitar 0,8 – 1,22 Milyar orang (David, 2008; Kazura JW, 2007). Penularan askariasis bersifat Soil Transmited Helminth (memerlukan tanah) karena tanah merupakan media perkembangan telur menjadi bentuk infektif (Sudoyo dkk, 2006).
Askariasis terutama ditemukan di daerah-daerah tropis dengan suhu panas dan sanitasi lingkungan yang kurang baik. Oleh karena daerah seperti ini banyak terdapat di negara-negara berkembang, maka angka kejadian penyakit ini di negara berkembang relatif sangat tinggi (Pohan, 2006). Populasi dengan risiko tinggi adalah di Asia, Afrika, Amerika Latin dan USSR (Jamsheer, 2001). Sedangkan di daerah-daerah yang mempunyai sanitasi yang bagus dan tidak beriklim tropis, angka kejadian askariasis relatif rendah. Misalnya di Eropa Barat, angka kejadiannya hanya sekitar 10%. Di Indonesia sendiri, askariasis terjadi pada hampir semua anak berusia 1-10 tahun, sedangkan pada orang dewasa angka kejadiannya mencapai 60%
commit to user
(Rampengan, 2007). Untuk mengatasi masalah ini, sering kali pemerintah mengadakan pengobatan massal dan berulang (Gandahusada dkk, 2000).
Obat-obat antihelmintik (anticacing) digunakan untuk memberantas atau mengurangi parasit-parasit cacing dari saluran pencernaan. Mebendazole, albendazole dan pyrantel pamoate merupakan obat-obat cacing pilihan pertama terhadap askariasis. Sedangkan obat alternatifnya adalah piperazine ataupun levamisole (Tjay dan Rahardja, 2002; Katzung, 2004). Akan tetapi, pengobatan massal yang berbasis obat-obat modern tersebut memerlukan biaya yang cukup besar serta efek samping yang cukup merugikan. Oleh karena itu, diperlukan adanya alternatif untuk mengatasi masalah askariasis ini. Salah satu alternatif pilihan adalah dengan menggunakan bahan-bahan alami yang biasanya tersedia banyak di alam dan diharapkan mempunyai efek samping yang lebih kecil dibandingkan dengan obat-obat modern yang ada saat ini.
Bermacam-macam bahan tradisional telah banyak digunakan di Indonesia untuk mengatasi berbagai kasus penyakit. Di samping murah dan mudah didapat karena ada di mana-mana, juga dapat mengikutsertakan masyarakat serta mengurangi subsidi pemerintah (Herawati, 2000). Salah satu tanaman yang diperkirakan dapat digunakan untuk mengatasi penyakit askariasis ini adalah jambu biji. Selama ini, daun jambu biji telah dikenal sebagai obat tradisional untuk mengatasi diare (Soedjito, 2008). Daun jambu biji mempunyai senyawa tanin sebesar 90.000 – 150.000 ppm (Duke, 2009). Telah diketahui bahwa senyawa tanin ini merupakan senyawa yang bersifat
commit to user
vermifuga, yakni secara langsung berefek pada cacing melalui perusakan protein tubuh cacing (Harvey dan John, 2005; Duke, 2009). Efek antihelmintik tanin dapat dilihat secara In vitro pada percobaan laboratoium, maupun secara In vivo di dalam tubuh kambing dan domba (Brunet dan Hoste, 2006; Iqbal dkk 2007; Cenci dkk, 2007; Anthanasiadou dkk, 2001). Tanin juga memiliki aktivitas penghambatan terhadap migrasi larva cacing pada kambing (Alonso dkk, 2008). Akan tetapi, belum banyak yang menggunakan daun jambu biji ini sebagai obat cacing. Oleh karena itu, peneliti tertarik untuk meneliti efek antihelmintik ekstrak daun jambu biji.
Cacing gelang yang digunakan pada penelitian ini adalah Ascaris suum, Goeze yang terdapat dalam usus babi. Peneliti menggunakan cacing Ascaris suum, Goeze karena sulitnya mendapatkan cacing Ascaris lumbricoides, Linn dalam keadaan hidup dengan jumlah yang banyak untuk diberi perlakuan. Selain itu, Ascaris suum, Goeze hampir sama dengan Ascaris lumbricoides, Linn, bahkan cacing ini disebut juga Ascaris lumbricoides suum (Miyazaki, 1991; Laskey, 2007).
B. Perumusan Masalah
1. Apakah infusa Daun Jambu Biji (Psidium guajava, Linn) dapat membunuh Ascaris suum, Goeze In vitro?
2. Berapakah konsentrasi infusa daun jambu biji (Psidium guajava, Linn) yang dapat menyebabkan jumlah kematian optimal Ascaris suum, Goeze In vitro?
commit to user
C. Tujuan Penelitian
1. Untuk mengetahui pengaruh infusa Daun Jambu Biji (Psidium guajava, Linn) terhadap kematian Ascaris suum, Goeze In vitro.
2. Untuk mengetahui konsentrasi infusa daun jambu biji yang dapat menyebabkan jumlah kematian optimal Ascaris suum, Goeze In vitro
D. Manfaat Penelitian
1. Manfaat teoritis
a. Diketahuinya konsentrasi infusa Daun Jambu Biji (Psidium guajava, Linn) yang dapat menyebabkan kematian optimal Ascaris suum, Goeze In vitro.
b. Sebagai sumber informasi ilmiah kepada masyarakat ilmiah pada khususnya dan masyarakat luas pada umumnya tentang manfaat infusa Daun Jambu Biji (Psidium guajava, Linn) yang dapat digunakan sebagai antihelmintik.
2. Manfaat aplikatif
a. Membuka peluang kemungkinan pembuatan preparat obat antihelmintik dari Daun Jambu Biji (Psidium guajava, Linn).
b. Menambah referensi informasi fungsi infusa daun jambu biji (Psidium guajava, Linn.) selain digunakan untuk mengobati diare namun juga dapat digunakan sebagai antihelmintik.
c. Dapat menjadi referensi untuk melakukan penelitian In vivo tentang manfaat infusa daun jambu biji (Psidium guajava, Linn) sebagai antihelmintik.
commit to user
BAB II LANDASAN TEORI
A. Tinjauan Pustaka
1. Ascaris suum, Goeze
Kingdom : Animalia Subkingdom : Metazoa Filum : Nemathelminthes Kelas : Nematoda Subkelas : Scernentea Bangsa : Ascaridia Famili : Ascarididea Marga : Ascaris
Jenis : Ascaris suum, Goeze (Loreille, 2003)
Cacing Ascaris suum, Goeze disebut juga Ascaris suilla yang secara morfologi hampir sama dengan Ascaris lumbricoides, Linn. Cacing ini mirip dengan Ascaris Lumbricoides, Linn dalam hal menginfeksi babi percobaan tetapi gejala akibat infeksi Ascaris lumbricoides, Linn berbeda dengan yang diakibatkan oleh Ascaris suum, Goeze. Selain itu, perbedaan lainnya terdapat pada deretan gigi dan bentuk bibirnya (Miyazaki, 1991).
Siklus hidup dan cara infeksi cacing Ascaris suum, Goeze sama dengan cacing Ascaris lumbricoides, Linn (Miyazaki, 1991; Robert et al., 2005). Hospes yang penting untuk cacing ini adalah babi. Akan tetapi, cacing ini juga dapat menjadi parasit pada kambing, domba, dan anjing
commit to user
(Soedarto, 1992). Yoshihara (2008) menemukan bahwa pada ayam yang terinfeksi Ascaris suum, Goeze terjadi lesi hepatik karena migrasi dari larva cacing ini. Siklus hidup dan cara infeksinya sama dengan Ascaris lumbricoides, Linn. Ascaris suum, Goeze juga dapat menginfeksi manusia namun tidak menimbulkan manifestasi klinis yang berarti (Miyazaki, 1991).
2. Ascaris lumbricoides, Linn a. Taksonomi Kingdom : Animalia Subkingdom : Metazoa Filum : Nemathelminthes Kelas : Nematoda Subkelas : Scernentea Bangsa : Ascaridia Famili : Ascarididea Marga : Ascaris
Jenis : Ascaris lumbricoides, Linn ( Utari, 2002)
b. Morfologi
Cacing jantan berukuran sekitar 10-30 cm, sedangkan yang betina sekitar 22-35 cm. Cacing dewasa tubuhnya berwarna kuning kecoklatan serta mempunyai kutikulum yang rata dan bergaris halus. Kedua ujung badan cacing membulat. Mulut cacing mempunyai 3 buah bibir, satu di bagian dorsal dan yang lain di bagian subventral.
commit to user
Pada cacing jantan, bagian ekornya melengkung ke arah ventral, serta ditemukan spikula atau bagian seperti untaian rambut di bagian ekornya (posterior), dimana masing-masing spikula berukuran sekitar 2 mm. Cacing betina mempunyai bentuk tubuh posterior yang membulat (conical) dan lurus. Cacing betina pada sepertiga depan terdapat bagian yang disebut cincin atau gelang kopulasi (Zaman, 1997). Cacing dewasa hidup pada usus manusia. Seekor cacing betina dapat bertelur hingga sekitar 200.000 telur per harinya. Telur yang tidak dibuahi berukuran 90x40 mikron, sedang telur yang telah dibuahi berukuran lebih kecil yaitu sekitar 60x45 mikron. Telur yang telah dibuahi inilah yang dapat menginfeksi manusia (Gandahusada dkk, 2000).
c. Habitat, Siklus Hidup, dan Cara Infeksi
Dalam lingkungan yang sesuai, telur yang dibuahi dapat berkembang menjadi bentuk infektif dalam waktu kurang lebih 3 minggu. Bentuk infektif ini bila tertelan oleh manusia akan menetas dalam usus halus. Larvanya menembus dinding usus halus menuju pembuluh darah atau saluran limfe lalu dialirkan ke jantung kemudian mengikuti aliran darah ke paru. Di paru, larva menembus dinding pembuluh darah lalu dinding alveolus, masuk ke rongga alveolus kemudian naik ke trakea melalui bronkiolus dan bronkus. Dari trakea, larva ini menuju ke faring sehingga menimbulkan rangsangan pada faring. Penderita batuk karena rangsangan ini dan larva akan tertelan
commit to user
ke esofagus, lalu menuju ke usus halus. Di usus halus larva berubah menjadi cacing dewasa. Sejak telur matang tertelan hingga cacing dewasa bertelur diperlukan waktu sekitar 2 bulan (Gandahusada dkk, 2000). Cacing dewasa terdapat di dalam usus halus tetapi kadang-kadang dijumpai di bagian usus lainnya. Cacing dewasa dapat hidup pada saluran pencernaan selama 6 – 24 bulan (Rasmaliah, 2001). Selain di dalam usus manusia, cacing ini juga dapat hidup di dalam usus babi (Soedarto, 1992).
d. Patologi dan Gambaran Klinis
Sebagian besar kasus tidak menujukkan gejala, akan tetapi karena tingginya angka infeksi, morbiditasnya perlu diperhatikan (Widoyono, 2008). Jumlah cacing yang cukup besar (hyperinfeksi) terutama pada anak-anak akan menimbulkan kekurangan gizi. 20 ekor cacing Ascaris lumbricoides, Linn dewasa di dalam usus manusia mampu mengkonsumsi 2,8 gram karbohidrat dan 0,7 gram protein setiap hari. Selain itu cacing tersebut juga dapat mengeluarkan cairan tubuh yang menimbulkan reaksi toksik sehingga terjadi gejala seperti demam typhoid yang disertai dengan tanda alergi seperti urtikaria, odema di wajah, konjungtivitis, dan iritasi pernapasan bagian atas (Rasmaliah, 2001). Di dalam paru, larva cacing ini akan merusak kapiler paru sehingga dapat menyebabkan kelainan yang disebut Syndrom Loeffler, yaitu gejala-gejala demam, sesak nafas, eosinofilia, dan pada foto Roentgen thoraks terlihat infiltrat yang hilang setelah 3
commit to user
minggu (Laskey, 2007). Pada stadium dewasa, di usus cacing akan menyebabkan gejala khas saluran cerna seperti tidak nafsu makan, muntah-muntah, diare, konstipasi, dan mual, serta dapat menyebabkan obstruksi ileus. Bila cacing masuk ke saluran empedu makan dapat menyebabkan kolik atau ikterus. Diagnosis askariasis dilakukan dengan menemukan telur pada tinja pasien atau ditemukan cacing dewasa yang keluar lewat anus, hidung, atau mulut (Gandahusada dkk, 2000; Laskey, 2007).
3. Jambu Biji (Psidium guajava, Linn) a. Klasifikasi
Kingdom : Plantae
Divisi : Spermatophyta
Sub Divisi : Angiospermae
Kelas : Dicotyledonae
Suku : Myrtaceae
Marga : Psidium
Spesies : Psidium guajava, Linn (Soedjito, 2008)
b. Morfologi Tanaman
Jambu biji merupakan tanaman yang berasal dari daerah Amerika Tropik antara Mexico sampai dengan Peru, menyebar ke daerah Asia oleh pedagang Spanyol dan Portugis (Verheij and Coronel, 1999). Tinggi tanaman dapat mencapai 10 meter (Heyne, 2001), mulai berbuah antara umur 2 sampai dengan 4 tahun dan umur
commit to user
tanaman produktif 30-40 tahun (Verheij dan Coronel, 1999). Jambu biji banyak ditanam sebagai pohon buah-buahan, sering tumbuh liar dan terdapat dari dataran rendah sampai 1200 meter di atas permukaan laut. Tumbuhan ini tumbuh pada tanah yang gembur maupun liat, di tempat terbuka dan banyak air.
Jenis jambu biji di seluruh dunia ada sekitar 150. Di Indonesia yang banyak ditanam adalah jenis jambu sukun, jambu susu putih, jambu apel, jambu australia, jambu palembang, jambu kamboja, jambu pasar minggu, jambu merah getas, jambu harum manis, jambu sari, dan jambu tukan. Berdasarkan pada karakteristik beberapa jenis jambu biji yang ada di masyarakat saat ini, tanaman ini dapat digolongkan dalam 3 tipe (Yuliani dkk, 2003). Perbedaan karakteristik dari ketiga tipe jambu biji tersebut dapat diamati pada tabel 1.
Tabel 1. Karakteristik Morfologi 3 Tipe Tanaman Jambu Biji
Karakteristik I II III Tipe Tanaman
Batang Bulat, warna kemerahan Persegi, warna hijau muda Persegi, warna kecoklatan
Daun Kemerahan Hijau muda ujung lancip Hijau muda,
Rata-rata panjang
daun 13,03 cm 12,94 cm 11,95 cm
Rata-rata lebar daun 6,54 cm 5,94 cm 4,15 cm
Rata-rata jumlah
tulang daun 16,14 cm 30,53 cm 38,8 cm
Rata-rata panjang
tangkai 1,12 cm 0,69 cm 0,73 cm
Jumlah bunga Banyak Satu Satu
Warna kulit buah Kekuningan Kuning Hijau
Warna daging buah Putih/Merah Kuning Putih/Merah
Rasa buah Asam berpasir Manis renyah Manis halus
commit to user
Gambar 1. Berbagai Jenis Jambu Biji (Sumber: Soedjito, 2008)
c. Kandungan Kimia
Daun jambu biji mengandung tanin, minyak atsiri (eugenol, minyak lemak, damar, zat samak, triterpinoid, asam apfel) dan buahnya mengandung asam amino (triptofan, lisin), kalsium, fosfor, besi, belerang, vitamin A, B1 dan C (Wijayakusuma et al., 1994). Kandungan vitamin C buah jambu biji sekitar 87 mg/100 g buah, dua kali lipat dari jeruk manis (49 mg/100 g), serta delapan kali lipat dari lemon (10,5 mg/100 g). Daun jambu biji mempunyai khasiat sebagai antidiare, astringen, mengobati sariawan dan menghentikan perdarahan. Sebagai obat anti diare, jambu biji telah dipasarkan dalam bentuk jamu modern, bahkan industri farmasi telah memformulasikan daun jambu biji menjadi obat fitofarmaka yang sudah banyak beredar di pasaran (Soedjito, 2008). Selain itu, daun jambu biji mempunyai kandungan senyawa tanin yang besar, yaitu sekitar 90.000-150.000 ppm (Duke, 2009). Akan tetapi, kandungan senyawa tanin yang besar ini belum banyak dimanfaatkan sebagai antihelmintik.
d. Tanin
Alkaloid tanin merupakan poliphenol tanaman yang larut dalam air dan dapat menggumpalkan protein (Westerdarp, 2006). Alkaloid
commit to user
tanin memiliki efek vermifuga dengan cara merusak protein tubuh cacing. Hal ini dapat menyebabkan gangguan metabolisme homeostasis pada cacing sehingga cacing akan mati. (Harvey & John, 2005). Hal ini dimungkinkan karena tanin mempunyai gugus karbonil yang menyebabkannya mudah terprotonisasi (menjadi ion bermuatan positif). Ion-ion positif ini kemudian akan menarik ion-ion negatif pada struktur protein, baik mikroorganisme penyebab diare, maupun pada organisme lain pada saluran pencernaan manusia (Sutrasno dkk, 2008). Oleh sebab itulah tanin pada jambu biji ini dapat bersifat sebagai antihelmintik. Efek antihelmintik tanin dapat dilihat secara In vitro maupun In vivo di dalam tubuh kambing dan domba (Brunet dan Hoste, 2006; Iqbal dkk 2007; Cenci dkk, 2007; Anthanasiadou dkk, 2001). Tanin juga memiliki aktivitas penghambatan terhadap migrasi larva cacing pada kambing (Alonso dkk, 2008).
commit to user
B. Kerangka Pemikiran
Gambar 2. Skema Kerangka Pemikiran
Infusa Daun Jambu biji (Psidium guajava, Linn)
Tannin
Mendenaturasi Protein
Cacing Gelang Babi Ascaris suum, Goeze
Gangguan Metabolisme dan Homeostasis
Variabel luar terkendali Variabel luar tidak terkendali
Umur cacing Besar Cacing
Umur daun jambu biji Kepekaan cacing Konsentrasi Larutan
Jenis Cacing
Suhu Percobaan
commit to user
C. Hipotesis
1. Infusa daun jambu biji (Psidium guajava, Linn) dapat membunuh Ascaris suum, Goeze In vitro.
2. Peningkatan konsentrasi infusa daun jambu biji (Psidium guajava, Linn) dapat meningkatkan kematian Ascaris suum, Goeze In vitro.
commit to user
BAB III
METODE PENELITIAN
A. Jenis Penelitian
Penelitian ini bersifat eksperimental laboratorik yang menggunakan rancangan penelitian the post test only controlled group design.
B. Lokasi Penelitian
Laboratorium Pusat Fakultas Matematika dan Ilmu Pengetahun Alam Universitas Sebelas Maret Surakarta.
C. Subjek Penelitian
Subyek penelitian/hewan uji adalah Ascaris suum, Goeze yang masih aktif bergerak diperoleh dari usus babi dari tempat penyembelihan Dinas Pertanian Kota Surakarta.
D. Teknik Sampling
Penelitian ini menggunakan teknik sampling purposive sampling dengan cara menyamakan panjang cacing serta tidak membedakan jenis kelamin cacing. Penentuan besar sampel dihitung dengan rumus Federer:
Keterangan : n = besar sampel
t = jumlah kelompok perlakuan (Federer, 1955) Karena penelitian ini menggunakan 5 kelompok perlakuan, maka:
(n-1)(5-1) ≥ 15
4n ≥ 19
n ≥ 4,75
Masing-masing kelompok akan memiliki sampel sebanyak 5 sampel. ( n ‐ 1 ) ( t ‐ 1 ) ≥ 1 5
commit to user
E. Identifikasi Variabel Penelitian
1. Variabel Bebas
Konsentrasi infusa daun jambu biji 2. Variabel Tergantung
Jumlah kematian cacing dalam tiap rendaman tiap jam selama 7 jam. 3. Variabel Perancu
a. Variabel perancu yang terkendali
i. Jenis cacing
ii. Ukuran cacing
iii. Suhu percobaan
b. Variabel perancu yang tidak terkendali 1) Umur cacing
2) Variasi kepekaan cacing terhadap larutan uji 3) Umur tanaman jambu biji
F. Definisi Operasional Variabel Penelitian
1. Serbuk Daun Jambu Biji
Serbuk daun jambu biji adalah serbuk yang dihasilkan dari daun
jambu biji yang telah dikeringkan dalam oven pada suhu 400C kemudian
dihaluskan dan diayak dengan pengayak nomor 40. 2. Infusa Daun Jambu Biji
Infusa daun jambu biji adalah infusa yang dihasilkan setelah serbuk daun jambu biji yang kemudian diekstraksi dengan metode infudasi.
commit to user
3. Konsentrasi Infusa Daun Jambu Biji
Konsentrasi infusa daun jambu biji yang digunakan adalah 20%, 40%, 60%, 80% dan 100%.
4. Jumlah Kematian Cacing
Jumlah kematian cacing adalah jumlah cacing yang mati dalam tiap rendaman pada waktu yang telah ditentukan. Pengamatan dilakukan tiap 1 jam. Cacing dianggap mati apabila disentuh dengan pinset anatomis tidak ada respon gerakan.
5. Variabel Perancu Terkendali a. Jenis cacing
Jenis cacing yang digunakan adalah cacing pada usus halus babi (Ascaris suum, Goeze).
b. Ukuran cacing
Ukuran cacing dikendalikan dengan memilih cacing yang memiliki panjang antara 30 cm sampai 35 cm
c. Suhu percobaan
Suhu percobaan dikendalikan dengan inkubator bersuhu 370C.
6. Variabel Perancu Tidak Terkendali a. Umur cacing
Umur cacing merupakan variabel luar yang tidak dapat dikendalikan karena cacing yang didapat adalah cacing yang berasal dari usus babi yang tidak dapat dipastikan kapan babi tersebut terinfeksi cacing dan kapan telur cacing menetas menjadi cacing dewasa.
commit to user
b. Variasi kepekaan cacing terhadap larutan obat yang diujikan
Variasi kepekaan cacing terhadap obat larutan yang diujikan merupakan variabel luar yang tidak dapat dikendalikan karena pertumbuhan dipengaruhi oleh banyak faktor.
c. Umur daun jambu biji
Umur daun jambu biji merupakan variabel yang tidak dapat dikendalikan karena daun merupakan bagian dari tanaman jambu biji yang selalu beregenerasi. Daun yang telah kering akan rontok dan digantikan dengan daun baru yang lebih produktif. Oleh karena itu, sangat sulit untuk mengetahui kapan daun-daun tersebut mulai tumbuh.
commit to user
G. Rancangan Penelitian
1. Penelitian Pendahuluan
Gambar 3. Skema Rancangan Penelitian Pendahuluan
5 ekor cacing Ascaris suum direndam dalam 25ml NaCl 0,9% Kelompok kontrol
5 ekor cacing Ascaris suum direndam dalam 25 ml larutan infusa daun jambu biji
konsentrasi 20, 40, 60, 80, dan 100%
Inkubasi pada suhu 370C Inkubasi pada suhu 370C
Waktu yang didapat digunakan sebagai dasar pada tahap penelitian akhir
Pengamatan dilakukan tiap jam dan dihentikan jika salah satu konsentrasi telah dapat membunuh semua cacing
commit to user
2. Tahap Penelitian Akhir
Gambar 4. Skema Rancangan Penelitian Akhir
Direndam dalam larutan garam Fisologis
(NaCl 0,9%)
Mebendazol Ascaris suum, Goeze
Direndam dalam larutan infusa daun jambu biji konsentrasi
60%, 80% dan 100%
Direndam dalam larutan pyrantel pamoate 5 mg / ml
Inkubasi 370 C Inkubasi 370 C Inkubasi 370 C
Pengamatan tiap 1 jam hingga waktu yang didapat pada penelitian
pendahuluan
Semua cacing mati Semua cacing mati
Pengamatan tiap 1 jam hingga waktu yang didapat pada penelitian
pendahuluan
Pengamatan tiap 1 jam hingga waktu yang didapat pada penelitian
pendahuluan
Replikasi 4 kali Replikasi 4 kali Replikasi 4 kali
uji one way ANOVA
uji Post Hoc LSD
commit to user
H. Alat dan Bahan
1. Cawan petri diameter 10 cm 2. Batang kaca sebagai pengaduk 3. Gelas ukur
4. Pinset anatomis 5. Labu takar
6. Toples untuk menyimpan cacing 7. Inkubator
8. Larutan garam fisiologis (NaCl 0,9%)
9. Larutan uji dengan konsentrasi 20%, 40%, 60%, 80%, dan 100%
I. Cara Kerja
1. Pembuatan Infusa Daun Jambu Biji a. Pengambilan Bahan
Daun jambu biji yang akan diinfus didapat langsung dari B2P2TOT Tawangmangu.
b. Pembuatan Serbuk Daun Jambu Biji
Serbuk daun jambu biji adalah serbuk yang dihasilkan dari
daun jambu biji yang telah dikeringkan dalam oven pada suhu 400C
kemudian dihaluskan dan diayak dengan pengayak nomor 40. c. Pembuatan Infusa Daun Jambu Biji
Ekstraksi daun jambu biji dilakukan dengan metode infudasi dan hasil ekstraksi disebut infusa. Infudasi adalah proses penyarian yang umumnya digunakan untuk menyari zat kandungan aktif yang
commit to user
larut air dan bahan-bahan nabati. Cara ini sangat sederhana dan sering digunakan oleh perusahaan obat tradisional. Dengan beberapa modifikasi, cara ini sering digunakan untuk membuat ekstrak. Infusa dibuat dengan cara :
1) Membasahi 100 gram serbuk daun jambu biji dengan air sebanyak 100 ml.
2) Dipanaskan selama 15 menit pada suhu 900C – 980C dengan
menggunakan panci infudasi.
3) Penyaringan dilakukan pada saat cairan masih panas. 2. Penentuan Konsentrasi Larutan Uji yang Digunakan
Penelitian ini menggunakan larutan infusa daun jambu biji dengan berbagai macam konsentrasi, yaitu:
Konsentrasi I : 20 ml infusa daun jambu biji + 80 ml NaCl 0,9% →
Larutan infusa daun jambu biji 20%
Konsentrasi II : 40 ml infusa daun jambu biji + 60 ml NaCl 0,9% →
Larutan infusa daun jambu biji 40%
Konsentrasi III : 60 ml infusa daun jambu biji + 40 ml NaCl 0,9% → Larutan infusa daun jambu biji 60%
Konsentrasi IV : 80 ml infusa daun jambu biji + 20 ml NaCl 0,9% → Larutan infusa daun jambu biji 80%
Konsentrasi V : 100 ml infusa daun jambu biji → Larutan infusa daun jambu biji 100%
commit to user
3. Langkah Penelitian
a. Tahap Penelitian Pendahuluan
1) 7 buah cawan petri disiapkan, diisi larutan garam fisiologis (NaCl 0,9%) sebanyak 25 ml dan larutan uji dalam 5 konsentrasi (20%, 40%, 60%, 80% dan 100%), dihangatkan dalam inkubator hingga
suhu larutan mencapai 370C.
2) Ke dalam masing-masing cawan petri dimasukkan Ascaris suum,
Goeze sebanyak 5 ekor dan diinkubasi pada suhu 370C.
3) Untuk menentukan cacing tersebut mati atau hidup cacing-cacing tersebut disentuh dengan pinset. Jika sudah tidak bergerak, maka cacing dinyatakan mati. Pengamatan dilakukan tiap 1 jam.
4) Waktu kematian dan serial konsentrasi yang dapat menyebabkan kematian cacing pada uji ini menjadi dasar tahap penelitian.
a. Tahap Penelitian Akhir
1) 5 cawan petri disiapkan, masing-masing diisi larutan NaCl 0,9% (kontrol negatif), larutan pyrantel pamoate (kontrol positif), dan larutan uji dalam konsentrasi 60%, 80%, dan 100% sebanyak 25 ml dan dihangatkan terlebih dahulu pada inkubator hingga suhu larutan mencapai 370C.
2) Ke dalam masing-masing cawan petri dimasukkan Ascaris suum,
commit to user
3) Untuk menentukan cacing tersebut mati atau hidup cacing-cacing tersebut disentuh dengan pinset. Jika sudah tidak bergerak, maka cacing dinyatakan mati. Pengamatan dilakukan tiap 1 jam.
4) Hasil pengamatan yang diperoleh tiap 1 jam dicatat. 5) Penelitian direplikasi 4 kali
J. Teknik Analisis Data
Untuk menentukan apakah hasil penelitian ini bermakna atau tidak, data yang diperoleh akan dianalisis secara statistik dengan Analisis Varian satu jalan (Anova) dan uji Post Hoc. Uji Anova satu jalan adalah untuk membandingkan perbedaan mean pada lebih dari 2 kelompok. Setelah itu untuk mengetahui kelompok mana yang mempunyai perbedaan yang signifikan digunakan uji Post Hoc. Kemudian untuk mengetahui konsentrasi optimum yang dapat membunuh cacing digunakan analisis probit (Dahlan, 2008).
commit to user
BAB IV
HASIL PENELITIAN
A. Data Hasil Penelitian
1. Penelitian Pendahuluan
Penelitian pendahuluan ini dilakukan dengan mengamati jumlah kematian cacing Ascaris suum serta waktu kematiannya pada perendaman dalam infusa daun jambu biji dengan konsentrasi 20%, 40%, 60%, 80%, dan 100%. Berdasarkan hasil penelitian pendahuluan didapatkan hasil pada tabel berikut ini :
Tabel 2. Hasil Pengamatan Kematian Ascaris suum pada Tiap Konsentrasi
dalam Penelitian Pendahuluan
Hasil pengamatan pada penelitian pendahuluan menunjukkan bahwa infusa daun jambu biji dengan konsentrasi 100% dapat membunuh semua cacing dalam waktu 7 jam. Waktu ini menjadi dasar lamanya penelitian pada tahap penelitian akhir. Selain itu, didapatkan pula bahwa pada konsentrasi 20% dan 40% tidak didapatkan cacing yang mati. Oleh karena itu, tahap penelitian akhir hanya digunakan serial konsentrasi 60%, 80% dan 100%.
Waktu Kematian
(Jam)
Jumlah Kematian Cacing
NaCl 20% 40% 60% 80% 100% 1 0 0 0 0 0 1 2 0 0 0 0 1 2 3 0 0 0 0 1 2 4 0 0 0 0 2 3 5 0 0 0 1 3 4 6 0 0 0 2 3 4 7 0 0 0 2 4 5
commit to user
2. Penelitian Akhir
Hasil pengamatan penelitian pengaruh infusa daun jambu biji terhadap kematian Ascaris suum, Goeze in vitro adalah sebagai berikut:
Tabel 3. Hasil Pengamatan Kematian Ascaris suum, Goeze dalam
Berbagai Konsentrasi selama 7 Jam pada Penelitian Akhir Waktu
(Jam) Replikasi
Jumlah Kematian Cacing
NaCl 60% 80% 100% PP 1 1 0 0 0 3 4 2 0 0 0 2 3 3 0 0 0 2 3 4 0 0 0 3 3 Mean 0 0 0 2,5 3,25 2 1 0 0 1 3 4 2 0 0 0 3 3 3 0 0 1 2 4 4 0 0 0 3 4 Mean 0 0 0,5 2,75 3,75 3 1 0 0 2 4 4 2 0 0 1 3 4 3 0 0 1 3 4 4 0 0 1 3 4 Mean 0 0 1,25 3,25 4 4 1 0 0 3 4 5 2 0 1 2 3 5 3 0 0 3 4 4 4 0 0 3 3 4 Mean 0 0,25 2,75 3,5 4,5 5 1 0 1 3 5 5 2 0 1 3 4 5 3 0 1 4 4 5 4 0 1 3 4 5 Mean 0 1 3,25 4,25 5 6 1 0 1 3 5 5 2 0 2 4 4 5 3 0 1 4 5 5 4 0 2 3 5 5 Mean 0 1,5 3,5 4,75 5 7 1 0 2 4 5 5 2 0 2 4 5 5 3 0 2 5 5 5 4 0 2 3 5 5 Mean 0 2 4 5 5
commit to user
Hasil pengamatan pada penelitian akhir ini didapatkan bahwa pada konsentrasi 100%, semua cacing mati pada jam ke 7. Sedangkan pada konsentrasi 60% dan 80% masih didapatkan cacing yang hidup pada jam ke 7. Selain itu, didapatkan pula bahwa pada kelompok kontrol positif semua cacing telah mati pada jam ke 5. Tabel 3 di atas dapat dibuat dalam bentuk grafik sebagai berikut:
0 1 2 3 4 5 1 2 3 4 5 6 7 ju m la h ke m at ia n ca ci n g (e ko r) waktu (jam) NaCl 60% 80% 100% Pyr Pam
Gambar 5. Grafik Jumlah Rata-rata Kematian Cacing dalam Berbagai
Konsentrasi pada Penelitian Akhir
Grafik rata-rata jumlah kematian cacing di atas dapat dilihat bahwa pada setiap jam pengamatan, terdapat peningkatan jumlah kematian cacing yang sebanding dengan peningkatan konsentrsi infusa daun jambu biji pada konsentrasi 60% hingga 100%.
B. Analisis Data
Data hasil pengamatan penelitian akhir pada tabel 3 yang berupa jumlah rata-rata kematian cacing dianalisis dengan menggunakan uji one way ANOVA apabila memenuhi syarat uji.
commit to user
1. Uji one way ANOVA
Sebelum melakukan uji one way ANOVA ada syarat-syarat yang harus dipenuhi, yaitu distribusi data harus normal dan varians data harus sama (Dahlan, 2008). Pada uji normalitas dan uji homogenitas didapat nilai probabilitas (p) seperti pada tabel berikut :
Tabel 4. Nilai Probabilitas (p) Uji Normalitas
a. Lilliefors Significance Correction
*. This is a lower bound of the true significance.
b. mati is constant when konsentrasi = nacl. It has been omitted.
Tabel 5. Nilai Probabilitas (p) Uji Homogenitas
a. mati is constant when konsentrasi = nacl. It has been omitted.
Tabel Uji Kolmogorov-Smirnov dan Shapiro Wilk di atas menujukkan nilai probabilitas (p) pada semua kelompok perlakuan >0,05. Hal ini berarti bahwa data berdistribusi normal. Kemudian pada tes homogenitas varians, didapatkan nilai probabilitas 0,208 (> 0,05), sehingga varians data dinyatakan homogen. Oleh karena itu syarat-syarat untuk penggunaan uji one way ANOVA telah terpenuhi.
Uji one way ANOVA dilakukan untuk menguji apakah kelompok perlakuan memiliki rerata jumlah kematian cacing yang
Konsentrasi Kolgomorov-Smirnov Shapiro-Wilk
60% 0,134 0,079 80% 0,200 0,374 100% 0,200 0,599
PP 0,200 0,184
Levene Statistic Df1 Df2 Probabilitas
commit to user
berbeda signifikan atau tidak berbeda signifikan secara statistik. Hasil uji one way ANOVA adalah sebagai berikut :
Tabel 6. Hasil Uji One Way ANOVA
ANOVA
Sum of Squares Df Mean Square F Sig.
Between Groups 98.704 4 24.676 26.711 .000
Within Groups 27.714 30 .924
Total 126.418 34
Hipotesis untuk uji one way ANOVA adalah sebagai berikut :
a. H0 : Infusa daun jambu biji tidak mempunyai pengaruh terhadap
kematian Ascaris suum, Goeze.
b. H1: Infusa daun jambu biji mempunyai pengaruh terhadap
kematian Ascaris suum, Goeze. Pengambilan keputusan :
1). Jika nilai probabilitas < 0,05, maka H0 ditolak
2). Jika nilai probabilitas > 0,05, maka H0 diterima
Nilai probabilitas pada uji ANOVA tersebut adalah 0,000 atau p
<0,05 maka H0 ditolak dan H1 diterima. Karena H1 diterima maka
terdapat perbedaan yang signifikan antara kelima rerata kelompok atau paling tidak terdapat perbedaan jumlah kematian cacing yang signifikan pada dua kelompok. Untuk mengetahui kelompok yang mempunyai perbedaan yang signifikan digunakan uji post hoc (Dahlan, 2008).
2. Uji Post Hoc LSD
commit to user
Tabel 7. Hasil Uji Post Hoc LSD
Kelompok yang dibandingkan Nilai probabilitas (p) Signifikan/tidak signifikan H0
NaCl 60% .197 Tidak Signifikan Diterima
80% .000
Signifikan Ditolak
100% .000
PP .000
60% NaCl .197 Tidak Signifikan Diterima
80% .007 Signifikan Ditolak 100% .000 PP .000 80% NaCl .000 Signifikan Ditolak 60% .007 100% .006 PP .000 100% NaCl .000 Signifikan Ditolak 60% .000 80% .006
PP .220 Tidak Signifikan Diterima
PP NaCl .000
Signifikan Ditolak
60% .000
80% .000
100% .220 Tidak Signifikan Diterima
Hipotesis untuk uji Post Hoc LSD di atas adalah sebagai berikut :
a. H0 : Rerata jumlah kematian cacing antara kelompok yang
dibandingkan memiliki perbedaan yang tidak signifikan
b. H1 : Rerata jumlah kematian cacing antara kelompok yang
dibandingkan memiliki perbedaan yang signifikan. Pengambilan keputusan uji Post Hoc LSD:
a. Jika nilai probabilitas < 0,05, maka H0 ditolak
commit to user
Dari tabel uji Post Hoc LSD di atas dapat dilihat bahwa tidak terdapat perbedaan yang signifikan antara kelompok NaCl (kontrol negatif), dengan perlakuan 60%, serta pada kelompok perlakuan 100% dengan PP (pyrantel pamoate/kontrol positif). Sedangkan konsentrasi 80% dan 100% serta kelompok kontrol positif (larutan pyrantel pamoate) terdapat perbedaan yang signifikan dengan kelompok kontrol negatif dan kelompok perlakuan 60%. Hasil selengkapnya uji Post Hoc LSD di atas dapat dilihat pada lampiran 3.
3. Analisis Probit
Analisis probit digunakan untuk mengetahui konsentrasi infusa daun jambu biji yang dapat membunuh 50% cacing yang dinyatakan
dengan LC50 serta konsentrasi infusa daun jambu biji yang dapat
membunuh 90% cacing yang dinyatakan sebagai LC90.
Hasil analisis probit didapatkan bahwa LC50 infusa daun jambu
biji adalah 64,764% dan LC90nya adalah 84,782%. Hasil lengkap dari
analisis probit dapat dilihat pada lampiran 4.
commit to user
BAB V PEMBAHASAN
Untuk mengetahui pengaruh infusa daun jambu biji terhadap kematian Ascaris suum, Goeze, penelitian dilakukan dalam dua tahap, yaitu tahap penelitian pendahuluan dan tahap penelitian akhir. Penelitian pendahuluan dilakukan untuk mengetahui serial konsentrasi infusa daun jambu biji yang dapat membunuh cacing serta waktu minimal yang diperlukan infusa daun jambu biji untuk membunuh semua cacing. Waktu tersebut akan digunakan sebagai dasar untuk tahap penelitian akhir. Selain itu, pada penelitian ini digunakan larutan NaCl 0,9% sebagai kontrol negatif untuk membuktikan bahwa cacing mati karena infusa daun jambu biji, serta digunakan pula larutan pyrantel pamoate sebagai pembanding efektivitas infusa daun jambu biji dalam membunuh cacing Ascaris suum, Goeze karena pyrantel pamoate merupakan drug of choice untuk askariasis. Pada tahap penelitian pendahuluan ini didapatkan waktu minimal yang diperlukan infusa daun jambu biji untuk membunuh semua cacing pada konsentrasi 100% selama 7 jam. Oleh karena itu, pada tahap penelitian akhir digunakan waktu penelitian selama 7 jam.
Pada tahap penelitian pendahuluan digunakan lima kosentrasi yaitu 20%, 40%, 60%, 80% dan 100%. Ternyata yang dapat membunuh cacing hanya 3 konsentrasi yaitu 60%, 80%, dan 100%. Maka pada penelitian akhir cacing Ascaris suum, Goeze direndam pada infusa daun jambu biji dengan 3 konsentrasi, yaitu 60%, 80% dan 100%.
commit to user
Pada data jumlah kematian cacing (tabel 3) dapat dilihat bahwa pada tiap jam pengamatan, terdapat peningkatan jumlah kematian cacing yang sebanding dengan peningkatan konsentrasi infusa daun jambu biji pada konsentrasi 60% hingga 100% yang terlihat pada grafik jumlah kematian cacing (gambar 5). Selain itu, tampak bahwa jumlah kematian cacing pada larutan pyrantel pamoate lebih tinggi jika dibandingkan dengan infusa daun jambu biji. Perbedaan ini menunjukkan bahwa pyrantel pamoate mempunyai kemampuan yang lebih tinggi untuk membunuh cacing dibandingkan dengan infusa daun jambu biji. Akan tetapi, untuk perbandingan efektivitas infusa daun jambu biji dengan pyrantel pamoate secara statistik akan dibahas lebih lanjut pada bagian akhir bab ini.
Hasil penelitian diuji dengan One Way Anova untuk menguji adanya perbedaan yang signifikan antara kelompok perlakuan dengan kelompok kontrol. Sebaran data menunjukkan sebaran yang normal dan varians data menunjukkan data yang homogen, sehingga syarat untuk uji anova telah terpenuhi. Pada uji anova didapatkan nilai probabilitas (p) 0,000 atau < 0,05 yang berati bahwa terdapat pengaruh infusa daun jambu biji terhadap kematian Ascaris suum, Goeze. Setelah diketahui adanya perbedaan yang signifikan pada kelompok perlakuan dengan kelompok kontrol, dilanjutkan dengan uji post hoc untuk mengetahui kelompok mana yang mempunyai perbedaan yang bermakna.
Hasil analisis post hoc didapatkan perbedaan yang signifikan antara kelompok perlakuan 80%, 100% dan kontrol positif (pyrantel pamoate) terhadap kontrol negatif. Hal ini menunjukkan bahwa infusa daun jambu biji dengan konsentrasi 80% dan 100% serta pyrantel pamoate mempunyai daya bunuh yang
commit to user
berarti terhadap ascaris suum. Sedangkan pada kelompok perlakuan 60% tidak didapatkan perbedaan yang bermakna dengan kontrol negatif. Hal ini menunjukkan bahwa infusa daun jambu biji dengan konsentrasi 60% tidak mempunyai kemampuan yang berarti untuk membunuh cacing Ascaris suum.
Hasil analisis post hoc menunjukkan pula bahwa kelompok 60% dan 80% mempunyai perbedaan yang signifikan dengan kelompok kontrol positif, yang berarti bahwa infusa daun jambu biji dengan konsentrasi 60% dan 80% mempunyai daya bunuh yang lebih rendah dari pyrantel pamoate. Sedangkan nilai probabilitas antara infusa daun jambu biji pada konsentrasi 100% dengan larutan pyrantel pamoate menunjukkan 0,220 (> 0,05). Hal ini berarti bahwa infusa daun jambu biji dengan konsentrasi 100% tidak mempunyai perbedaan yang bermakna dengan larutan pyrantel pamoate secara statistik, yang berarti bahwa infusa daun jambu biji dengan konsentrasi 100% mempunyai efektivitas yang identik dengan larutan pyrantel pamoate.
Hasil analisis probit didapatkan bahwa toksisitas akut (LC50) infusa daun
jambu biji adalah pada konsentrasi 64,764%, dimana pada konsentrasi tersebut 50% cacing mati dalam waktu yang ditentukan (7 jam). Didapatkan pula bahwa
konsentrasi yang dapat membunuh 90% cacing (LC90) infusa daun jambu biji
adalah 84,782%.
commit to user
BAB VI
SIMPULAN DAN SARAN
A. Simpulan
1. Infusa daun jambu biji (Psidium guajava, Linn) dapat membunuh Ascaris
suum, Goeze In vitro
2. Peningkatan konsentrasi infusa daun jambu biji dapat meningkatkan
jumlah kematian Ascaris suum, Goeze In vitro
B. Saran
1. Perlu dilakukan penelitian lebih lanjut mengenai pengaruh infusa daun jambu biji (Psidium guajava, Linn) terhadap kematian cacing Ascaris suum, Goeze In vivo.
2. Perlu dilakukan pengujian lebih lanjut tentang infusa daun jambu biji (Psidium guajava, Linn) sehingga diharapkan dapat menjadi bahan obat untuk askariasis.
