EKSPLORASI GEN CYTOCHROME OXIDASE SUBUNIT I (COI) DARI KERANG MUTIARA (Pinctada fucata) YANG BERASAL DARI LOKASI GEOGRAFIS YANG BERBEDA YUYUN QONITA

EKSPLORASI GEN CYTOCHROME OXIDASE SUBUNIT I

(COI) DARI KERANG MUTIARA (Pinctada fucata) YANG

BERASAL DARI LOKASI GEOGRAFIS YANG BERBEDA

YUYUN QONITA

DEPARTEMEN MANAJEMEN SUMBER DAYA PERAIRAN FAKULTAS PERIKANAN DAN ILMU KELAUTAN

INSTITUT PERTANIAN BOGOR BOGOR

PERNYATAAN MENGENAI SKRIPSI DAN

SUMBER INFORMASI

Dengan ini saya menyatakan bahwa skripsi berjudul Eksplorasi Gen

Cytochrome Oxidase Subunit I (COI) dari Kerang Mutiara (Pinctada fucata) yang

Berasal dari Lokasi Geografis yang Berbeda adalah benar karya saya dengan arahan dari komisi pembimbing dan belum diajukan dalam bentuk apa pun kepada perguruan tinggi mana pun. Sumber informasi yang berasal atau dikutip dari karya yang diterbitkan maupun tidak diterbitkan dari penulis lain telah disebutkan dalam teks dan dicantumkan dalam Daftar Pustaka di bagian akhir skripsi ini.

Bogor, Juli 2014

Yuyun Qonita

ABSTRAK

YUYUN QONITA. Eksplorasi Gen Cytochrome Oxidase Subunit I (COI) dari Kerang Mutiara (Pinctada fucata) yang Berasal dari Lokasi Geografis yang Berbeda. Dibimbing oleh YUSLI WARDIATNO dan NURLISA A BUTET.

Pinctada fucata merupakan salah satu spesies kerang penghasil mutiara di

dunia. Kerang ini dapat ditemukan di Teluk Persia (Uni Emirat Arab) dan Selat Semau, Nusa Tenggara Timur (Indonesia). Meskipun potensi pengembangan P.

fucata di Indonesia relatif tinggi, eksplorasi terhadap kerang mutiara jenis ini

belum banyak dilakukan. Tujuan dari penelitian ini adalah untuk mengeksplorasi urutan basa nukleotida gen Cytochrome Oxidase Subunit I (COI) dari kerang mutiara Pinctada fucata yang berasal dari Teluk Persia (Uni Emirat Arab) dan Selat Semau, Nusa Tenggara Timur (Indonesia). Hasil analisis urutan basa nukleotida gen COI P. fucata yang berasal dari kedua wilayah menunjukkan bahwa terdapat 33 situs mutasi yang terdiri dari 16 situs mutasi insersi dan 17 situs mutasi delesi. Perbedaan urutan basa nukleotida gen COI P. fucata yang berasal dari kedua wilayah ini dapat menjadi identitas molekuler yang dapat memberikan perlindungan terhadap sumber daya kerang mutiara (P. fucata) dan produk mutiara yang dihasilkannya. Autentifikasi P. fucata dapat dilakukan berdasarkan urutan basa nukleotida gen COI untuk mencegah perdagangan ilegal. Kata kunci: gen COI, Nusa Tenggara Timur, Pinctada fucata, Teluk Persia

ABSTRACT

YUYUN QONITA. Exploration of Cytochrome Oxidase Subunit I (COI) Gene from Pearl Oyster (Pinctada fucata) Originating from Different Geographic Locations. Supervised by YUSLI WARDIATNO and NURLISA A BUTET.

Pinctada fucata is one of the marine bivalves producing pearl which has

been utilized and cultured in some countries. These oysters can be found in the Persian Gulf (United of Emirates Arab) and Semau Strait, East Nusa Tenggara (Indonesia). Despite the high potential for the development of P. fucata fishery and culture in Indonesia, the exploration of these oysters has not been conducted. The aim of this research is to explore Cytochrome Oxidase Subunit I (COI) gene sequences of pearl oyster (Pinctada fucata) originating from Persian Gulf (United of Emirates Arab) and Semau Strait, East Nusa Tenggara (Indonesia). The results of the analysis of P. fucata COI gene sequences from both regions shows that there are 33 mutation sites consisting of 16 insertion mutation sites and 17 deletion mutation sites. The difference of P. fucata COI gene sequences from both regions may be a molecular identity that can provide protection of the species and its pearl production. Species authentication of P. fucata may be determined using COI gene sequence in order to prevent illegal trading.

Skripsi

sebagai salah satu syarat untuk memperoleh gelar Sarjana Perikanan

pada

Departemen Manajemen Sumber Daya Perairan

EKSPLORASI GEN CYTOCHROME OXIDASE SUBUNIT I

(COI) DARI KERANG MUTIARA (Pinctada fucata) YANG

BERASAL DARI LOKASI GEOGRAFIS YANG BERBEDA

YUYUN QONITA

DEPARTEMEN MANAJEMEN SUMBER DAYA PERAIRAN FAKULTAS PERIKANAN DAN ILMU KELAUTAN

INSTITUT PERTANIAN BOGOR BOGOR

Judul Skripsi : Eksplorasi Gen Cytochrome Oxidase Subunit I (COI) dari Kerang Mutiara (Pinctada fucata) yang Berasal dari Lokasi Geografis yang Berbeda

Nama : Yuyun Qonita

NIM : C24100019

Program studi : Manajemen Sumber Daya Perairan

Disetujui oleh Dr Ir Yusli Wardiatno, MSc Pembimbing I Dr Ir Nurlisa A. Butet, MSc Pembimbing II Diketahui oleh

Dr Ir Mohammad Mukhlis Kamal, MSc Ketua Departemen

PRAKATA

Puji dan syukur Penulis panjatkan kepada Allah subhanahu wa ta’ala atas segala karunia-Nya, sehingga karya ilmiah ini berhasil diselesaikan. Tema yang dipilih dalam penelitian ini adalah Eksplorasi Gen Cytochrome Oxidase Subunit I (COI) dari Kerang Mutiara (Pinctada fucata) yang Berasal dari Lokasi Geografis yang Berbeda.

Penulis menyampaikan terima kasih kepada:

1. Institut Pertanian Bogor yang telah memberikan kesempatan untuk studi. 2. Program kerja sama penelitian Institut Pertanian Bogor dan Ehime

University, Jepang yang telah mendanai penelitian ini.

3. PT Timor Otsuki Mutiara, Kupang, NTT yang telah membantu kelancaran penelitian ini.

4. Dr Ir Yusli Wardiatno, MSc selaku ketua komisi pembimbing dan Dr Ir Nurlisa A. Butet, MSc selaku anggota komisi pembimbing yang telah memberi arahan dan masukan dalam penulisan karya ilmiah ini.

5. Dr Ir Mohammad Mukhlis Kamal, MSc selaku penguji tamu dan Ali Mashar SPi, MSi selaku komisi pendidikan Departemen Manajemen Sumber Daya Perairan atas saran dan masukan dalam penulisan karya ilmiah ini.

6. Dr Ir Ario Damar, MSc selaku dosen pembimbing akademik. 7. Ayah, ibu, dan keluarga yang telah memberikan dukungan dan doa. 8. Tim penelitian Institut Pertanian Bogor di Kupang

9. Tim Laboratorium Biologi Molekuler Departemen Manajemen Sumber Daya Perairan yang telah memberikan semangat.

10. Teman-teman terbaik mahasiswa Manajemen Sumber Daya Perairan angkatan 47.

Semoga karya ilmiah ini bermanfaat.

Bogor, Juli 2014

DAFTAR ISI

DAFTAR GAMBAR vi

DAFTAR LAMPIRAN vi

DAFTAR ISTILAH vii

PENDAHULUAN

Latar Belakang 1

Perumusan Masalah 2

Tujuan Penelitian 2

METODE

Waktu dan Tempat 3

Bahan 3

Analisis Data 4

HASIL DAN PEMBAHASAN

Hasil 5

Pembahasan 8

KESIMPULAN DAN SARAN

Kesimpulan 10

Saran 11

DAFTAR PUSTAKA 11

LAMPIRAN 13

DAFTAR GAMBAR

1 Pinctada fucata dari Teluk Persia (kiri), P. fucata dari Selat Semau,

NTT (kanan) 3

2 Hasil ekstraksi DNA total Pinctada fucata dari Teluk Persia (kiri), dan

P. fucata dari Selat Semau, NTT (kanan) pada gel agarosa 1.2% 5 3 Visualisasi produk PCR pada gel agarosa 1%, kolom kiri sampai

kanan: marker 1 kb, Pf UE, Pf ID 6

4 Konstruksi filogeni berdasarkan gen COI pada famili Pteriidae (Pinctada fucata), Arcidae (Anadara antiquata, Anadara transversa,

Arca ventricosa, Arca navicularis), dan Pectinidae (Perna viridis,

Perna indica, Perna perna) 8

DAFTAR LAMPIRAN

1 Peta lokasi pengambilan contoh Pinctada fucata 13 2 Situs mutasi basa nukleotida gen COI Pinctada fucata yang berasal

dari Teluk Persia (Uni Emirat Arab) dan P. fucata yang berasal dari

Selat Semau (Indonesia) 14

3 Situs nukleotida spesifik gen COI Pinctada fucata yang berasal dari Teluk Persia (Uni Emirat Arab) dan P. fucata yang berasal dari Selat

DAFTAR ISTILAH

DNA barcoding : sistem yang dirancang untuk melakukan identifikasi secara cepat dan akurat berdasarkan urutan basa nukleotida dari gen penanda pendek yang telah terstandarisasi.

BLASTn : (Basic Local Alignment Search Tool-nucleotide) pilihan menu dari situs NCBI (National Center for

Biotechnology Information) yang digunakan untuk

memastikan kebenaran suatu spesies dan mengetahui kedekatan suatu spesies dengan spesies lain.

Complex life history : satu spesies yang memiliki beberapa stadia hidup dengan morfologi yang berbeda.

Complex species : satu spesies yang diklasifikasikan ke dalam beberapa nama spesies akibat keragaman morfologi.

Conserve : urutan basa nukleotida yang dipertahankan dalam jangka waktu yang sangat panjang pada suatu spesies;

basa nukleotida yang bersifat tetap dari setiap spesies dalam satu situs hasil pensejajaran.

Cryptic species : dua atau lebih spesies berbeda yang diklasifikasikan ke dalam satu spesies yang sama akibat karakteristik morfologi yang samar/mirip.

GenBank : situs NCBI yang memuat informasi dasar mengenai bioteknologi (termasuk informasi dasar DNA).

Phenotypic plasticity : satu spesies dengan beberapa bentuk tubuh yang berbeda akibat adaptasi terhadap lingkungan.

Sexual dimorphisme : satu spesies dengan morfologi yang berbeda antara jantan dan betina.

Singleton : satu basa nukleotida yang berbeda dari spesies lain dalam satu situs hasil pensejajaran.

Variable : basa nukleotida yang berbeda dari setiap spesies dalam satu situs dari hasil pensejajaran yang merupakan ciri khusus spesies.

PENDAHULUAN

Latar Belakang

Kerang mutiara merupakan salah satu komoditas laut yang memiliki nilai ekonomis tinggi. Kerang penghasil mutiara dari genus Pinctada yang dikenal di dunia adalah P. maxima, P. margaritifera, dan P. fucata. Saat ini, spesies yang paling banyak dikembangkan di Indonesia adalah P. maxima, yang mampu menghasilkan mutiara dengan ukuran terbesar. Meskipun demikian, spesies lainnya tetap memiliki potensi yang besar untuk dikembangkan. Kerang mutiara

P. fucata atau yang populer disebut sebagai Akoya pearl oyster, sebagai penghasil

mutiara akoya, tersebar di perairan Indonesia, termasuk di Selat Semau, Nusa Tenggara Timur. Selain terdapat di perairan Indonesia, kerang mutiara P. fucata juga tersebar di wilayah pesisir Uni Emirat Arab, khususnya di Teluk Persia. Di Teluk Persia, P. fucata telah banyak dikembangkan sebagai kerang penghasil mutiara.

Indonesia memiliki potensi yang besar dalam pengembangan mutiara akoya, namun kajian terhadap sumber daya P. fucata di Indonesia belum banyak dilakukan hingga saat ini. Pemanfaatan sumber daya P. fucata sebagai penghasil mutiara juga belum banyak dilakukan oleh masyarakat Indonesia. Oleh karena itu, upaya eksplorasi dan pengembangan kerang mutiara akoya (P. fucata) perlu dilakukan.

Tahap identifikasi merupakan tahap awal yang sangat penting dalam penentuan strategi pengembangan dan pengelolaan P. fucata di Indonesia. Teknik identifikasi berdasarkan karakteristik morfologi rentan terhadap kesalahan identifikasi akibat adanya fenomena cryptic species dan complex species. Cryptic

species adalah dua atau lebih spesies yang sulit dibedakan secara morfologi dan

sering ditemukan pada organisme yang hidup di laut (Knowlton 2000; Bickford et

al. 2006). Oleh karena itu, diperlukan suatu teknik identifikasi yang lebih akurat,

yaitu teknik identifikasi berdasarkan marka molekuler.

Menurut Vrijenhoek (2009), teknik identifikasi secara molekuler mampu menyelesaikan permasalahan identifikasi terhadap cryptic species dan kesamaan taksonomi akibat adanya phenotypic plasticity, sexual dimorphisme, dan complex

life history. Salah satu teknik identifikasi molekuler yang populer digunakan

adalah DNA barcoding. DNA barcoding merupakan sistem yang dirancang untuk mengidentifikasi spesies secara cepat dan akurat dengan menggunakan daerah gen yang terstandarisasi sebagai penanda spesies (Hebert et al. 2005). Sumber DNA pada hewan eukariot terbagi menjadi DNA inti dan DNA mitokondria (Duryadi 1994). DNA mitokondria yang banyak digunakan sebagai penanda adalah Cytochrome Oxidase Subunit I (COI). Menurut Hebert et al. (2003a), keragaman sekuens gen COI mampu menjadi dasar dalam sistem DNA

barcoding hewan.

Gen COI memiliki kelebihan sebagai penanda molekuler, yaitu nukleotida ketiga dari gen penyandi protein ini menunjukkan kejadian substitusi basa yang tinggi, sehingga menyebabkan laju evolusinya tiga kali lebih cepat dibandingkan 12S atau 16S rDNA (Knowlton dan Weigt 1998). Laju evolusi dari gen ini cukup tinggi, sehingga gen COI bukan hanya mampu membedakan individu antarspesies

2

yang memiliki kekerabatan dekat, namun dapat pula membuat filogeografi dari spesies yang sama (Cox dan Hebert 2001 in Hebert et al. 2003b).

Eksplorasi gen COI melalui DNA barcoding memiliki peran penting dalam langkah awal pengelolaan serta perlindungan komoditas kerang mutiara maupun produk mutiara yang dihasilkannya. Perlindungan terhadap sumber daya dapat dilakukan dengan teknik DNA barcoding yang mampu memberikan identitas terhadap suatu komoditas berdasarkan urutan basa nukleotidanya. Berdasarkan DNA barcoding, dapat diketahui asal-usul suatu sumber daya dan dapat dilakukan validasi terhadap negara asal dari sumber daya tersebut (Nielsen dan Kjaer 2008), sehingga suatu negara dapat melakukan klaim kepemilikan dari komoditas perdagangan yang diproduksinya.

Perumusan Masalah

Indonesia memiliki potensi yang besar untuk mengembangkan mutiara akoya, namun pengembangan dan pemanfaatan kerang mutiara P. fucata belum banyak dilakukan di Indonesia. Tahap identifikasi merupakan tahap awal yang penting dalam upaya pengembangan dan pengelolaan sumber daya hayati. Fenomena cryptic species dan complex species dapat menyebabkan kesalahan identifikasi secara morfologi. Oleh karena itu, dibutuhkan teknik identifikasi yang lebih akurat, yaitu identifikasi berdasarkan marka molekuler. Teknik identifikasi yang digunakan adalah teknik DNA barcoding yang dilakukan dengan mengkarakterisasi gen COI dari P. fucata. Marka molekuler ini juga mampu memberikan perlindungan terhadap sumber daya kerang mutiara dan produk mutiara P. fucata berdasarkan identitas gen COI. Berdasarkan identitas molekuler tersebut, dapat diketahui asal wilayah dari suatu sumber daya, sehingga negara dapat melakukan klaim terhadap suatu komoditas perdagangan. Hal ini sangat dibutuhkan mengingat kerang mutiara P. fucata terdapat di beberapa negara di dunia, termasuk Indonesia dan Uni Emirat Arab. Selain itu, banyaknya kegiatan ekspor-impor kerang mutiara antarnegara akan meningkatkan kemungkinan terjadinya kerancuan identitas kerang mutiara dan produk mutiara yang dihasilkannya, sehingga dibutuhkan sebuah teknik pemberian identitas melalui DNA barcoding.

Tujuan Penelitian

Penelitian ini bertujuan untuk mengeksplorasi urutan basa nukleotida gen

cytochrome oxidase subunit I (COI) dari kerang mutiara Pinctada fucata yang

berasal dari Teluk Persia (Uni Emirat Arab) dan Selat Semau, Nusa Tenggara Timur (Indonesia).

3

METODE

Waktu dan Tempat

Penelitian ini dilaksanakan pada bulan Desember 2013 hingga Mei 2014. Penelitian dilakukan di Laboratorium Biologi Molekuler Perairan Departemen Manajemen Sumber Daya Perairan dan Laboratorium Terpadu Fakultas Perikanan dan Ilmu Kelautan, Institut Pertanian Bogor.

Bahan

Bahan yang digunakan dalam penelitian ini adalah jaringan insang serta otot kaki dari kerang mutiara P. fucata. Contoh kerang mutiara (Gambar 1) diambil dari dua wilayah yang berbeda, yaitu Selat Semau, Nusa Tenggara Timur (Indonesia) dan Teluk Persia (Uni Emirat Arab) (Lampiran 1). Jumlah contoh yang digunakan dalam penelitian ini adalah 18 contoh P. fucata yang berasal dari Teluk Persia dan 2 contoh P. fucata yang berasal dari Selat Semau.

Gambar 1 Pinctada fucata dari Teluk Persia (kiri), P. fucata dari Selat Semau, NTT (kanan)

Isolasi dan ekstraksi DNA

Isolasi dan ekstraksi DNA dilakukan terhadap jaringan insang dan otot kaki

P. fucata yang berasal dari Teluk Persia (Uni Emirat Arab) dan Selat Semau, NTT

(Indonesia), masing-masing sejumlah 18 dan 2 contoh. Sebelum dilakukan isolasi dan ekstraksi, contoh yang telah diawetkan di dalam alkohol 96% dibersihkan dan dicuci terlebih dahulu menggunakan akuades. Jaringan tubuh kerang kemudian diisolasi dan diekstraksi menggunakan kit komersial Gene Aid. Prosedur isolasi dan ekstrasi yang dilakukan mengikuti manual pabrik dengan beberapa prosedur yang telah dimodifikasi.

Uji kualitas DNA

Tahap pengujian kualitas DNA dilakukan untuk mengetahui kualitas DNA yang layak digunakan sebagai cetakan pada prosedur amplifikasi. Pengujian kualitas DNA dilakukan dengan metode elektroforesis menggunakan gel agarosa

4

1.2% yang direndam dengan buffer 1xTAE (40 mM Tris-asetat, 1 mM EDTA) dan dialiri listrik 100 volt selama 30 menit. Sebelumnya, gel agarosa telah diwarnai dengan ethidium bromide (EtBr). Penggunaan EtBr bertujuan untuk memberikan warna pada DNA, sehingga pita DNA dapat terlihat saat dilakukan visualisasi di bawah sinar UV. Volume DNA total yang digunakan dalam pengujian ini adalah 2.5 μL. Setelah DNA dimigrasikan dengan aliran listrik, gel agarosa kemudian diamati dan divisualisasikan di bawah sinar UV. DNA total dengan kualitas baik akan memiliki pita DNA yang tebal saat divisualisasikan di bawah sinar UV.

Amplifikasi DNA dengan metode PCR

Amplifikasi DNA dilakukan dengan metode PCR (Polymerase Chain

Reaction) menggunakan kit komersial Kapa Extra Hot Start, sehingga prosedur

amplifikasi mengikuti manual pabrik. Fragmen DNA yang diamplifikasi adalah gen COI. Primer yang digunakan merupakan primer universal untuk beberapa jenis kerang, termasuk P. fucata, yang didesain oleh Butet (2013, unpublish data). Amplifikasi DNA dilakukan dalam beberapa tahap, yaitu predenaturasi pada suhu 95 oC selama 3 menit, denaturasi pada suhu 95 oC selama 1 menit, annealing pada suhu 52 oC selama 1 menit, elongasi pada suhu 72 oC selama 1 menit,

post-elongasi pada suhu 72 oC selama 5 menit, dan penyimpanan pada suhu 15 oC selama 10 menit. Amplifikasi dengan metode PCR dilakukan dalam 35 siklus di mana tahap denaturasi, annealing, dan elongasi diulang sebanyak 35 kali.

Sekuensing DNA P. fucata gen COI

Produk PCR yang memiliki kualitas baik dapat dilanjutkan ke tahap sekuensing atau pembacaan sekuens DNA. Sekuensing dilakukan oleh jasa perusahaan sekuensing berdasarkan pada metode Sanger (1977).

Analisis Data Pensejajaran urutan nukleotida gen COI P. fucata

Hasil sekuensing diedit secara manual berdasarkan primer forward dan

reverse untuk mendapatkan urutan basa nukleotida gen COI dari P. fucata.

Urutan basa nukleotida P. fucata kemudian disejajarkan dengan spesies lainnya (ingroup dan outgroup) menggunakan metode Clustal W pada software MEGA 5.0 (Tamura 2011). Urutan basa nukleotida gen COI P. fucata yang berasal dari Teluk Persia (UEA) disejajarkan dengan P. fucata yang berasal dari Selat Semau, NTT (Indonesia) sebagai ingroup, sedangkan urutan nukleotida gen COI dari beberapa spesies famili Arcidae dan Pectinidae disejajarkan sebagai outgroup. Urutan basa nukleotida dari anggota famili Arcidae dan Pectinidae didapatkan dari GenBank. Spesies dari famili Arcidae yang digunakan adalah Anadara

transversa (GQ166572.1), Anadara antiquata (HQ258850.1), Arca ventricosa

(AB076935.1), dan Arca venicularis (AB076935.1), sedangkan spesies yang digunakan dari famili Pectinidae adalah Perna viridis (JX676167.1), Perna indica (FJ428755.1), dan Perna perna (DQ351476.1).

5 Jarak Genetik

Analisis jarak genetik dari urutan basa nukleotida gen COI intraspesies dan interspesies dilakukan menggunakan metode pairwise distance yang terdapat pada program MEGA 5.0 (Tamura et al. 2011). Jarak genetik intraspesies menunjukkan jarak genetik P. fucata yang berasal dari kedua wilayah yang berbeda, sedangkan jarak genetik interspesies menunjukkan jarak genetik antara P. fucata dan spesies lainnya dari famili Arcidae dan Pectinidae.

Analisis Filogeni

Analisis filogeni dilakukan menggunakan metode bootstrapped Neighbour

Joining Tree dengan 1000 kali pengulangan pada software MEGA 5.0 (Tamura

2011). Pohon filogeni dikonstruksi berdasarkan jarak genetik antarspesies. Konstruksi pohon filogeni berfungsi untuk mengetahui hubungan kekerabatan antarspesies.

HASIL DAN PEMBAHASAN

Hasil DNA total

Isolasi dan ekstraksi dilakukan terhadap jaringan insang dan otot kaki P.

fucata yang berasal dari Teluk Persia (UEA) dan Selat Semau, NTT (Indonesia),

masing-masing sebanyak 18 dan 2 contoh. Jaringan insang dipilih karena memiliki tekstur yang lembut sehingga memudahkan dalam proses penggerusan, sedangkan otot kaki dipilih karena mengandung jumlah sel yang relatif tinggi.

Berdasarkan isolasi dan ekstraksi DNA yang dilakukan, diperoleh DNA total dengan kualitas yang baik sebanyak 1 contoh, baik untuk P. fucata yang berasal dari Teluk Persia, UEA (Pf UE) dan P. fucata yang berasal dari Selat Semau, Indonesia (Pf ID). DNA total dengan kualitas baik ditunjukkan oleh keberadaan pita DNA yang terang dan tebal (Gambar 2).

Gambar 2 Hasil ekstraksi DNA total Pinctada fucata dari Teluk Persia (kiri), dan

6

DNA total P. fucata yang berasal dari perairan Indonesia berhasil diisolasi dan diekstraksi dari jaringan insang, sedangkan DNA total P. fucata yang berasal dari Teluk Persia diisolasi dan diekstraksi dari otot kaki. DNA total dengan kualitas yang baik dapat dijadikan cetakan DNA dalam tahap amplifikasi gen COI yang dilakukan menggunakan metode PCR.

Amplifikasi DNA gen COI

Amplifikasi gen COI dari kedua DNA total P. fucata dilakukan dengan metode PCR pada suhu penempelan primer (annealing) 52 oC. Amplifikasi gen COI menghasilkan produk PCR dengan kualitas yang baik. Gen COI yang berhasil teramplifikasi memiliki panjang urutan basa nukleotida berkisar antara 500-750 pb (Gambar 3). Selanjutnya, proses sekuensing akan dilakukan terhadap kedua produk PCR yang memiliki kualitas baik. Tahap sekuensing dilakukan untuk mendapatkan urutan basa nukleotida gen COI P. fucata.

Gambar 3 Visualisasi produk PCR pada gel agarosa 1%, kolom kiri sampai kanan: marker 1 kb, Pf UE, Pf ID

Sekuensing DNA dan pensejajaran urutan basa nukleotida gen COI P. fucata Sekuensing gen COI P. fucata dilakukan menggunakan metode Sanger (1977). Sekuensing dilakukan melalui dua arah, yaitu forward dan reverse. Urutan basa nukleotida gen COI yang berupa urutan forward dan reverse disejajarkan dan diedit secara manual, sehingga didapatkan panjang basa nukleotida gen COI untuk contoh P. fucata yang berasal dari Teluk Persia (UEA) dan Selat Semau, NTT (Indonesia), masing-masing adalah 360 pb dan 543 pb.

Komposisi urutan basa nukleotida gen COI dari kedua contoh P. fucata dianalisis menggunakan software MEGA 5.0. Berdasarkan analisis yang dilakukan, dapat diketahui persentase tiap basa nukleotida (adenin, timin, sitosin, guanin) yang menyusun gen COI dari kedua contoh. Komposisi basa nukleotida gen COI dari P. fucata yang berasal dari Teluk Persia terdiri dari 29.2% basa timin (T), 24.0% basa sitosin (C), 28.7% basa adenin (A), dan 18.1% basa guanin. Komposisi nukleotida P. fucata yang berasal dari Selat Semau terdiri dari 28.1% basa timin (T), 20.1% basa sitosin (C), 28.1% basa adenin (A), dan 23.7% basa guanin (G). Berdasarkan komposisi basa nukleotida, diketahui bahwa basa nukleotida adenin (A) dan timin (T) mendominasi urutan basa nukleotida gen COI dari kedua contoh, sehingga gen COI dari kedua contoh dikategorikan sebagai kelompok kaya A-T (A-T rich).

7 Urutan basa nukleotida gen COI dari kedua contoh P. fucata (famili Pteriidae) disejajarkan dengan outgroup (famili Arcidae dan Pectinidae) yang diperoleh dari GenBank. Berdasarkan hasil pensejajaran, diperoleh nilai

conserved sebesar 18.3% (75/409), variable sebesar 71.8% (294/409) dan singleton sebesar 51.3% (210/409).

Analisis jarak genetik dan filogeni gen COI P. fucata

Perhitungan jarak genetik dilakukan antara spesies P. fucata dan spesies bivalvia lainnya dari famili Arcidae dan Pectinidae. Perhitungan jarak genetik menunjukkan bahwa jarak genetik antara spesies P. fucata yang berasal dari Teluk Persia (UEA) dan P. fucata yang berasal dari Selat Semau, NTT (Indonesia) lebih rendah dari jarak genetik antara P. fucata dan spesies outgroup dari famili Arcidae dan Pectinidae (Tabel 1).

Data jarak genetik dijadikan sebagai dasar dalam analisis filogeni. Analisis filogeni dilakukan untuk mengetahui hubungan kekerabatan antarspesies. Analisis filogeni menunjukkan pemisahan yang nyata antara famili Pteriidae, Arcidae, dan Pectinidae (Gambar 4). Pohon filogeni yang dikonstruksi berdasarkan metode pairwise-distance menghasilkan tiga nodus. Nodus pertama terdiri dari anggota famili Pteriidae (kedua contoh P. fucata), nodus kedua terdiri dari anggota famili Arcidae (Anadara transversa, Anadara antiquata, Arca

ventricosa, dan Arca navicularis), dan nodus ketiga terdiri dari anggota famili

Pectinidae (Perna viridis, Perna indica, dan Perna. perna).

Tabel 1 Jarak genetik fragmen gen COI pada Pinctada fucata yang berasal dari Teluk Persia (UEA), P. fucata yang berasal dari Selat Semau (Indonesia), Anadara antiquata, A transversa, Arca ventricosa, Arca

navicularis, Perna viridis, Perna indica, dan Perna perna

PF UEa Pf ID Aa At Av An Pv Pi Pp Pf UE Pf ID 0.333 Aa 0.702 0.641 At 0.687 0.616 0.308 Av 0.697 0.697 0.394 0.333 An 0.712 0.652 0.348 0.303 0.232 Pv 0.672 0.652 0.606 0.571 0.626 0.545 Pi 0.652 0.652 0.591 0.591 0.636 0.576 0.167 Pp 0.662 0.667 0.606 0.611 0.641 0.611 0.197 0.061 a

Pf UE: Pinctada fucata dari UEA, Pf ID: P. fucata dari Indonesia, Aa: Anadara antiquata, At:

Anadara transversa, Av: Arca ventricosa, An: Arca navicularis, Pv: Perna viridis, Pi: Perna indica, Pp: Perna perna.

8

Gambar 4 Konstruksi filogeni berdasarkan gen COI pada famili Pteriidae (Pinctada fucata), Arcidae (Anadara antiquata, Anadara transversa,

Arca ventricosa, Arca navicularis), dan Pectinidae (Perna viridis, Perna indica, Perna perna)

Situs mutasi gen COI Pinctada fucata

Berdasarkan hasil pensejajaran urutan basa nukleotida gen COI P. fucata yang berasal dari Teluk Persia (UEA) dan Selat Semau (Indonesia), diperoleh situs mutasi pada gen COI P. fucata sebanyak 33 situs. Situs mutasi yang ditemukan terdiri dari 16 situs mutasi insersi dan 17 situs mutasi delesi (Lampiran 2).

Nukleotida spesifik gen COI Pinctada fucata

Berdasarkan hasil pensejajaran gen COI P. fucata dengan gen COI famili Arcidae dan Pectinidae, diperoleh 70 situs spesifik pada P. fucata (Lampiran 3). Situs spesifik ini merupakan penciri yang membedakan spesies P. fucata dengan spesies lainnya dari famili Arcidae.dan Pectinidae. Keberadaan situs spesifik ini menunjukkan adanya evolusi dari spesies P. fucata.

Pembahasan

Isolasi dan ekstraksi DNA P. fucata yang berasal dari Teluk Persia (UEA) dan Selat Semau, NTT (Indonesia), masing-masing menghasilkan satu contoh DNA total dengan kualitas yang baik. DNA total akan menjadi cetakan dalam proses amplifikasi. Kualitas DNA total merupakan faktor yang sangat penting dalam keberhasilan proses amplifikasi karena keberadaan debris dan protein yang berlebihan akan menghambat proses amplifikasi (Popa et al. 2007). Kandungan polisakarida dan protein polifenol yang tinggi di dalam otot kaki kerang juga dapat menjadi kontaminan yang akan mengganggu proses polimerase enzimatik asam nukleat (Pereira et al. 2011).

9 Kedua contoh DNA total dengan kualitas yang baik dijadikan sebagai cetakan DNA untuk mengamplifikasi gen COI P. fucata dengan metode PCR (Polymerase Chain Reaction). Amplifikasi gen COI dilakukan pada suhu penempelan primer (annealing) 52 oC. Optimalisasi suhu annealing merupakan tahap yang sangat penting dilakukan dalam metode PCR. Hal ini disebabkan penempelan primer forward dan reverse di kedua ujung DNA terjadi pada tahap

annealing. Oleh karena itu, dibutuhkan suhu annealing yang optimal untuk

proses penempelan primer tersebut.

Urutan basa nukleotida gen COI P. fucata yang berasal dari Teluk Persia (UEA) dan Selat Semau, NTT (Indonesia) didominasi oleh basa nukleotida adenin dan timin. Komposisi basa nukleotida A-T pada P. fucata yang berasal dari Teluk Persia dan Selat Semau, masing-masing adalah 56.2% dan 57.9%. Menurut Jusuf (2011), ikatan hidrogen A-T terdiri dari 2 ikatan hidrogen yang bersifat lebih lemah dibandingkan dengan ikatan hidrogen G-C yang memiliki 3 ikatan hidrogen. Oleh karena itu, ikatan basa nukleotida A-T lebih mudah untuk terpisah, sehingga menyebabkan spesies P. fucata memiliki kemungkinan mutasi yang relatif tinggi.

Urutan basa nukleotida gen COI P. fucata digunakan dalam analisis filogeni untuk mengetahui hubungan kekerabatan antara P. fucata dan spesies bivalvia lainnya (Anadara transversa, Anadara antiquata, Arca ventricosa, Arca

navicularis, Perna viridis, Perna indica, Perna perna). Konstruksi pohon filogeni

memperlihatkan pemisahan yang jelas antara famili Pteriidae (P. fucata) dengan famili Arcidae (Anadara transversa, Anadara antiquata, Arca ventricosa, Arca

navicularis) dan famili Pectinidae (Perna viridis, Perna indica, Perna perna).

Pohon filogeni dikonstruksi berdasarkan jarak genetik antarindividu. Semakin berbeda urutan basa nukleotida antarindividu, semakin besar pula jarak genetik antarindividu. Selanjutnya, semakin besar jarak genetik antarindividu, semakin jauh pula hubungan kekerabatan antara keduanya.

Konstruksi pohon filogeni memperlihatkan adanya tiga nodus. Nodus pertama terdiri dari P. fucata yang berasal dari perairan UEA dan P. fucata yang berasal dari perairan Indonesia. Nodus kedua terdiri dari anggota famili Arcidae, yaitu Anadara transversa, A. antiquata, Arca ventricosa, dan Arca navicularis, sedangkan nodus ketiga terdiri dari anggota famili Pectinidae, yaitu P. viridis, P.

indica, dan P. perna. Pemisahan ini terjadi akibat adanya situs spesifik pada gen

COI yang menjadi penciri bagi P. fucata. Keberadaan situs spesifik yang berjumlah 70 situs nukleotida mampu membedakan antara P. fucata dan spesies lainnya dari famili Arcidae dan Pectinidae.

Hasil perhitungan jarak genetik menunjukkan adanya perbedaan urutan basa nukleotida pada beberapa situs gen COI P. fucata yang berasal dari Teluk Persia (UEA) dan Selat Semau, NTT (Indonesia). Hal ini mengindikasikan terjadinya mutasi pada P. fucata. Berdasarkan urutan basa nukleotida, diketahui bahwa terdapat 16 situs mutasi insersi dan 17 situs mutasi delesi pada gen COI P. fucata. Mutasi insersi adalah mutasi yang terjadi karena adanya penambahan satu atau lebih basa nukleotida ke dalam urutan DNA, sedangkan mutasi delesi adalah mutasi yang terjadi karena kehilangan satu atau lebih basa nukleotida di dalam DNA. Mutasi yang terjadi pada P. fucata diduga disebabkan oleh adanya fragmentasi habitat akibat jarak yang sangat jauh antara Teluk Persia (Uni Emirat Arab) dan Selat Semau, NTT (Indonesia). Fragmentasi habitat mampu menyebabkan terjadinya mutasi genetik (Moreira 2009). Jarak yang sangat jauh

10

antara UEA dan Indonesia menyebabkan pertukaran haplotip tidak dapat terjadi antara kedua populasi dan menyebabkan tidak adanya konektivitas antara kedua populasi.

Teluk Persia terletak pada 23.9-30.3 oLU, sedangkan Selat Semau, NTT terletak pada 10.1-10.3 oLS. Hal ini menyebabkan Teluk Persia beriklim subtropis, sedangkan Selat Semau, NTT beriklim tropis. Lokasi geografis dengan iklim yang berbeda menyebabkan perbedaan kondisi lingkungan perairan, sehingga P. fucata melakukan strategi adaptasi yang berbeda pula untuk tetap bertahan hidup dan bereproduksi. Salah satu strategi adaptasi yang dilakukan adalah melalui mekanisme molekuler, sehingga gen COI P. fucata dari Teluk Persia (UEA) dan Selat Semau, NTT (Indonesia) memiliki karakter molekuler yang berbeda. Hal ini terbukti dari adanya perbedaan urutan basa nukleotida gen COI pada P. fucata yang berasal dari kedua wilayah tersebut.

Perbedaan urutan gen COI antara P. fucata yang berasal dari Teluk Persia (UEA) dan Selat Semau, NTT (Indonesia) dapat menjadi penciri khusus bagi masing-masing populasi untuk mengetahui asal wilayah keduanya. Adanya perbedaan tersebut mengindikasikan bahwa gen COI dapat menjadi suatu identitas molekuler dan alat autentifikasi bagi sumber daya P. fucata dan mutiara yang dihasilkannya untuk mencegah perdagangan ilegal dan pencurian mutiara. Berdasarkan identitas molekuler tersebut, suatu negara dapat melakukan klaim perdagangan terhadap sumber daya P. fucata dan produk mutiaranya.

Adanya situs mutasi dan perbedaan urutan basa nukleotida gen COI dari kedua contoh mengindikasikan bahwa P. fucata yang berasal dari Teluk Persia (UEA) dan Selat Semau (Indonesia) memiliki keragaman nukleotida yang berbeda.

P. fucata yang berasal dari Selat Semau (Indonesia) memiliki urutan basa

nukleotida gen COI yang khas. Keragaman nukleotida suatu spesies penting untuk dipertahankan bagi kelestarian spesies tersebut. Semakin tinggi keragaman nukleotida, semakin tinggi pula keragaman genetik yang dimiliki. Keragaman genetik memiliki peran penting dalam kebugaran (fitness) dan ketahanan suatu populasi. Keragaman genetik mampu menyediakan keragaman respon yang penting untuk menjaga fungsi ekosistem dan adaptasi spesies terhadap perubahan lingkungan (Ehlers et al. 2008). Oleh karena itu, kondisi perairan Selat Semau yang belum banyak terkontaminasi oleh polutan harus tetap dipertahankan. Kegiatan antropogenik yang membuang limbah di sepanjang pesisir juga perlu dibatasi dalam upaya mempertahankan kondisi perairan Selat Semau yang berperan sebagai habitat kerang mutiara P. fucata. Terjaganya kondisi habitat menjadi faktor penting dalam pemeliharaan keragaman genetik P. fucata, sehingga populasi P. fucata di Selat Semau dapat tetap lestari.

KESIMPULAN DAN SARAN

Kesimpulan

Karakterisasi gen COI berhasil dilakukan pada kerang mutiara P. fucata sebagai langkah eksplorasi P. fucata di Selat Semau, NTT (Indonesia). P fucata

11 yang berasal dari Teluk Persia (UEA) dan P. fucata yang berasal dari Selat Semau, NTT (Indonesia) memiliki perbedaan urutan basa nukleotida gen COI. Perbedaan urutan basa nukleotida gen COI ini dapat menjadi penciri bagi masing-masing populasi, sehingga suatu negara dapat melakukan klaim perdagangan terhadap sumber daya P. fucata dan mutiara yang dihasilkannya berdasarkan urutan basa nukleotida gen COI.yang dimilikinya.

Saran

Pengambilan contoh P. fucata yang berasal dari wilayah geografis yang lebih bervariasi diperlukan untuk memberikan pembuktian yang lebih menyeluruh mengenai perbedaan urutan basa nukleotida gen COI P. fucata. Penelitian lanjutan dengan melakukan cloning gen COI P. fucata juga perlu dilakukan untuk mendapatkan urutan basa nukleotida utuh dari gen COI P. fucata.

DAFTAR PUSTAKA

Bickford D, Lohman DJ, Sodhi NS, Ng PKL, Meler R, Winker K, Ingram KK, Das I. 2006. Cryptic species as a window on diversity and conservation.

Ecology and Evolution. 22:148-155.doi:10.1016/j.tree.2006.11.004.

Duryadi D. 1994. Peran DNA mitokondria (mtDNA) dalam studi keragaman genetik dan biologi populasi pada hewan. J Hayati. 1(1):1-4.

Ehlers A, Worm B, Reusch TBH. Importance of genetic diversity in eelgrass

Zostera marina for its resilience to global warming. Mar Ecol Prog Ser.

355: 1-7

Hebert PDN, Ratnasingham S, deWaard JR. 2003a. Barcoding animal life: cytochrome c oxidase subunit 1 divergences among closely related species.

Proc. R. Soc. Lond. 270:96–99. doi:10.1098/rsbl.2003.0025.

Hebert PDN, A Cywinska, Ball S. L, deWaard JR. 2003b. Biological identification through DNA barcodes. Proc. R. Soc. Lond. 270:313-321. doi:10.1098/rspb.2002.2218.

Hebert PDN, Gregory T R. 2005. The Promise of DNA Barcoding for Taxonomy.

Syst. Biol. 54(5):852-859. doi:10.1080/10635150500354886.

Jusuf M. 2001. Genetika I: Struktur dan Ekspresi Gen. Jakarta (ID):Sagung Seto. Knowlton N, Weigt LA. 1998. New dates and new rates for divergence across the

Isthmus of Panama. Proc. R. Soc. Lond. 265:2257-2263.

Knowlton N. 2000. Molecular genetic analyses of species boundaries in the sea.

Hydrobiologi. 420:73-90.

Moreira PA, Fernandes GW, Collevatti RG. 2009. Fragmentation and spatial genetic structure in Tabebuia ochracea (Bignoniaceae) a seasonally dry Neotropical tree. Forest Ecology and Management. 258:2690-2695. doi:10.1016/j.foreco.2009.09.037

Nielsen LR, Kjaer ED. 2008. Tracing Timber From Forest To Consumer With

12

Pereira JC, Chaves R, Bastos E, Leitao A, Pinto HG. 2011. An efficient method for genomic DNA extraction from different molluscs species. Int J Mol Sci. 12:8086-8095. doi:10.3390/ijms12118086.

Popa OP, Murariu D, Popa LO. 2007. Comparison of four DNA extraction methods from invasive freshwater bivalve species (mollusca: bivalvia) in Romanian fauna. Grigore Antipa. L:527-536.

Sanger F, Nicklen S, Coulson AR. 1977. DNA sequencing with chainterminating inhibitors. Proc Natl Acad Sci USA. 74: 5463-5467.

Tamura K, Dudley J, Nei M, Kumar S. 2011. Mega 5: molecular evolutionary genetics analysis using maximum likelihood, evolutionary distance, and maximum parsimony methods. J Mol Biol Evol. 28 (10): 2731–2739. doi:10.1093/molbev/msr121.

Vrijenhoek RC. 2009. Cryptic species, phenotypic plasticity, and complex life histories: Assessing deep-sea faunal diversity with molecular markers.

13

LAMPIRAN

Lampiran 1 Peta lokasi pengambilan contoh Pinctada fucata

Peta lokasi pengambilan contoh P. fucata di Teluk Persia (Uni Emirat Arab)

14

Lampiran 2 Situs mutasi basa nukleotida gen COI Pinctada fucata yang berasal dari Teluk Persia (Uni Emirat Arab) dan P. fucata yang berasal dari Selat Semau (Indonesia)

Spesies

Situs nukleotida ke-

1 2 3 4 5 6 7 8 9 1 0 2 3 3 1 4 1 4 9 1 1 9 1 2 0 Pinctada fucata UE - - - G T T A C Pinctada fucata ID A T G A A C A C G G G - - - - - Spesies

Situs nukleotida ke- 1 2 1 1 2 9 2 2 2 2 6 8 2 9 8 3 2 9 3 3 0 3 5 4 3 5 5 3 6 9 3 7 0 3 7 1 3 7 2 3 7 3 3 7 4 3 7 5 3 7 6 Pinctada fucata UE A T - - - C G G G G T T A A A Pinctada fucata ID - - G A A C A - - - -

15 Lampiran 3 Situs nukleotida spesifik gen COI Pinctada fucata yang berasal dari Teluk Persia (Uni Emirat Arab) dan P. fucata yang berasal dari Selat Semau (Indonesia)

Spesies

Situs nukleotida ke- 6 5 6 8 7 0 8 1 8 3 8 6 8 8 1 0 1 1 0 2 1 0 3 1 0 9 1 1 3 1 1 4 1 3 2 1 3 9 1 4 5 1 7 3 1 7 5 1 8 4 Pinctada fucata UE A C A A C T C C T C C T A A A C C T G Pinctada fucata ID A C A A C T C C T C C T A A A C C T G Anadara. antiquata C T T T T C G G A G G C T C T T A A T Anadara transversa C T T G T C G G A G G G G C T T A A C Arca ventricosa - - - G T G G A C Arca navicularis - - - C T C G G A G G C T T T G G A C Perna viridis - - - T G T Perna indica C G G G A A G A C G G C T . T G T G T Perna perna C G G G A A G A C G G C T G T G T G T Spesies

Situs nukleotida ke- 1 8 6 1 8 7 1 9 5 2 0 0 2 0 4 2 0 7 2 1 1 2 1 3 2 1 9 2 2 8 2 3 3 2 3 4 2 3 6 2 3 7 2 4 0 2 4 9 Pinctada fucata UE A G A A A C T C C C A G G G G T Pinctada fucata ID A G A A A C T C C C A G G G G T Anadara antiquata C T C C G T G T A T T T T A A A Anadara transversa C T C T G T G T A T T T T A T A Arca ventricosa T T C T G T G T A T T T C C T G Arca navicularis T T C T G T G T A T T T T T A G Perna viridis C T T T G G A T T T T A T T A G Perna indica C T T T G T A T T T T A T T A G Perna perna T T T C G T A T T T T A C C A G

16

Lanjutan Lampiran 3

Spesies

Situs nukleotida ke- 2 5 0 2 5 5 2 5 6 2 5 7 2 6 3 2 6 4 2 6 6 2 9 1 3 0 0 3 0 8 3 0 9 3 1 0 3 1 1 3 1 3 3 1 5 3 1 6 3 2 0 3 2 1 Pinctada fucata UE C C T G A C C C A T A G G A G G C A Pinctada fucata ID C C T G A C C C A T A G G A G G C A Anadara. antiquata T G C T T T T G T G T T T T A C T T Anadara transversa T G C T C T T A T G T T T T A C T T Arca ventricosa T G C C T T T G T G T T T T A C G T Arca navicularis T G C T T T T G T A T T T T A C T T Perna viridis T A C C C T T T G A G C T G A C T T Perna indica T T C C C T T T G G G C T G A C T T Perna perna T T C C C T T T G G G C T G A C T T Spesies

Situs nukleotida ke- 3 2 8 3 3 6 3 3 7 3 4 3 3 5 4 3 5 9 3 7 2 3 8 2 3 8 3 3 8 5 3 8 8 3 9 2 4 0 2 4 0 3 4 1 5 4 1 6 4 1 9 Pinctada fucata UE A A T T A T C G A G C T A A T A A Pinctada fucata ID A A T T A T C G A G C T A A T A A Anadara antiquata T T C C G G - - - - Anadara transversa T T C C G A A C G C G A - - - - - Arca ventricosa T T C C G A G C G C G A T T G G G Arca navicularis T T C C G A A C G C G A T T G G G Perna viridis T C C C T C G T T T T G T T G T T Perna indica T C C C T C G - - - - Perna perna T C C C T C G T T T T - - - -

17

RIWAYAT HIDUP

Penulis bernama lengkap Yuyun Qonita lahir di Arso 28 Juni 1992, merupakan anak kedua dari tiga bersaudara dari ibu bernama Romelah dan ayah Sumbono. Penulis mulai mengikuti pendidikan sekolah dasar di SD YPKP 1 Sentani dan lulus pada tahun 2004. Melanjutkan di SMPN 1 Sentani dan lulus pada tahun 2007 serta dilanjutkan di SMAN 1 Sentani dan lulus pada tahun 2010. Penulis lulus seleksi menjadi mahasiswa di Institut Pertanian Bogor melalui jalur Ujian Seleksi Masuk IPB (USMI) pada tahun 2010 sebagai mahasiswa Departemen Sumber Daya Perairan, Fakultas Perikanan dan Ilmu Kelautan, Institut Pertanian Bogor. Kegiatan di luar akademik, penulis aktif dalam organisasi Forum for Scientific Studies (FORCES) IPB tahun 2010-2011 sebagai anggota Departemen Community Development, Himpunan Mahasiswa Manajemen Sumber Daya Perairan (HIMASPER) IPB tahun 2011-2012 sebagai Sekretaris Umum II, HIMASPER tahun 2012-2013 sebagai sekretaris Umum I. Kegiatan akademik di luar perkuliahan yang pernah dilakukan oleh penulis adalah menjadi asisten mata kuliah Metode Statistika dan asisten Ekologi Perairan tahun 2012-2013, asisten mata kuliah Kualitas Air tahun 2013-2014, asisten mata kuliah Dasar-dasar Biologi Populasi tahun 2013-2014 dan Koordinator asisten mata kuliah Metode Statistik 2013-2014.