PERCOBAAN I PROTEIN & ASAM AMINO

(1)

PERCOBAAN I

Judul : Protein dan Asam Amino

Tujuan : 1. Membuktikan adanya asam amino di dalam larutan protein 2. Mengetahui sifat-sifat protein

Hari / tanggal : Rabu / 9 Maret 2011

Tempat : Laboratorium Kimia FKIP Unlam Banjarmasin

I. DASAR TEORI

1.1 Protein dan Asam Amino

Protein merupakan biopolimer yang terdiri atas banyak asam amino yang berhubungan satu dengan lainnya lewat ikatan amida (peptida). Protein berasal dari bahasa Yunani, proteus yang artinya protein karena protein merupakan senyawa yang sangat penting di dalam organisme. Protein merupakan suatu koloid elektrolit yang bersifat amfoter. Dengan sifat ini protein dapat bersifat asam atau basa.

Protein merupakan komponen utama semua sel hidup. Protein merupakan suatu senyawa polimer dari asam-asam amino dengan BM 104_{sampai dengan 10}6_. Struktur protein tersusun oleh gabungan asam amino pada gugus karbonil dan asam amino dengan ikatan peptida.

(2)

Asam amino merupakan unit pembangun protein yang dihubungkan melalui ikatan peptida pada setiap ujungnya. Protein tersusun dari atom C, H, O, dan N, serta kadang-kadang P dan S. Asam amino yang diperoleh dari hidrolisis protein ialah asam amino α atau disebut juga asam α-aminokarboksilat. Asam amino yang terjadi secara alami sebagai penyusun protein mempunyai gugus amino (NH2) dan gugus karboksilat (COOH) yang terikat pada atom yang sama yaitu pada atom karbon alfa.

Rumus umum untuk asam amino : Rumus ion dipolar asam amino :

Semua asam amino yang ditemukan pada protein mempunyai ciri yang sama, gugus karboksil dan amino diikat pada atom karbon yang sama. Masing-masing berbeda satu dengan yang lain pada gugus R-nya, yang bervariasi dalam struktur, ukuran, muatan listrik, dan kelarutan dalam air. Beberapa asam amino mempunyai reaksi yang spesifik yang melibatkan gugus R-nya.

(3)

Pada umumnya asam amino larut dalam air dan tidak larut dalam pelarut organik non polar seperti eter, aseton dan kloroform. Asam amino mempunyai titik lebur yang lebih tinggi bila dibandingkan dengan asam karboksilat atau amina. Kedua sifat fisika ini menunjukkan bahwa asam amino cenderung mempunyai struktur yang bermuatan dan mempunyai polaritas tinggi dan bukan sekedar senyawa yang mempunyai gugus –COOH dan gugus –NH2. Hal ini tampak pula pada sifat asam amino sebagai elektrolit.

Asam amino mengandung suatu gugus amino yang bersifat basa dan gugus karboksil yang bersifat asam dalam molekul yang sama. Asam amino mengalami reaksi asam-basa internal yang menghasilkan suatu ion dipolar, yang juga disebut zwitterion atau ion amfoter. Berikut rumus strukturnya:

Sumber protein dapat diperoleh dari bahan hewani maupun nabati, seperti: telur, daging, susu, pati dan kacang-kacangan.

1.2 Reaksi Protein dan Asam Amino

A. Reaksi Warna Protein 1) Reaksi Biuret

(4)

suasana basa. Dipeptida dan asam-asam amino (kecuali histidina, serina dan treonina) tidak memberikan uji ini. Beberapa protein yang mempunyai gugus –CS-NH-, -CH-NH- dalam molekulnya juga memberikan tes warna positif dengan biuret.

2) Reaksi Millon

Pereaksi Millon melibatkan penambahan senyawa Hg ke dalam protein segingga pada penambahan logam ini akan menghasilkan endapan putih dari senyawa merkuri. Untuk protein yang mengandung tirosin atau triptofan penambahan pereaksi Millon memberikan warna merah. Namun, pereaksi ini tidak spesifik karena juga memberikan tes positif warna merah dengan adanya senyawa fenol.

3) Reaksi Hopkins Cole

Reaksi warna protein menunjukkan positif bila ditandai terbentuknya cincin ungu pada bidang batas antara larutan protein dengan pereaksi, yang disebabkan karena terbentuk kondensasi 2 inti indol dari triptofan dengan aldehid (yang diperoleh dari asam glioksalat).

4) Reaksi Ninhidrin

Reaksi protein dengan ninhidrin menunjukkan positif bila memberikan warna biru atau ungu. Reaksi ini terjadi pada gugus amino bebas dari asam amino dengan ninhidrin.

B. Sifat-sifat Protein

1) Protein bersifat asam/basa

Dalam suasana asam molekul protein akan membentuk ion positif, dalam suasana basa molekul protein akan membentuk ion negatif.

Molekul protein dapat membentuk ion yang bermuatan positif dan juga bermuatan negatif atau disebut dengan senyawa amfoter, keadaan ion ini sangat tergantung pada pH larutan.

2) Denaturasi protein

(5)

diartikan suatu proses terpecahnya ikatan hidrogen, interaksi hidrofobik, ikatan garam dan terbukanya lipatan.

Protein yang terdenaturasi akan berkurang kelarutannya. Lapisan molekul bagian dalam yang bersifat hidrofobik akan keluar sedangkan bagian hidrofilik akan terlipat ke dalam. Pelipatan atau pembakikkan akan terjadi bila protein mendekati pH isoelektris lalu protein akan menggumpal dan mengendap. Viskositas akan bertambah karena molekul mengembang menjadi asimetrik, sudut putaran optis larutan protein juga akan meningkat.

Denaturasi protein meliputi gangguan dan kerusakan yang mungkin terjadi pada struktur sekunder dan tersier protein. Sejak diketahui reaksi denaturasi tidak cukup kuat untuk memutuskan ikatan peptida, dimana struktur primer protein tetap sama setelah proses denaturasi. Denaturasi terjadi karena adanya gangguan pada struktur sekunder dan tersier protein. Pada struktur protein tersier terdapat empat jenis interaksi yang membentuk ikatan pada rantai samping seperti; ikatan hidrogen, jembatan garam, ikatan disulfida dan interaksi hidrofobik non polar, yang kemungkinan mengalami gangguan. Denaturasi yang umum ditemui adalah proses presipitasi dan koagulasi protein.

Gambar 1. Perubahan struktur protein karena denaturasi 3) Pengendapan protein

(6)

karena kemampuan ion garam untuk terhidrasi sehingga berkompetisi dengan molekul protein untuk mengikat air.

a. Pengendapan dengan amonium sulfat b. Pengendapan asam mineral pekat c. Pengendapan dengan logam berat

II. ALAT DAN BAHAN

2.1 Alat yang digunakan:

1) Batang pengaduk 1 buah

2) Tabung reaksi 6 buah

3) Rak tabung reaksi 1 buah 4) Penjepit Tabung Reaksi 1 buah

5) Pipet tetes 2 buah

6) Gelas ukur 10 mL 6 buah

7) Gelas kimia 4 buah

8) Cawan petri 1 buah

9) Penangas air 1 buah

10) Corong 1 buah

2.2 Bahan yang digunakan:

1) Telur ayam ras 2) Telur ayam kampung 3) Telur penyu

4) Telur itik tambak 5) Susu sapi murni 6) Susu kedelai 7) NaOH 2,5 N 8) CuSO4 0,01 M 9) Reagen Millon

10) Larutan ninhidrin 0,1% 11) HCl 1 N

(7)

13) NaOH 0,1 N 14) Indikator Kongo 15) Indikator PP 16) Larutan (NH4)2SO4 17) Asam Asetat 1 M

III. PROSEDUR KERJA 3.1 Reaksi Warna Protein

1) Uji Biuret

Menambahkan 1 mL NaOH 2,5 N ke dalam 2 ml larutan protein, sambil mengaduk. Menambahkan setetes CuSO4 0,01 M. Mengaduk, jika tidak timbul warna maka menambahkan lagi setetes atau dua tetes CuSO4 0,01 N.

2) Uji Millon

Menambahkan 5 tetes reagen millon ke dalam 3 mL larutan protein, memanaskan campuran dengan menggunakan penangas air. Jika reagen terlalu banyak, maka warna akan hilang pada pemanasan.

3) Uji Ninhidrin

Menambahkan 0,5 mL laritan ninhidrin 0,1% ke dalam 2 mL larutan protein. Memanaskan campuran hingga mendidih menggunakan penangas air. Mengulangi percobaan dengan menggunakan 3 mL glisin sebagai pengganti larutan protein.

3.2 Sifat Protein

1) Sifat Amfoter Protein Uji dalam suasana asam

(8)

protein ke dalam larutan yang berwarna biru ini. Mencatat perubahan warna yang terjadi.

Uji dalam suasana basa

Menyiapkan 3 mL larutan NaOH 0,1 N dalam tabung reaksi. Menambahkan beberapa tetes indikator PP hingga warna larutan menjadi merah jambu. Menyiapkan 2 mL larutan protein dalam tabung reaksi yang lain dan menambahkan bertetes-tetes larutan NaOH di atas. Mencatat perubahan warna yang terjadi.

2) Pengendapan dengan Garam

Menjenuhkan 5 mL larutan protein dengan 3-5 mL larutan ammonium sulfat 30%, menambahkannya sedikit demi sedikit sambil mengaduk hingga melarut dan diperoleh larutan jenuh. Kemudian menyaring larutan jenuh. Menguji kelarutan dari endapan di dalam air. Menguji endapan dengan reagen Millon dan filtrat dengan uji Biuret.

3) Denaturasi Protein

(9)

IV. HASIL PENGAMATAN 4.1 Reaksi Warna Protein

Tabel 1. Hasil Pengamatan Percobaan Reaksi Warna Protein

No. Larutan Protein Uji Biuret Uji Millon Uji Ninhidrin

1. Putih telur ayam kampung

2. Putih telur ayam ras 3. Putih telur itik

tambak

4. Putih telur penyu (+)

(10)

abuan muda

Keterangan : (+) = positif mengandung protein terhadap uji tertentu (-) = tidak mengandung protein terhadap uji tertentu

Tabel 2. Hasil Pengamatan Percobaan Sifat Amfoter Protein

No. Larutan

Larutan berwarna ungu Larutan berwarna bias merah muda

3. Putih telur itik tambak

Larutan berwarna ungu Larutan berwarna merah muda (+)

5. Susu sapi murni Terbentuk endapan dan berwarna merah muda

Larutan berwarna merah muda keruh 6. Susu kedelai Membentuk 2 lapisan :

lapisan atas abu-abu (suspensi) dan lapisan bawah putih (gumpalan)

Larutan berwarna merah muda keruh

Tabel 3. Hasil Pengamatan Percobaan Pengendapan dengan Garam

(11)

(12)

Tabel 4. Hasil Pengamatan Percobaan Denaturasi Protein

1. Putih telur ayam kampung

2. Putih telur ayam ras

3. Putih telur itik tambak 4. Putih telur penyu Larutan + endapan

putih (+) 5. Susu sapi murni Terbentuk

gumpalan putih (+ 6. Susu kedelai Terbentuk endapan

putih (++)

5.1 Reaksi Warna Protein a) Uji Biuret.

(13)

basa pada larutan yang akan mendukung terbentuknya kompleks Cu2+_dengan gugus CO dan NH yang ditandai dengan munculnya warna ungu pada larutan setelah penamhahan CuSO4.

Pada percobaan diperoleh putih telur ayam kampung, putih telur ayam ras, putih telur itik tambak dan susu sapi murni memberikan warna ungu pada uji biuret yang menunjukkan bahwa sampel tersebut mengandung senyawa dengan tripeptida. Susu kedelai memberikan warna biru menunjukkan sampel mengandung senyawa dengan dipeptida. Tetapi untuk putih telur penyu memberikan reaksi yang negatif dalam uji Biuret ini yakni larutan berwarna putih keabu-abuan, yang berarti bahwa tidak mengandung ikatan peptida. Padahal seharusnya mengandung ikatan peptida, hal ini dapat terjadi dimungkinkan kurang murninya sampel.

Uji Biuret digunakan untuk mengetahui adanya ikatan peptida pada suatu bahan. Terbentuknya warna ungu pada larutan sampel karena terbentuk senyawa kompleks antara Cu2+_{dan N dari molekul ikatan peptida yaitu gugus peptida (} -CO-NH-). Makin banyak atau makin panjang ikatan peptida dalam protein maka warna ungu akan makin kuat intensitasnya.

Senyawa kompleks antara Cu2+_{dan N dari molekul ikatan peptida yaitu} gugus peptida ( -CO-NH-)

(14)

Jadi, dapat disimpulkan bahwa larutan sampel dari putih telur ayam kampung, putih telur ayam ras, putih telur itik tambak, susu kedelai dan susu sapi murni mengandung ikatan peptida.

b) Uji Millon.

Pereaksi Millon melibatkan penambahan senyawa Hg ke dalam protein sehingga pada penambahan logam ini akan menghasilkan endapan putih dari senyawa merkuri. Untuk protein yang mengandung tirosin atau triptofan penambahan pereaksi Millon memberikan warna merah.

Jika garam merkuri ditambahkan ke dalam protein, maka akan terjadi peristiwa koagulasi (penggumpalan), dimana protein akan menggumpal karena peristiwa denaturasi (perubahan struktur awal). Albumin (putih telur) terkoagulasi atau mengalami penggumpalan karena terjadinya denaturasi pada strukturnya, dimana jembatan sulfida S-S, direduksi untuk mendapatkan residu asam amino penyusun albumin.

(15)

Ketika percobaan, semua sampel larutan protein yang ditambahkan reagen Millon langsung membentuk gumpalan putih dan endapan merah bata. Dan setelah dipanaskan, warna merah dari endapan semakin tampak jelas. Pemanasan bertujuan agar larutan protein dengan reagen Millon semakin bereaksi secara sempurna sehingga warna endapan menjadi lebih jelas.

Endapan warna merah ini merupakan garam merkuri dari tirosin yang ternitarsi. Sampel larutan protein dari putih telur ayam kampung, putih telur itik tambak, putih telur penyu, susu sapi murni dan susu kedelai menunjukkan uji positif terhadap reagen Millon. Hal ini menyatakan bahwa asam amino tirosin terdapat pada sampel larutan protein tersebut. Untuk sampel putih telur ayam ras memberikan endapan berwarna putih dan abu-abu. Tetapi sampel ini masih memberikan uji positif karena sampel membentuk gumpalan putih saat ditambahkan reagen Millon hanya saja kandungan tirosin lebih sedikit dibandingkan dengan sampel lain atau dimungkinkan kurangnya pemanasan, mungkin juga reagen yang digunakan terlalu banyak.

Reaksi yang terjadi adalah:

c) Uji Ninhidrin.

Larutan yang mengandung asam amino akan menunjukkan uji positif terhadap larutan ninhidrin. Reaksi warna protein dengan ninhidrin menunjukkan positif bila memberikan warna biru atau ungu. Reaksi ini terjadi pada gugus amino bebas dari asam amino dengan ninhidrin. Melalui uji ninhidrin, asam amino yang mampu dioksidasi akan teroksidasi secara kualitatif sehingga akan dikeluarkan gas CO2.

Reagen ninhidrin merupakan reagen yang berguna untuk mendeteksi asam amino dan menetapkan konsentrasinya dalam larutan. Senyawa ini merupakan

(16)

hidrat dari triketon siklik, dan bila direaksikan dengan asam amino, menghasilkan zat warna ungu.

Uji warna dengan ninhidrin dijalankan dengan memanaskan larutan ninhidrin dengan asam amino dan menghasilkan warna biru-violet. Ninhidrin dalam air berada dalam kesetimbangan sebagai berikut :

Pada percobaan, larutan protein dari sampel putih telur ayam kampung, putih telur ayam ras, putih telur itik tambak, putih telur penyu, susu sapi murni dan susu kedelai serta glisin membentuk suatu lapisan atau larutan yang berwarna ungu pada uji Ninhidrin sehingga menunjukkan reaksi positif, maka dapat dikatakan bahwa larutan sampel mengandung asam amino.

Adapun reaksi umum secara keseluruhannya, adalah sebagai berikut :

Dan reaksi umum secara lebih terperinci adalah sebagai berikut : indona 1,2,3-trion ninhidrin

ninhidrin

+ + RCHO + CO2 + 3H2O + H+

anion ungu

(17)

Dari persamaan reaksi dapat dilihat bahwa hanya atom nitrogen dari zat warna ungu yang berasal dari asam amino, asam amino selebihnya terkonversi menjadi aldehida dan CO2. Tetapi zat warna ungu yang sama dihasilkan dari semua asam amino α dengan gugus amino primer. Jadi, dapat dikatakan bahwa dari semua larutan protein sampel mengandung asam amino dengan gugus amino primer, adapun asam amino-asam amino dengan gugus amino primer tersebut adalah glisin, alanin, valin, leusin, isoleusin, serin, treonin, sistein, treonin, sistein, metionin, fenilalanin, tirosin, triptofan, asam aspartat, asam glutamat, asparagin, glutamin, lisin, arginin dan histidin. Warna ungu yang dihasilkan setelah pemanasan dapat berbeda-beda. Dalam hal ini, intensitas warna yang dihasilkan berbanding lurus dengan konsentrasi asam amino yang ada.

a) Sifat Amfoter Protein

Pada percobaan sifat amfoter ini keenam sampel diuji dalam suasana asam dan suasana basa. Dalam uji suasana asam menggunakan akuades, HCl dan indikator Kongo. Indikator Kongo ini merupakan indikator pH dalam rentang pH asam.

(18)

Struktur protein tersusun oleh gabungan asam amino pada gugus karbonil dan asam amino dengan ikatan peptida. Adapun perubahan warna akibat dari konsentrasi ion H+_{yang tinggi mampu berikatan dengan ion –COO}-_sehingga terbentuk gugus –COOH. Dalam suasana asam molekul protein akan membentuk ion positif.

Dalam uji suasana basa menggunakan NaOH dan indikator PP. Ketika semua sampel larutan protein diuji dalam suasana basa memberikan perubahan warna menjadi larutan berwarna merah jambu yang mengindikasikan bahwa larutan bersifat basa. Dalam suasana basa konsentrasi ion OH-_{yang tinggi} mampu mengikat ion-ion H+_{pada gugus –NH3}+_{. Dalam suasana basa molekul} protein akan membentuk ion negatif.

Apabila asam amino larut dalam air, gugus karboksilat akan melepaskan ion H+_{, sedangkan gugus amina akan menerima ion H}+_{, seperti reaksi berikut:}

COOH -COO-_{+ H}+ -NH2 + H+ _-NH3+

Oleh adanya kedua gugus tersebut asam amino dalam larutan dapat membentuk ion yang bermuatan positif dan juga bermuatan negatif atau disebut juga ion amfoter (zwitterion), keadaan ion ini sangat tergantung pada pH larutan. Bila protein disebut senyawa amfoter.

Pada titik isolistrik protein mempunyai muatan positif dan negatif yang sama, sehingga tidak bergerak ke arah elektroda positif maupun negatif apabila ditempatkan di antara kedua elektroda tersebut. pH Isolistrik untuk Albumin telur 4,55-4,90, Kasein 4,6. Pada pH di atas titik isolistrik protein bermuatan negatif, sedangkan di bawah titik isolistrik protein bermuatan positif.

b) Pengendapan dengan garam

(19)

(20)

Berdasarkan hasil percobaan putih telur ayam kampung, putih telur ayam ras, putih telur itik tambak dan susu sapi murni terdapat endapan putih, hal ini menunjukkan protein terutama albumin dapat diendapkan dengan penambahan amoniumsulfat hingga jenuh. Sedangkan putih telur penyu tidak terbentuk endapan dan susu kedelai terbentuk gumpalan tetapi tidak mengendap (koloid).

Endapan diuji kelarutannya di dalam air. Endapan putih dari putih telur ayam kampung, ayam ras dan itik tambak dapat melarut. Ini karena albumin merupakan protein yang dapat larut dalam air begitu juga pada endapan susu sapi murni dapat melarut kembali. Sedangkan pada putih telur penyu dan susu kedelai tidak diuji kelarutan endapannya dalam air karena tidak terbentuk endapan.

Protein yang diendapkan dengan cara penambahan garam amonium sulfat tidak mengalami perubahan kimia hanya mengalami dehidratasi atau kehilangan air, jadi bila ditambahkan air lagi maka dapat dengan mudah melarut kembali. Pengendapan dengan cara ini bersifat reversibel.

Dari hasil uji endapan putih telur ayam kampung, ayam ras, itik tambak dan susu sapi murni dengan reagen Millon berturut-turut merubah warna endapan dari putih menjadi putih kekuningan, merah bata, krem dan merah bata. Hal ini menunjukkan bahwa protein tersebut mengandung tirosin atau triftopan, karena penambahan pereaksi Millon pada protein yang mengandung asam amino tersebut akan memberikan uji positif bila terbentuknya warna merah. Adapun warna yang tidak merah bata dimungkinkan kurangnya pemanasan, reagen yang digunakan terlalu banyak atau kandungan tirosin yang sedikit.

(21)

Maka dapat dikatakan bahwa pengendapan protein dengan cara menambahkan garam amonium sulfat tidak merusak struktur dari protein, hanya mengendapkan saja melalui dehidratasi protein (kehilangan air) serta reaksi ini bersifat reversibel sebab endapan dapat melarut kembali ketika ditambahkan air lagi. Ketika diuji dengan reagen Millon terhadap endapan ataupun biuret terhadap filtratnya masih memberikan hasil yang positif.

c) Denaturasi Protein

Perubahan konformasi alamiah menjadi suatu konformasi yang tidak menentu merupakan suatu proses yang disebut denaturasi. Perubahan bentuk sampel tersebut diakibatkan karena terjadinya denaturasi. Proses denaturasi bisa disebabkan karena pengaruh bahan-bahan kimia, tekanan tinggi, penyinaran sinar X dan ultraviolet serta pemanasan. Dalam percobaan ini denaturasi protein disebabkan karena penambahan bahan kimia yaitu asam asetat 1 N dan pemanasan.

Protein dengan penambahan asam atau pemanasan akan terjadi koagulasi pada pH iso-elektrik kelarutan protein sangat menurun atau mengendap. Protein yang terdenaturasi pada titik isolistriknya masih dapat larut pada pH di luar titik isolistrik tersebut.

Perubahan struktur yang diakibatkan proses denaturasi adalah perubahan konfigurasi protein dari bentuk α-heliks menjadi memanjang. Hal ini disebabkan rusaknya ikatan hidrogen dan ikatan non polar yang terjadi pada struktur berlipat dari protein. Adapun gambarnya dapat dilihat sebagai berikut :

(22)

umumnya sifat denaturasi protein bersifat irreversibel yaitu pengendapan tidak dapat diperoleh kembali protein asam dengan cara melarutkannya dalam air.

Ketika diuji dengan reagen Millon, endapan dari putih telur itik tambak, susu sapi murni dan susu kedelai menunjukkan hasil yang positif dengan memberikan warna merah. Artinya dalam endapan terdapat protein yang mengandung asam amino tirosin atau triptofan. Sedangkan endapan dari putih telur ayam kampung, putih telur ayam ras dan putih telur penyu memberikan hasil uji yang negatif yang berarti di dalam tidak mengandung protein akibat telah rusak oleh pemanasan. Denaturasi akibat pemanasan mengakibatkan perubahan struktur protein. Dengan berubahnya struktur protein maka aktivitas protein akan hilang.

Jadi, dapat disimpulkan bahwa baik penambahan senyawa kimia ataupun pemanasan dapat menyebabkan perubahan dari struktur protein atau terjadi denaturasi protein. Denaturasi akibat penambahan senyawa kimia dapat disebabkan karena terjadinya reaksi antara gugus-gugus yang ada dengan senyawa yang ditambahkan.

VI. KESIMPULAN

1) Berdasarkan hasil uji Biuret diketahui larutan sampel dari putih telur ayam kampung, putih telur ayam ras, putih telur itik tambak, susu kedelai dan susu sapi murni mengandung ikatan peptida.

2) Pada percobaan, larutan protein dari sampel putih telur ayam kampung, putih telur ayam ras, putih telur itik tambak, putih telur penyu, susu sapi murni dan susu kedelai serta glisin membentuk suatu lapisan atau larutan yang berwarna ungu pada uji Ninhidrin sehingga menunjukkan reaksi positif, maka dapat dikatakan bahwa larutan sampel mengandung asam amino.

(23)

4) Pengendapan protein dengan cara menambahkan garam amonium sulfat tidak merusak struktur dari protein, hanya mengendapkan saja melalui dehidratasi protein (kehilangan air) serta reaksi ini bersifat reversibel sebab endapan dapat melarut kembali ketika ditambahkan air lagi. Ketika diuji dengan reagen Millon terhadap endapan ataupun biuret terhadap filtratnya masih memberikan hasil yang positif.

VII. DAFTAR PUSTAKA

Arbianto, Purwo. 1993. Biokimia Konsep-Konsep Dasar. Bandung: FMIPA ITB. Fessenden dan Fessenden . 1995 . Kimia organik jilid 2 Edisi ketiga . Jakarta :

Erlangga.

Indro.2009.Protein(online).http://my.opera.com/sampahbermanfaat/blog/

index.dml/tag/PROTEIN. Diakses pada tanggal 13 Maret 2010.

Lehninger, Albert. 1982. Dasar-dasar Biokimia jilid 1. Jakarta : Erlangga.

Poedjiadi, Anna dan F. M. Titin Supriyanti. 2006. Dasar-Dasar Biokimia. Jakarta: UI-Press.

Rismaka. 2009. Uji Kualitatif Protein dan Asam Amino (online).

http://blog.rismaka.net/. Diakses pada tanggal 15 Maret 2010.

Syahmani dan Sudarsih. 2011. Petunjuk Praktikum Biokimia. Banjarmasin: FKIP UNLAM. (Tidak dipublikasikan).

Thenawijaya, Maggy. 1982. Dasar-Dasar Biokimia. Jilid 1. Jakarta: Erlangga.

(24)

Pertanyaan dan jawaban praktikum A. Reaksi Warna Protein

1) Uji Biuret

(1) Apa warna yang ditunjukkan pada uji Biuret pada percobaan di atas? Mengapa warna tersebut terjadi?

Jawab : Reaksi positif ditandai dengan terbentuknya warna ungu karena terbentuk senyawa kompleks antara Cu2+_{dan N dari molekul ikatan} peptida. Banyaknya asam amino yang terikat pada ikatan peptida mempengaruhi warna reaksi ini.

(2) Tuliskan persamaan reaksi pada hasil uji Biuret? Jawab :

(3) Apa fungsi penambahan NaOH pada uji Biuret?

Jawab : Penambahan NaOH ini bertujuan untuk menciptakan suasana basa pada larutan yang akan mendukung terbentuknya kompleks Cu2+ dengan gugus CO dan NH yang ditandai dengan munculnya warna ungu pada larutan setelah penamhahan CuSO4.

(4) Akankah asam amino glisin memberikan uji Biuret yang positif? Jelaskan.!

(25)

2) Uji Millon

(1) Apa yang terjadi jika garam merkuri ditambahkan ke dalam protein? Jawab :Jika garam merkuri ditambahkan ke dalam protein, maka akan terjadi peristiwa koagulasi (penggumpalan), dimana protein akan menggumpal karena peristiwa denaturasi (perubahan struktur awal). (2) Mengapa larutan albumin terkoagulasi? Larutan uji mana yang

memberikan uji negatif ? Mengapa?

Jawab : Albumin (putih telur) terkoagulasi atau mengalami penggumpalan karena terjadinya denaturasi pada strukturnya, dimana jembatan sulfida S-S, direduksi untuk mendapatkan residu asam amino penyusun albumin.

Larutan uji dalam percobaan tidak ada yang memberikan uji negatif hanya saja pada putih telur ayam ras ketika diuji dengan reagent Millon membentuk endapan putih dan abu-abu tetapi tidak memberikan endapan berwarna merah setelah dipanaskan. Hal ini terjadi mungkin karena sangat sedikit sekali larutan mengandung tirosin atau triptofan. 3) Uji Ninhidrin

(1) Warna apa yang terbentuk pada uji Ninhidrin?

Jawab : Reaksi warna protein dengan ninhidrin menunjukkan positif bila memberikan warna biru atau ungu.

(2) Tulis persamaan reaksi yang terjadi pada uji Ninhidrin?

Jawab : Adapun reaksi umum secara keseluruhannya, adalah sebagai berikut :

(3) Gugus apa yang memberikan uji positif pada uji Ninhidrin?

Jawab : Reagen ninhidrin merupakan reagen yang berguna untuk mendeteksi asam amino dan menetapkan konsentrasinya dalam larutan.

ninhidrin

+

anion ungu

(26)

Senyawa ini merupakan hidrat dari triketon siklik, dan bila direaksikan dengan asam amino, menghasilkan zat warna ungu.

Tetapi zat warna ungu yang sama dihasilkan dari semua asam amino α dengan gugus amino primer adapun asam amino-asam amino dengan gugus amino primer tersebut adalah glisin, alanin, valin, leusin, isoleusin, serin, treonin, sistein, treonin, sistein, metionin, fenilalanin, tirosin, triptofan, asam aspartat, asam glutamat, asparagin, glutamin, lisin, arginin dan histidin.

B. Sifat Protein

1) Sifat Amfoter Protein

(1) Apakah zwitterions itu? Mengapa disebut sebagai senyawa amfoter? Gambarkan struktur umumnya.

Jawab :

Zwitterions yaitu senyawa yang dapat membentuk ion yang bermuatan positif dan juga bermuatan negatif. Keadaan senyawa ini sangat tergantung pada pH larutan.

Protein+ _H+₊+_protein

-Kation ion zwitter

+_protein- _H+_{+ protein} -ion zwitter anion

Apabila asam amino larut dalam air, gugus karboksilat akan melepaskan ion H+_{, sedangkan gugus amina akan menerima ion H}+_, seperti reaksi berikut:

(27)

bila ditambahkan asam ke dalam larutan asam amino, maka konsentrasi ion H+_{yang tinggi mampu berikatan dengan ion –COO}-_sehingga terbentuk gugus –COOH sehingga asam amino akan terdapat dalam bentuk (II).

Oleh adanya kedua gugus tersebut asam amino dalam larutan dapat membentuk ion yang bermuatan positif dan juga bermuatan negatif atau disebut juga ion amfoter (zwitterion).

(2) Jelaskan sifat amfoter protein berdasarkan definisi asam basa Bronsted-Lowry.

Jawab :

Berdasarkan definisi asam basa Bronsted-Lowry sifat amfoter protein, yaitu dapat bersifat sebagai asam dan memberikan proton kepada basa kuat, atau dapat bersifat sebagai basa dan menerima proton dari basa kuat.

2) Pengendapan dengan garam

(1) Apa tujuan dilakukannya uji Millon pada endapan yang dihasilkan pada percobaan pengendapan dengan garam?

Jawab :

Untuk menunjukkan bahwa protein tersebut mengandung tirosin atau triftopan, karena penambahan pereaksi Millon pada protein yang mengandung asam amino tersebut akan memberikan uji positif bila terbentuknya warna merah.

(28)

28

Jawab :

Untuk menunjukkan bahwa filtrat sampel mengadung ikatan peptida. Hal ini terjadi karena terbentuknya senyawa kompleks antara Cu2+_{dan N} dari molekul ikatan peptida.

3) Denaturasi Protein

(1) Jelaskan mengenai denaturasi protein? jawab :

Proses denaturasi adalah perubahan konfigurasi protein dari bentuk α-heliks menjadi memanjang. Hal ini disebabkan rusaknya ikatan hidrogen dan ikatan non polar yang terjadi pada struktur berlipat dari protein. Dapat diilustrasikan pada gambar berikut :

Protein dengan penambahan asam atau pemanasan akan terjadi koagulasi pada pH iso-elektrik (pH larutan tertentu biasanya berkisar antara 4–4,5, dimana protein mempunyai muatan positif dan negatif sama, sehingga saling menetralkan) kelarutan protein sangat menurun atau mengendap.

Proses denaturasi bisa disebabkan karena pengaruh bahan-bahan kimia, tekanan tinggi, penyinaran sinar X dan ultraviolet serta pemanasan.

LAMPIRAN II

Foto-foto Percobaaan Protein dan Asam Amino a. Gambar Sampel yang Digunakan

(29)

b. Gambar Percobaan Reaksi Warna Protein

(1) Uji Biuret

Gambar 3. Hasil Uji Biuret Putih Telur Ayam Kampung

Gambar 4. Hasil Uji Biuret Putih Telur Ayam Ras

Gambar 5. Hasil Uji Biuret Putih Telur Itik Tambak

Gambar 6. Hasil Uji Biuret

(30)

(2) Uji Millon

Gambar 9. Hasil Uji Millon Putih Telur Ayam Kampung

Gambar 10. Hasil Uji Millon Putih Telur Ayam Ras

Gambar 11. Hasil Uji Millon Putih Telur Itik Tambak

Gambar 12. Hasil Uji Millon

Putih Telur Penyu Gambar 13. Hasil Uji Millon Susu Sapi Gambar 14. Hasil Uji Millon Susu Kedelai Gambar 7. Hasil Uji Biuret

(31)

(3) Uji Ninhidrin

Gambar 15. Hasil Uji Ninhidrin Putih Telur Ayam Kampung

Gambar 16. Hasil Uji Ninhidrin Putih Telur Ayam Ras

Gambar 17. Hasil Uji Ninhidrin Putih Telur Itik Tambak

Gambar 18. Hasil Uji Ninhidrin Putih Telur Penyu

Gambar 19. Hasil Uji Ninhidrin Susu Sapi

Gambar 20. Hasil Uji Ninhidrin Susu Kedelai

(32)

4. Sifat Amfoter Protein

Dalam suasana asam

Gambar 22. Susu kedelai

Gambar 23. Susu sapi murni

Gambar 24. Albumin ayam kampung

Gambar 25. Albumin ayam ras

Gambar 26. Albumin itik

tambak

(33)

Dalam Suasana Basa

Gambar 28. Susu kedelai

Gambar 29. Susu sapi murni

Gambar 30. Albumin ayam kampung

Albumin ayam ras Albumin itik tambak

Albumin penyu Albumin ayam ras Albumin itik

tambak

Gambar 33. Albumin penyu

Gambar 31. Albumin ayam ras

Gambar 32. Albumin itik

(34)

LAMPIRAN III FLOWCHART

PROTEIN & ASAM AMINO

A. Reaksi Warna Protein 1) Uji Biuret

NB : * larutan protein dari putih telur ayam ras, putih telur ayam kampung, putih telur penyu, putih telur itik tambak, susu sapi murni dan susu kedelai.

2) Uji Millon

-Jika reagen terlalu banyak, maka warna akan hilang pada pemanasan. 3) Uji Ninhidrin

2 mL larutan protein* + 5 tetes reagen Millon

- Memanaskan campuran dengan menggunakan penangas air

Campuran berwarna Campuran tidak berwarna

1 mL NaOH 2,5 N + 2 mL larutan protein + setetes CuSO₄ 0,01 M

Larutan berwarna Larutan tidak berwarna + CuSO₄ 0,01 M

- Menambahkan setetes atau dua tetes

(35)

-Mengulangi percobaan dengan menggunakan 3 mL glisin sebagai pengganti larutan protein.

B. Sifat Protein

1) Sifat Amfoter Protein Uji dalam suasana asam

2 mL larutan protein* + 0, 5 mL larutan ninhidrin 0,1%

- Memanaskan campuran hingga mendidih menggunakan penangas air

Campuran berwarna Campuran tidak berwarna

3 mL akuades + 1 tetes HCl 1N + 3 tetes indikator Kongo

- Memasukkan ke dalam tabung reaksi

Larutan berwarna biru

2 mL larutan protein* + larutan berwarna biru

- Mencampurkan

(36)

36

-Mencatat perubahan warna yang terjadi

Uji dalam suasana basa

-Mencatat perubahan warna yang terjadi

2) Pengendapan dengan Garam

Protein dan asam amino

*5 mL larutan protein + **3-5 mL larutan ammonium sulfat 30%

Menjenuhkan

Residu Filtrat

- Menguji dengan uji biuret

- Menguji dengan reagen milon Larutan berwarna/tidak

Larutan jenuh

Menyaring

- Membagi dua

Residu 1 Residu 2

- Menguji kelarutan di dalam 3 mL larutan NaOH 0,1N + beberapa tetes indikator PP

- Memasukkan ke dalam tabung reaksi

Larutan berwarna merah jambu

2 mL larutan protein* + tetesan larutan NaOH berwarna merah jambu

- Mencampurkan

(37)

(38)

3) Denaturasi Protein

*5 mL larutan protein + 2 tetes asam asetat 1 M

Meletakkan tabung reaksi ke dalam air mendidih selama 5 menit

Larutan + Endapan

Mengambil endapan yang terbentuk dengan batang pengaduk

Filtrat Endapan

- Menguji dengan reagen milon

Larutan berwarna/tidak - Membagi dua

Endapan 1 Endapan 2

- Menguji kelarutan di dalam air