KAJIAN KEBERADAAN PARASIT DARAH (
ANAPLASMA
,
BABESIA
,
THEILERIA
) DAN GAMBARAN FISIOLOGIS
SAPI BAKALAN IMPOR ASAL AUSTRALIA
IMELDA KARTINI TEFI
SEKOLAH PASCASARJANA INSTITUT PERTANIAN BOGOR
BOGOR 2015
PERNYATAAN MENGENAI TESIS DAN
SUMBER INFORMASI SERTA PELIMPAHAN HAK CIPTA*
Dengan ini saya menyatakan bahwa tesis berjudul Kajian Keberadaan Parasit Darah (Anaplasma, Babesia, Theileria) dan Gambaran Fisiologis Sapi Bakalan Impor Asal Australia adalah benar karya saya dengan arahan dari komisi pembimbing dan belum diajukan dalam bentuk apapun kepada perguruan tinggi mana pun. Sumber informasi yang berasal atau dikutip dari karya yang diterbitkan maupun tidak diterbitkan dari penulis lain telah disebutkan dalam teks dan dicantumkan dalam Daftar Pustaka di bagian akhir tesis ini.Dengan ini saya melimpahkan hak cipta dari karya tulis saya kepada Institut Pertanian Bogor.
Bogor, Februari 2015 Imelda Kartini Tefi NIM B251130064
RINGKASAN
IMELDA KARTINI TEFI. Kajian Keberadaan Parasit Darah (Anaplasma, Babesia, Theileria) dan Gambaran Fisiologis Sapi Bakalan Impor Asal Australia. Dibimbing oleh FADJAR SATRIJA dan UMI CAHYANINGSIH.
Importasi sapi bakalan sebagai pemenuhan kebutuhan daging sapi meningkatkan risiko masuknya penyakit. Beberapa penyakit disebabkan oleh parasit darah (Anaplasma, Babesia dan Theileria) dapat menyebabkan penurunan produksi ternak. Penelitian ini bertujuan untuk mengindentifikasi parasit darah dan pengaruhnya terhadap kondisi fisiologis sapi bakalan impor serta menduga prevalensi penyakit.
Desain penelitian adalah kajian lintas seksional dengan besaran sampel sebanyak 280 sampel. Pengambilan sampel dilakukan Agustus hingga September berupa sampel ulas darah, darah dan data kondisi fisiologis sapi bakalan. Pengambilan sampel dilakukan secara acak sederhana pada Instalasi Karantina Hewan (IKH) di wilayah pemasukan Pelabuhan Tanjung Priok. Preparat ulas darah dibuat pada gelas objek, difiksasi dengan metanol, diberi pewarnaan Giemsa 10% dan diperiksa dengan mikroskop perbesaran 1000x. Jumlah parasit dihitung pada 500 eritrosit. Temperatur tubuh, pulsus, frekuensi nafas dan berat badan sapi dihitung pada saat pengambilan sampel darah. Profil hematologi yang terdiri dari nilai hemoglobin, jumlah eritrosit dan nilai hematokrit dihitung dengan menggunakan automated hematology analyzer. Data yang diperoleh berupa prevalensi dan kondisi fisiologis sapi bakalan. Analisis statistik dilakukan secara deskriptif dan digunakan uji T untuk membandingkan data kontinyu berdasarkan dua kategori.
Hasil penelitian menunjukkan bahwa prevalensi tertinggi disebabkan oleh Theileria (62.14%), kemudian Anaplasma (60.36%) dan Babesia (42.86%) dengan tingkat parasitemia berkisar antara 0.2% - 1% dan terjadi multi infeksi (62.45%). Analisis statistik untuk membandingkan data temperatur tubuh, pulsus, frekuensi nafas, berat badan, nilai hemoglobin, jumlah eritrosit dan nilai hematokrit antara sapi bakalan yang terinfeksi dan tidak terinfeksi tidak menunjukkan perbedaan nyata (p>0.05). Kejadian penyakit bersifat subklinis namun sapi bakalan tersebut dapat menjadi pembawa agen penyakit.
.
SUMMARY
IMELDA KARTINI TEFI. Study The Existence of Blood Parasites (Anaplasma, Babesia, Theileria) and Physiological Profiles of Australian Imported Feeder Cattle. Supervised by FADJAR SATRIJA and UMI CAHYANINGSIH.
Feeder cattle importation as a solution for the fulfillment of beef demand increases risk of entry the disease. Some diseases caused by blood parasites (Anaplasma, Babesia, Theileria) resulted production losses in livestocks. This study aimed to identify blood parasites and its influence on the physiological condition of Australian imported feeder cattle and also to estimate the prevalence of diseases.
Cross-sectional study was performed in this research with 280 samples of sample size. Sampling was conducted in August to September and form of sample was blood smear, whole blood, and physiological condition data. Simple random sampling was performed at the Animal Quarantine Installation in entrance area of Tanjung Priok Port. Blood smear were made on a glass object, fixated in methanol, stained with 10% Giemsa and observed using a microscope with 1000x magnification. The amount of blood parasites were counted on 500 red blood cells. Body temperature, heart rates, respiratory rates and body weight were measured when collecting blood sample. Blood profiles consist of hemoglobine values, erythrocytes count and hematocrit values were measured by automated hematology analyzer. Obtained data were prevalence of diseases and physiological condition of feeder cattle. Statistical analysis was done descriptively and two categories of continuous data were compared using t test
Results of the study revealed that the highest prevalence caused by Theileria (62.14%), followed by Anaplasma (60.36%) and Babesia (42.86%) with the level of parasitemia ranged from 0.2% to 1% and occured multi infection (62.45%). Statistical analysis to compare the body temperature, heart rates, respiratory rates, body weight, hemoglobine values, erythrocytes and hematocrit values showed no significant differences (p>0.05) between infected and uninfected cattle. Disease were proceeded sub clinically while the feeder cattle were capable of carrying disease agents.
© Hak Cipta Milik IPB, Tahun 2015
Hak Cipta Dilindungi Undang-Undang
Dilarang mengutip sebagian atau seluruh karya tulis ini tanpa mencantumkan atau menyebutkan sumbernya. Pengutipan hanya untuk kepentingan pendidikan, penelitian, penulisan karya ilmiah, penyusunan laporan, penulisan kritik, atau tinjauan suatu masalah; dan pengutipan tersebut tidak merugikan kepentingan IPB Dilarang mengumumkan dan memperbanyak sebagian atau seluruh karya tulis ini dalam bentuk apa pun tanpa izin IPB
Tesis
sebagai salah satu syarat untuk memperoleh gelar Magister Sains
pada
Program Studi Kesehatan Masyarakat Veteriner
KAJIAN KEBERADAAN PARASIT DARAH (
ANAPLASMA
,
BABESIA
,
THEILERIA
) DAN GAMBARAN FISIOLOGIS
SAPI BAKALAN IMPOR ASAL AUSTRALIA
SEKOLAH PASCASARJANA INSTITUT PERTANIAN BOGOR
BOGOR 2015
Judul Tesis : Kajian Keberadaan Parasit Darah (Anaplasma, Babesia, Theileria) dan Gambaran Fisiologis Sapi Bakalan Impor Asal Australia Nama : Imelda Kartini Tefi
NIM : B251130064
Disetujui oleh Komisi Pembimbing
Drh Fadjar Satrija, MSc PhD Ketua
Prof Dr Drh Hj Umi Cahyaningsih, MS Anggota
Diketahui oleh
Ketua Program Studi
Kesehatan Masyarakat Veteriner
Dr med vet Drh Denny Widaya Lukman, MSi
Dekan Sekolah Pascasarjana
Dr Ir Dahrul Syah, MScAgr
PRAKATA
Puji dan syukur penulis panjatkan kepada Tuhan Yang Maha Kuasa atas segala karunia-Nya sehingga tesis yang berjudul “ Kajian Keberadaan Parasit Darah (Anaplasma, Babesia, Theileria) dan Gambaran Fisiologis Sapi Bakalan Impor Asal Australia” berhasil diselesaikan. Tesis ini disusun sebagai salah satu syarat menyelesaikan studi di Sekolah Pascasarjana Institut Pertanian Bogor. Penelitian ini dilakukan sejak bulan Agustus hingga Oktober 2014 yang bertujuan untuk mengetahui keberadaan parasit darah dan gambaran fisiologis pada sapi impor yang berasal dari Australia.
Terima kasih penulis ucapkan kepada Bapak Drh Fadjar Satrija, MSc PhD dan Ibu Prof Dr Drh Hj Umi Cahyaningsih, MS selaku pembimbing yang senantiasa memberi dorongan semangat dan mengorbankan waktu dalam memberi bimbingan bagi penulis sampai selesainya tesis ini. Bapak Dr Drh Yusuf Ridwan, MSi selaku penguji luar komisi yang telah meluangkan waktunya untuk menelaah tesis ini. Bapak Dr med vet Drh Denny Widaya Lukman, MSi sebagai ketua Program Studi Kesehatan Masyarakat Veteriner yang telah banyak meluangkan waktu untuk membimbing, memberi arahan serta nasehat kepada kami dan seluruh staf pengajar dan pegawai di Kesehatan Masyarakat Veteriner yang telah membimbing dan memberikan semangat penulis.
Di samping itu, penghargaan penulis sampaikan kepada Badan karantina Pertanian yang telah memberikan beasiswa, Bapak Drh Sriyanto, MSi PhD sebagai Kepala Bidang Karantina Hewan beserta seluruh pegawai Balai Besar Karantina Pertanian Tanjung Priok yang telah membantu selama pengumpulan data. Teman-teman KMV angkatan 2013 (Anin, Yasmin, Hanif, Zulfikhar, Rifky, Intarti, Syahdu, Saimah, Citra, Ambar, Leo, Kamil, Sumitro, Aditya, Heru, Santo, Winda, Doni, Isti) yang telah bersama-sama dalam pembelajaran kita.
Ungkapan terima kasih juga disampaikan kepada Bapak Mathias Tefi, Ibu Suwarni, suamiku Yunus, anakku Laras, adik-adikku Tesar, Lia dan Fajar, atas segala doa dan bantuannya.
Semoga karya ilmiah ini bermanfaat.
Bogor, Februari 2015 Imelda kartini Tefi
DAFTAR ISI
DAFTAR TABEL vi DAFTAR GAMBAR vi DAFTAR LAMPIRAN vi 1 PENDAHULUAN 1 Latar Belakang 1 Perumusan Masalah 2 Tujuan Penelitian 2 Manfaat Penelitian 2 Hipotesis 2 2 TINJAUAN PUSTAKA 3 Anaplasmosis 3 Babesiosis 4 Theileriosis 5Pemeriksaan Kondisi Fisiologis 6
3 METODE 7
Waktu dan Tempat Penelitian 7
Metode Pengambilan Sampel dan Besaran Sampel 7
Metode Pengambilan Darah 8
Metode Deteksi Parasit Darah 8
Metode Pemeriksaan Profil Hematologis 8
Metode Pengambilan Data Kondisi Fisiologis Sapi 8
Kerangka Konsep 9
Analisis Data 9
4 HASIL DAN PEMBAHASAN 9
Pengambilan Sampel 9
Identifikasi Parasit Darah 10
Prevalensi Anaplasmosis, Babesiosis dan Theileriosis 11
Proporsi Infeksi Parasit Darah 12
Persentase Parasitemia 13
Kondisi Fisiologis Sapi 14
5 SIMPULAN DAN SARAN 17
Simpulan 17
Saran 17
DAFTAR PUSTAKA 17
LAMPIRAN 21
DAFTAR TABEL
1 Pengambilan sampel darah dari enam Instalasi Karantina
Hewan (IKH) 9
2 Prevalensi anaplasmosis, babesiosis, theileriosi pada sapi bakalan
asal Australia Agustus-September 2014 11
3 Proporsi infeksi tunggal dan multi infeksi pada sapi bakalan asal
Australia Agustus-September 2014 12
4 Proporsi multi infeksi parasit darah pada sapi bakalan asal Australia Agustus-September 2014Hasil uji komparatif uji cepat komersial dengan uji konvensional
12 5 Persentase parasitemia pada sapi bakalan asal Australia
Agustus -September 2014 13
6 7
Nilai hemoglobin, jumlah eritrosit dan hematokrit sapi bakalan asal Australia
Temperatur tubuh, pulsus, frekuensi nafas dan berat badan sapi bakalan asal Australia
14 15
DAFTAR GAMBAR
1 Parasit darah dalam eritrosit 10
DAFTAR LAMPIRAN
1 2 3 4 5 6Prevalensi anaplasmosis pada sapi bakalan asal Australia Agustus - September 2014
Prevalensi babesiosis pada sapi bakalan asal Australia Agustus - September 2014
Prevalensi theileriosis pada sapi bakalan asal Australia Agustus - September 2014
Proporsi parasit darah pada sampel ulas darah sapi bakalan asal Australia Agustus - September 2014
Proporsi multi infeksi parasit darah pada sampel ulas darah sapi bakalan asal Australia Agustus - September 2014
Hasil uji T tidak berpasangan
21 21 21 22 22 22
1
PENDAHULUAN
Latar BelakangDaging sapi merupakan salah satu sumber protein hewani yang penting bagi manusia. Menurut data Direktorat Jenderal Peternakan dan Kesehatan Hewan, kebutuhan daging sapi dan kerbau nasional tahun 2012 untuk konsumsi dan industri sebanyak 484 000 ton, sedangkan ketersediaannya sebanyak 399 000 ton (82.5%) dicukupi dari sapi lokal, sehingga terdapat kekurangan penyediaan sebesar 85 000 ton (17.5%). Kekurangan ini dipenuhi dari impor berupa sapi bakalan sebanyak 283 000 ekor (setara dengan daging 51 000 ton) dan impor daging sapi beku sebanyak 34 000 ton. Ketersediaan untuk memenuhi konsumsi tersebut diperoleh dari pemotongan ternak sapi dan kerbau lokal dari sentra utama populasi dan produksi Indonesia khususnya Jawa Barat, Banten, Nusa Tenggara Timur, Nusa Tenggara Barat, Bali, Jawa Timur, Jawa Tengah, Daerah Istimewa Yogyakarta, Lampung dan Sulawesi Selatan. Kekurangan penyediaan konsumsi dicukupi melalui impor sapi bakalan dari Australia dan daging beku terutama dari Australia dan Selandia Baru (DITJEN PKH 2012). Indonesia pada tahun 2013 telah mengimpor sapi bakalan dan sapi siap potong melalui Pelabuhan Tanjung Priok sejumlah 250 851 ekor sapi. Menurut Kementrian Pertanian (Kementan) dalam Peraturan Menteri Pertanian Republik Indonesia Nomor 113 tahun 2013, sapi bakalan adalah sapi bukan bibit yang mempunyai sifat unggul untuk dipelihara selama kurun waktu tertentu guna tujuan produksi daging dan sapi siap potong adalah sapi potong yang layak untuk dipotong. Jumlah rincian importasi adalah 172 799 ekor sapi bakalan dan 78 052 ekor sapi siap potong (BBKP Tanjung Priok 2013). Importasi sapi ke Indonesia dapat meningkatkan risiko masuknya penyakit akibat Anaplasma, Babesia dan Theileria. Kementan lewat Keputusan Menteri Pertanian Nomor 3238 tahun 2009 menggolongkan ketiga agen penyakit tersebut dalam Hama Penyakit Hewan Karantina (HPHK) golongan II. Ketiga agen penyakit tersebut meskipun telah dinyatakan ada dalam wilayah Republik Indonesia dan telah diketahui penanganannya, namun tetap harus dicegah pemasukan dan penyebarannya.
Anaplasmosis pada sapi disebabkan oleh rickettsia intraeritrositik dari genus Anaplasma yang dapat terjadi pada ternak baik pada domba dan sapi. Gejala yang terjadi, demam selama 4 sampai 10 hari, anoreksia, penurunan berat badan, lesu, batuk dan peningkatan frekuensi pernapasan dan denyut nadi, aborsi, stillbirth, penurunan produksi susu dan kualitas semen (CFSPH 2013). Babesiosis adalah penyakit akibat infeksi protozoa parasitik genus Babesia dengan gejala pada hewan adalah anoreksia, demam, anemia, peningkatan frekuensi pernafasan dan denyut nadi, ikterus, diare dan konstipasi, gangguan pernafasan. Demam yang terjadi dapat mengakibatkan aborsi dan penurunan fertilitas sperma (CFSPH 2008). Theileriosis adalah penyakit akibat infeksi protozoa dari genus Theileria. Theileria merupakan parasit intraseluler obligat. Gejala klinis yang terjadi adalah demam, anoreksia, penurunan produksi susu dan berat badan, gangguan saluran pernafasan, terhambatnya pertumbuhan badan dan produksi, terjadi ikterus, anemia dan aborsi (CFSPH 2009).
Anaplasma, Babesia dan Theileria merupakan parasit darah yang penyebarannya didistribusikan oleh caplak (tickborne disease) yang secara global
2
berdampak pada kesehatan ternak dan perekonomian. Hasil penelitian parasit darah dan pengaruhnya terhadap kondisi fisiologis sapi yang diimpor dari Australia diperlukan untuk memberikan informasi tentang kejadian penyakit dan untuk penetapan tindakan karantina yang diperlukan untuk mencegah masuk dan tersebarnya penyakit.
Perumusan Masalah
Importasi sapi bakalan asal Australia dapat meningkatkan risiko pemasukan agen penyakit seperti Anaplasma, Babesia dan Theileria yang termasuk dalam HPHK golongan II yang telah dinyatakan ada dalam wilayah Republik Indonesia. Anaplasma, Babesia dan Theileria merupakan parasit darah yang keberadaannya dapat berpengaruh pada kesehatan ternak. Berdasarkan latar belakang maka dapat dirumuskan permasalahan yaitu:
1. Apakah agen penyakit Anaplasma, Babesia dan Theileria terdapat pada sapi bakalan impor?
2. Berapakah prevalensi kejadian anaplasmosis, babesiosis dan theileriosis pada sapi bakalan impor?
3. Apa pengaruhnya terhadap kondisi fisiologis sapi bakalan impor yang terinfeksi oleh Anaplasma, Babesia dan Theileria?
Tujuan Penelitian
Dari perumusan masalah, maka tujuan penelitian ini adalah untuk :
1. Mengidentifikasi agen penyakit Anaplasma, Babesia dan Theileria pada sapi bakalan impor.
2. Menduga prevalensi kejadian anaplasmosis, babesiosis dan theileriosis pada sapi bakalan impor.
3. Mengidentifikasi pengaruh akibat infeksi Anaplasma, Babesia dan Theileria
pada kondisi fisiologis sapi bakalan impor.
Manfaat Penelitian
1. Memperoleh data tentang kejadian anaplasmosis, babesiosis dan theileriosis pada sapi bakalan impor.
2. Memberikan informasi tentang gambaran fisiologis sapi bakalan impor yang terinfeksi parasit darah (Anaplasma, Babesia dan Theileria).
3. Sebagai acuan dalam penetapan tindakan karantina yaitu upaya pencegahan masuk dan menyebarnya agen penyakit Anaplasma, Babesia dan Theileria.
Hipotesis
Australia merupakan negara yang belum bebas dari anaplasmosis, babesiosis dan theileriosis. Adanya parasit darah (Anaplasma, Babesia dan Theileria) akan berpengaruh pada kondisi fisiologis sapi bakalan impor. Masuknya sapi bakalan
3
impor yang terinfeksi parasit darah (Anaplasma, Babesia dan Theileria) akan berdampak pada status kesehatan dan penyakit ternak di Indonesia.
2
TINJAUAN PUSTAKA
Anaplasmosis
Menurut National Center for Biotechnology Information (NCBI) Taxonomy Database (2014), Anaplasma termasuk dalam bakteri, filum Proteobacteria, kelas
AlphaProteobacteria, ordo Rickettsiales dan famili Anaplamataceae. Spesies dari genus Anaplasma yaitu Anaplasma phagocytophilum, A.platys (sebelumnya
E.platys), A.marginale (dan A.marginale subsp. Centrale), A.bovis (sebelumnya
E.bovis) dan A.ovis (CFSPH 2013).A.marginale dan A.centrale menginfeksi hewan ruminansia besar dan dikenal sebagai penyebab umum anaplasmosis pada sapi dan tersebar luas di seluruh dunia terutama pada daerah tropis dan subtropis. A.bovis
menginfeksi sapi dan juga hewan mamalia lainnya, terdeteksi di Brazil, Amerika utara, Afrika dan Jepang. A.phagocytophilum merupakan penyebab anaplasmosis pada manusia, A.platys penyebab umum anaplasmosis pada anjing dan A.ovis
penyebab anaplasmosis pada hewan ruminansia kecil seperti kambing dan domba
(Rymaszewska & Grenda 2008).
Eritrosit merupakan predileksi genus Anaplasma dan di dalam sel terdapat benda inklusi berisi empat hingga delapan rickettsia. Masa inkubasi bervariasi tergantung jumlah organisme yang menginfeksi dan biasanya berkisar dari 7 hingga 60 hari dengan rata-rata 28 hari. Saat eritrosit terinfeksi terdeteksi terlihat jumlah eritrosit yang berisi parasit meningkat. Eritrosit terinfeksi akan difagosit oleh sel retikuloendotelial sehingga gejala yang terjadi adalah anemia dan ikterus ringan atau berat tanpa hemoglobinemia dan hemoglobinuria. Gejala klinis lain adalah demam, penurunan berat badan, aborsi, lesu, dan terjadi kematian hewan berumur lebih dari 2 tahun. Sapi carrier memiliki imunitas dan tahan terhadap penyakit dan pendedahan. Sapi carrier akan menjadi reservoir bagi caplak untuk melakukan transmisi mekanik maupun biologik. Transmisi Anaplasma dapat dilakukan secara mekanis yaitu lewat gigitan lalat dan biologis melalui caplak. Transmisi mekanik juga sering terjadi melalui sisa darah yang terkontaminasi lewat jarum, gergaji
dehorning, penjepit hidung, instrumen tato, alat tagging telinga dan instrumen pengebirian. Transmisi mekanik oleh Arthropoda telah dilaporkan yaitu transmisi oleh Diptera pengisap darah dari genus Tabanus, Stomoxys dan nyamuk. Transmisi oleh caplak dapat terjadi pada tahap ke tahap dalam siklus hidup caplak (transstadial) atau beberapa kali di dalam suatu tahap siklus hidup caplak (intrastadial). Siklus perkembangan Anaplasma pada caplak kompleks dan dikoordinasikan dengan siklus makan caplak. Eritrosit yang terinfeksi dibawa caplak melalui darah. Setelah perkembangan Anaplasma dalam sel usus caplak maka banyak jaringan caplak terinfeksi termasuk kelenjar ludah. Pada setiap lokasi infeksi pada caplak, Anaplama berkembang dalam vakuola atau koloni. Bentuk pertama dari Anaplasma dalam koloni adalah bentuk sel retikulat (bentuk vegetatif) yang berkembang biak dengan pembelahan biner membentuk koloni besar yang dapat berisi ratusan organisme. Bentuk sel retikulat kemudian berubah dalam
4
bentuk sel berinti padatyang merupakan bentuk infektif dan dapat bertahan hidup di luar sel inang. Sapi terinfeksi Anaplasma ketika dalam bentuk sel berinti padat yang ditransmisikan saat proses makan caplak melalui kelenjar ludah (Kocan et al. 2003).
Identifikasi agen dilakukan dengan pemeriksaan mikroskopis preparat ulas darah atau organ yang diwarnai dengan Giemsa yang merupakan metode yang paling umum untuk mengidentifikasi Anaplasma pada hewan yang secara klinis menunjukkan gejala. A.marginale tampak padat, bulat, diameter intraeritrosit sekitar 0.3 – 1.0 µm terletak di atau dekat margin eritrosit. Untuk A.centrale mirip dalam penampilan namun sebagian besar organisme terletak jauh dari margin eritrosit. Sulit untuk membedakan A.marginale dan A.centrale dalam preparat, terutama dengan rendahnya tingkat rickettsiaemia. Preparat ulas darah dari ternak hidup sebaiknya disiapkan dari darah yang diambil dari vena jugularis atau vena besar lain. Diagnosis post mortem disiapkan dari organ internal (termasuk hati, ginjal, jantung dan paru-paru) dan dari darah yang tersimpan dalam pembuluh perifer (OIE 2012).
Hanya sejumlah antibiotik yang efektif untuk mengobati anaplasmosis dan antibiotik seperti oxytetracycline dan doxycycline merupakan antibiotik pilihan dalam pengobatan (CFSPH 2013). Pengendalian anaplasmosis tergantung dari lokasi geografi dan pengendalian caplak dengan aplikasi akarisida, pengaturan antibiotik dan vaksinasi. Vaksinasi secara ekonomis dan efektif mengendalikan anaplasmosis pada sapi. Vaksin dapat dibedakan yaitu vaksin live dan killed. Vaksin live menggunakan A.centrale karena kurang patogen dengan reaksi penyakit lebih ringan daripada A.marginale namun dapat memberikan resistensi terhadap infeksi A.marginale. Negara-negara yang memproduksi dan menggunakan vaksin live untuk anaplasmosis adalah Afrika, Australia, Amerika Selatan dan Israel (Kocan et al. 2013). Akarisida yang digunakan untuk pengendalian caplak tidak sepenuhnya dapat menghilangkan caplak. Pengendalian biologis, modifikasi habitat dan penyediaan padang rumput bebas caplak dapat menghilangkan dan dapat menurunkan populasi caplak dan risiko penyakit (CFSPH 2013).
Babesiosis
Babesiosis dikenal sebagai penyakit penting pada hewan di seluruh dunia terutama pada sapi namun terdapat juga pada kuda, domba, babi dan anjing, dan telah menarik perhatian dalam beberapa tahun terakhir sebagai infeksi zoonosis pada manusia seperti Babesia microti dan B.duncani (Blaschitz et al. 2008). Genus Babesia merupakan protozoa hemoparasit yang ditransmisikan oleh caplak dan merupakan parasit darah umum kedua setelah genus Trypanosoma (Hunfeld et al. 2008). Menurut NCBI Taxonomy Database (2014), genus Babesia termasuk dalam Eukariota, filum Apicomplexa, kelas Aconoidasida, ordo Piroplasmida dan famili
Babesiidae. Terdapat tiga spesies yang paling sering ditemukan pada sapi yaitu adalah Babesia bovis, B.bigemina dan B.divergens. Spesies tambahan yang dapat menginfeksi ternak termasuk B.major, B.ovata, B.occultans dan B.jakimovi
(CFSPH 2008).
Filum Apicomplexa atau Sporozoa termasuk genus Babesia dan Theileria
5
dan fusi gamet dalam usus caplak), sporogoni (reproduksi aseksual pada kelenjar ludah caplak) dan merogoni (reproduksi aseksual di inang vertebrata) (Homer et al.
2000). Infeksi terjadi saat sporozoit ditransfer oleh caplak pada proses makan caplak. Sporozoit kemudian menyerang eritrosit dan berkembang menjadi trofozoit. Trofozoit berkembang dengan pembelahan biner dan menghasilkan merozoit yang terus menginfeksi dan bereplikasi pada inang. Beberapa trofozoit berkembang menjadi gametosit yang dapat memulai infeksinya pada vektor caplak. Pada usus caplak, gametosit berkembang dan berfusi untuk membentuk zigot dan berkembang menjadi kinet. Kinet akan menuju ke hemolymph dari caplak, kemudian menduplikasi dan menyerang berbagai organ. Spesies Babesia dapat menginfeksi ovarium dan dapat ditransmisikan secara transovarial melalui telur sehingga semua tahapan (larva, nimfa dan dewasa) berpotensi infektif. Sporogoni dimulai ketika kinet menyerang kelenjar ludah kemudian membentuk sporoblast berinti. Sporozoit yang baru dikembangkan akan masuk ke dalam inang vertebrata dengan air liur caplak pada proses makan selanjutnya (Hunfeld et al. 2008).
Penyakit akut umumnya berjalan dari 3 sampai 7 hari dan demam lebih dari 40 0C yang diikuti oleh hilangnya nafsu makan, depresi, meningkatnya frekuensi pernapasan, kelemahan dan keengganan untuk bergerak. Hemoglobinuria sering terjadi sehingga dikenal sebagai red water disease. Anemia dan ikterus berkembang pada kasus kronis. Demam selama infeksi dapat menyebabkan sapi aborsi dan terjadi infertilitas. Lesi dapat dilihat pada pembengkakan limpa dan hati. Organ lain seperti usus menunjukkan kongesti atau pendarahan petekie dan adanya edema paru-paru (Bock et al. 2004).
Identifikasi agen dalam hewan hidup digunakan preparat ulas darah tipis yang diambil dari kapiler. Pada hewan mati dilakukan dengan pemeriksaan mikroskopis dari preparat ulas darah perifer, otak, ginjal, otot jantung, limpa dan hati. Fiksasi dilakukan dengan metanol, diwarnai dengan larutan Giemsa 10% selama 15-30 menit, dan diperiksa di bawah perbesaran 800-1000x memakai minyak emersi. Uji
polymerase chain reaction (PCR) sensitif dan dapat mendeteksi dan membedakan spesies Babesia pada sapi (OIE 2010). Pengobatan dapat digunakan babesiasida seperti diminazene aceturate dan imidocarb dipropionate namun dalam literatur tidak banyak merujuk sejumlah babesiasida yang efektif. Pengendalian dilakukan dengan vaksinasi selain itu dilakukan pengendalian lainnya berupa pengendalian vektor caplak dan genetika hewan. Pengendalian terpadu mengintegrasikan strategi penggunaan akarisida, penerapan vaksin di daerah endemik yang stabil dan penggunaan vaksin rekombinan (Bock et al. 2004).
Theileriosis
Theileriosis merupakan kejadian infeksi protozoa dari genus Theileria dari subordo Piroplasmorina. Theileria adalah parasit obligat intraseluler. Dua spesies yang paling penting pada sapi dan kerbau adalah T.parva, yang menyebabkan East Coast Fever dan T.annulata, yang menyebabkan Tropical theileriosis. Sejumlah spesies Theileria lainnya termasuk T.mutans, T.buffeli, T.velifera, T.taurotragi dan
T.sergenti juga dapat menginfeksi ruminansia domestik dan liar. Gejala yang terjadi asimptomatis namun beberapa dapat menyebabkan anemia dan mengarah pada infeksi seperti East Coast Fever dan Tropical theileriosis (CFSPH 2009). Parasit
6
Theileria benigna termasuk T.sergenti, T.buffeli dan T.orientalis, yang didistribusikan di Jepang, Australia dan tempat lain menyebabkan penyakit yang ditandai dengan anemia ringan dan hipertermia namun keparahan dan kematian dapat terjadi. Anemia yang terjadi karena adanya parasit intraeritrosit dapat menginduksi aborsi dan kematian pada ternak yang terinfeksi (Tan–ariyaa et al.
2001). Menurut NCBI Taxonomy Database (2014), genus Theileria termasuk dalam Eukariota, filum Apicomplexa, kelas Aconoidasida, ordo Piroplasmida dan famili
Theileriidae.
Transmisi dilakukan secara transstadial dan secara transovarian seperti pada tranmisi Babesia. Sporogoni terjadi di kelenjar ludah caplak. Sporozoit infektif dilepaskan dari 3 hingga 7 hari dari saat proses caplak makan. Satu sel yang terinfeksi dapat mengandung 40-50 000 sporozoit. Beberapa hewan mengalami penyakit ringan dan terjadi reaksi pemulihan akibat respon imun seluler. Setelah masuk, sporozoit Theileria menyerang sel inang dan mampu menginfeksi monosit atau makrofag. Terdapat stadium pada kelenjar ludah caplak, stadium pada sel inang vertebrata dan stadium rekombinasi seksual pada usus caplak (Bishop et al. 2004). Identifikasi agen dilakukan dengan diagnosis berbagai gejala penyakit yang disebabkan oleh parasit. Prinsipnya didasarkan pada gejala klinis, pengetahuan tentang penyakit, distribusi vektor dan identifikasi parasit dalam preparat ulas darah dan kelenjar getah bening yang diwarnai dengan Giemsa. Adanya multinukleat intrasitoplasmik dan skizon bebas pada preparat ulas kelenjar getah bening adalah diagnostik karakteristik dari infeksi akut Theileria. Hewan yang terinfeksi Theileria
menunjukkan pembesaran kelenjar getah bening, demam, peningkatan frekuensi pernapasan secara bertahap dan diare sesekali. Lesi post-mortem yang diamati adalah edema paru-paru dan trakea berbuih, pembesaran kelenjar getah bening dan limpa, pendarahan organ dalam, erosi abomasum, adanya limfosit berinklusi dan infiltrasi limfosit pada jaringan viseral dan menyebabkan anemia dan ikterus (OIE 2008). Theileriosis tidak ditularkan melalui kontak biasa dan apabila infeksi tersebut baru di suatu daerah dapat dikendalikan dengan pemusnahan hewan yang terinfeksi dan dengan mencegah caplak yang terinfeksi. Di daerah endemik, caplak dapat dikurangi dengan akarisida dan metode lain pengendalian caplak seperti sistem rotasi tempat penggembalaan. Obat antiparasit yaitu buparvaquone efektif pada hewan dengan tanda-tanda klinis. Pengobatan paling efektif dilakukan pada tahap awal penyakit (CFSPH 2009).
Pemeriksaan Kondisi Fisiologis
Kondisi fisiologis merupakan respon fungsional tubuh dan reaksi dari metabolisme tubuh secara sistematis yang bertujuan mencapai homeostatis tubuh atau keseimbangan tubuh terhadap lingkungan. Pemeriksaan klinis bertujuan untuk mengidentifikasi kelainan klinis yang hadir dan faktor risiko yang menentukan terjadinya penyakit pada individu atau populasi. Dari informasi ini penyebab paling mungkin dapat ditentukan. Organ atau sistem organ yang terlibat, lokasi, jenis lesi dan proses patofisiologis yang terjadi serta tingkat keparahan penyakit dapat disimpulkan dari informasi yang diperoleh selama pemeriksaan klinis. Pemeriksaan klinis berlangsung melalui beberapa langkah. Keluhan pemilik, sejarah pasien, sejarah peternakan dan signalment pasien harus diketahui pada saat yang sama
7 melalui wawancara dengan pemilik atau penjaga hewan. Pengamatan pasien dan lingkungan dilakukan sebagai langkah berikutnya. Pemeriksaan klinis pasien diikuti oleh investigasi tambahan jika diperlukan. Signalment mencakup nomor identifikasi, jenis/ras, usia, jenis kelamin, warna dan berat badan hewan. Beberapa penyakit spesifik untuk beberapa kelompok hewan dan informasi ini berguna dalam mempertimbangkan suatu penyakit (Jackson & Cockroft 2002).
3
METODE
Waktu dan Tempat Penelitian
Penelitian dilakukan pada bulan Agustus hingga Oktober 2014. Pengambilan sampel ulas darah, darah dan data fisiologis dilakukan mulai tanggal 20 Agustus hingga 17 September 2014. Pengambilan sampel dan data dilakukan di Pelabuhan Tanjung Priok dan Instalasi Karantina Hewan (IKH) di wilayah pemasukan Pelabuhan Tanjung Priok. Pendeteksian parasit darah dan profil darah dilakukan di laboratorium Balai Besar Karantina Pertanian Tanjung Priok, Balai Besar Uji Standar Karantina Pertanian dan Laboratorium Protozoologi Fakultas Kedokteran Hewan Institut Pertanian Bogor.
Metode Pengambilan Sampel dan Besaran Sampel
Desain penelitian adalah kajian lintas seksional. Menurut Budiharta (2002) berdasarkan perhitungan/rumus kajian lintas seksional dengan memperhatikan asumsi prevalensi sebesar 50 %, dengan tingkat kepercayaan 95 % dan galat yang diinginkan 6 % maka di dapat besaran sampel sebanyak:
𝑛 =4𝑃𝑄 𝐿2 Keterangan n = besaran sampel
P = asumsi prevalensi Q = 1 – P
L = galat yang diinginkan, sehingga
n = 4𝑥0.5𝑥0.5
0.062
n = 278
Sampel diambil sebanyak 278 pada enam kali pemasukan sapi bakalan impor dalam bulan Agustus hingga September berupa preparat ulas darah, darah dan data kondisi fisiologis. Pengambilan sampel pada IKH dilakukan secara acak sederhana pada sapi dalam satu kandang IKH.
8
Metode Pengambilan Darah
Pengambilan darah dilakukan dengan menggunakan tabung venoject 3 ml yang berisi antikoagulan EDTA dan jarum ukuran 18 G dari vena coccygea media.
Metode Deteksi Parasit Darah
Pembuatan dan pewarnaan preparat ulas darah tipis dengan menggunakan sampel darah yang akan diperiksa, metanol, larutan pewarna Giemsa, aquades dan gelas objek. Setetes darah diletakkan pada tepian gelas objek 1 dan dengan perlahan ujung gelas objek 2 ditempelkan di atas darah tersebut. Darah akan menyebar di antara sudut gelas objek 1 dan 2. Gelas objek 2 didorong membentuk sudut 450
sehingga terbentuk ulas darah tipis. Sediaan ulas darah dikeringkan selama 1 menit dan difiksasi menggunakan metanol selama 3-5 menit. Preparat ulas darah diwarnai menggunakan larutan Giemsa 10% dengan cara merendamnya selama 30 menit. Preparat ulas darah yang telah diwarnai dicuci dengan aquades dan dikeringkan (Mahmmod et al. 2011).
Pemeriksaan ulas darah dilakukan dengan perbesaran 1000x. Jumlah parasit intraseluler darah akan dihitung untuk tiap 500 butir eritrosit dalam lima bidang pandang (Alamzan et al. 2008). Rataan parasitemia dihitung dengan rumus :
𝑗𝑢𝑚𝑙𝑎ℎ 𝑝𝑎𝑟𝑎𝑠𝑖𝑡 𝑑𝑎𝑟𝑎ℎ
500 x 100 %
Metode Pemeriksaan Profil Hematologis
Pemeriksaan hematologis yang dilakukan pada penelitian ini terhadap sampel darah adalah pemeriksaan jumlah sel eritrosit, jumlah hemoglobin (Hb), dan nilai Packed Cell Volume (PCV/hematokrit). Pemeriksaan dengan menggunakan automated hematology analyzer.
Metode Pengambilan Data kondisi Fisiologis Sapi bakalan Impor Pemeriksaan kondisi fisiologis pada sapi bakalan impor yang dilakukan adalah pengukuran temperatur tubuh, frekuensi pulsus, frekuensi nafas dan berat badan. Pengukuran temperatur tubuh dilakukan perrektal dengan menggunakan termometer. Pengukuran frekuensi pulsus dilakukan dengan palpasi dan menghitung denyut pada vena coccygea media. Pengukuran frekuensi nafas dengan menghitung gerak nafas pada abdomen. Pengukuran berat badan dilakukan dengan menggunakan timbangan digital pada kandang jepit.
9 Kerangka Konsep
Analisis Data
Data yang diperoleh adalah prevalensi parasit darah dan data kondisi fisiologis sapi. Data dianalisis secara deskriptif dan uji t (t-test) untuk analisa perbandingan data kontinyu berdasarkan dua kategori.
4
HASIL DAN PEMBAHASAN
Pengambilan Sampel
Indonesia dalam pemenuhan kebutuhan daging sapi selain dari dalam negeri juga memasok dari luar negeri berupa importasi daging dan sapi. Sapi yang masuk ke Indonesia dapat berupa sapi indukan, sapi bakalan dan sapi siap potong. Importasi sapi melalui Pelabuhan Tanjung Priok pada tahun 2014 berupa sapi bakalan dan sapi siap potong. Penelitian ini menggunakan sapi bakalan yang berumur 1-2 tahun, baik jantan maupun betina berbobot 250 hingga 350 kg dan dipelihara dalam jangka waktu tertentu untuk tujuan produksi daging. Penelitian ini mengambil sampel dari enam kali pemasukan (shipment) sapi bakalan selama satu bulan (20 Agustus hingga 17 September 2014). Berdasarkan penelitian sebelumnya terhadap babesiosis dan theileriosis pada sapi potong asal Australia, maka dengan asumsi prevalensi 50%, tingkat kepercayaan 95% dan galat 6%, jumlah sampel yang diambil adalah sebagai berikut :
Tabel 1 Pengambilan sampel darah dari enam Instalasi Karantina Hewan (IKH) No Lokasi IKH Asal pelabuhan muat Jumlah Sapi Bakalan Impor (ekor) Jumlah sampel (ekor) 1 Cianjur Darwin 1249 45 2 Cileungsi Darwin 2000 53 3 Jonggol Darwin 509 41 4 Subang Darwin 300 40 5 Tangerang Darwin 3056 58 6 Bandung Fremantle Broome 1000 43 Total 280 Keberadaan agen penyakit (Anaplasma, Babesia, Theileria)
Kondisi fisiologis sapi (suhu, pulsus, frekuensi nafas, berat badan,
10
Identifikasi Parasit Darah
Anaplasma merupakan mikroorganisme intraseluler obligat, bakteri Gram negatif dan hidup pada sel darah mamalia (Rymaszewska & Grenda 2008). Anaplasma memiliki dua bentuk morfologi yaitu sel berinti padat (0.4-0.6 µm) dan sel retikulat (0.4-0.6 µm hingga 0.7-1.9 µm). Sel berinti padat mendominasi 24 jam awal setelah infeksi dan merupakan bentuk infektif bakteri. Sel retikulat yang membelah diri mendominasi kejadian infeksi setelah 48 jam. Sel retikulat setelah 72 jam menjadi sel berinti padat dan dilepas untuk memulai siklus baru (Ismail et al. 2010). Babesia dan Theileria merupakan protozoa patogen penting pada peternakan. Babesia pada umumnya dibedakan berdasarkan morfologi, karakteristik DNA penyusun dan inang yang spesifik (Hunfeld et al. 2008). Babesia berbentuk buah pir, terletak berpasangan, bulat, lonjong atau tidak teratur tergantung stadium perkembangan parasit dalam eritrosit. Babesia dibedakan berdasarkan ukuran yaitu Babesia kecil (1- 2.5 µm) dan Babesia besar (3-5 µm). Theileria berukuran 1-2 µm dan berbentuk batang, oval atau koma dalam eritrosit (Yabsley & Shock 2013).
a b
c
Gambar 1 Parasit darah dalam eritrosit (anak panah menunjukkan (a) Anaplasma sp., (b) Babesia sp. dan (c) Theileria sp.)
Hasil identifikasi parasit darah pada sampel ulas darah untuk genus Anaplasma, Babesia dan Theileria dari 280 sampel terdapat 253 (90.35%) sampel
11 positif parasit darah dan 27 (9.65%) sampel negatif parasit darah. Hal ini menunjukkan bahwa pada sampel sapi bakalan impor asal Australia hampir keseluruhan terinfeksi oleh parasit darah.
Prevalensi Anaplasmosis, Babesiosis dan Theileriosis
Hasil identifikasi parasit darah dapat diduga prevalensi masing-masing parasit darah di enam IKH dan total keseluruhan sebagai berikut:
Tabel 2 Prevalensi anaplasmosis, babesiosis, theileriosis pada sapi bakalan asal Australia Agustus - September 2014
No Lokasi IKH Prevalensi anaplasmosis (%) Prevalensi babesiosis (%) Prevalensi theileriosis (%) 1 Cianjur 57.78 40.00 51.11 2 Cileungsi 56.60 43.39 67.92 3 Jonggol 56.09 24.39 46.34 4 Subang 72.50 47.50 70.00 5 Tangerang 56.90 44.83 72.41 6 Bandung 65.12 55.81 60.47 Total sampel 60.36 42.86 62.14
Prevalensi kejadian penyakit akibat parasit darah pada sapi ditunjukkan pada Tabel 2 dan prevalensi kejadian theileriosis lebih tinggi jika dibandingkan dengan prevalensi kejadian anaplasmosis dan babesiosis pada penelitian ini. Dari data prevalensi tahun 2009 terdapat kecenderungan meningkat pada kejadian babesiosis dan theileriosis. Prevalensi babesiosis dari 10.5% (Dewi 2009) menjadi 42.86% dan Prevalensi theileriosis dari 55.01% (Silitonga 2009) menjadi 62.14%.
Secara global terjadi peningkatan kejadian tick-borne disease yang disebabkan oleh adanya perubahan iklim, perubahan sosiodemografi dan perubahan penggunaan fungsi lahan. Perubahan - perubahan yang terjadi dapat mempengaruhi keseimbangan segitiga epidemiologi. Perubahan iklim yang terjadi dapat mempengaruhi daya tahan hidup caplak sebagai vektor, daya tahan hidup agen patogen, daya tahan vertebrata dan adanya lingkungan yang dinamis. Perubahan sosiodemografi yang terjadi antara lain disebabkan adanya migrasi hewan dan manusia melalui perjalanan dan perdagangan, dukungan dalam penanganan penyakit yang diberikan oleh suatu negara, terjadinya resistensi obat karena kesalahan prosedur penggunaan dan malnutrisi yang dapat mengakibatkan kematian. Perubahan penggunaan fungsi lahan seperti penggundulan lahan juga dapat mengakibatkan suatu kejadian penyebaran penyakit yang tidak diinginkan seperti migrasi suatu populasi hewan liar yang membawa caplak dari suatu daerah ke daerah lain (Dantas-Torres et al. 2012).
Australia mengalami peningkatan kejadian anemia pada sapi yang diakibatkan oleh infeksi parasit dan menyebabkan penurunan produksi daging dan susu, kematian sapi dan peningkatan biaya dalam manajemen pencegahan dan pengobatan. Infeksi secara umum terjadi akibat adanya mobilisasi sapi yang terinfeksi ke daerah bebas penyakit, musim panas yang disertai hujan selama dua
12
tahun terakhir yang memfasilitasi daya tahan hidup caplak dan kondisi alam seperti banjir yang mempengaruhi kesehatan sapi (Bailey 2012).
Proporsi Infeksi Parasit Darah
Sampel ulas darah sebanyak 253 menunjukkan hasil positif parasit darah dan diidentifikasi terjadi infeksi tunggal dan multi infeksi. Proporsi multi infeksi lebih tinggi kejadiannya daripada infeksi tunggal seperti ditunjukkan pada Tabel 3. Tabel 3 Proporsi infeksi tunggal dan multi infeksi parasit darah pada sapi
Bakalan asal Australia Agustus - September 2014
No Lokasi IKH Jumlah sampel positif parasit darah Jumlah sapi terinfeksi tunggal
Jumlah sapi multi infeksi 1 Cianjur 37 15 (40.54%) 22 (59.46%) 2 Cileungsi 47 16 (34.04%) 31 (65.96%) 3 Jonggol 37 23 (62.16%) 14 (37.84%) 4 Subang 38 9 (23.68%) 29 (76.32%) 5 Tangerang 53 19 (35.85%) 34 (64.15%) 6 Bandung 41 13 (31.71%) 28 (68.29%) Total sampel 253 95 (37.55%) 158 (62.45%) Tabel 4 Proporsi multi infeksi parasit darah pada sapi bakalan asal Australia
Agustus - September 2014 Jumlah sampel multi infeksi Anaplasma- Babesia Anaplasma-Theileria Babesia-Theileria Anaplasma- Babesia-Theileria 158 24 (15.19%) 47 (29.75%) 34 (21.52%) 53 (33.54%) Proporsi multi infeksi masing-masing parasit darah ditunjukkan pada Tabel 4 dan multi infeksi dari Anaplasma, Babesia dan Theileria lebih sering terdapat pada kejadian infeksi. Multi infeksi disebut juga poliparasitisme yaitu infeksi beberapa parasit dalam satu inang. Parasit yang menginfeksi dapat berasal dari satu spesies parasit yang berbeda genotipe ataupun beberapa spesies parasit yang berbeda. Multi infeksi yang terjadi pada umumnya mengakibatkan adanya kompetisi diantara parasit. Kompetisi yang terjadi terutama pada sumber bahan untuk kehidupan parasit seperti darah dan sistem imun seperti imunosupresi dan reaksi silang. Karakteristik parasit, adanya sumber bahan untuk hidup dan sistem imun akan mengakibatkan beberapa interaksi antar parasit dalam inang. Interaksi yang terjadi
13 dapat berupa interaksi yang saling mendukung (interaksi sinergis) dan interaksi yang saling kontra atau menekan kehidupan parasit lain (interaksi antagonis). Interaksi parasit juga berkaitan dengan risiko infeksi yaitu pada jumlah parasit, umur inang dan keadaan lingkungan (Bordes & Morand 2011).
Persentase Parasitemia
Persentase parasitemia pada sapi bakalan asal Australia pada kejadian anaplasmosis, babesiosis dan theileriosis berkisar antara 0.2% hingga 1%. Menurut Ndungu et al. (2005) tingkat parasitemia dibagi menjadi tingkat ringan (mild reaction) dengan nilai parasitemia <1% yang ditandai dengan tidak adanya demam atau demam sementara dalam 4 hari, tingkat sedang (severe reaction) dengan nilai parasitemia 1-5% yang ditandai dengan adanya demam dalam beberapa hari dan sembuh, dan tingkat berat (very severe reaction) dengan nilai parasitemia >5% yang ditandai dengan demam persisten dan dibutuhkan terapi hingga eutanasi. Pada penelitian ini sapi bakalan mengalami tingkat parasitemia rendah pada babesiosis dan theileriosis namun pada kejadian anaplasmosis mengalami tingkat parasitemia rendah hingga sedang.
Tabel 5 Persentase parasitemia parasit darah pada sapi bakalan asal Australia Agustus - September 2014
No Lokasi IKH Rata-rata
Anaplasma (%) Rata-rata Babesia (%) Rata-rata Theileria (%) 1 Cianjur 0.45 0.27 0.27 2 Cileungsi 0.37 0.23 0.40 3 Jonggol 0.36 0.26 0.38 4 Subang 0.30 0.26 0.41 5 Tangerang 0.27 0.26 0.34 6 Bandung 0.34 0.24 0.37 Total 0.34 (0.20-1.00) 0.24 (0.20-0.80) 0.36 (0.20-0.80) Dalam Animal Health in Australia (AHA) tahun 2013, anaplasmosis dan babesiosis terbatas pada wilayah Australia bagian utara dan Australia bebas theileriosis yang disebabkan oleh T.parva dan T.annulata. Caplak pada sapi sebagai vektor agen penyakit diketahui sejak akhir abad ke 19 di Australia melalui Darwin dan terdistribusi di Australia bagian utara dan timur. Penelitian ini mendapatkan data bahwa anaplasmosis dan babesiosis terdapat pada sapi bakalan yang berasal dari pelabuhan muat di Australia Utara (Darwin) dan di Australia Barat (Fremantle dan Broome). Australia endemis Theileria penyebab infeksi ringan pada sapi dimana Theileria jarang diasosiasikan dengan suatu gejala penyakit. Diagnosa terhadap theileriosis dilakukan apabila penyebab penyakit lain telah dieliminasi (Kamau et al.2011). Theileriosis benigna pada sapi disebabkan oleh T.sergenti, T.buffeli dan T.orientalis yang mengakibatkan penyakit asimtomatik pada sapi (Aktas et al. 2006). Anaplasmosis, babesiosis dan theileriosis endemis pada daerah beriklim tropis dan sub tropis. Namun demikian, telah dilaporkan adanya kejadian
14
penyakit pada daerah beriklim sedang. Prevalensi penyakit lebih tinggi pada daerah berhawa panas dan lembab yang berkaitan dengan banyaknya caplak (Bock et al.
2004; Perera et al. 2014; Sajid et al. 2014).
Kondisi Fisiologis Sapi
Pengambilan sampel darah dan kondisi fisiologis pada penelitian ini dilakukan pada kandang jepit IKH dengan temperatur lingkungan 30.5 0C hingga
34.7 0C dengan kelembaban udara 60% hingga 80%.
Anaplasma memiliki masa inkubasi 7 hingga 60 hari dan rata-rata yaitu 28 hari. Selama masa inkubasi, eritrosit yang terinfeksi meningkat dan difagosit oleh sel retikuloendotelial sehingga menimbulkan anemia dan ikterus tanpa hemoglobinemia dan hemoglobinuria. Selanjutnya tejadi gejala klinis berupa hipertermia, penurunan berat badan, aborsi dan letargi (Rymaszewska & Grenda 2008). Babesia menginfeksi dalam bentuk sporozoit lewat gigitan caplak. Sporozoit akan berkembang menjadi piroplasma dalam eritrosit yang terinfeksi dan menghasilkan 2 hingga 4 sel dan akan menginfeksi eritrosit lain. Gejala yang terjadi hipertemia, anemia, ikterus serta letargi. Sporozoit Theileria akan masuk dan menginfeksi limfosit atau makrofag dan membentuk skizon (Hunfeld et al. 2008). Limfosit akan melepas merozit yang menginfeksi eritrosit dan menjadi trofozoit. Saat Theileria menginfeksi limfosit terjadilah gejala seperti trombositopenia dan panleukopenia (Homer et al. 2000). Gejala lain yang timbul adalah hipertermia, anemia, ikterus, aborsi, letargi hingga kematian (Perera et al. 2014). Okon et al. (2012) dalam suatu penyelidikan penyakit akibat parasit darah menunjukkan bahwa penyakit memiliki dampak negatif pada fungsi fisiologis hewan yang terinfeksi.
Data yang diperoleh berupa pemeriksaan darah dan kondisi fisiologis dibandingkan antara sampel positif dan sampel negatif parasit darah pada Tabel 6 dan Tabel 7 sebagai berikut :
Tabel 6 Nilai hemoglobin,jumlah eritrosit dan hematokrit sapi bakalan asal Australia Sampel (n) Rata-rata Hemoglobin (g/dl) Rata-rata Eritrosit (x106/µl) Rata-rata hematokrit (%) Negatif parasit darah 12.77±0.34 7.28±0.24 34.29±0.93 Positif parasit darah 12.97±0.12 7.45±0.67 34.56±0.32 Kisaran normal* 8-15 5-10 24-46
* Sumber:Merck Veterinary Manual (2013)
Analisis data untuk membandingkan profil hematologi antara darah sapi yang terinfeksi dan tidak terinfeksi tidak menunjukkan perbedaan nyata (p>0.05).
Pemeriksaan darah rutin dilakukan dengan memeriksa jumlah eritrosit, jumlah hemoglobin dan hematokrit. Eritrosit berdiameter sekitar 5 sampai 7 µm. Berbentuk pipih cekung ganda dengan tepian melingkar dan pusatnya tipis. Bentuk cekung ganda memberikan luasan permukaan untuk pertukaran gas di sel membran.
15 Eritrosit tidak memiliki inti dan beberapa organel. Jumlah eritrosit dinyatakan sebagai jumlah sel per mikroliter darah secara keseluruhan dan hewan domestik memiliki 7 x 106 permikroliternya. Protein hemoglobin adalah konstituen utama intraseluler eritrosit. Fungsi hemoglobin terutama dalam transportasi oksigen dan karbon dioksida. Konsentrasi hemoglobin diukur dalam gram per 100 ml darah, dan jumlah normal umum konsentrasi hemoglobin berkisar antara 11 hingga 13 g/100 ml pada hewan domestik. Hematokrit (packed cell volume) adalah persentase eritrosit dalam seluruh volume darah. Hematokrit biasanya berkisar 35-45 untuk sebagian besar spesies mamalia dan umumnya dianggap menjadi indikator jumlah total eritrosit (Frandson et al. 2007). Pemeriksaan dilakukan untuk melihat apakah terjadi gejala klinis berupa anemia pada sapi. Dalam penelitian ini antara sapi positif dan negatif parasit darah menunjukkan rerata hematologis masih dalam kisaran normal sehingga tidak terjadi gejala klinis.
Tabel 7 Temperatur tubuh, pulsus, frekuensi nafas dan berat badan sapi bakalan asal Australia Sampel Rata-rata Temperatur tubuh (0C) Rata-rata Pulsus (/menit) Rata-rata Frekuensi Nafas (/menit) Berat Badan (Kg) Negatif parasit darah 37.54±0.11 66.37±2.27 33.48±2.13 293.59±3.84 Positif parasit darah 37.77±0.04 68.36±0.66 31.78±0.57 299.98±1.89 Kisaran normal* 36.7-39.1 60-80 15 – 30 250-350
* Sumber: Merck Veterinary Manual (2013), Jackson & Cockroft (2002)
Analisis data untuk membandingkan temperatur tubuh, pulsus, frekuensi nafas dan berat badan antara sapi yang terinfeksi dan tidak terinfeksi tidak menunjukkan perbedaan nyata (p>0.05). Status fisiologis dapat diketahui dari beberapa indikator yaitu temperatur tubuh, pulsus dan frekuensi nafas. Temperatur tubuh merupakan ekspresi kemampuan tubuh melepaskan dan menerima panas.
Temperatur tubuh adalah data klinis awal dan harus diukur secara rutin pada hewan saat sakit. Berbagai penyakit dapat mengakibatkan peningkatan atau penurunan temperatur tubuh. Temperatur tubuh diukur paling akurat dan konsisten secara perrektal. Peningkatan temperatur dapat terjadi akibat adanya paparan lingkungan, peningkatan aktivitas, infeksi dan inflamasi. Pulsus merupakan jumlah denyut jantung per satuan waktu, biasanya per menit. Denyut jantung didasarkan pada jumlah kontraksi ventrikel. Pulsus dapat terjadi secara cepat (takikardia) atau lambat (bradikardia). Frekuensi pernafasan adalah jumlah frekuensi inspirasi dan ekspirasi yang dilakukan dalam setiap menit. Proses inspirasi dan ekspirasi terjadi akibat selisih tekanan yang terdapat antara atmosfir dan alveolus disebabkan kerja mekanik otot-otot di wilayah rongga thoraks. Peningkatan atau penurunan frekuensi pernapasan merupakan respon fisiologis tubuh untuk menyesuaikan perubahan suhu
tubuhnya terhadap keadaan lingkungan (Frandson et al. 2007).
Pemeriksaan dilakukan untuk melihat apakah terjadi perubahan gejala klinis terhadap temperatur tubuh, pulsus, frekuensi nafas dan berat badan pada sapi.
16
Dalam penelitian ini antara sapi positif dan negatif parasit darah menunjukkan rerata fisiologis masih dalam kisaran normal sehingga tidak terjadi gejala klinis.
Beberapa kondisi pada saat pengambilan sampel data fisiologis sapi antara lain adanya temperatur lingkungan yang tinggi, tempat pengambilan sampel di lapangan tanpa atap, tidak adanya ketersediaan air minum dan kondisi stres pada sapi karena proses pengambilan data dilakukan rata-rata pada hari ke 4-5 dari kedatangan di Pelabuhan Tanjung Priok. Kondisi tersebut dapat mempengaruhi temperatur tubuh, pulsus dan frekuensi nafas. Mekanisme fisiologis akibat meningkatnya temperatur lingkungan dapat meningkatkan frekuensi nafas, pulsus dan pengeluaran saliva (Atrian & Shahryar 2012).
Hasil penelitian pada sapi bakalan asal Australia mendapatkan adanya parasit darah (Anaplasma, Babesia dan Theileria) namun tidak menunjukkan gejala klinis. Hal ini disebabkan oleh tingkat parasitemia rendah hingga sedang. Anaplasma, Babesia dan Theileria merupakan parasit darah penyebab penyakit yang ditularkan lewat caplak yang menyebabkan penurunan produksi dan kematian ternak. Tick-borne disease menyerang 80% populasi ternak dunia dan terdistribusi luas. Kurangnya data prevalensi dan insidensi tentang penyakit menyebabkan sulitnya menentukan dampak penyakit (Estrada-Pena & Salman 2013). Penelitian lebih lanjut harus dilakukan pada tick-borne disease untuk mengurangi kerugian, pencegahan dan strategi pengendalian (Alemu et al. 2014).
Australia memiliki beberapa rekomendasi manajemen penanganan untuk mengurangi kejadian penyakit akibat parasit darah yaitu dengan penglokasian daerah tertular, pencegahan mobilisasi sapi pada daerah tertular, manajemen peternakan berupa manajemen pemberian pakan yang baik, pemeliharaan kesehatan dan pengendalian stres pada sapi dengan menciptakan lingkungan dan penanganan sapi yang tepat, mencegah tranmisi parasit lewat penggunaan alat-alat dalam kastrasi, jarum suntik, dan alat lainnya. Selain itu ada pengendalian caplak walaupun terdapat vektor lainnya seperti lalat dan nyamuk yang dapat menularkan penyakit. Pemerintah Australia menjamin kesehatan sapi bakalan yang diekspor dengan sertifikat kesehatan. Sertifikat kesehatan hewan menyatakan bahwa sapi bakalan tersebut bebas dari ektoparasit dan mendapat perlakuan dengan akarisida 14 hari sebelum ekspor serta tidak terjadi wabah ataupun gejala klinis anaplasmosis, babesiosis, theileriosis pada 6 bulan sebelum pengapalan. Sapi yang sembuh dari infeksi penyakit parasit darah akan menjadi pembawa agen (carrier) karena dapat menularkan penyakit dari darah baik melalui transmisi biologis maupun mekanis. Pemeriksaan terhadap sapi carrier diperlukan untuk pencegahan penularan penyakit (Kocan et al. 2003). Sapi bakalan impor yang masuk ke Indonesia melalui proses karantina untuk mengetahui kondisi kesehatan terutama adanya HPHK yang menginfeksi sapi. Anaplasma, Babesia dan Theileria terdapat pada sapi dan harus dicegah penyebarannya. Upaya pencegahan dapat dilakukan dengan memberikan tambahan prasyarat impor sapi berupa adanya pengobatan yang dilakukan pada sapi yang terinfeksi parasit darah di negara pengekspor. Pencegahan lainnya adalah dengan menjalankan kebijakan teknis yang telah ditetapkan seperti pembuatan Instalasi Karantina Hewan untuk sapi impor yang sesuai, mengadaptasi rekomendasi untuk menanggulangi infeksi parasit darah seperti yang dilakukan di Australia terutama dalam manajemen pakan, pengendalian stres dan pencegahan transmisi baik mekanis maupun biologis.
17
5
SIMPULAN DAN SARAN
SIMPULAN
Parasit darah (Anaplasma, Babesia, Theileria) terdapat pada sapi bakalan yang diimpor dari Australia dan prevalensi penyakit cenderung meningkat dan terjadi multi infeksi. Kejadian penyakit walaupun bersifat subklinis namun sapi bakalan tersebut dapat menjadi pembawa agen penyakit seiring importasi sapi ke Indonesia.
SARAN
Perlu dilakukan pengobatan, pengendalian stres, manajemen pakan yang baik dan pencegahan transmisi penyakit serta pemeriksaan lanjutan untuk mengetahui spesies dari Anaplasma, Babesia dan Theileria pada sapi bakalan impor asal Australia. Pemerintah perlu melakukan tindakan pencegahan pemasukan dan penyebaran penyakit akibat parasit darah dengan memperkuat kebijakan dan pelaksanaan kebijakan serta mengembangkan informasi, komunikasi dan edukasi kepada pelaku usaha impor dan peternak sapi.
DAFTAR PUSTAKA
[AHA] Animal Health Australia. 2013. Animal Health in Australia 2013. [diunduh 2014 Nomber 13]. Tersedia pada: http:// www. animalhealthaustralia. com.au/wp-content/uploads /2011/01/CH2-Terrestrial-animal-health.pdf
Aktas M, Altay K, Dumanli N. 2006. A Molecular survey of bovine Theileria
parasites among apparently healthy cattle and with a note on the distribution of ticks in Eastern Turkey. Vet Parasitol. 138: 179-185. doi: 10.1016/j. vetpar.2006.01.052.
Alamzan C, Medrano C, Ortiz M, de la Fuente J. 2008. Genetic Diversity of
Anaplasma marginale strains from an outbreak of bovine anaplasmosis in an endemic area. Vet Parasitol. 158 (1-2): 103-109.
Alemu G, Chanie M, Mengesha D, Bogale B. 2014. Prevalence of Ixodid ticks on cattle in Northwest Ethiopia. Acta Parasitol Glob. 5(2): 139-145. doi: 10.5829/idosi.apg.2014.5.2.84292.
Atrian P, Shahryar HA. 2012. Heat stress in dairy cows. Res in Zoology. 2 (4):31-37. doi: 10.5923/j.zoology.20120204.03.
Bailey G. 2012. Cattle producers ticked off by Theileria. Farming Ahead. 245: 36-37.
[BBKP] Balai Besar Karantina Pertanian Tanjung Priok. 2013. Laporan Tahunan BBKP Tanjung Priok 2013. Jakarta (ID): BBKP Tanjung Priok.
Bishop R, Musoke A, Morzaria S, Gardner M, Nene V. 2004. Theileria: intracelluler protozoan parasites of wild and domestic ruminants transmitted by Ixodid ticks. Parasitol. 129: S271–S283. doi: 10.1017/ S0031182003004748.
18
Blaschitz M, Narodoslavsky-Gföller M, Kanzler M, Stanek G, Walochnik J. 2008.
Babesia species occuring in Austrian Ixodes Ricinus ticks. Appl Erviron Microbiol. 74 (15): 4841-4846. doi: 10.1128/AEM.00035-08.
Bock R, Jackson L, De Vos A, Jorgensen W. 2004. Babesiosis in cattle. Parasitol. 129: S247 – S269. doi: 10.1017/S0031182004005190.
Bordes F, Morand S. 2011. The impact of multiple infections on wild animal hosts: a review. IEE Review. 1(7346): 1-10. doi: 10.3402/iee.v1i0.7346.
Budiharta S. 2002. Kapita Selecta Epidemiologi Veteriner. Yogyakarta (ID): Bagian
Kesehatan Masyarakat Veteriner FKH UGM.
[CFSPH] The Center for Food Security and Public Health. 2008. Bovine Babesiosis. [diunduh 2014 Maret 23]. Tersedia pada: http:// www. cfsph. iastate. edu/ Factsheets/ pdfs /bovine_babesiosis.pdf.
[CFSPH] The Center for Food Security and Public Health. 2009. Theileriosis.
[diunduh 2014 Februari 24].Tersedia pada: http:// www. cfsph. iastate.edu/ Factsheets/ pdfs/ theileriosis _ theileria_parva_and_theileria_annulata.pdf [CFSPH] The Center for Food Security and Public Health. 2013. Ehrlichiosis and
Anaplasmosis: Zoonotic Species. [diunduh 2014 Maret 17]. Tersedia pada: http:// www. cfsph. iastate. edu/ Factsheets/pdfs/ehrlichiosis.pdf
Dantas-Torres F, Chomel BB, Otranto D. 2012. Ticks and tick-borne diseases: a one health perspective. Trepar. 30(10): 1-10. doi: 10.1016/j.pt.2012.07.003 Dewi RS. 2009. Babesiosis pada Sapi Potong Impor dari Australia melalui
Pelabuhan Tanjung Priok. Bogor (ID): Institut Pertanian Bogor.
[DITJEN PKH] Direktorat Jenderal Peternakan dan Kesehatan Hewan. 2012. Press Release Konferensi Pers Direktur Jenderal Peternakan dan Kesehatan Hewan tentang Supply Demand Daging Sapi/Kerbau sampai dengan Desember 2012.
[diunduh 2014 Maret 17]. Tersedia pada: https: // www . ditjennak . deptan.go.id / download,ph/
Estrada-Pena A, Salman M. 2013. Current limitations in the control and spread of ticks that affect livestock: a review. Agriculture. 3: 221-235. doi: 10.3390/agriculture3020221.
Frandson RD, Wilke WL, Fails AD. 2007. Anatomy and Physiology of Farm Animals. Colorado (US): Wiley Blackwell.
Homer MJ, Aguilar-Delfin I, Telford III SR, Krause PJ, Persing DH. 2000. Babesiosis. Clin Microbiol Rev. 13 (3): 451-469.
Hunfeld KP, Hildebrandt A, Gray JS. 2008. Babesiosis: recent insights into an ancient disease. Int J Parasitol. 38: 1219 – 1237.
Ismail N, Bloch KC, McBride JW. 2010. Human ehrlichiosis and anaplasmosis.
Clin Lab Med. 30(1): 261-292. doi: 10.1016/j.cll.2009.10.004.
Jackson PGG, Cockroft PD. 2002. Clinical Examination of Farm Animals. Oxford (GB): Blackwell Science.
Kamau J, de Vos AJ, Playford M, Salim B, Kinyanjui P, Sugimoto C. 2011. Emergence of new type of Theileria orientalis in Australian cattle and possible cause of theileriosis outbreaks. Parasite Vector. 4(22): 1-10. doi: 10.1186 / 1756 – 3305 - 4 -22.
[KEMENTAN RI] Kementrian Pertanian Republik Indonesia. 2009. Keputusan Menteri PertanianNo 3238 tentang Penggolongan Jenis-Jenis Hama Penyakit Hewan Karantina, Penggolongan dan Klasifikasi Media Pembawa. Jakarta (ID): Kementrian Pertanian Republik Indonesia.
19 [KEMENTAN RI] Kementrian Pertanian Republik Indonesia. 2013. Peraturan Menteri Pertanian No 113 tentang Tindakan karantina Hewan Terhadap Pemasukan Sapi Indukan, Sapi Bakalan dan Sapi Siap Potong ke dalam Wilayah Negara Republik Indonesia. Jakarta (ID): Kementrian Pertanian Republik Indonesia.
Kocan KM, de la Fuente J, Guglielmone AA, Melendez RD. 2003. Antigens and alternatives for control of Anaplasma marginale infection in cattle. Clin Microbiol Rev. 16 (04): 698-712. doi: 10.1128/CMR.16.4.698-712.2003. Mahmmod YS, Elbalkemy FA, Klaas IC, Elmekkawy MF, Monazie AM. 2011.
Clinical and haemotological study on water buffaloes (Bubalus bubalis) and crossbreed cattle naturally infected with Theileria anullata in Sharkia Province, Egypt.TTB Dis. 2: 168-171. doi: 10.1016/j.ttbdis.2011.05.001. Merck Veterinary Manual. 2014. Hematology References Ranges. [diunduh 2014
Maret 17]. Tersedia pada: http: // www. merckmanuals. Com / vet / appendixes / reference _guides/hematologic_reference_ranges.html.
Merck Veterinary Manual. 2014. Normal Rectal References Ranges. [diunduh 2014 Maret 17]. Tersedia pada: http://www.merckmanuals.Com/ vet/ appendixes / reference_ guides/normal_ rectal_ temperature_ranges.html.
[NCBI] National Center for Biotechnology Information. 2014. NCBI Taxonomy. [diunduh 2014 Maret 17]. Tersedia pada: https:// www . ncbi . nlm . nih . gov / Taxonomy/Browser/
Ndungu SG, Brown CGD, Dolan TT. 2005. In vivo comparison of suspectibility between Bos indicus and Bos taurus cattle type to Theileria parva infection. Onderstepoort J Vet Res. 72(1):13-22.
[OIE] Office International des Epizooties. 2008. Theileriosis. Chapter 2.4.16. Terrestrial Manual 2008. [diunduh 2014 April 1]. Tersedia pada: http://
www.oie.int/ fileadmin/ Home/eng/ Health _ standards / tahm / 2.04.16 _ THEILIERIOSIS.pdf.
[OIE] Office International des Epizooties. 2010. Bovine Babesiosis. Chapter 2.4.2. Terrestrial Manual 2010. [diunduh 2014 April 1]. Tersedia pada: http: // www . oie . int / fileadmin / Home / eng / Health _ standards / tahm / 2 . 04 . 02 _bovine_babesiosis.pdf.
[OIE] Office International des Epizooties. 2012. Bovine Anaplasmosis. Chapter 2.4.1. Terrestrial Manual 2012. [diunduh 2014 Februari 24]. Tersedia pada: http:// www . oie . int / fileadmin / Home / eng / Health _ standards / tahm / 2.04.01_BOVINE_ANAPLASMOSIS.pdf.
Okon OE, Opara K, Etim SE, Iboh CI, Oku EE. 2012. Experimental transmission of Babesia bigemina by Boophilus decoloratus in cattle. Aca J Animal Dis. 1(1): 1-6. doi: 10.5829/idosi.ajad.2012.1.1.6116.
Perera PK, Gasser RB, Firestone SM, Anderson GA, Malmo J, Davis G, Beggs DS, Jabbar A. 2014. Oriental theileriosis in dairy cows causes a significant milk production loss. Parasite Vector. 7(73): 1-8. doi: 10.1186/1756-3305-7-73.
Rymaszewska A, Grenda S. 2008. Bacteria of The genus Anaplasma – characteristics of Anaplasma and their vectors: a review. Vet Med- Czech. 53(11): 573-584.
Sajid MS, Siddique RM, Khan SM, Iqbal Z, Khan MN. 2014. Prevalence and risk factors of anaplasmosis in cattle and buffalo populations of District Khanewal,
20
Punjab, Pakistan. Glob Vet. 12(1): 146-153. doi: 10.5829 / idosi . gv. 2014. 12. 01. 8252.
Silitonga RJP. 2009. Theileriosis pada Sapi Potong Impor dari Australia melalui Pelabuhan Tanjung Priok. Bogor (ID): Institut Pertanian Bogor.
Tan-ariyaa P, Kerdmaneea C, sarataphanb N, Mungthinc M. 2001. A short term In vitro cultivation of Thai isolate Theileria sp.ScienceAsia. 27: 149 – 156. Yabsley MJ, Shock BC. 2013. Natural history of zoonotic Babesia: role of wildlife
21 Lampiran 1 Prevalensi anaplasmosis pada sapi bakalan asal Australia Agustus - September 2014 No Lokasi IKH Jumlah sampel (ekor) Jumlah positif Anaplasma sp. (ekor) Prevalensi (%) 1 Cianjur 45 26 57.78 2 Cileungsi 53 30 56.60 3 Jonggol 41 23 56.09 4 Subang 40 29 72.50 5 Tangerang 58 33 56.90 6 Bandung 43 28 65.12 Total 280 169 60.36
Lampiran 2 Prevalensi babesiosis pada sapi bakalan asal Australia Agustus - September 2014 No Lokasi IKH Jumlah sampel (ekor) Jumlah positif Babesia sp. (ekor) Prevalensi (%) 1 Cianjur 45 18 40.00 2 Cileungsi 53 23 43.39 3 Jonggol 41 10 24.39 4 Subang 40 19 47.50 5 Tangerang 58 26 44.83 6 Bandung 43 24 55.81 Total 280 120 42.86
Lampiran 3 Prevalensi theileriosis pada sapi bakalan asal Australia Agustus - September 2014 No Lokasi IKH Jumlah sampel (ekor) Jumlah positif Theileria sp. (ekor) Prevalensi (%) 1 Cianjur 45 23 51.11 2 Cileungsi 53 36 67.92 3 Jonggol 41 19 46.34 4 Subang 40 28 70.00 5 Tangerang 58 42 72.41 6 Bandung 43 26 60.47 Total 280 174 62.14
22
Lampiran 4 Proporsi parasit darah pada sampel ulas darah sapi bakalan asal Australia Agustus - September 2014
No Lokasi IKH Jumlah sampel (ekor) Jumlah negatif parasit darah (ekor) Jumlah positif parasit darah (ekor) Proporsi (%) 1 Cianjur 45 8 37 82.22 2 Cileungsi 53 6 47 88.67 3 Jonggol 41 4 37 90.24 4 Subang 40 2 38 95.00 5 Tangerang 58 5 53 91.37 6 Bandung 43 2 41 95.34 Total 280 27 253 90.35
Lampiran 5 Proporsi multi infeksi parasit darah sampel ulas darah sapi bakalan asal Australia Agustus - September 2014
No Lokasi IKH Jumlah sampel multi infeksi AB AT BT ABT 1 Cianjur 22 3 (13.63%) 5 (22.73%) 5 (22.73%) 9 (40.91%) 2 Cileungsi 31 5 (16.13%) 8 (25.81%) 6 (19.35%) 12 (38.71%) 3 Jonggol 14 3 (21.43%) 7 (50%) 3 (21.43%) 1 (7.14%) 4 Subang 29 3 (10.34%) 10 (34.49%) 7 (24.14%) 9 (31.03%) 5 Tangerang 34 4 (11.76%) 10 (29.41%) 6 (17.65%) 14 (41.18%) 6 Bandung 28 6 (21.43%) 7 (25%) 7 (25%) 8 (28.57%) Total 158 24 (15.19%) 47 (29.75%) 34 (21.52%) 53 (33.54%)
Lampiran 6 Hasil uji T tidak berpasangan
p value Mean Difference CI 95%
Hemoglobin 0.58 0.21 (-0.57) - 0.95 Eritrosit 0.45 0.17 0.26 - 0.59 PCV 0.79 0.27 (-1.74) - 2.28 Temperatur tubuh 0.08 0.23 (-0.03) - 0.49 Pulsus 0.36 1.99 (-2.25) - 6.24 Frekuensi nafas 0.36 -1.70 (-5.39) - 1.98 Berat badan 0.14 6.39 (-2.26) - 15.03
23
RIWAYAT HIDUP
Penulis dilahirkan di Dili pada tanggal 21 April 1983 dari pasangan Tefi Mathias dan Suwarni. Penulis merupakan anak pertama dari tiga bersaudara. Penulis lulus dari SMU Stella Duce 1 Yogyakarta pada tahun 2001 dan pada tahun yang sama diterima di Fakultas Kedokteran Hewan, Universitas Gadjah Mada. Penulis mendapatkan gelar Dokter Hewan pada tahun 2007. Penulis bekerja sebagai praktisi kesehatan hewan pada tahun 2008 dan menjadi pegawai Badan Karantina Pertanian, Kementrian Pertanian pada tahun 2009. Penulis diterima di Program Studi Kesehatan Masyarakat Veteriner, Fakultas Kedokteran Hewan, Institut Pertanian Bogor melalui jalur beasiswa Badan Karantina Pertanian (Barantan) pada tahun 2013. Penulis menikah dengan Yunus Isnawan dan memiliki seorang putri bernama Brigitta Laras Yunindra. Penulis dari tahun 2009 hingga saat ini bekerja di Balai Besar Karantina Pertanian Tanjung Priok.
