DAFTAR PUSTAKA. Avnimelech Y Carbon/nitrogen ratio as a control element in aquaculture systems. Aquaculture 176:

(1)

DAFTAR PUSTAKA

Alanara A, Kadri S, Paspatis M. 2001. Di dalam: Houlihan D, Boujard T, Jobling M, Editor. Food Intake in Fish. Oxford: Blackwell Publishing. Hlm 332-353. Allsopp M, Johnston P, Santillo D. 2008. Challenging the Aquaculture Industry on

Sustainability: Technical Overview. Washington: Greenpeace Research

Laboratories Technical.

Al Azad S, Chong VC, Vikineswary S. 2002. Phototrophic bacteria as feed supplement for rearing Penaeus monodon larvae. Journal of the World

Aquaculture Society 33: 158-168.

Asaduzzaman M et al. 2009. Effect of addition of tilapia Oreochromis niloticus and substrates for periphyton developments on pond ecology and production in C/N-controlled freshwater prawn Macrobrachium rosenbergii farming systems.

Aquaculture 287: 371-380.

Avnimelech Y. 1999. Carbon/nitrogen ratio as a control element in aquaculture systems. Aquaculture 176: 227-235.

Avnimelech Y. 2007. Feeding with microbial flocs by tilapia in minimal discharge bio-flocs technology ponds. Aquaculture 264: 140-147.

Azim ME, Little DC. 2008. The biofloc technology (BFT) in indoor tanks: water quality, biofloc composition, and growth and welfare of Nile tilapia (Oreochromis niloticus). Aquaculture 283: 29-35.

Barnes RD. 1987. Invertebrate Zoology. Orlondo: Saunders College Publishing. Beatty JT. 2002. On the natural selection and evolution of the aerobic phototrophic

bacteria. Photosynthesis Research 73: 109-114.

Beveridge MCM. 2004. Cage Aquaculture. Ed ke-3. Oxford: Blackwell Publishing. [BSN] Badan Standarisasi Nasional. 2000. SNI 01-6484.1: Induk Ikan Lele Dumbo (Clarias gariepinus x C. fuscus) Kelas Induk Pokok (Parent Stock). Jakarta: BSN.

Brune DE, Schwartz G, Eversole AG, Collier JA, Schwedler TE. 2003. Intensification of pond aquaculture and high rate photosynthetic system.

Aquaculture Engineering 28: 65-86.

Burford MA, Thomson PJ, McIntosh RP, Bauman RH, Pearson DC. 2003. Nutrient and microbial dynamics in high-intensity, zero-exchange shrimp ponds in Belize. Aquaculture 219: 393-411.

(2)

Buford MA, Thompson PJ, McIntosh RP, Bauman RH, Pearson DC. 2004. The contribution of flocculated material to shrimp (Litopenaeus vannamei) nutrition in a high-intensity, zero-exchange system. Aquaculture 232: 525-537.

Crab R, Avnimelech Y, Defoirdt T, Bossier P, Verstraete W. 2007. Nitrogen removal techniques in aquaculture for a sustainable production. Aquaculture 270: 1-14.

Devaraja TN, Yusoff FM, Shariff M. 2002. Changes in bacterial populations and shrimp production in ponds treated with commercial microbial products.

De Schryver P, Crab R, Defoirdt T, Boon N, Verstraete W. 2008. The basics of bio-flocs technology: The added value for aquaculture. Aquaculture 277: 125-137. De Schryver P, Verstraete W. 2009. Nitrogen removal from aquaculture pond water

by heterotrophic nitrogen assimilation in lab-scale sequencing batch reactors. Bioresource Technology 100: 1162-1167.

Dore I, Frimodt C. 1978. An Illustrated Guide to Shrimp of The Word. New York: Van Nostrand Reinhold.

Ebeling JM, Timmons MB, Bisogni JJ. 2006. Engineering analysis of the stoichiometry of photoautotrophic, autotrophic, and heterotrophic removal of ammonia-nitrogen in aquaculture systems. Aquaculture 257: 346-358.

Ekasari J. 2008. Bio-flocs technology: the effect of different carbon source, salinity and the addition of probiotics on the primary nutritional value of the bio-flocs [Tesis]. Gent: Faculty of Bioscience Engineering, Ghent University.

[FAO] Food and Agricultural Organization. 2007. The State of World Fisheries and

Aquaculture 2006. Rome: Fisheries and Aquaculture Department, FAO-UN.

Frimpong EA, Lochmann SE, Bodary MJ, Stone NM. 2004. Suspendeed solid from baitfish pond effluents in drainage ditches. Journal of the World Aquaculture

Society 35: 159-166.

Getha K, Chong VC, Vikineswary S. 1998. Potential use of the phototrophic bacterium, Rhodopseudomonas palustris, as an aquaculture feed. Asian

Fisheries Science 10: 223-232.

Gross A, Boyd CE. 2000. Nitrogen transformations and balance in chanel catfish ponds. Aquaculture Engineering 24: 1-14.

Hargreaves JA. 2006. Photosynthetic suspended-growth systems in aquaculture.

(3)

Hari B, Kurup BM, Varghese JT, Schrama JW, Verdegem MCJ. 2004. Effect of carbohydrate addition on production in extensive shrimp culture systems.

Hougardy A, Tindall BJ, Klemme JH. 2000. Rhodopseudomonas rhenobacensis sp. nov., a new nitrate-reducing purple non-sulfur bacterium. International Journal

of Systematic and Evolutionary Microbiology 50: 985-992.

Irianto A. 2003. Probiotik Akuakultur. Yogyakarta: Gadjah Mada University Press. Lazur AM, Britt DC. 1997. Pond recirculating production systems. Southern

Regional Aquaculture Center Publication No. 455.

Liu F, Han W. 2004. Reuse strategy of wastewater in prawn nursery by microbial remediation. Aquaculture 230: 281-296.

Masser MP. 2004. Cage and in-pond raceways. Di dalam: Tucker CS, Hargreaves JA, Editor. Biology and Culture of Channel Catfish. Amsterdam: Elseiver. Hlm 530-544.

New MB. 2002. Farming Freshwater Prawns: A Manual for Cultureof The Gaint

River Prawn (Macrobrachium rosenbergii). Roma: Food and Agriculture

Organization of The United Nations.

Paturau JM. 1982. By-products of the Cane Sugar Industry. Ed ke-2. Amsterdam: Elseivier Publishing Co.

Peteri A, Nandi S, Chowdhury SN. 1992. Manual on Seed Production of African

Catfish (Clarias gariepinus). Roma: Food and Agriculture Organization of The

United Nations.

Pillay TVR. 2004. Aquaculture and the Environment. Ed ke-2. Oxford: Blackwell Publishing.

Pillay TVR, Kutty MN. 2005. Aquaculture Principles and Practices. Ed ke-2. Oxford: Blackwell Publishing.

Richards BN. 1994. The Microbiology of Terrestrial Ecosystems. New York: Longman Scientific & Technical.

Rosenberry, B. 2006. Meet the Flockers. Shrimp News International; October 1, 2006.

(4)

Singh ISB et al. 2005. Recirculation systems for organic shrimp and prawn seed production. Di dalam: Subasinghe T, Singh T, Lem A, Editor. The Production

and Marketing of Organic Aquaculture Products. Proceedings of The Global Technical and Trade Conference; Ho Chi Minh City, 15-17 June 2004.

Malaysia: Infofish. hlm 75-95.

Steele RGD, Torrie JH. 1980. Principles and Procedures of Statistic. Ed ke-2. New York: McGraw-Hill.

Stickney RR. 2005. Aquculture: An Introductory Text. USA: CABI Publishing. Surawidjaja EH. 2006. Akuakultur berbasis “throphic level”: revitalisasi untuk

ketahanan pangan, daya saing ekspor dan kelestarian lingkungan [orasi ilmiah]. Bogor: Fakultas Perikanan dan Ilmu Kelautan, Institut Pertanian Bogor.

Teshima S-I, Koshio S, Ishikawa M, Alam MS, Hernandez LHH. 2006. Protein requirements of the freshwater prawn Macrobrachium rosenbergii evaluated by the factorial method. Journal of the World Aquaculture Society 37: 145-153. Uddin MS et al. 2007. Technical evaluation of tilapia (Oreochromis niloticus)

monoculture and tilapia-prawn (Macrobrachium rosenbergii) polyculture in earthen ponds with or without substrates for periphyton development.

Vaseeharan B, Ramasamy P. 2003. Control pathogenic Vibrio spp. By Bacillus substilis BT 23, a possible probiotic treatment for black tiger shrimp Penaeus monodon. Applied Microbiology 36: 83-87.

Wahab MA, Masud OA, Yi Y, Diana JS, Lin CK. 2005. Integrated cage-cum-pond culture system with high-valued stinging catfish (Heteropneustes fossilis) in cages and low-valued carps in open pond. Di dalam: Burright J, Flemming C, Egna H, Editor. Twenty-Second Annual Technical Report. Oregon: Aquaculture CRSP. hlm 81-96.

Wedemeyer, GA. 1996. Physiology of Fish in Intensive Culture Systems. New York: Champman & Hall.

Weidenbach RP. 1982. Dietary components of freshwater prawns reared in Hawaiian ponds. Di dalam: New MB, Editor. Giant Prawn Farming. ‘Giant

Prawn 1980’, An International Conference on Freshwater Prawn Farming;

Bangkok, 15-21 June 1980. Amsterdam: Elseiver. hlm 257-267.

Yadav RK, Shresta MK, Pandit NP. 2007. Introduction of sahar (Tor putitora) in cage-cum-pond integration system of mixed-sex nile tilapia (Oreochromis

niloticus). Our Nature 5:52-59.

Yi Y. 1999. Modeling growth of nile tilapia (Oreochromis niloticus) in a cage-cum pond integrated culture system. Aquacultural Engineering 21:113-133.

(5)

Yi Y, Lin CK, Diana S. 2003. Hybrid catfish (Clarias macrocephalus x C.

gariepinus) and Nile tilapia (Oreochromis niloticus) in an integrated pen-cum

pond system: growth performance and nutrient budgets. Aquaculture 217: 395-408.

Yi Y, Phuong NT, Diana JS, Lin CK. 2005. Integrated cage-cum-pond culture system with high-valued climbing perch (Anabas testudineus) in cage suspended in nile tilapia (Oreochromis niloticus) pond. Di dalam: Burright J, Flemming C, Egna H, Editor. Twenty-Second Annual Technical Report. Oregon: Aquaculture CRSP. hlm 115-130.

(6)

(7)

Lampiran 1 Prosedur penambahan karbon

Penambahan sumber karbon mengikuti teori yang dikembangkan oleh Avnimelech (1999). Kontrol terhadap akumulasi nitrogen inorganik dalam kolam didasarkan pada metabolisme karbon dan proses-proses mikroba yang mengimobilisasi nitrogen. Bakteri dan mikroorganisme lain menggunakan karbohidrat (gula, pati dan selulosa) sebagai makanan untuk menghasilkan energi dan untuk tumbuh melalui pembentukan protein dan sel-sel baru. Dengan adanya karbon, nitrogen anorganik akan diasimilasi menjadi sel-sel mikroba.

Persamaan reaksi yang terjadi dalam perairan adalah seperti berikut:

C organik CO2 + energi + C terasimilasi dalam sel mikrobial (1)

Penambahan karbohidrat bertujuan mengurangi konsentrasi nitrogen anorganik pada sistem akuakultur intensif. Menurut persamaan (1) dan untuk mendefinisikan koefisien konversi mikroba (E), jumlah potensial asimilasi karbon mikroba, jika terdapat ∆CH yang dicerna, adalah sebagai berikut:

∆Cmik = ∆CH x %C x E (2)

Keterangan:

∆Cmik = Jumlah karbon yang terasimilasi oleh mikroba

%C = Kandungan karbon dari sumber karbon yang ditambahkan (58% untuk molase)

E = Efisiensi konversi mikroba

Jumlah nitrogen yang dibutuhkan untuk memproduksi material sel baru (∆N) tergantung pada rasio C/N pada biomassa mikroba, yang diperkirakan sekitar 4.

∆N = ∆Cmik/[C/N]mik = ∆CH x %C x E/[C/N]mik (3)

dan menggunakan nilai perkiraan %C, E dan [C/N]mik yang berturut-turut adalah 23,2%, 40% dan 4.

∆CH = ∆N /(0,232 x 0,4 / 4) = ∆N/0,0232 (4) Keterangan:

∆ N = Jumlah nitrogen yang diperlukan dalam pembentukan sel baru ∆ CH = Jumlah sumber karbon yang harus ditambahkan

C/N = 4 (rasio [C/N] bakteri heterotrof)

Ikan di dalam kolam mengasimilasi nitrogen yang ditambahkan ke dalam pakan hanya sekitar 67%. Sisanya sebesar 33% diekskresikan sebagai NH4 atau N

organik pada feses atau residu pakan. Hal ini dapat diasumsikan bahwa amonia terus berubah di dalam air, ∆NH4, secara langsung melalui ekskresi dan secara tidak

(8)

langsung melalui degradasi residu N organik oleh mikroba, kira-kira 50% dari nitrogen pakan yang terus berubah:

∆N = pakan x %Npakan x %N ekskresi (5)

Pertukaran sebagian air atau pemindahan endapan mengurangi perubahan amonia yang dapat dihitung atau ditentukan. Pada kolam tanpa pertukaran air, seluruh amonia menetap di kolam. Jumlah penambahan karbohidrat yang dibutuhkan untuk mengasimilasi amonia yang terus berubah menjadi protein mikroba dapat dihitung dengan persamaan (4) dan (5):

∆ CH = pakan x %N pakan x %N ekskresi / 0,0232 (6) = pakan x (32% protein x 16% N) x 33%/ 0,0232

= pakan x 0,051 x 0,33 / 0,0232 = pakan x 0,725

Asumsi:

1. Kadar protein pakan ikan lele 32% 2. Efisiensi konversi mikroba 40%

3. Jumlah karbon dalam sumber karbon 23,2% 4. C/N rasio bakteri heterotrof (target) 4 5. Nitrogen pakan ikan lele 16%

(9)

Lampiran 2 Manajemen pemberian pakan pada pembesaran ikan lele Minggu Target jumlah Target Bobot Target biomassa Target pakan

ke- (ekor) (g) (g) (%) (g) I 150 10,3 1.545 5,0 77,2 II 147 15,0 2.205 5,0 110,3 III 144 20,0 2.880 5,0 144,0 IV 141 30,0 4.230 5,0 211,5 V 138 40,0 5.520 4,5 248,4 VI 137 60,0 8.220 3,5 287,7 VII 136 80,0 10.880 3,0 326,4 - 135 100,0 13.500 - -

Berdasarkan manajemen pemberian pakan pada tabel di atas, jumlah pakan yang diberikan pada ikan lele selama pemeliharaan adalah 9.838,5 g. Pertambahan biomassa ikan lele selama pemeliharaan adalah 12.000 g.

(10)

Lampiran 3 Perhitungan padatan tersuspensi volatile (VSS)

Padatan tersuspensi volatile atau Volatile Suspended Solid (VSS) merupakan selisih antara padatan tersuspensi total atau Total Suspended Solid (TSS) dengan

Fixed Suspended Solid (FSS).

TSS diukur dengan metode gravimetrik. Prosedur pemeriksaannya adalah sebagai berikut:

1. Filter (Millipore dengan porositas 0,45 µm) dan “vacuum pump” disiapkan. Sebanyak 2 x 20 ml akuades disaring, penyaringan dibiarkan berlanjut sampai 2-3 menit untuk mengisap kelebihan air.

2. Kertas saring (filter) dikeringkan dalam oven selama 1 jam pada temperatur 103-105°C, didinginkan dalam desikator, lalu ditimbang (B mg).

3. Sebanyak 100 ml air sampel diambil dengan gelas ukur, diaduk kemudian disaring dengan menggunakan kertas saring (filter) yang telah ditimbang pada prosedur no. 2.

4. Filter dan residu dikeringkan dalam oven 103-105°C selama minimal 1 jam, didinginkan dalam desikator, selanjutnya ditimbang (A mg).

TSS (mg/l) =

(

)

_⎟⎟ ⎠ ⎞ ⎜⎜ ⎝ ⎛ × − mlSampel B A 1000 Keterangan:

A = Berat (mg) filter dan residu B = Berat (mg) filter

FSS diukur dengan metode gravimetrik. Prosedur pemeriksaannya adalah sebagai berikut:

1. Filter (Millipore dengan porositas 0,45 µm) dan “vacuum pump” disiapkan. Sebanyak 2 x 20 ml akuades disaring, penyaringan dibiarkan berlanjut sampai 2-3 menit untuk mengisap kelebihan air.

2. Kertas saring (filter) dikeringkan dalam oven selama 30 menit pada temperatur 550°C, didinginkan dalam desikator, lalu ditimbang (B mg).

3. Sebanyak 100 ml air sampel diambil dengan gelas ukur, diaduk kemudian disaring dengan menggunakan kertas saring (filter) yang telah ditimbang pada prosedur no. 2.

(11)

4. Filter dan residu dikeringkan dalam pembakar suhu 550°C selama 30 menit, didinginkan dalam desikator, selanjutnya ditimbang (A mg).

FSS (mg/l) =

(

)

_⎟⎟ ⎠ ⎞ ⎜⎜ ⎝ ⎛ × − mlSampel B A 1000 Keterangan:

A = Berat (mg) filter dan residu B = Berat (mg) filter

(12)

Lampiran 4 Perhitungan bobot bakteri heterotrof

Menurut Hougardy et al. (2000), sel bakteri Rodopseudomonas rhenobacensis strain RbT berukuran lebar 0,4-0,6 µm dan panjang 1,5-2,0 µm. Sedangkan berdasarkan Imhoff & Truper (1989) diacu dalam Hougardy et al. (2000), sel bakteri

Rodopseudomonas palustris dan Rodopseudomonas acidophila memiliki ukuran

diameter masing-masing 0,6-0,9 µm dan 1,0-1,3 µm.

Volume = (π x r2) x l = (3,14 x 0,42) x 2 = 1 µm3 1 µm3 = 1 µm3 x 10-9 mm3 x 10-3 ml x 1 g 1 µm3 1 mm3 1 ml = 1 x 10-12 g 2 µm 0,8 µm

(13)

Lampiran 5 Analisa statistik kinerja ikan lele

a. Laju pertumbuhan harian rata-rata/α (%) Deskripsi

Perlakuan Ulangan Rataan STDV

1 2 3 A (150:0) 4,37 4,66 4,59 4,54 0,15 B (150:300) 4,38 4,67 4,60 4,55 0,15 C (150:600) 4,31 4,75 4,52 4,53 0,22 ANOVA LPH Sum of Squares df Mean Square F Sig. Between Groups 0,001 2 0,000 0,013 0,987 Within Groups 0,188 6 0,031 Total 0,189 8 b. Kelangsungan hidup/SR (%) Deskripsi

1 2 3 A (150:0) 97,33 99,33 99,33 98,67 1,15 B (150:300) 98,67 98,00 99,33 98,67 0,67 C (150:600) 98,00 99,33 98,67 98,67 0,67 ANOVA SR Sum of Squares df Mean Square F Sig. Between Groups 0,000 2 0,000 0,000 1,000 Within Groups 4,436 6 0,739 Total 4,436 8

(14)

c. Rasio konversi pakan/FCR

Deskripsi

1 2 3 A (150:0) 0,83 0,83 0,88 0,85 0,03 B (150:300) 0,81 0,84 0,83 0,83 0,02 C (150:600) 0,85 0,79 0,79 0,81 0,03 ANOVA FCR Sum of Squares df Mean Square F Sig. Between Groups 0,001 2 0,001 1,050 0,406 Within Groups 0,004 6 0,001 Total 0,005 8

(15)

Lampiran 6 Analisa statistik keseimbangan massa nitrogen

a. Nitrogen yang diretensi oleh ikan lele (%) Deskripsi

1 2 3 A (150:0) 64,57 64,82 61,25 63,55 1,99 B (150:300) 65,89 64,25 64,46 64,87 0,89 C (150:600) 63,24 67,91 68,20 66,45 2,78 ANOVA Nitrogen teretensi Sum of Squares df Mean Square F Sig. Between Groups 12,679 2 6,339 1,519 0,293 Within Groups 25,034 6 4,172 Total 37,713 8

b. Nitrogen yang dibuang oleh ikan lele (%) Deskripsi

1 2 3 A (150:0) 35,43 35,18 38,75 36,45 1,99 B (150:300) 34,11 35,75 35,13 35,00 0,89 C (150:600) 36,76 32,09 31,80 33,55 2,78 ANOVA Nitrogen terbuang Sum of Squares df Mean Square F Sig. Between Groups 12,644 2 6,322 1,529 0,291 Within Groups 24,813 6 4,135 Total 37,457 8

(16)

Lampiran 7 Analisa statistik kelimpahan bakteri pada kolom air

a. Logaritma kelimpahan bakteri pada kolom air hari ke-7 Deskripsi

1 2 3

A (150:0) 4,08 3,81 3,82 3,90 0,12 B (150:300) 4,86 4,50 4,92 4,76 0,18 C (150:600) 4,76 4,98 4,46 4,73 0,21

ANOVA Log Kelimpahan bakteri H-7

Sum of Squares df Mean Square F Sig. Between Groups 1,423 2 0,712 14,914 0,005 Within Groups 0,286 6 0,048 Total 1,710 8 Multiple Comparisons LSD (I) Perlakuan (J) Perlakuan Mean Difference (I-J) Std. Error Sig. 95% Confidence Interval Lower Bound Upper Bound 1,00 2,00 -0,85667(*) 0,17837 0,003 -1,2931 -0,4202 3,00 -0,83000(*) 0,17837 0,003 -1,2664 -0,3936 2,00 1,00 0,85667(*) 0,17837 0,003 0,4202 1,2931 3,00 0,02667 0,17837 0,886 -0,4098 0,4631 3,00 1,00 0,83000(*) 0,17837 0,003 0,3936 1,2664 2,00 -0,02667 0,17837 0,886 -0,4631 0,4098 * The mean difference is significant at the .05 level.

(17)

b. Logaritma kelimpahan bakteri pada kolom air hari ke-28 Deskripsi

1 2 3

A (150:0) 4,93 5,26 4,81 5,00 0,23 B (150:300) 5,70 7,69 7,70 7,03 1,15 C (150:600) 5,92 6,49 6,43 6,28 0,31

Sum of Squares df Mean Square F Sig. Between Groups 6,322 2 3,161 6,411 0,032 Within Groups 2,958 6 0,493 Total 9,280 8 Multiple Comparisons LSD (I) Perlakuan (J) Perlakuan Mean Difference (I-J) Std. Error Sig. 95% Confidence Interval Lower Bound Upper Bound 1,00 2,00 -2,03000(*) 0,57331 0,012 -3,4328 -0,6272 3,00 -1,28000 0,57331 0,067 -2,6828 0,1228 2,00 1,00 2,03000(*) 0,57331 0,012 0,6272 3,4328 3,00 0,75000 0,57331 0,239 -0,6528 2,1528 3,00 1,00 1,28000 0,57331 0,067 -0,1228 2,6828 2,00 -0,75000 0,57331 0,239 -2,1528 0,6528 * The mean difference is significant at the .05 level.

(18)

c. Logaritma kelimpahan bakteri pada kolom air hari ke-49 Deskripsi

1 2 3

A (150:0) 5,52 5,60 5,30 5,47 0,16 B (150:300) 6,86 7,87 8,01 7,58 0,63 C (150:600) 6,63 7,92 7,78 7,44 0,71

Sum of Squares df Mean Square F Sig. Between Groups 8,338 2 4,169 13,611 0,006 Within Groups 1,838 6 0,306 Total 10,175 8 Multiple Comparisons LSD (I) Perlakuan (J) Perlakuan Mean Difference (I-J) Std. Error Sig. 95% Confidence Interval

Lower Bound Bound Upper

1,00 2,00 -2,10667(*) 0,45188 0,003 -3,2124 -1,0010 3,00 -1,97000(*) 0,45188 0,005 -3,0757 -,08643 2,00 1,00 2,10667(*) 0,45188 0,003 1,0010 3,2124 3,00 0,13667 0,45188 0,773 -0,9690 1,2424 3,00 1,00 1,97000(*) 0,45188 0,005 0,8643 3,0757 2,00 -0,13667 0,45188 0,773 -1,2424 0,9690 * The mean difference is significant at the .05 level.

(19)

Lampiran 8 Analisa statistik kelimpahan bakteri pada usus udang galah

a. Logaritma kelimpahan bakteri pada udang galah hari ke-28 Deskripsi

1 2 3

A (150:0) - - - - -

B (150:300) 9,91 8,98 9,73 9,54 0,49 C (150:600) 7,85 8,72 8,82 8,46 0,53

Sum of Squares df Mean Square F Sig. Between Groups 1,739 1 1,739 6,587 0,062 Within Groups 1,056 4 0,264 Total 2,795 5

b. Logaritma kelimpahan bakteri pada udang galah hari ke-49 Deskripsi

1 2 3

A (150:0) - - - - -

B (150:300) 9,96 10,32 10,22 10,17 0,19 C (150:600) 7,69 6,91 7,97 7,52 0,55

Sum of Squares df Mean Square F Sig. Between Groups 10,481 1 10,481 62,336 0,001 Within Groups 0,673 4 0,168 Total 11,153 5

(20)

Lampiran 9 Konsumsi oksigen rata-rata oleh bakteri heterotrof

Persamaan reaksi bakteri heterotrof:

NH4+ + 1,18C6H12O6 + HCO3- + 2,06O2 C5H7O2N + 6,06OH2O + 3,07CO2

N dalam bakteri = N/C5H7O2N = 14/113

Jika N = 1 g Æ 1g/C5H7O2N = 14/113

C5H7O2N = 113/14 g = 8,07 g

(1 gram nitrogen dikandung olah 8,07 g bakteri heterotrof) N org = 14/113 x 8,071 = 1 g

C org = 60/113 x 8,071 = 4,285 g Mol C5H7O2N = 113/14 : 113 = 1/14 g

Berdasarkan perbandingan pada persamaan reaksi di atas maka:

• Mol NH4+ = 1/14 Æ gram = mol x BM = 1/14 x 18 = 1,286 g

N inorg = 14/18 x 1,286 = 1 g

• Mol C6H12O6 = 1/14 x 1,18 Æ gram = (1/14 x 1,18) x 180 = 15,171 g

C org = 72/180 x 15,171 = 6,068 g • Mol HCO3- = 1/14 x 1 Æ gram = 1/14 x 61 = 4,357 g

C inorg = 12/61 x 4,357 = 0,857 g

• Mol O2 = 1/14 x 2,06 Æ gram = (1/14 x 2,06 ) x 32 = 4,709 g

• Mol CO2 = 1/14 x 3,07 Æ gram = ( 1/14 x 3,07) x 44 = 9,649 g

C inorg = 12/44 x 9,649 = 2,632 g

Berdasarkan data pada Tabel 5, rata-rata biomassa bakteri heterotrof pada kolom air perlakuan A, B, dan C berturut-turut adalah 3,02 g, 167 g dan 293 g. Sehingga untuk memproduksi bakteri heterotrof tersebut dibutuhkan oksigen sebanyak:

• A (150:0) O2 = 3,02/8,07 x 4,709 = 1,76 g • B (150:300) O2 = 167/8,07 x 4,709 = 97,45 g • C (150:600) O2 = 293/8,07 x 4,709 = 170,97 g

(21)

Lampiran 10 Analisa statistik kinerja udang galah

a. Laju pertumbuhan harian rata-rata/α (%) Deskripsi

1 2 3 A (150:0) - - - - - B (150:300) 3,10 3,13 2,70 2,98 0,24 C (150:600) 2,34 1,97 2,00 2,10 0,21 ANOVA LPH Sum of Squares df Mean Square F Sig. Between Groups 1,144 1 1,144 22,912 0,009 Within Groups 0,200 4 0,050 Total 1,344 5 b. Kelangsungan hidup/SR (%) Deskripsi

1 2 3 A (150:0) - - - - - B (150:300) 88,00 88,00 89,00 88,33 0,58 C (150:600) 75,67 73,00 83,00 77,22 5,18 ANOVA SR Sum of Squares df Mean Square F Sig. Between Groups 185,148 1 185,148 13,642 0,021 Within Groups 54,286 4 13,571 Total 239,434 5

(22)

Lampiran 11 Analisa statistik efisiensi nitrogen

a. Efisiensi nitrogen oleh udang galah (%) Deskripsi

1 2 3 A (150:0) - - - - - B (150:300) 4,04 4,14 3,24 3,81 0,49 C (150:600) 3,78 2,54 3,44 3,25 0,64 ANOVA Efisiensi

Sum of Squares df Mean Square F Sig. Between Groups 0,459 1 0,459 1,405 0,302 Within Groups 1,308 4 0,327

Total 1,767 5

b. Efisiensi nitrogen total (%)

Deskripsi

1 2 3 A (150:0) 64,57 64,82 61,25 63,55 1,99 B (150:300) 69,93 68,39 67,70 68,68 1,14 C (150:600) 67,02 70,45 71,64 69,70 2,40 ANOVA Efisiensi Sum of Squares df Mean Square F Sig. Between Groups 65,248 2 32,624 8,874 0,016 Within Groups 22,059 6 3,676 Total 87,307 8

(23)

Multiple Comparisons LSD (I) Perlakuan (J) Perlakuan Mean Difference

(I-J) Std. Error Sig. 95% Confidence Interval

Lower Bound Upper Bound 1,00 2,00 -5,12667(*) 1,56555 0,017 -8,9574 -1,2959 3,00 -6,15667(*) 1,56555 0,008 -9,9874 -2,3259 2,00 1,00 5,12667(*) 1,56555 0,017 1,2959 8,9574 3,00 -1,03000 1,56555 0,535 -4,8608 2,8008 3,00 1,00 6,15667(*) 1,56555 0,008 2,3259 9,9874 2,00 1,03000 1,56555 0,535 -2,8008 4,8608 * The mean difference is significant at the 0,05 level.

(24)

Lampiran 12 Perhitungan konversi nitrogen bakteri heterotrof (BH) berdasarkan nitrogen limbah dan pakan

Jumlah N pada biomassa BH selama pemeliharaan dihitung dengan menggunakan rumus:

∑ N BH = BH x t x P BH x N P

Keterangan: ∑ N BH = jumlah N pada biomassa bakteri heterotrof (g) BH = rata-rata produksi bakteri heterotrof (g/hari) t = waktu pemeliharaan (hari)

P BH = kandungan protein bakteri heterotrof (5,82%) N P = kandungan nitrogen pada protein (%)

Berdasarkan data pada Tabel 5 rata-rata produksi biomassa bakteri heterotrof per hari adalah 3,02 g (A), 166,80 g (B) dan 292,80 g(C). Sehingga jumlah N pada biomassa bakteri selama pemeliharaan adalah 1,38 g (A), 76,11 g (B) dan 133,60 (g).

Sedangkan berdasarkan data penelitian, jumlah N pakan yang digunakan selama penelitian adalah 498,77 g (A), 500,00 g (B) dan 500,57 g (C) serta jumlah N yang dibuang oleh ikan lele adalah 181,80 g (A), 175,67 (B) dan 167,94 g (C).

N limbah yang dikonversi menjadi N biomassa bakteri heterotrof dihitung dengan menggunakan rumus:

K N = [N BH : N L] x 100%

Keterangan : K N = konversi nitrogen (%)

N BH = nitrogen pada biomassa bakteri heterotrof (g) N L = nitrogen limbah (g)

Sehingga konversi N biomassa bakteri heterotrof dari N limbah adalah 0,76% (A), 43,32% (B) dan 79,55% (C) serta konversi N biomassa bakteri heterotrof berdasarkan N pakan adalah 0,28% (A), 15,22% (B) dan 26,70% (C).

(25)

Lampiran 13 Perhitungan nitrogen eutrofikasi dan penjumlahan nitrogen dalam bentuk TAN, NO2 dan NO3 hasil pengukuran

Jumlah nitrogen untuk eutrofikasi adalah 181,52 g (A), 156,63 g (B) dan 150,68 g (C). Rata-rata nitrogen per hari dihitung menggunakan rumus:

Rata-rata nitrogen per hari = N eutrofikasi : waktu pemeliharaan : volume kolam. Sehingga rata-rata nitrogen per hari adalah 0,31 mg/L (A), 0,27 mg/L (B), dan 0,26 mg/L (C).

Penjumlahan nitrogen hasil pengukuran:

A N dalam TAN 14/18 x 0,31 = 0,241 N dalam NO2 14/46 x 0,24 = 0,073 N dalam NO3 14/62 x 0,404 = 0,091 Jumlah N 0,405 B N dalam TAN 14/18 x 0,26 = 0,202 N dalam NO2 14/46 x 0,075 = 0,023 N dalam NO3 14/62 x 0,214 = 0,048 Jumlah N 0,273 C N dalam TAN 14/18 x 0,26 = 0,202 N dalam NO2 14/46 x 0,04 = 0,012 N dalam NO3 14/62 x 0,282 = 0,064 Jumlah N 0,278

(26)

Lampiran 14 Analisa statistik produksi ikan lele dan udang galah

a. Produksi bersih ikan lele (kg/m2/crop) Deskripsi

1 2 3 A (150:0) 0,79 0,78 0,74 0,77 0,03 B (150:300) 0,80 0,78 0,78 0,79 0,01 C (150:600) 0,77 0,82 0,83 0,81 0,03 ANOVA Produksi Sum of Squares df Mean Square F Sig. Between Groups 0,002 2 0,001 1,625 0,273 Within Groups 0,004 6 0,001 Total 0,006 8

b. Produksi tokolan udang galah (ekor/m2/crop) Deskripsi

1 2 3 A (150:0) B (150:300) 18 18 18 18 0 C (150:600) 30 29 33 31 2 ANOVA Produksi Sum of Squares df Mean Square F Sig. Between Groups 240,667 1 240,667 111,077 0,000 Within Groups 8,667 4 2,167 Total 249,333 5

(27)

c. Efisiensi pakan ikan lele&udang galah Deskripsi

1 2 3 A (150:0) 120,48 120,48 113,64 118,20 3,95 B (150:300) 129,87 128,20 126,58 128,22 1,64 C (150:600) 125,00 131,58 133,33 129,97 4,39 ANOVA Efisiensi pakan Sum of Squares df Mean Square F Sig. Between Groups 241,941 2 120,970 9,654 0,013 Within Groups 75,185 6 12,531 Total 317,126 8 Multiple Comparison LSD (I)

Perlakuan (J) Perlakuan Difference (I-J)Mean Error Std. Sig. 95% Confidence Interval

Lower Bound Bound Upper

1,00 2,00 -10,01667(*) 2,89032 0,013 -17,0890 -2,9443 3,00 -11,77000(*) 2,89032 0,007 -18,8424 -4,6976 2,00 1,00 10,01667(*) 2,89032 0,013 2,9443 17,0890 3,00 -1,75333 2,89032 0,566 -8,8257 5,3190 3,00 1,00 11,77000(*) 2,89032 0,007 4,6976 18,8424 2,00 1,75333 2,89032 0,566 -5,3190 8,8257 * The mean difference is significant at the 0,05 level.