A S A M dan KARBOHIDRAT TIM DOSEN ANALISA FARMASI 2022

(1)

A S A M dan KARBOHIDRAT

TIM DOSEN ANALISA FARMASI 2022

(2)

A S A M

Almawati Situmorang-kuali4 2

(3)

PENGGOLONGAN ASAM

Asam dibedakan menjadi 2 macam :

 Asam organik

 Asam anorganik ( H₂SO₄, HCl, HNO₃ ) Sifat golongan asam :

 Dapat membentuk garam dengan penambahan NaOH adan NaHCO₃, sedangkan fenol hanya dengan

penambahan NaOH

 Terbagi atas alifatis dan aromatis.

 Bentuknya padat asam oksalat, asam sitrat, dll) cairan kental (asam laktat), cair (asam formiat)

3 Almawati Situmorang-kuali4

(4)

REAKSI PENGGOLONGAN

1. Merubah lakmus biru menjadi merah

2. Dengan Na

₂

S

₂

O

₃

→ H

₂

S

₂

O

₃

→ SO

₂

+ H

₂

O + S↓ kuning

3. Dengan NaHCO

₃

→ NaOH + CO

₂

( gas )

(5)

REAKSI WARNA

1. Dengan FeCl₃ → berwarna

2. Cuprifil → + untuk yang mempunyai banyak gugus -OH 3. DAB – HCl

4. Marquis 5. Fehling 6. Frohde

7. Umbelliferon, Cara : zat + resorsin + H₂SO₄ pekat → panaskan + air + NaOH → fluorescensi

8. KMnO₄ + NaOH

(6)

REAKSI KRISTAL

 Aseton – air

 Sublimasi

(7)

REAKSI MASING – MASING ZAT

 Acetanilid

 Kristal mengkilat, tidak berbau, tidak berwarna

 TL 113 - 114°C

 Kelarutan dalam air 1:0,5, spiritus 1:3,7, eter 1:2,5

 Reaksi :

 zat padat + H₂SO₄ pekat + K₂Cr₂O₇ padat, aduk dengan batang pengaduk → ungu – ungu hijau

 Aqua brom → warna hilang, berlebih → endapan putih

 Reaksi indofenol :

 Zat + HCl panaskan, dinginkan + air + Fenol + kaporit → ungu kotor + ammonia berlebih → biru

 Sulimasi dan aseton - air

(8)

REAKSI MASING – MASING ZAT

 Asam salisilat

 Kristal jarum, tidak berbau, tidak berwarna

 TL 158°C

 Kelarutan dalam air 1: 550, spiritus 1:3, eter 1:2

 Reaksi :

 FeCl₃ → ungu ( stabil dalam spirt )

 Aqua brom → endapan putih

 Esterifikasi : zat + metanol + H₂SO₄ pekat → panaskan, bau gandapura

 Marquis : merah rosa

 Reaksi SPICA : zat padat + HNO₃ 5% + NH₄OH berlebih → kuning emas

 Sublimasi dan aseton – air

(9)

REAKSI MASING – MASING ZAT

 Asetosal

 Serbuk putih, fluorescensi ungu

 TL 137°C

 Reaksi :

 FeCl₃ → negatif, panaskan → ungu ( stabil dalam spirtus )

 Marquis : merah darah

 Frohde : segera ungu

(10)

REAKSI MASING – MASING ZAT

 Asam pikrat

 Kristal kuning, higroskopis, rasa pahit

 TL 121,5 – 122,5°C

 Reaksi :

 Larutan dalam air + NH₄OH dil + CuSO₄ → hijau, gemerlap

 Larutan dalam air + KCN → merah darah, KCN berlebih → mengendap

 Larutan dalam alkohol + glukosa → merah darah

(11)

REAKSI MASING – MASING ZAT

 Asam ascorbat

 TL 191 – 194°C

 Kelarutan dalam air 1: 3,5, spiritus 1:20

 Reaksi :

 Aqua iod → warna iod hilang

 KMnO₄ → warna hilang

 Nessler → hijau merah → abu-abu

 NaOH → merah ( tidak dalam campuran )

 Larutan + HCl → biru hijau

 FeNO₃ → kuning orange

(12)

REAKSI MASING – MASING ZAT



Asam sitrat



Kristal tak berwarna, rasa asam



TL 100°C ( dg air kristal ), 153°C ( anhidrit )



Larut baik dalam air dan spiritus



Reaksi :



Zat + metanol → gerus, bau jeruk



Sublimasi dan aseton – air

(13)

REAKSI MASING – MASING ZAT

 Asam oksalat



Kristal tak berwarna, tak berbau, rasa asam



Larut dalam air dan etanol



Reaksi :



Carletti : +



Sublimasi dan aseton – air

(14)

REAKSI MASING – MASING ZAT



Asam borat



Kristal tak berwarna, serbuk putih, tak berbau



Kelarutan dalam air 1: 400, spiritus 1:3



Reaksi :



Zat + kertas curcuma + HCl dil, keringkan → coklat merah, asapi dg amonia → biru kelabu



Zat + metanol + H

₂

SO

₄

pekat → nyala hijau



Sublimasi dan aseton – air

(15)

REAKSI MASING – MASING ZAT

 Asam benzoat

 Kristal tak berwarna, tak berbau

 TL 121 – 122°C

 Kelarutan dalam air 1: 400, spiritus 1:3

 Reaksi :

 Zat + etanol + H₂SO₄ pekat → panaskan, + air

→ bau etil benzoat

 Zat + CaCO₃ + H₂O → saring, filtrat + FeCl₃ → endapan kuning coklat

(16)

REAKSI MASING – MASING ZAT

 Asam tartrat

 Kristal putih – kuning. TL 170°C

 Larut baik dalam air dan spiritus

 Reaksi :

 Reagen : Resorsin 2%, KBr 10%, Aqua 100%, H₂SO₄pkt 1%

 Positif untuk asam tartrat, asam sitrat dan asam laktat

 Cara : zat + air + reagen + H₂SO₄ pkt → panaskan w.b. biru + air → merah frambos

 Asam tartrat → biru, + air → merah frambos

 Asam sitrat sesudah 10’ hijau, + air → merah

 Asam laktat sesudah 10’ biru, + air → merah

(17)

REAKSI MASING – MASING ZAT

Asam Suksinat

 Kristal tak berwarna ataukekuningan, Bau minyak batu ambar

 Sukar larut dalam air, TL184-190°C

 Reaksi :

 Larutan netral (dengan NH₄OH ) + FeCl₃ → ↓cokelat, larut dalam HCl

 Dengan pyrolisa ( pemijaran ) : menimbulkan batuk-batuk

 Dengan sinar biasa : kuning. Sinar UV : hijau muda

 Kristal

 Sublimasi dan aseton-air

 zat+ Kristal Pb asetat → Kristal

 Larutan zat + pDAB → merah

 Reaksi umbelliferon :

Larutan zat + H₂SO₄ +resorcin , dinginkan, encerkan dengan air dan basakan dengan NH₄OH

(18)

REAKSI MASING – MASING ZAT

 Asam Mefenamat

 Serbuk Kristal putih hingga kuning terang, Titik lebur : 230-231˚C

 Kelarutan : praktis tidak larut dalam air, larut dalam etanol 1:185, larut dalam kloroform 1: 150, larut dalam eter 1: 80, larut dalam larutan alkali hidroksida

 Reaksi :

 Zat + FeCl₃→ bintik jingga

 Zat + H₂SO₄ → biru + HCl → warna hilang atau menjadi berwarna kuning pucat

 Zat + HNO₃ → hijau lumut sampai hijau kekuningan

 Zat + pDAB HCl → tidak bereaksi

 Zat + K₄Fe(CN)₆ → tidak bereaksi f. Reaksi lybermann ( nitrosa ) :

Pereaksi : Zat + HNO₃ dan H₂SO₄→ warna biru

(19)

REAKSI MASING – MASING ZAT



Asam folat



Serbuk kuning jingga, tidak berbau, tidak berasa



TL 121 – 122°C



Sukar larut dalam air



Reaksi :



Zat + H

₂

SO

₄

→ warna kuning hilang



Larutan dalam NaOH → fluorescensi hijau–

biru



Sublimasi dan aseton-air

(20)

REAKSI MASING – MASING ZAT

 UMBELLIFERON

(21)

KARBOHIDRAT

(22)

Almawati Situmorang-Kuali5 22

 Karbohidrat merupakan senyawa polihidroksiketon atau polihidroksialdehid yang mengandung unsur karbon, hidrogen, dan oksigen.

 Karbohidrat sangatlah beragam sifatnya.

 Salah satu perbedaan utama antara berbagai tipe karbohidrat adalah tipe molekulnya.

 Berbagai senyawa yang termasuk karbohidrat

mempunyai berat molekul yang berbeda yaitu dari senyawa yang sederhana yang mempunyai berat molekul 90 hingga 50.000 bahkan lebih.

 Berbagai senyawa tersebut digolongkan menjadi tiga golongan yaitu golongan monosakarida, disakarida dan polisakarida.

(23)

Karbohidrat adalah merupakan hasil kondensasi dari oksi aldehid atau oksi keton alifatis.

Berdasarkan dari asalnya :

1. Karbohidrat alam ( gula alam )

2. Karbohidrat sintetis ( gula buatan ) Penggolongan karbohidrat :

1. Monosakarida

2. Disakarida

3. Polisakarida

23 Almawati Situmorang-Kuali5

(24)

1. Monosakarida, karbohidrat yang sederhana, dalam arti

molekulnya hanya terdiri atas beberapa atom karbon saja dan tidak dapat diuraikan dengan cara hidrolisis dalam

kondisi lunak menjadi karbohidrat lain. Contoh: glukosa, fruktosa, pentosa

2. Disakarida, Senyawa yang termasuk oligosakarida

mempunyai molekul yang terdiri atas beberapa molekul monosakarida. Dua molekul monosakarida yang berikatan satu dengan yang lain, membentuk satu molekul disakarida.

Contoh: Sukrosa, Laktosa, maltosa

(25)

 Urutan tingkat rasa manis pada beberapa mono dan disakarida

(26)

3. Polisakarida

Pada umumnya polisakarida mempunyai molekul besar dan lebih kompleks daripada mono dan oligosakarida, Molekul polisakarida terdiri atas banyak molekul monosakarida.

Polisakarida yang terdiri atas satu macam monosakarida saja disebut homopolisakarida, sedangkan yang mengandung

senyawa lain disebut heteropolisakarida.

Umumnya polisakarida berupa senyawa berwarna putih dan tidak berbentuk kristal, tidak memiliki rasa manis dan tidak memiliki sifat mereduksi.

Contoh: Amilum, Glikogen, Dekstrin, Selulosa

(27)

Berdasarkan sifat inversinya :

1. Gula terbuka, terbagi lagi menjadi a. Monosa, dibagi lagi menjadi :

1) Aldosa terbagi lagi :

a) Aldopentosa, contohnya : arabinosa, xylosa, rhamnosa b) Aldohexosa, contohnya : glukosa, galaktosa, mannosa 2) Ketosa : ketohexosa, contohnya : fruktosa

b. Biosa :

1) Mereduksi fehling, contohnya : laktosa, maltosa 2) Tidak mereduksi fehling, contohnya : sakarosa c. Polisakarida, terbagi menjadi :

1) Larut dalam air, contohnya : amilum, dextrin, glikogen, inulin

2) Tidak larut dalam air, contohnya : selulosa

2. Gula tertutup, merupakan lendir tumbuhan, contohnya : gom arab, tragacant

(28)

REAKSI PENGGOLONGAN

1. Reaksi Molish untuk identifikasi gula alam

2. Reaksi Luff dan Fehling untuk identifikasi gula terbuka

3. Reaksi Barfoed untuk identifikasi monosa

4. Reaksi Riegler untuk identifikasi aldosa

Untuk gula terbuka reaksi Fehling positif, tapi reaksi Luff lebih baik.

Karbohidrat yang mereduksi Fehling dapat membentuk kristal dengan Fenil hidrazin

Gula tertutup diinversi dahulu dengan asam lalu reaksi monosa

(29)

REAKSI WARNA

Tugas : cari gunanya, komposisi reagensnya, cara melakukan dan reaksi dan hasil positifnya

1 Molish 6 Selliwanof

2 Luff 7 Tollens

3 Fehling 8 Bials

4 Barfoed 9 Biuret

5 Benedict 10 Iodine

(30)

REAKSI KRISTAL

Hidrazon/osazon

Cara : 100 mg gula + 200 mg fenilhidrazin HCl + 300 mg Na asetat kristal + 2 ml air → dipanaskan/dimasak di wb sampai

terjadi endapan, kemudian endapan diamati di bawah mikroskop.

Lakukan blangko

Prinsip: Reaksi ini dapat digunakan baik untuk larutan aldosa

maupun ketosa, yaitu dengan menambahkan larutan fenilhidrazin, lalu dipanaskan maka akan terbentuk kristal yangberwarna

berwarna kuning yang dinamakan hidrazon (osazon).

larutan dekstroksa ditambah dengan larutan 2-fenilhirazin akan dihasilkan dekstrosazon , 2H₂O dan CO₂).

(31)

Uji Molisch

Bahan Uji Hasil Uji

(+/-) warna

glukosa + Cincin Ungu

Fruktosa + Cincin Ungu

Sukrosa + Cincin Ungu

Laktosa + Cincin Ungu

Maltosa + Cincin Ungu

Pati + Cincin Ungu

(32)

Uji Benedict

Bahan Uji Hasil Uji

(+/-) warna Endapan

glukosa + Hijau -kuning Merah bata Fruktosa + Hijau -kuning Merah bata

Sukrosa - Biru -

Laktosa + Hijau -kuning Merah bata Maltosa + Hijau -kuning Merah bata

Pati - Biru -

(33)

Uji Barfoed

(+/-) warna

glukosa + Biru Tua ( +++ )

Fruktosa + Biru Tua ( +++ )

Sukrosa + Biru Tua ( +++)

Laktosa + Biru Tua ( ++ )

Maltosa + Biru Muda ( ++ )

Pati + Biru Muda ( + )

(34)

Uji Seliwanoff

Bahan Uji Hasil Uji

(+/-) warna

glukosa - Tidak Berwarna

Fruktosa + Jingga

Sukrosa + Jingga

Laktosa + Jingga

Maltosa - Tidak Berwarna

Pati - Tidak Berwarna

(35)

Uji Fenilhidrazin

(+/-) kekeruhan Banyaknya Endapan

glukosa + + ++++

Fruktosa + ⁺⁺⁺ ++++

Sukrosa + ⁺⁺ +++

Laktosa + ⁺⁺ ++

Maltosa + ⁺⁺⁺ +

Pati - ⁺⁺⁺ -

Ket ++++ Banyak endapan +++ keruh

+++ Endapan sedang ++ Kurang keruh ++ Sedikit endapan + Sedikit keruh

+ Endapan kurang - Tidak ada endapan

(36)

Uji Iodium

Bahan Uji Hasil Uji (+/-)

glukosa -

Fruktosa -

Sukrosa -

Laktosa -

Maltosa -

Pati +

(37)

IDENTIFIKASI MASING – MASING ZAT

Amilum

 Serbuk halus, putih, tidak berbau, tidak berasa

 Sukar larut dalam air, larut dalam air panas

 Molish → positif

 Larutan kanji + aqua iod → biru

 Miroskopis dalam air

Arabinosa

• Rasa manis

• Larut dalam air dan etanol 80%

• Reaksi umum terhadap pentosa :

 reaksi Furfural-Schiff → merah

 reaksi Bial → biru hijau

 reaksi Tollens → merah ungu

• Luff → positif

• Molish → lama terjadi cincin ungu, dikocok → merah muda

(38)

IDENTIFIKASI MASING – MASING ZAT

Dextrin

• Serbuk putih kekuningan

• Tidak higroskopis

• Mudah larut dalam air

• Molish → positif ( lemah )

• Barfoed → negatif

• Cuprifil → positif

• Dipanaskan dalam air → berbusa

• Zat + aqua iod → merah ungu / merah coklat

 Miroskopis dalam air sama dengan amilum

(39)

IDENTIFIKASI MASING – MASING ZAT Glukosa

• Kristal putih

• Larut dalam air

• Molish → positif

• Fehling → positif

• Barfoed → positif

• Pinnoff → ungu muda

• Riegler → merah

• Osazon → positif setelah 2 menit

Sacharosa / gula

• Kristal putih

• Larut dalam air

• Fehling → negatif

• Barfoed → negatif

• Osazon → negatif

• Mollish → positif ( rosa )

• Seliwanoff → positif

(40)

IDENTIFIKASI MASING – MASING ZAT

Laktosa

• Barfoed → positif ( lama )

• Osazon → positif

setelah 30 menit, amati di mikroskop

• Larutan zat + 5 ml

NH₄OH → dipanaskan

→ merah

Glikogen

• Serbuk putih

• Larut dalam air

• Zat + iodium → coklat violet

• Zat + Pb-asetat → mengendap

(41)

IDENTIFIKASI MASING – MASING ZAT

Perbedaan gom arab dan tragacant :

(42)

IDENTIFIKASI MASING – MASING ZAT

Maltosa

• Barfoed → negatif,

dimasak lama → positif

• Osazon → positif setelah 15 – 30 menit

Mannosa

• TL 195 - 200°C

• Riegler → positif

• Osazon → positif setelah 15 menit

(43)

IDENTIFIKASI MASING – MASING ZAT

Perbedaan sakarin dan dulcin :

(44)

IDENTIFIKASI MASING – MASING ZAT

(45)

A. Metode Analisis Kualitatif Karbohidrat

1. Test Molish Prinsip:

Karbohidrat akan didehidrasi oleh asam sulfat pekat membentuk senyawa furfural atau turunannya.

Furfural dan turunannya akan berkondensasi dengan alfa- naftol (molish) membentuk cincin furfural yang berwarna ungu atau merah ungu pada bidang batas antara larutan karbohidrat dan H₂SO₄ pekat.

45

(46)

1. Test Molish…..



Uji Molisch dinamai sesuai penemunya yaitu

Hans Molisch, seorang ahli botani dari Australia.



Sampel yang diuji dicampur dengan reagent Molisch, yaitu α – naphthol yang terlarut dalam etanol



Setelah pencampuran atau homogenisasi ,

H

₂

SO

₄

pekat perlahan –lahan dituangkanmelalui dinding tabung reaksi agar tidak sampai

bercampur dengan larutan atau hanya membentuk lapisan.

46

(47)

47

(48)

[

Uji Luff adalah uji kimia kualitatif yang bertujuan menguji adanya gugus aldehid (-CHO). Komponen utama reagent Luff adalah CuO.

Uji ini dilakukan dengan menambahkan reagen luff pada sampel, kemudian dipanaskan. Reaksi positif pada uji Luff ditandai dengan adanya endapan merah.

Reaksi yang terjadi adalah:

Pada reaksi tersebut terjadi reduksi CuO menjadi Cu₂O. Cu₂O ini kemudian membentuk endapan merah bata.

Salah satu manfaat praktis uji luff adalah mengetahui adanya gula pereduksi atau aldosa (contohnya sukrosa), yang memiliki gugus aldehid.

2. Uji Luff

(49)

3. Metode Fehling

Prinsip dari metode fehling yaitu menggunakan gugus aldehid pada gula untuk mereduksi

senyawa Cu

₂

SO

₄

menjadi Cu

₂

O (endapan berwarna merah bata) setelah dipanaskan pada suasana basa (Benedict dan Fehling) atau asam (Barfoed) dengan ditambahkan agen

pengikat (chelating agent) seperti Na-sitrat dan K-Na-tatrat.



Reagent yang digunakan dalam pengujian ini adalah Fehling A (CuSO

₄

) dan Fehling B (NaOH dan K-Na tartrat).

49

(50)

3. Metode Fehling……….

 Pemanasan dalam reaksi ini bertujuan agar gugus

aldehida pada sampel terbongkar ikatannya dan dapat bereaksi dengan ion OH^- membentuk asam

karboksilat. Cu₂O (endapan merah bata) yang terbentuk merupakan hasil sampingan dari reaksi pembentukan asam karboksilat.

 Apabila digunakan larutan glukosayang lebih encer , endapan yang terjadi berwarna hijau kekuningan.

 Reaksi yang terjadi adalah:

50

(51)

4. Test Barfoed

 tes dilakukan untuk membedakan Monosakarida dan disakarida dengan mengontrol kondisi pH serta waktu pemanasan

 Prinsipnya berdasarka reduksi Cu²⁺dalam suasana

asam lemah (CH₃COOH) menjadi Cu⁺, menghasilkan endapan yang berwarna merah bata dari Cu₂O.

 Sampel monosakarida mempunyai waktu yang lebih cepat membentuk merah bata

51

(52)

4. Test Barfoed

 tes dilakukan untuk membedakan Monosakarida dan disakarida dengan mengontrol kondisi pH serta waktu pemanasan

 Prinsipnya berdasarka reduksi Cu²⁺dalam suasana

asam lemah (CH₃COOH) menjadi Cu⁺, menghasilkan endapan yang berwarna merah bata dari Cu₂O.

 Sampel monosakarida mempunyai waktu yang lebih cepat membentuk merah bata

52

(53)

5. Test Benedict



uji ini untuk mengetahui kandungan gula (karbohidrat) pereduksi. Gula pereduksi meliputi semua jenis monosakarida dan beberapa disakarida seperti laktosa dan maltosa



Prinsip: Larutan CuSO

₄

dalam suasana alkali akan direduksi oleh gula yang mempunyai

gugus aldehid sehingga CuO atau kupri tereduksi menjadi Cu

₂

O yang berwarna merah bata (endapan).

53

(54)

54

(55)

6. Test Selliwanof

Prinsip: Perubahan fruktosa oleh HCl panas menjadi levulinat dan hidroksimetil furfural, selanjutnya

kondensasi hidroksimetil dengan resorsinol akaan

menghasilkan senyawa sukrosa yang mudah dihidrolisa menjadi glukosa akan member reaksi positif

berwarna oranye.

55

(56)

7. Metode Tollens

 Prinsip: Tollen terdiri dari Ag₂SO₄ yang bila ada gula pereduksi Ag akan direduksi menjadi Ag⁺ yang akan membentuk cincin perak.

 Pereaksi tollens merupakan suatu oksidator / pengoksidasi lemah yang digunakan untuk mengoksidasi gugus aldehid, - CHO menjadi asam karboksilat, -COOH.

 Senyawa-senyawa yang mengandung gugus aldehid dapat dikenali melalui uji tollens. Contoh senyawa yang sering diuji adalah formalin, asetaldehid, dan glukosa.

 Kelemahan dari reaksi Tollen adalah dia bukan cuma

bereaksi dengan gula pereduksi tetapi juga bereaksi dengan senyawa keton yang mempunyai gugus metil.

56

(57)

7. Metode Tollens….

 Pereaksi tollens ini dapat dibuat dari larutan perak nitrat, AgNO₃.

 Mula-mula larutan ini direaksikan dengan basa kuat, NaOH(aq), kemudian endapan coklat Ag₂O yang

terbentuk dilarutkan dengan larutan amonia sehingga membentuk kompleks perak amoniakal, Ag(NH₃)₂⁺(aq).

57

(58)

7. Metode Tollens….

 Bermacam cara dapat ditempuh untuk membuat pereaksi tollens; yang penting larutan ini harus mengandung perak amoniakal.

 Larutan kompleks perak beramoniak inilah yang dapat mengoksidasi gugus aldehid menjadi asam yang disertai dengan timbulnya cermin perak. Oleh sebab itu, larutan perak amoniakal ini sering ditulis secara sederhana

sebagai larutan Ag₂O.

58

(59)

59

(60)

8. Uji Bials

60

(61)

9. Uji Bials

61

(62)

10. Uji Tollen

Pereaksi tollens merupakan suatu oksidator / pengoksidasi lemah yang dapat digunakan untuk mengoksidasi gugus aldehid, - CHO menjadi asam karboksilat, -COOH. Senyawa-senyawa yang mengandung gugus aldehid dapat dikenali melalui uji tollens.

Uji Tollen merupakan salah satu uji yang digunakan untuk

membedakan mana yang termasuk senyawa aldehid dan mana yang termasuk senyawa keton. Selain dengan menggunakan Uji Tollen

untuk membedakan senyawa aldehid dan keton dapat juga menggunakan Uji Fehling dan Uji Benedict.

Uji Tollen adalah, dimana ion kompleks perak ammonia mudah direduksi oleh aldehida menjadi logam perak. Perak hidroksida tidak larut dalam air, sehingga ion perak harus dikompleks oleh ammonia dalam suasana basa agar tetap larut. Persamaan untuk reaksi dapat ditulis

(63)

10. Uji Tollen

Pereaksi tollens ini dapat dibuat dari larutan perak nitrat, AgNO₃. Mula-mula larutan ini direaksikan dengan basa

kuat, NaOH(aq), kemudian endapan coklat Ag₂O yang terbentuk dilarutkan dengan larutan amonia sehingga membentuk kompleks perak amoniakal, Ag(NH₃)₂⁺(aq).

2AgNO₃(aq) + 2NaOH(aq) → Ag₂O(s) + 2NaNO₃(aq) + H₂O(l)

Ag₂O(s) + 4NH₃(aq) + 2NaNO₃(aq) + H₂O(l) →Ag(NH₃)₂NO₃(aq) + 2NaOH(aq)

(64)

9. Biuret Test

Uji untuk mengetahui adanya ikatan peptida dari suatu sampel

Prosedur Kerja

a. Sebanyak 3 mL larutan protein ditambah 1 mL NaOH 10% Dan dikocok.

b. Ditambahkan 1-3 tetes larutan CuSO4 0.1%.

c. Diamati timbulnya warna

Ion Cu2+ akan membentuk ikatan

kompleks berwarna ungu dengan peptida

pada kondisi Alkali

(65)

Senyawa berwarna biru-violet

(66)

2. Test Moore Prinsip:

Uji Moore menggunakan NaOH (alkali) yang berfungsi

sebagai ion OH^- yang akan berikatan dengan rantai aldehid yang membentuk aldol aldehid (aldehida dengan cabang gugus alkanol) yang berwarna kekuningan. Pemanasan bertujuan untuk membuka ikatan karbon dengan

hydrogen dan menggantikannya dengan gugus –OH.

66

(67)

9. Metode iodine

 Prinsipnya uji iodium digunakan untuk medeteksi adanya pati ( suatu polisakarida).

 Amilum atau pati akan menghasilkan warna biru. Hasil yang postif hanya pada penambahan air dan HCl dengan iodine. Iodin yang

ditambahkan berfungsi sebagai indikator suatu senyawa polisakarida.

 Uji Iodin dalam percobaan dilakukan dengan 3 kondisi yaitu kondisi, netral,asam dan basa,yaitu pada masing-masing tabung ditambahkan 2 tetes air pada tabung I ( netral ), 2 tetes HCl pada tabung II ( asam ) dan 2 tetes NaOH pada tabung III (basa).

 Kemudian ketiga tabung tersebut dipanaskan, setelah dipanaskan pada tabung I dengan kondisi netral diperoleh (+2 tetes air) tidak terjadi perubahan warna, dengan basa (+ 2 tetes NaOH) tidak

mengalami perubahan warna (warna tetap keruh) atau dengan kata lain tidak terbentuk ikatan koordinasi antara ion iodida pada heliks.

67

(68)

9. Metode iodine….

Hal ini disebabkan karena dengan basa I₂ akan mengalami reaksi sebagai berikut:

3 I₂ + 6 NaOH → 5 NaI + NaIO₃ + 3 H₂O

 Sehingga pada larutan tidak terdapat I₂ yang

menyebabkan tidak terjadinya ikatan koordinasi sehingga warna tetap keruh, sedangkan dengan kondisi asam (+ 2 tetes HCl) terjadi perubahan warna dari keruh menjadi bening.

Pada kondisi asam NaI dan NaIO₃ diubah menjadi I₂ kembali oleh asam klorida . Jadi pada kondisi asam-lah memberikan hasil uji terbaik. Dengan reaksi:

5 NaI + NaIO₃ + 6 HCl → 3 I₂ + 6 NaCl + 3 H₂O

68

(69)

7. Metode Osazon

Prinsip: Reaksi ini dapat digunakan baik untuk larutan

aldosa maupun ketosa, yaitu dengan menambahkan larutan fenilhidrazin, lalu dipanaskan maka akan terbentuk kristal yangberwarna berwarna kuning yang dinamakan

hidrazon (osazon).

larutan dekstroksa ditambah dengan larutan 2-fenilhirazin akan dihasilkan dekstrosazon , 2H₂O dan CO₂).

69

(70)

TUGAS PRESENTASI SETELAH UTS

BUAT PRESENTASI BERUPA POWER POINT, DENGAN MATERI

1. ANALISA KUANTITATIF /VOLUMETRI

2. TITRASI ASAM BASA

3. KOMPLEKSOMETRI

4. TITRASI BEBAS AIR

5. TITRASI REDOKS

6. NITRIMETRI

PANDUANNYA LIHAT PADA RPS MATA KULIAH ANFAR, TUGAS SAUDARA MEMBAHAS KAJIAN APA SAJA

(71)

TERIMA

KASIH...!!!!