28. Widyatmoko BS. Aktivitas antioksidan vitamin c dan e pada kadar sgot dan sgpt serum darah tikus putih yang terpapar allethrin.

(1)

61 2012.

2. Tjahjono. Buku ajar patologi saluran napas. Semarang: Badan Penerbit Universitas Diponegoro; 2011.

3. Riset kesehatan dasar. Jakarta: Badan Penelitian dan Pengembangan Kesehatan; 2013.

4. Abubakar MG, Hasan L. Toxicological effect of some mosquito coils brands in experimental rats. J Toxicol. 2007;4:1–6.

5. Chen S, Wong R, Shiu L, Chiou M, Lee H. Exposure to mosquito coil smoke may be a risk factor for lung cancer in taiwan. 2008;18(110):19–25.

6. Liu WL, Zhang JF, Hashim JH, Jalaludin J, Hashim, Z, Benard D, Goldstein BD . Mosquito coil emissions and health implications. Environ Heal Perspect. 2003;111:1454–60.

7. Martantya RS, Nasrul E, Basyar M . Gambaran hitung jenis leukosit pada pasien penyakit paru obstruktif kronik yang dirawat di rsup dr. m. djamil padang. Andalas J Health. 2014;3(2):217–20.

8. Yunianto I, Yanti FR, Wulaningrum F. Evaluasi aktivitas antioksidan daun sirsak (annona muricata) pada sistem respirasi mencit (mus musculus) terpapar asap anti nyamuk bakar sebagai bahan ajar biologi sma kelas xi. J Bioedutika. 2014;2(2):23–7.

9. Winarsi H. Antioksidan alami dan radikal bebas, potensi dan aplikasinya dalam kesehatan. Yogyakarta: Kanisius; 2007.

10. Nurliyana R, Syed Z, Musthapa S, Aisyah MR KR. Antioxidant study of pulps and peels og dragon fruits. Int Food Res J. 2010;17:367–75.

11. Patocka J . Biologically active pentacyclic triterpenes and their current medicine signification. J Appl Biomed. 2013;1:7–12.

12. Saputra NA . Pengaruh pemberian ekstrak kulit buah naga super merah (hylocereus costaricensis) terhadap malondialdehis dan gambaran

(2)

histopatologi tikus wistar yang dipapar asap rokok. Surabaya: Universitas Airlangga; 2014.

13. Sadler TW . Embriologi kedokteran langman. Jakarta: EGC; 2012.

14. Snell RS . Anatomi klinik untuk mahasiswa kedokteran. Jakarta: EGC; 2006. 15. Sloane E . Anatomy and physiology. Jakarta: EGC; 2004.

16. Sembulingan K, Sembulingan P . Medical physiology. 6th ed. New Delhi: Jaypee Brothers Medical Publishers; 2012.

17. Junqueira LC, Carneiro J . Histologi dasar. 10th ed. Jakarta: EGC; 2007. 18. Eroschenko VP . Atlas histologi difiore. 11th ed. Jakarta: EGC; 2013. 19. Faradz SMH . Histologi II. Semarang: Balai Penerbit Fakultas Kedokteran

Universitas Diponegoro; 2011.

20. Global initiative for chronic obstructive lung disease. National Institute of Health, National Heart, Lung and Blood Institute . 2001.

21. World Health Organization . Chronic obstructive pulmonary disease [Internet]. 2004. Available from: http://www.who.int/respiratory/copd/en/ 22. Global initiative for chronic obstructive lung disease (gold). In: Pocket guide

to copd diagnosis, management, and prevention [Internet]. 2015. p. 5–10. Available from: http://www.goldcopd.org/guidelines-pocket-guide-to-copd-diagnosis.html

23. Damjanov I . Histopatologi: buku teks dan atlas berwarna. Jakarta: Widya Medika; 2012. 27-33 p.

24. Kumar V, Cotran RS, Robbins SL . Buku ajar patologi. 7th ed. Jakarta: EGC; 2013.

25. Paranjape K, Gowariker V, Krishnamurthy V N GS. The pesticide encyclopedia [Internet]. CABI; 2014. 725 p. Available from: https://books.google.co.id/books?id=cnDHBgAAQBAJ&dq=Allethrin&hl=i d&source=gbs_navlinks_s

26. Intisari. Jangan asal semprot, bahaya…! Departemen Kesehatan Republik Indonesia. 2007;

27. Fishel FM . Pesticide toxicology profiles : Carbamate Pesticides [Internet]. 2005. Available from: http://extoxnet.orst.edu/index.html

(3)

28. Widyatmoko BS . Aktivitas antioksidan vitamin c dan e pada kadar sgot dan sgpt serum darah tikus putih yang terpapar allethrin. Semarang: Universitas Negeri Semarang; 2009.

29. Lerda D. Polycyclic aromatic hydrocarbons ( pahs ) factsheet. JRC Tech Notes. 2010;3:1–25

30. Mahardini T, Renawati, Yulistia A . Parameter polycyclic aromatic hydrocarbons (pahs) dalam standarisasi produk pangan. Bogor: Universitas Pertanian Bogor; 2008.

31. Dubey J, Banerjee A, Meena RK, Kumari KM, Lakhani A. Characterization of polycyclic aromatic hydrocarbons in emissions of different mosquito coils. Bull Environ Contam Toxicol [Internet]. 2014;92(6):650–4. Available from: http://link.springer.com/10.1007/s00128-014-1278-6

32. Soekanto TH, Perdanakusuma D . Intoksikasi karbon monoksida. Surabaya: Departemen / SMF Ilmu Bedah Plastik Fakultas Kedokteran Universitas Airlangga, RSUD Dr. Soetomo.

33. Sugiarti. Gas pencemar udara dan pengaruhnya bagi kesehatan manusia. J Chem [Internet]. 2009;10(1):50–8. Available from: http://ois.unm.ac.id/index.php/chemica/article/view/399

34. Manik K.E.S . Pengolahan lingkungan hidup. Jakarta: Djambatan; 2007. 35. Wardhana WA . Dampak pencemaran lingkungan. Yogyakarta: Andi; 2004. 36. Lin C, Wu Y, Lai C, Watson JG, Chow JC. Air quality measurements from

the southern particulate matter supersite in taiwan. 2008;8(3):233–64. 37. Murray JF, Broaddus VC, Martin TR, King TE, Schraufnagel DE, Mason RJ,

Nadel JA . Mason: Murray and nadel’s textbook of respiration medicine. 5th ed. Philadephia: Saunders Elsevier; 2010.

38. Tyner JW, Kim EY, Ide K . Blocking airway mucous cell metaplasia by inhibiting EGFR antiapoptosis and IL-13 transdifferentiation signals. J Clin Invest. 2005;116(2):309–21.

39. Vegad JI . A textbook of veterinary general pathology. India: International Book Distributing Co; 2007.

(4)

40. Zhang J, Qi H-W, Sun Y-P, Xie H-K, Zhou C-C. Mosquito coil exposure associated with small cell lung cancer: A report of three cases. Oncol Lett [Internet]. 2015;9(4):1667–71. Available from: http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/25789020

41. Choo WS, Yong WK. Antioxidant properties of two species of Hylocereu s fruits. 2011;2(3):418–25.

42. Puspaningtyas DE . The miracle of fruit. Jakarta: AgroMedia Pustaka; 2013. 43. Mahattanatawee, K., Manthey, J. A., Luzio, G., Talcott, S. T., Goodner, K., Baldwin EA. Total antioxidant activity and fiber content of select florida-grown tropical fruits. J Agric Food Chem. 2006;54:7355–63.

44. Esquivel P, Stintzing FC, Carle R . Phenolic compound profiles and their corresponding antioxidant capacity of purple pitaya (Hylocereus sp) genotypes. Z Naturforsch C, J Biosci. 2007;62:636–44.

45. Mudgil D, Barak S . Composition, properties and health benefits of indigestible carbohydrat polymers as dietary fiber. Int J Biol Macromol. 2013;(61):1–6.

46. Winarti S . Makanan fungsional. Yogyakarta: Graha Ilmu; 2010.

47. Herawati N. Formulasi ekstrak kulit buah naga merah (hylocereus polyrhizus), rosella dan buah salam pada pembuatan minuman alami.” belum diplublikasikan. Jember: Fakultas Teknologi Pertanian Universitas Jember; 2013.

48. Luo H, Cai Y, Peng Z, Liu T, Yang S. Chemical composition and in vitro evaluation of the cytotoxic and antioxidant activities of supercritical carbon dioxide extracts of pitaya (dragon fruit) peel. Chem Cent J [Internet].

2014;8(1):1. Available from:

http://www.pubmedcentral.nih.gov/articlerender.fcgi?artid=3880984&tool= pmcentrez&rendertype=abstract

49. Park YS, Jung ST, Kang SG, Heo BG, Arancibia A, Toledo F, Drzewiecki J, Namiesnik J, Gorinstein S . Antioxidants and proteins in ethylene- treated kiwi fruits. Food Chem. 2008;107:640–8.

(5)

50. Kosem N, Han YH, Moongkarndi P . Antioxidant and crytoprotective activities of methanolic extract from Garcinia mangostana hulls. Sci Asia. 2007;33:283–92.

51. Bertoncelj J, Dobersek U, Jamnik M, Golob T . Evaluation of the phenolic content, antioxidant activity and colour of Slovenian honey. Food Chem. 2007;(105):822–8

52. Kristanti JB . Buku ajar fitokimia. Surabaya: Airlangga University Press; 2008

53. Gould K, Davies KM, Winefield C . Anthocyanins: biosynthesis, functions, and applications. New York: Springer Verlag; 2008. 283-298 p.

54. Miguel MG . Antioxidant activity of medicinal and aromatic plants. J Flavour Fragr. 2010;25:291–312

55. Strack D, Vogt T, Schliemann W . Recent advances in betalain research. Phytochemistry. 2003;62:247–69.

56. Grotewold E . The genetics and biochemistry of floral pigments. Ann Rev Plant Biol. 2006;57:761–80.

57. Winarsi H . Aktivitas antioksidan dan organoleptik sosis daging sapi dan susu pasteurisasi yang diberi pewarna pigmen ekstrak kulit buah naga (Hylocereus sp). J Sci. 2010;4 - No. 01.

58. World Health Organization . Research guideline for evaluation the safety and efficiency of herbal medicines. Manila; 1993. 33-44 p.

59. Hansel TT, Barnes PJ . An atlas of chronic obstructive pulmonary disease. London: Parthenon Publishing group; 2004.

60. Kirana R. Pengaruh pemberian teh hijau ( cammelia sinensis ) terhadap kerusakan struktur histologis alveolus paru mencit yang dipapar asap rokok. Surakarta: Universitas Sebelas Maret; 2009.

61. Cheng V, Lee HR, Chen CS . Morphological changes in the respiratory system of mice after inhalation of mosquito-coil smoke. Toxicol Lett. 1992;62:2.

(6)

62. Idowu ET, Aimufua OJ, Ejovwoke Y. Toxicological effects of prolonged and intense use of mosquito coil emission in rats and its implications on malaria control. 2013;61(September):1463–73.

63. Lago JHG, Toledo-arruda AC, Mernak M, Barrosa KH, Martins MA, Tibério IFLC, et al. Structure-activity association of flavonoids in lung diseases. 2014;3570–95.

64. Calabrese EJ, Baldwin LA. Hormesis : The Dose-Response Revolution. Annu Rev Pharmacol Toxicol. 2003;43:175–97.

(7)

(8)

(9)

(10)

(11)

Lampiran 5. Metode baku histologi

A. Pengambilan Jaringan

Mengambil jaringan sesegera mungkin setelah mencit mati (maksimal 2 jam) dengan ukuran 1 cm3.

B. Fiksasi

Memasukkan ke dalam larutan fiksasi, yaitu merendam jaringan dalam larutan Neutral Buffered Formalin (BNF) 10%.

C. Dehidrasi

Mengeluarkan air dari jaringan, dengan cara :

1) Merendam jaringan dalam alkohol 30% masing-masing selama 20 menit dalam 3 botol yang berbeda.

2) Merendam jaringan dalam alkohol 40% selama 1 jam. 3) Merendam jaringan dalam alkohol 50% selama 1 jam. 4) Merendam jaringan dalam alkohol 60% selama 1 jam. 5) Merendam jaringan dalam alkohol 70% selama 1 jam. 6) Merendam jaringan dalam alkohol 80% selama 1 jam. 7) Merendam jaringan dalam alkohol 90% selama 1 jam. 8) Merendam jaringan dalam alkohol 96% selama 1 jam.

D. Clearing (Penjernihan)

Memasukkan jaringan yang telah didehidrasi ke dalam larutan penjernih agar parafin cair mudah masuk ke dalam jaringan, dengan cara :

(12)

1) Merendam jaringan dengan larutan alkohol 96% dan xylol (1:1) selama 2x20 menit.

2) Merendam jaringan dengan larutan xylol I selama 20 menit. 3) Merendam jaringan dengan larutan xylol II selama 20 menit. 4) Merendam jaringan dengan larutan xylol III selama 20 menit.

E. Embedding (Pengikatan)

Mengikat jaringan dengan parafin, dengan cara :

1) Blocking

a. Memasukkan jaringan dalam parafin cair dan xylol (1:1) selama 20 menit tiap 24 jam dan dimasukkan dalam oven 60oC agar tidak beku.

b. Memasukkan jaringan dalam parafin I selama 20 menit. c. Memasukkan jaringan dalam parafin II selama 20 menit. d. Memasukkan jaringan dalam parafin III selama 20 menit. e. Memasukkan jaringan dalam cetakan berbahan logam. f. Mendinginkan jaringan dalam air es sehingga cetakan dapat

dibuka.

2) Trimming

Memotong balok-balok parafin yang dalamnya berisi jaringan.

F. Sectioning (Pemotongan)

1) Menyiapkan object glass bersih.

2) Memotong balok parafin yang sudah disiapkan menggunakan mikrotom, dengan ketebalan 3-10 mikron.

(13)

3) Mengambil jaringan yang telah dipotong dengan menggunakan jarum dan memasukkan dalam water bath yang berisi air hangat 40-45o_C. 4) Mengambil jaringan menggunakan object glass yang sudah diberi

glisserin albumin.

5) Mengeringkan jaringan dan object glass.

6) Menambahkan timol setelah menutup jaringan dengan deck glass untuk mencegah pembusukan.

G. Staining (Pewarnaan)

1) Meletakkan preparat dalam staining yard.

2) Menghilangkan parafin yang ada dalam irisan jaringan. 3) Memasukkan slide jaringan dalam xylol I selama 2 menit. 4) Memasukkan slide jaringan dalam xylol II selama 2 menit.. 5) Rehidrasi dengan alkohol absolute I selama 1 menit.

6) Merendam dengan alkohol absolute II selama 1 menit. 7) Merendam dengan alkohol 96% selama 1 menit. 8) Merendam dengan alkohol 70% selama 1 menit. 9) Membilas dengan air selama 2 – 4 menit

10) Merendam preparat dalam larutan Hematoxyline Modified Ullies’s Mayer selama 5-7 menit.

11) Membilas dengan air mengalir 2-4 menit.

12) Bluing (membilas dengan alkohol 90%) sebanyak 10 celup 13) Membilas dengan air mengalir 2-4 menit.

(14)

15) Merendam dengan alkohol 96% selama 1 menit.

16) Mencelupkan pada Eosin-Phloxine sebanyak 10-20 celup 17) Merendam dengan alkohol 96% selama 1 menit.

18) Merendam dengan alkohol absolute I selama 2 menit menit. 19) Merendam dengan alkohol absolute II selama 2 menit menit. 20) Memasukkan slide jaringan dalam xylol I selama 2 menit. 21) Memasukkan slide jaringan dalam xylol II selama 2 menit. 22) Mengeringkan preparat dengan kertas saring.

23) Membersihkan kotoran yang ada di sekitar jaringan dengan kapas alkohol.

H. Mounting

(15)

Lampiran 6. Pembuatan Ekstrak Kulit Buah Naga Putih

Cara pembuatan ekstrak kulit buah naga putih dengan metode maserasi.

1. Kulit buah naga putih diiris-iris seukuran jari kelingking.

2. Dikeringkan dengan cara dijemur di bawah sinar matahari dengan ditutup kain. Hindari terkena sinar matahari secara langsung.

3. Setelah kering bahan ditimbang dengan neraca digital.

4. Masukkan bahan kering ke dalam labu erlemeyer, tambahkan pelarut etanol 70% sampai merendam bahan kering.

5. Gojok tabung elemeyer yang berisi kulit buah naga putih kering dan etanol.

6. Diamkan selama 24 jam, hindari terkena sinar. Tutup dengan kain atau dengan plastik hitam.

7. Disaring dengan menggunakan kain flannel. Hasil dari penyaringan berupa ekstrak cair.

8. Hasil ekstrak cair kemudian diuapkan menggunakan water bath untuk menghilangkan pelarut.

Pada penelitian ini dilakukan dua kali proses pembuatan ekstrak dengan data sebagai berikut :

I. Penimbangan 1: 48,75 gr Pelarut 1 : 250 ml Pelarut 2 : 250 ml Pelarut 3 : 200 ml

(16)

II. Penimbangan 2: 72,343 gr Pelarut 1 : 350 ml Pelarut 2 : 350 ml Pelarut 3 : 300 ml

(17)

Lampiran 7. Gambar hasil penelitian.

Gambar 6. Diagram batang indeks infiltrasi sel radang. Keterangan :

0 = tidak terdapat sel radang

1 = infiltrasi sel radang kurang dari sepertiga dari seluruh lapangan pandang 2 = infiltrasi sel radang pada sepertiga hingga dua per tiga dari seluruh lapangan

pandang

3 = infiltrasi sel radang lebih dari dua per tiga dari seluruh lapangan pandang K1 : Kelompok kontrol 1, 5 ekor mencit balb/c yang hanya diberi makanan dan

minuman standar selama 21 hari

K2 : Kelompok kontrol 2, 5 ekor mencit balb/c diberi paparan asap obat nyamuk bakar selama 8 jam.

P1 : Kelompok perlakuan 1, 5 ekor mencit balb/c diberi paparan asap obat nyamuk bakar selama 8 jam yang sebelumnya diberi ekstrak kulit buah naga putih 7,5 mg/mL. pe rse ra tus 0 10 20 30 40 50 60 70 80 K1 K2 P1 P2 P3 0 1 2 3

(18)

0 10 20 30 40 50 60 70 80 90 K1 K2 P1 P2 P3 0 1 2 3

P2 : Kelompok perlakuan 2, 5 ekor mencit balb/c diberi paparan asap obat nyamuk bakar selama 8 jam yang sebelumnya diberi ekstrak kulit buah naga putih 15 mg/mL.

P3 : Kelompok perlakuan 3, 5 ekor mencit balb/c diberi paparan asap obat nyamuk bakar selama 8 jam yang sebelumnya diberi ekstrak kulit buah naga putih 30 mg/mL.

Gambar 7. Diagram batang indeks destruksi septum interalveolaris. Keterangan :

0 = tidak terjadi perubahan struktur histologi

1 = destruksi alveolus pada kurang dari sepertiga dari seluruh lapangan pandang 2 = destruksi alveolus pada sepertiga hingga dua per tiga dari seluruh lapangan

pandang

3 = destruksi alveolus pada lebih dari dua per tiga dari seluruh lapangan pandang

pe

rse

ra

(19)

Gambar 8. Diagram batang indeks oedem alveolus. Keterangan :

0 = tidak terjadi perubahan struktur histologi

1 = oedem alveolus pada kurang dari sepertiga dari seluruh lapangan pandang 2 = oedem alveolus pada sepertiga hingga dua per tiga dari seluruh lapangan

pandang

3 = oedem alveolus pada lebih dari dua per tiga dari seluruh lapangan pandang

0

10

20

30

40

50

60

70

80 K1

K2

P1

P2

P3

0 1 2 3 pe rse ra tus

(20)

0 20 40 60 80 100 120 K1 K2 P1 P2 P3 0 1 2 3

Gambar 9. Diagram batang kerusakan alveolus paru. Keterangan:

0 = Tidak ada perubahan patologis.

1 = Kerusakan alveolus paru < 30 % dari kerusakan maksimal.

2 = Kerusakan alveolus paru antara 30% - 60% dari kerusakan maksimal.

3 = Kerusakan alveolus paru >60 % dari kerusakan maksimal.

p

erse

ra

(21)

Lampiran 8. Hasil skoring penelitian

Kelompok Sel Radang Destruksi Oedema

I II III IV V I II III IV V I II III IV V

Kontrol 1-A 1 1 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 Kontrol 1-B 1 3 0 1 1 1 0 2 0 0 0 0 0 1 0 Kontrol 1-C 0 1 2 1 1 0 1 0 0 1 1 1 1 0 0 Kontrol 1-D 1 0 0 1 1 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 Kontrol 1-E 1 1 1 1 1 1 0 0 0 0 1 0 0 1 0 Kontrol 2-A 1 3 1 0 2 2 3 3 3 3 2 2 2 1 0 Kontrol 2-B 1 2 1 0 1 3 2 3 3 3 2 1 2 2 2 Kontrol 2-C 1 1 0 1 1 0 3 3 2 3 2 2 3 2 1 Kontrol 2-D 1 1 1 1 0 3 3 3 3 3 3 3 2 0 3 Kontrol 2-E 2 3 1 2 1 3 3 3 3 3 3 3 2 3 3 Perlakuan 1-A 1 1 0 0 1 3 2 3 3 1 1 1 0 1 1 Perlakuan 1-B 1 2 1 0 1 3 0 1 2 3 1 0 1 1 2 Perlakuan 1-C 1 1 1 1 0 3 3 3 2 3 1 2 1 0 0 Perlakuan 1-D 2 0 1 0 0 3 1 3 3 3 1 0 0 1 0 Perlakuan 1-E 1 0 0 1 0 3 3 3 3 3 1 1 1 1 0 Perlakuan 2-A 0 3 0 0 0 2 3 3 3 2 1 3 0 1 0 Perlakuan 2-B 1 3 1 0 1 3 3 2 3 1 0 1 1 0 0 Perlakuan 2-C 3 0 0 1 2 3 3 3 3 3 1 3 1 1 2 Perlakuan 2-D 0 0 1 1 1 3 2 2 2 3 0 0 2 0 1 Perlakuan 2-E 0 1 0 2 1 3 2 3 1 0 1 2 0 1 1 Perlakuan 3-A 0 1 0 0 0 1 3 3 2 0 1 1 1 1 1 Perlakuan 3-B 0 0 0 0 1 3 3 3 3 2 1 1 1 1 1 Perlakuan 3-C 1 1 1 0 1 3 2 2 3 2 0 0 0 0 1 Perlakuan 3-D 0 0 0 0 0 1 2 2 3 3 1 1 1 1 0 Perlakuan 3-E 1 1 0 1 1 3 0 3 3 3 0 0 1 1 1

(27)

Lampiran 9. Hasil analisis SPSS

NPar Tests

Kruskal-Wallis Test Ranks

Kelompok N Mean Rank

KerusakanParu Kontrol 5 4.50 P1 5 20.90 P2 5 12.50 P3 5 14.60 P4 5 12.50 Total 25

Test Statisticsa,b

KerusakanParu

Chi-Square 17.488

df 4

Asymp. Sig. .002

a. Kruskal Wallis Test

b. Grouping Variable: Kelompok

NPar Tests

Mann-Whitney Test

Ranks

Kelompok N Mean Rank Sum of Ranks

KerusakanParu Kontrol 5 3.10 15.50 P1 5 7.90 39.50 Total 10 Test Statisticsa KerusakanParu Mann-Whitney U .500 Wilcoxon W 15.500

(28)

Z -2.683

Asymp. Sig. (2-tailed) .007

Exact Sig. [2*(1-tailed Sig.)] .008b a. Grouping Variable: Kelompok

b. Not corrected for ties.

NPar Tests

Ranks

KerusakanParu P1 5 7.50 37.50 P2 5 3.50 17.50 Total 10 Test Statisticsa KerusakanParu Mann-Whitney U 2.500 Wilcoxon W 17.500 Z -2.449

NPar Tests

Ranks

KerusakanParu

P1 5 7.00 35.00

P3 5 4.00 20.00

(29)

Test Statisticsa

KerusakanParu

Mann-Whitney U 5.000

Wilcoxon W 20.000

Z -1.800

NPar Tests

Ranks

(30)

NPar Tests

Ranks

NPar Tests

Ranks

KerusakanParu P2 5 5.50 27.50 P4 5 5.50 27.50 Total 10 Test Statisticsa KerusakanParu Mann-Whitney U 12.500 Wilcoxon W 27.500 Z .000

Asymp. Sig. (2-tailed) 1.000

Exact Sig. [2*(1-tailed Sig.)] 1.000b a. Grouping Variable: Kelompok

(31)

NPar Tests

Ranks

NPar Tests

Ranks

KerusakanParu Kontrol 5 3.40 17.00 P3 5 7.60 38.00 Total 10 Test Statisticsa KerusakanParu Mann-Whitney U 2.000 Wilcoxon W 17.000 Z -2.425

(32)

NPar Tests

Ranks

NPar Tests

Ranks

(33)

a. Grouping Variable: Kelompok b. Not corrected for ties.

NPar Tests

Ranks

(34)

Lampiran 10. Biodata mahasiswa

Nama : Ina Marlina NIM : 22010112120006 Tempat/ tanggal lahir : Garut, 15 Maret 1994 Jenis Kelamin : Perempuan

Alamat : Mijen Rt 05/04 Kaliwungu Kudus No telepon : 081329501394

e-mail : inamarlina0006@gmail.com

Riwayat Pendidikan Formal

SD : SD 1 Prambatan Lor Lulusan tahun 2006

SMP : SMP 1 Kudus Lulusan tahun 2009

SMA : SMA 1 Kudus Lulusan tahun 2012

FK UNDIP : Masuk tahun 2012

Keanggotaan Organisasi

Staf KESMA BEM FK KM UNDIP tahun 2012 s.d. 2013 Staf Ahli KESMA BEM FK KM UNDIP tahun 2013 s.d 2014

Anggota JMKI FK UNDIP tahun 2012 s.d 2013

Bendaharan JMKI FK UNDIP tahun 2012 s.d 2015 Staf Divisi Mentoring ROHIS KU FK UNDIP tahun 2012 s.d 2013 Staf Ahli Divisi Mentoring ROHIS KU FK UNDIP tahun 2013 s.d 2014

Pengalaman Penelitian

(35)

Lampiran 11. Dokumentasi penelitian

Proses Pembuatan Ekstrak Kulit Buah Naga Putih

(36)