ONE HEALTH PADA PENYAKIT INFEKSI LEPTOPIROSIS
BAB I PENDAHULUAN
A. Latar Belakang
Leptospirosis telah menjadi penyakit yang terabaikan dan muncul kembali yang memiliki kepentingan global bagi kesehatan masyarakat dengan morbiditas dan mortalitas yang tinggi pada manusia dan hewan [1] dan dianggap sebagai penyakit zoonosis yang paling luas penyebarannya di seluruh dunia [2]. Penyakit ini disebabkan oleh bakteri dari genus Leptospira (ordo Spirochaetales, famili Leptospiraceae), dimana 64 spesies telah dikenali dan dibagi menjadi dua kelompok utama: “Saprophytes” yang berisi spesies tidak menular yang diisolasi di lingkungan alami dan “Patogen” termasuk semua yang bertanggung jawab. spesies yang dapat menular pada manusia dan hewan, serta spesies lingkungan yang virulensinya belum terbukti [3]. Dalam kelompok terakhir ini terdapat spesies (L. interrogans, L. kirschneri, L.
noguchii, L. santarosai, L.mayottensis, L. borgpetersenii, L. alexanderi dan L.
weilii) yang sebagian besar dikaitkan dengan infeksi parah pada manusia [ 3]
sedangkan L. interrogans, L. kirschneri, L. noguchii, L. santarosai, L.
borgpetersenii dan L. weilii dilaporkan ditemukan pada anjing dari Brazil [4].
Kondisi optimal untuk pertumbuhan Leptospira telah dilaporkan pada pH 6,7 hingga 8,0 di air sungai dan tanah lembab di sekitarnya [5], sedangkan konsentrasi garam yang tinggi mungkin tidak cocok untuk kelangsungan hidup jangka panjang Leptospira patogen [6]. Tinjauan sistematis terbaru menunjukkan bahwa Leptospira spp. dapat bertahan hidup di lingkungan dan menjaga virulensi selama lebih dari 20 hari di air dan 40 hari di tanah,
bervariasi antar spesies dan strain [6]. Kelangsungan hidup dan virulensi Leptospira interrogans selama sekitar 20 bulan telah diamati dalam air mineral kemasan [7] dan selama 6 bulan di tanah jenuh air [8]. Karena tidak ada bukti pasti yang diperoleh melalui studi lapangan terbuka, air dan tanah mungkin berulang kali terkontaminasi oleh hewan dan lingkungan sekitar. Selain itu, kelangsungan hidup lingkungan Leptospira mungkin didukung oleh pembentukan dan perlindungan biofilm alami multispesies, dengan interaksi Leptospira yang mematikan dengan mikrobiota lingkungan yang kompleks [6]. Terlepas dari itu, infeksi Leptospira sebagian besar terjadi melalui urin tikus yang terinfeksi [9] dan hewan peliharaan [10] dan liar [11] lainnya, yang disukai di daerah tropis [1] karena paparan air banjir yang terkontaminasi [9].
Seperti kasus pada manusia umumnya terjadi setelah hujan lebat, air hujan dapat tersuspensi kembali dan menyebarkan leptospira bersama dengan partikel tanah untuk menginfeksi manusia atau hewan melalui luka tubuh di kulit, selaput lendir dan konjungtiva [6]. Meskipun bertahan hidup dalam urin dan air yang terkontaminasi di lingkungan, leptospira patogen tidak berkembang biak dalam kondisi seperti itu [6]. Karena penularan dari manusia ke manusia jarang dilaporkan [12], pendekatan One Health diwajibkan untuk lebih memahami peran hewan dan lingkungan dalam pemeliharaan Leptospira spp., serta menunjukkan area risiko untuk pemantauan dan pencegahan. kasus baru pada manusia dan hewan.
Leptospirosis telah dianggap sebagai infeksi yang tidak terdiagnosis, sebagian besar disebabkan oleh gejala awal yang asimtomatik dan tidak patognomonik, mirip dengan penyakit demam-hemoragikterik lainnya seperti
flu, hepatitis, demam berdarah, dan hantavirus, sehingga membuat diagnosis klinis menjadi sulit dan menyebabkan kasus tidak dilaporkan [12,13 ]. Jadi, meskipun perkiraan kejadian tahunan di seluruh dunia adalah 1,03 juta kasus, 58.900 kematian, dan hilangnya 2,9 juta tahun hidup karena disabilitas, angka- angka ini seharusnya lebih tinggi lagi [13]. Wilayah dengan angka kesakitan tertinggi meliputi Asia Selatan dan Tenggara, Oseania, Karibia, Afrika sub- Sahara, dan Amerika Latin, terutama disebabkan oleh kelembapan yang tinggi dan keberadaan hutan berdaun lebar, dengan laporan wabah leptospirosis tertinggi (32,1%; 102/318) [12]. Perkiraan tingkat morbiditas tahunan di Andean dan Amerika Latin Selatan berkisar antara 1,43 hingga 39,8 per 100.000 penduduk; Brazil menyumbang 40,2% dari kasus yang dilaporkan dengan hampir setengah dari populasi Amerika Latin [12]. Di Brazil, pemberitahuan kasus leptospirosis menjadi wajib pada tahun 2000 dan pengawasan nasional telah dilakukan oleh Kementerian Kesehatan Brazil, dengan rata-rata tahunan sebesar 3.846 kasus, kejadian 1,9 per 100.000 penduduk dan tingkat kematian sebesar 8,9%, dengan tingkat kematian yang stabil. rata-rata selama 20 tahun terakhir [14]. Investigasi di sini dilakukan pertama-tama di tingkat lokal (kotamadya), berdasarkan pemberitahuan kasus, kemudian di tingkat negara bagian dan nasional, berdasarkan kumpulan data kasus yang diberitahukan Kementerian Kesehatan, standar penerbitan dan rekomendasi pengawasan [15]. Strategi pencegahan leptospirosis pada manusia saat ini telah difokuskan pada epidemiologi historis penyakit dan pasca terjadinya bencana alam, seperti banjir dan genangan, dengan informasi publik yang cepat dan identifikasi dini kasus-kasus yang mencurigakan. [14].
Leptospirosis secara historis merupakan penyakit endemik di seluruh wilayah Brasil, dengan insiden kasus manusia yang lebih tinggi di wilayah selatan, tenggara dan utara, khususnya di daerah perkotaan di kota-kota besar [4]. Selain itu, tinjauan sistematis terhadap leptospirosis anjing di Brasil menunjukkan tumpang tindih dengan daerah banjir, yang menunjukkan perlunya penelitian skala lokal untuk memastikan anjing sebagai penjaga lingkungan di daerah perkotaan [4], karena peran anjing dalam siklus Leptospira tetap sama. sepenuhnya mapan [4,10,16]. Anjing telah dianggap sebagai inang yang tidak disengaja bagi sebagian besar serovar kecuali Canicola, dimana anjing dilaporkan dianggap sebagai inang pemeliharaan [17]. Di antara 36 Leptospira spp yang diketahui. serovar, yang paling umum dengan distribusi variabel di seluruh negara bagian Brasil adalah Autumnalis, Canicola, Copenhageni, Grippotyphosa dan Icterohaemorrhagiae [18].
Icterohaemorrhagiae dan Copenhageni sering dikaitkan dengan kasus parah pada manusia di Brazil, menyoroti peran anjing sebagai reservoir serovar ini di daerah perkotaan [19]. Leptospirosis anjing telah dianggap sebagai masalah kesehatan masyarakat karena patogenisitasnya, periode penularan yang lama [19] dan potensi penularan dari anjing ke manusia [19]. Berbagi lingkungan rumah tangga yang sama, anjing mempunyai peranan penting dalam kaitannya dengan leptospirosis, termasuk penyelidikan, pengendalian dan pencegahannya [19,20], terutama anjing yang tidak divaksinasi, yang umumnya ditemukan pada populasi berpenghasilan rendah [21].
Pendekatan One Health yang menggabungkan kesehatan manusia, hewan dan lingkungan dalam pendekatan holistik sangat penting dalam pengendalian
dan pencegahan penyakit zoonosis [22]. Baru-baru ini diterapkan pada leptospirosis, analisis spasial manusia-anjing bersama dengan curah hujan dan banjir telah memberikan pendekatan yang lebih baik terhadap paparan rumah tangga, infeksi silang, faktor risiko terkait dan pemetaan area risiko [18].
Meskipun penelitian ini menggambarkan dinamika leptospirosis manusia- anjing-lingkungan di Brasil selama periode 20 tahun, peran anjing di tingkat lokal, khususnya di daerah perkotaan, masih belum sepenuhnya diketahui.
Oleh karena itu, penelitian ini bertujuan untuk mengidentifikasi Leptospira spp. serovar pada pemilik dan anjingnya, faktor risiko terkait, hubungan dengan curah hujan dan daerah banjir serta penilaian terhadap anjing tanpa gejala yang dimiliki sebagai penjaga lingkungan potensial untuk daerah berisiko leptospirosis pada manusia..
BAB II PEMBAHASAN
A. Leptopirosis
Negara dengan kejadian leptospirosis tertinggi di dunia adalah Sri Lanka, dengan lebih dari 700 kematian per tahun (lebih dari dua kali lipat angka kematian akibat demam berdarah) dan perkiraan kejadian tahunan untuk masuk rumah sakit adalah 52,1 pasien/100.000 penduduk [13] (Angka-angka ini harusnya ditafsirkan dengan hati-hati, karena didasarkan pada definisi kasus surveilans yang luas, termasuk kecurigaan klinis karena tidak adanya konfirmasi menggunakan uji diagnostik lengkap dan pengecualian penyebab lainnya.) Pekerjaan di sawah merupakan faktor risiko yang penting di Sri Lanka dan juga di Thailand, India, india, Iran, Filipina, Tanzania, dan Korea;
penyakit ini disebut demam sawah [14-19]. Di negara-negara maju, penyakit paling sering dikenali pada orang-orang dengan aktivitas pekerjaan yang melibatkan paparan air atau interaksi dengan hewan inang atau pada orang- orang yang berpartisipasi dalam aktivitas rekreasi yang melibatkan air.1 Penangkapan satwa liar untuk tujuan penelitian, pekerjaan produksi hewan (pekerjaan rumah potong hewan, peternakan sapi perah , dokter hewan yang bekerja di bidang peternakan), budidaya tanaman yang banyak menggunakan air (pisang, nanas, talas, beras, buah beri), operasi militer, budidaya ikan, dan pekerjaan saluran pembuangan meningkatkan risiko leptospirosis [20].
Kegiatan rekreasi yang dikaitkan dengan peningkatan risiko penyakit termasuk balap petualangan, kano, kayak, menjelajahi gua, berenang di perairan terbuka, triathlon, dan arung jeram.1 Meningkatnya popularitas
kegiatan ini selama 20 tahun terakhir diikuti oleh laporan-laporan yang sering kali signifikan. wabah penyakit [21]. Infrastruktur perumahan dan sanitasi yang tidak memadai di komunitas miskin sumber daya meningkatkan risiko karena paparan terhadap hewan pengerat yang terinfeksi dan berpotensi juga pada populasi anjing yang berkeliaran bebas. Meskipun hal ini terutama merupakan masalah di negara-negara miskin sumber daya, laporan mengenai leptospirosis di wilayah perkotaan di Eropa Selatan, Amerika Serikat, dan Inggris dalam beberapa tahun terakhir [22-28] menunjukkan bahwa leptospirosis dapat muncul karena meningkatnya jumlah tunawisma setelah bencana alam dan bencana alam. krisis keuangan besar, seperti yang terkait dengan pandemi COVID-19.
Selain infeksi subklinis yang tersebar luas pada sejumlah besar hewan inang reservoir, leptospira patogen menyebabkan penyakit pada anjing, sapi, kuda, babi, unta, ruminansia kecil, dan spesies satwa liar [27-28]. Gambaran klinis leptospirosis pada anjing mirip dengan manusia, sebagian besar infeksinya bersifat subklinis, namun bila terjadi penyakit biasanya ditandai dengan tanda-tanda lesu, demam, tidak nafsu makan, dan poliuria/polidipsia, kemudian disfungsi multiorgan dengan cedera ginjal akut, disfungsi hati kolestatik, pankreatitis, perdarahan paru dengan derajat bervariasi, miositis, dan, dalam beberapa kasus, uveitis [29-30]. Pada sapi, spirochete merupakan penyebab utama aborsi, penyakit neonatal, dan hilangnya produksi seperti penurunan produksi susu di seluruh dunia. Penyakit terbanyak pada sapi di seluruh dunia disebabkan oleh L borgpetersenii serovar Hardjo (Hardjobovis);
lainnya termasuk serovar L interrogans Hardjo (Hardjoprajitno) dan serovar L
interrogans Pomona, serta sejumlah besar serovar lain yang termasuk dalam serogrup lain. Namun, tantangan yang terkait dengan pengujian diagnostik telah membatasi pemahaman penuh tentang serovar paling penting yang menyebabkan penyakit, dan prevalensi serovar bervariasi secara geografis.
Ketika terjadi penyakit multisistemik akut yang parah, biasanya terjadi pada anak sapi yang disertai dengan tanda-tanda demam, anemia hemolitik, hemoglobinuria, dan ikterus. Susu berlumuran darah dan agalaktia dapat terjadi pada sapi menyusui [31]. Faktor-faktor risiko yang teridentifikasi untuk infeksi Hardjo pada sapi adalah peternakan di tempat terbuka, akses terhadap sumber air yang terkontaminasi, hidup bersama dengan domba, penggunaan jasa alam (bukan inseminasi buatan), dan jumlah ternak.31 Infeksi subklinis pada sapi dalam suatu kawanan dapat melanggengkan penyakit dalam kawanan. Pelepasan dapat berlanjut secara intermiten selama berbulan-bulan tanpa adanya antibodi serum yang terdeteksi [32].
Kehilangan produksi, kegagalan reproduksi akibat aborsi, bayi lahir mati, dan penyakit neonatal juga terjadi pada babi dan ruminansia kecil [31].
Leptospirosis dikenal secara global sebagai penyebab utama kegagalan reproduksi pada babi, dengan serogrup Tarassovi, Pomona, dan Australis yang mendominasi. Infeksi insidental pada babi mungkin berhubungan dengan penyakit hemoragik, hematuria, ikterus, dan cedera ginjal akut. Perpindahan ke perumahan dalam ruangan tampaknya telah mengurangi timbulnya penyakit [31].
Faktor patogen, hewan inang reservoir, dan faktor lingkungan memainkan peran penting dalam mempertahankan penularan. Setelah menembus jaringan
di tempat inokulasi, spirochetes berkembang biak dengan cepat di aliran darah. Faktor virulensi organisme dan respon imun individu terhadap patogen berdampak pada hasil infeksi. Ketika strain virulen mencapai beban infeksi yang tinggi di dalam darah, maka terjadilah “badai” sitokin, disertai demam dan kegagalan multiorgan. Kepemilikan antigen leukosit manusia DQ6 merupakan faktor risiko independen untuk hasil parah dalam 1 wabah di kalangan atlet triatlon yang berpartisipasi dalam sebuah uji coba. triathlon di Springfield, Illinois, menunjukkan bahwa superantigen leptospiral mungkin berkontribusi terhadap pengembangan aktivasi kekebalan tubuh.55 Pada inang lain, replikasi organisme dikendalikan dan pada akhirnya terbatas pada lumen tubulus proksimal ginjal; organisme menempel pada batas sikat pada sel epitel tubulus dan dikeluarkan melalui urin selama berminggu-minggu hingga berbulan-bulan, sehingga menghindari respons imun pejamu.5 Organisme ini membentuk biofilm di dalam tubulus ginjal yang mungkin berkontribusi terhadap ketahanannya dalam menghadapi respons imun dan terapi antimikroba. Meskipun terdapat perbedaan antara inang insidental dan inang reservoir, pengenalan strain leptospiral yang terkait dengan inang reservoir dalam wabah penyakit yang menyerang inang reservoir tersebut menunjukkan bahwa mungkin ada rangkaian hasil infeksi dan bahwa faktor inang seperti imunosupresi mungkin penting dalam mempengaruhi penyakit tersebut. hasil seperti itu. Misalnya saja, pada singa laut Kalifornia, siklus wabah penyakit pada anakan singa laut disertai dengan infeksi subklinis terus-menerus pada populasi singa laut dewasa, dengan pelepasan penyakit yang tercatat hingga 154 hari setelah infeksi.52 Kami baru-baru ini mengisolasi L interrogans
serovar Canicola dari anjing-anjing yang ada dalam asosiasi. dengan wabah leptospirosis pada anjing peliharaan di Los Angeles (J. E. Sykes, J. Sebastian, K. L. Reagan, dkk, data tidak dipublikasikan, 2022); Anjing biasanya dianggap sebagai inang reservoir untuk serovar Canicola, jadi sekali lagi faktor-faktor lain, seperti variasi strain patogen atau imunosupresi inang (terkait dengan kepadatan kandang yang berlebihan), mungkin berdampak pada ekspresi penyakit [32].
Lamanya pengeluaran urin tergantung pada derajat adaptasi antara strain leptospira dan reservoir spesifik yang terlibat. Berbagai macam spesies hewan domestik dan satwa liar berdarah panas atau poikilotermik dapat bertindak sebagai pembawa subklinis. Secara global, hewan pengerat (terutama Rattus norvegicus) dianggap sebagai inang reservoir yang paling penting karena tingginya prevalensi infeksi pada beberapa populasi hewan pengerat (hingga 90%) dan tingginya konsentrasi spirochetes dalam urin hewan pengerat jika dibandingkan dengan hewan lainnya. spesies [33]. Paparan hewan pengerat merupakan faktor risiko infeksi pada manusia dan hewan peliharaan dalam berbagai keadaan. Manusia dan hewan terinfeksi leptospira patogen ketika selaput lendir utuh, kulit yang mengalami maserasi, atau kulit yang terkelupas terkena sumber lingkungan yang terkontaminasi (seperti air atau lumpur).
Hewan juga dapat terinfeksi setelah kontak langsung dengan urin yang terinfeksi atau jaringan inang reservoir. Oleh karena itu, selain paparan terhadap sumber air yang terkontaminasi, pemangsaan spesies seperti hewan pengerat dan kadal oleh anjing harus dipertimbangkan sebagai cara penularan yang potensial. Leptospira patogen telah ditemukan di saluran reproduksi sapi,
babi, domba, dan babi hutan peliharaan, sehingga penularan melalui jalur kelamin mungkin terjadi dan dapat mempertahankan penularan ketika kondisi lingkungan tidak mendukung kelangsungan hidup spirochete di luar inang mamalia. Leptospira borgpetersenii serovar Hardjo juga terdeteksi pada susu mentah segar, sehingga menunjukkan bahwa infeksi juga dapat ditularkan melalui konsumsi produk susu yang tidak dipasteurisasi. [34].
BAB III PENUTUP
A. Kesimpulan
Kesimpulannya, leptospirosis merupakan salah satu masalah kesehatan klasik yang memerlukan pengetahuan menyeluruh tentang mekanisme penularan, hewan inang yang terlibat, sumber organisme di lingkungan dan faktor iklim yang mempengaruhi penularan, serta dampak pola perilaku pekerjaan dan rekreasi manusia. Faktor-faktor ini bervariasi secara regional dan dari waktu ke waktu, sehingga memerlukan upaya pengawasan global yang berkelanjutan. Perbaikan dalam pengobatan dan pencegahan penyakit ini memerlukan kemajuan dalam waktu penyelesaian tes diagnostik, sensitivitas, dan spesifisitas; penerapan pendekatan genomik baru untuk lebih memahami epidemiologi penyakit ini; pendidikan berkelanjutan bagi orang-orang yang berisiko dan pemilik hewan secara global; dan pengembangan vaksin baru dan berbiaya rendah yang memberikan perlindungan terhadap berbagai jenis virus dengan efek samping yang minimal.
DAFTAR PUSTAKA
1. Vincent AT, Schiettekatte O, Goarant C, et al. Revisiting the taxonomy and evolution of pathogenicity of the genus Leptospira through the prism of genomics. PLoS Negl Trop Dis. 2019;13(5):e0007270.
2. Jayasundara D, Senavirathna I, Warnasekara J, et al. 12 novel clonal groups of Leptospira infecting humans in multiple contrasting epidemiological contexts in Sri Lanka. PLoS Negl Trop Dis. 2021;15(3):e0009272.
doi:10.1371/journal.pntd.0009272
3. Abd Rahman AN, Hasnul
Hadi NH, Sun Z, Thilakavathy K, Joseph N. Regional prevalence of
intermediate Leptospira spp. in humans: a meta-
analysis. Pathogens. 2021;10(8):943.
4. Yanagihara Y, Villanueva SYAM, Nomura N, et al. Leptospira is an environmental bacterium that grows in waterlogged soil. Microbiol Spectr. 2022;10(2):e0215721. doi:10.1128/spectrum.02157-21
5. Vinod Kumar K, Lall C, Vimal Raj R, Vedhagiri K, Vijayachari P. Molecular detection of pathogenic leptospiral protein encoding gene (lipL32) in environmental aquatic biofilms. Lett Appl Microbiol. 2019;62(4):311–315.
doi:10.1111/lam.12533
6. nstitute for Health Metrics and Evaluation (IHME). Global Health Data
Exchange (GHDx). 2022. Accessed July 16,
2022. https://ghdx.healthdata.org/countries
7. Xavier V, Baby B, George JM, Ittyachen AM. Covid-19 and leptospirosis, pulmonary involvement and response to steroids: a comparative observational
study from a rural tertiary care center in Kerala. J Family Med Prim Care. 2022;11(1):294–298. doi:10.4103/jfmpc.jfmpc_1414_21
8. Turmel JM, Olive C, Bigeard B, et al.; COVID-19 Study Group of the University Hospital of Martinique. Case report: pulmonary leptospirosis misdiagnosed as COVID-19. Am J Trop Med Hyg. Published online May 16, 2022. doi:10.4269/ajtmh.21-1102
9. Gupta N, Wilson W, Ravindra P, Raghu R, Saravu K. Coinfection of leptospirosis and coronavirus disease 2019: a retrospective case series from a coastal region in South India. J Med Virol. Published online April 16, 2022.
doi:10.1002/jmv.27816
10.Warnasekara J, Koralegedara I, Agampodi S. Estimating the burden of leptospirosis in Sri Lanka; a systematic review. BMC Infect Dis. 2019;19(1):119. doi:10.1186/s12879-018-3655-y
11.Kim MJ. Historical review of leptospirosis in the Korea (1945–2015). Infect Chemother. 2019;51(3):315–329. doi:10.3947/ic.2019.51.3.315
12.Chadsuthi S, Chalvet-Monfray K, Geawduanglek S, Wongnak P, Cappelle J. S patial-temporal patterns and risk factors for human leptospirosis in Thailand, 2012–2018. Sci Rep. 2022;12(1):5066. doi:10.1038/s41598-022-09079-y 13.Sahneh E, Delpisheh A, Sayehmiri K, Khodabakhshi B, Moafi-Madani M. Inv
estigation of risk factors associated with leptospirosis in the north of Iran (2011–2017). J Res Health Sci. 2019;19(2):e00449
14.Maze MJ, Cash-Goldwasser S, Rubach MP, et al. Risk factors for human acute leptospirosis in northern Tanzania. PLoS Negl Trop Dis. 2019;12(6):e0006372. doi:10.1371/journal.pntd.0006372
15.Sanchez Fernandez P, Kodjo A, Medkour H, et al. Autochthonous human and animal leptospirosis, Marseille, France. IDCases. 2020;21:e00899.
doi:10.1016/j.idcr.2020.e00899
16.Moreira Marques T, Nascimento PO, Almeida A, Tosatto V. Weil's disease in a young homeless man living in Lisbon. BMJ Case Rep. 2020;13(6):e233543.
doi:10.1136/bcr-2019-233543
17.Kang YM, Hagiwara A, Uemura T. Leptospirosis infection in a homeless patient in December in Tokyo: a case report. J Med Case Rep. 2020;9(1):198.
doi:10.1186/s13256-015-0687-4
18.Bini Viotti J, Chan JC, Rivera C, Tuda C. Sporadic leptospirosis case in Florida presenting as Weil's disease. IDCases. 2019;19:e00686.
doi:10.1016/j.idcr.2019.e00686
19.Sykes JE, Reagan KL, Nally JE, Galloway RL, Haake DA. Role of diagnostics in epidemiology, management, surveillance, and control of leptospirosis. Pathogens. 2022;11(4):395. doi:10.3390/pathogens11040395 20.Gyimesi ZS, Burns RB, Erol E, Bolin SR. Acute clinical leptospirosis
(Grippotyphosa serovar) in an adult dromedary camel (Camelus dromedarius). J Zoo Wildl Med. 2019;46(3):605–608. doi:10.1638/2014- 0186.1
21.Sykes JE, Hartmann K, Lunn KF, Moore GE, Stoddard RA, Goldstein RE. 20 10 ACVIM small animal consensus statement on leptospirosis: diagnosis, epidemiology, treatment, and prevention. J Vet Intern Med. 2021;25(1):1–13.
doi:10.1111/j.1939-1676.2010.0654.x
22.Divers TJ, Chang YF, Irby NL, Smith JL, Carter CN. Leptospirosis: an important infectious disease in North American horses. Equine Vet J. 2019;51(3):287–292. doi:10.1111/evj.13069
23.Fouché N, Graubner C, Lanz S, Schweighauser A, Francey T, Gerber V. Acut e kidney injury due to Leptospira interrogans in 4 foals and use of renal replacement therapy with intermittent hemodiafiltration in 1 foal. J Vet Intern Med. 2020;34(2):1007–1012. doi:10.1111/jvim.15713
24.Wollanke B, Gerhards H, Ackermann K. Infectious uveitis in horses and new
insights in its leptospiral biofilm-related
pathogenesis. Microorganisms. 2022;10(2):387.
doi:10.3390/microorganisms10020387
25.Ackermann K, Kenngott R, Settles M, Gerhards H, Maierl J, Wollanke B. In vivo biofilm formation of pathogenic Leptospira spp. in the vitreous humor of horses with recurrent uveitis. Microorganisms. 2021;9(9):1915.
doi:10.3390/microorganisms9091915
26.Webb JK, Keller KA, Sander SJ, Allender MC, Sheldon JD. Clinical disease and treatment of Leptospira kirschneri sv Grippotyphosa in a Sumatran tiger (Panthera tigris sumatrae). J Am Vet Med Assoc. Published online March 16, 2022. doi:10.2460/javma.21.04.0185
27.Sousa MS, Cristiny Rodrigues Silva ML, Santos Azevedo S, et al. Leptospira interrogans infection of southern tamanduas (Tamandua tetradactyla, Linnaeus, 1758) in Brazil. Transbound Emerg Dis. 2020;tbed.13523.
doi:10.1111/tbed.13523
28.Szonyi B, Agudelo-Flórez P, Ramírez M, Moreno N, Ko AI. An outbreak of severe leptospirosis in capuchin (Cebus) monkeys. Vet J. 2021;188(2):237–
239. doi:10.1016/j.tvjl.2010.05.002
29.Wilson TM, Ritter JM, Martines RB, et al. Pathology and one health implications of fatal Leptospira interrogans infection in an urbanized, free- ranging, black-tufted marmoset (Callithrix penicillata) in Brazil. Transbound Emerg Dis. 2021;68(6):3207–3216. doi:10.1111/tbed.14287
30.Bregoli M, Pesaro S, Ustulin M, et al. Environmental exposure of wild carnivores to zoonotic pathogens: Leptospira infection in the first free living wolf (Canis lupus Linnaeus, 1758) found dead in the Friuli Venezia Giulia Region. Int J Environ Res Public Health. 2021;18(5):2512.
doi:10.3390/ijerph18052512
31.Straub MH, Rudd JL, Woods LW, Clifford DL, Foley JE. Leptospira prevalen ce and its association with renal pathology in mountain lions (Puma concolor) and bobcats (Lynx rufus) in California, USA. J Wildl Dis. 2021;57(1):27–39.
doi:10.7589/JWD-D-20-00070
32.Marreros N, Zürcher-Giovannini S, Origgi FC, et al. Fatal leptospirosis in free-ranging Eurasian beavers (Castor fiber L.), Switzerland. Transbound Emerg Dis. 2018;65(5):1297–1306. doi:10.1111/tbed.12879
33.Knowles S, Lynch D, Thomas N. Leptospirosis in northern sea otters (Enhydra lutris kenyoni) from Washington, USA. J Wildl Dis. 2020;56(2):466–471. doi:10.7589/2019-05-112
34.Santos AAN, Ribeiro PDS, da França GV, et al. Leptospira interrogans biofilm formation in Rattus norvegicus (Norway rats) natural
reservoirs. PLoS Negl Trop Dis. 2021;15(9):e0009736.
doi:10.1371/journal.pntd.0009736
