Alimuddin. 2005. Inovasi On Line. Kompas Cyber Media. Diakses 11/ 2008
Al Qodri AH, Sujiharno dan Anindiastuti. 2004. Pemilihan lokasi Pembenihan Ikan Kerapu. Balai Budidaya Laut Lampung. Direktorat Jenderal Perikanan Budidaya. Departemen Kelautan dan Perikanan. Halaman 15 dan 19.
Anonim. 2008. FISH. Wikipedia. www.en.wikipedia.org. [Diakses 9/2008] Anonim. 2007. Metoda Standar Pemeriksaan HPIK Golongan Bakteri.
Puskari. Departemen Kelautan dan Perikanan
Anonim. 2006 b. Bacterial disease. Korea - Us Aquaculture.
http://www.lib.noaa.gov/korea/diseases/bacterial.html. [Diakses 6/2006]
Anonim. 2006 a. Keputusan Menteri Kelautan dan Perikanan No. 17/2006. Tentang Penetapan jenis-jenis Hama Penyakit Ikan Karantina, golongan, media pembawa dan sebarannya.
Anonim. 2005. Streptococcosis. OiE. Institut for International Cooperation in Animal Biologics. The Centre for Food Security & Public Health. IOWA STATE UNIVERSITY. http://www.cfsph.iastate.edu. 2005. [Diakses 7/2006]
Anonim. 2001. Budidaya Ikan Kerapu. Direktorat Jenderal Perikanan Budidaya, Departemen kelautan dan Perikanan. Hal 19 - 22
Antoro S, HA. Sarwono dan Sujiharno. 2004. Biologi Kerapu. Pembenihan Ikan Kerapu - Direktorat Jenderal Perikanan Budidaya, Departemen kelautan dan Perikanan. Seri Budidaya Laut ISBN : 979-9890340-6 Hal 4 – 13
Andrews C, A Exell, N Carington. 2003. Manual of Fish Health. Firely Books. Hal. 208 .
Austin B and DA Austin. 1987. Bacterial Fish Pathogens. Diseases in Farmed and Wild Fish. John Willey and Sons. Chichester. Hal. 364 . Bellanti JA. 1993. Imunologi. Georgetown University School of Medicine.
W.B. Sounders Company. Dicetak oleh Gajah Mada University Press. Hal : 127 – 145.
Bromage ES, A Thomas, L Owen. 1999. Streptococcus iniae, a bacterial infection in barramundi Lates calcarifer. Diseases of Aquatic of Organisms. Vol. 36 : 177 – 181. Published May 31. [Diakses 10/2007] Biberstein EL and YC Zea. 1990. Review Veterinary Microbiology.
Blackwell Scientific Publication.
Brooks GF, JS Butel, SA Morse. 2004. Medical Microbiology. Jawetz, Melnick & Adelbergs. Twentythird Edition -International Edition. Hal : 231 – 248
Carter GR, 1986. Essentials of Veterinary Bacteriology and Mycology. Third Edition. Lea & Febiger. Philadelphia. Hal. 109 -115.
Cheville NF. 1999. Introduction to Veterinary Pathology. Second Edition. Iowa
State. Univesity Press/AMES. Hal 5 – 27.
Conte Jr, John E. 2002. Manual af Antibiotics and Infection Disease. Treatment and Prevention. Ninth Edition. Lippincott Williams & Wailkins. Hal 181 - 194
Cowan ST. 1985. Manual for The Identification of Medical Bacteria. Cambridge University Press. Cambridge. Hal : 78, 100 ,101.
Eldar A, S Pearl, PF Frelier, H Bercovier. 1999. Red drum Scienops ocellatus mortalities associated with Streptococcus iniae infection.
Diseases of Aquatic organism. Vol. 36 : 121 – 127. [Diakses 7/2007] Facklam R, J Elliot, L Shewmaker and A Reingold. 2005. Identification and
Caracterization of Sporadic Isolates of Streptococcus iniae Isolated from Humans. Journal of Clinical Microbiology. Vol. : 43 No. 2, hal 933 – 937. [Diakses 10/2006].
Faddin JF dan Bergeys, 1980. Biochemical Test for Identification of Medical Bacteria. Second Edition, William & Willkins, Baltimore, London. Hal 327.
Gyles CL JF Prescott, JG Songer and CO Thoen. 2004. Pathogenesis of Bacterial infection in Animal. Third Edition. Blackwell Publishing. Iowa State .Hal 3 – 9; 23 - 37
Himawan S. 1996. Ginjal. Kumpulan kuliah patologi. Bagian Patologi Anatomi Fakultas Kedokteran, Universitas Indonesia – Jakarta. Hal : 9, 159 – 171.
Heemstra PC, JE., Randall., 1993. FAO Species Catalog Vol.16 : Grouper of The world (Family Serranidae, Sub family Ephinephelus). Rome. Food and Agricultur organization of The United Nation.
Hubert JJ. 1980. Bioassay. Kendall. Hunt Publishing Company. Iowa. 164 hal.
Inglis V, RJ Roberts and NR Bromage. 1993. Bacterial Diseases of Fish. Institute of Aquaculture. Balckwell Science. Hal. 196 – 210.
Kordi G, 2002. Usaha Pembesaran Ikan Kerapu di Tambak. Penerbit Kanisius. Yogyakarta. Hal 47 - 52
Kurniastuty T, Tusihadi dan P Hartono. Hama dan Penyakit Ikan kerapu. Direktorat Jenderal budidaya Departemen Kelautan dan Perikanan. 2004. Hal 56 - 58
Kusumawidjaja, 1996. Susunan Kardivaskuler. Didalam Himawan, editor. Kumpulan Kuliah Patologi. Bagian Patologi Anatomi Fakultas Kedokteran, Universitas Indonesia – Jakarta. Hal 252 – 285.
Kvitt H, A Colorni. 2004. Diseases of Aquatic Organism. Vol. 61 : 67 – 73. Inter Research. www.Int.Res.com. [Diakses 10/2006]
Lahav D, M Eynger, A Huvitz, C Ghittino, A Lublin, A Eldar. 2004.
Diseases of Aquatic Organism. Vol. : 62 : 177 – 180. www. Inter
res.com. [Diakses 09/2007]
Miyazaki T, SS Kobota, N Kaige and T Miyashita. 1984. AHistopathological Study of Streptococcal Disease in Tilapia. Fish Pathology 19 (3) 167 – 172
Mims CA. 1988. The pathogenesis of Infectious Diseases. 3rd edition. Academic Press. London. 342 hal.
Nabib R, dan FH Pasaribu. 1989. Patologi dan Penyakit Ikan. PAU Bioteknologi. Institut Pertanian Bogor. Hal 68 – 98.
Nitimulyo KH, Kurniasih, D Dana, Desrina, Alifuddin, H Supriyadi, Widodo, J Rukmono, M Widjiastuti, DN Satrie, R Ismayasari, Dewi S. 2002. Deskripsi Hama dan penyakit pada ikan kerapu dan lobster. Pusat Karantina Ikan – DKP. Hal 36 - 39
Pasaribu FH. 2005. Peran dan arti pengendalian Penyakit Hewan Akuatik (Aquatic Animals) untuk kesejahteraan masyarakat. Orasi Ilmiah Guru Besar Tetap Ilmu Penyakit Hewan dan Kesehatan Masyarakat Veteriner. Institut Pertanian Bogor. Hal 8
Perrera RP and SK Johnson. 1994. Streptococcus iniae Associated with Mortality of Tilapia x T. aurea Hybrids. Journal of Aquatic Animal Health 6 : 335 – 340.
Philips J, P Murray & P Kirk. 2001. The Biology of Desease. Second edition. Blackwell science. Hal. 269 - 283
Pier GB & Madin SH. 1976. Streptococcus iniae: a Beta Haemolitic Streptococcus isolated from Amazon Freshwater Dolphin (Inia geoffrensis). International Journal of Sistematic Bacteriology. 26: 545- 553
Plumb JA. 2002. A guide to Integrated Management of Warm-water and Cool water Fish Diseases in the Great Lake Basin. Great Lake Fishery Comission Project. Completion Report. Hal 19 – 25.
Post G. 1987. Text Book of Fish Health. TFH Publication. Hal. : 72 – 73 Ressang AA. 1984. Patologi khusus veteriner. Ed. Ke 2. Denpasar. N.V.
Percetakan. Bali. Hal 81 - 87
Romimohtarto KS. 2005. Biologi Laut. Jambatan – Jakarta. Hal : 71.
Robert JR. 2001. Fish Pathology 3 rd Edition. Bailere, Tyndall, Cadar, England. Hal. 300 – 316.
Robbins. 1999. Pathologic Basis of Desease. WB. Sounders Company.Philadephia USA. Hal : 340 – 350.
Russo R, H Mitchell, RPE Yanong. 2006. Aquaculture. Vol. 256 : 105 – 110. ELSEVER. www.elsever.com/locate/aqua.online. [Diakses : 10/2006]
Sano M, M Minigawa, M tamaki, T hayashibara and Kouki fukuoka. 2000.
Couse of the mass motality of the Rabbit Fishes Cultured in Ishigali Island. www.snfaffrc.go.jp/English/ wwwsupt. [Diakses 9/2006] Sarono A, Kamiso HN, Iwan dan Widodo. 1993. Deskripsi Hama dan
Penyakit Ikan Karantina Golongan Bakteri. Pusat Karantina Pertanian. Jakarta. Hal 29 – 33.
Stevens A, JS. Lowe, B Young. 2002. Wheather Basic Histiopatology, A Color Atlas and Text. Fourtth Edition. Churchill Livingstone. Edinburgh.
Sunyoto P. 1994. Pembesaran Kerapu dengan Keramba Jaring Apung. Peneba Swadaya. Hal 2, 3 dan 12
Supriyadi H, Effendie J, D Bastiawan. 2002. Penyebaran penyakit streptococcosis pada beberapa pusat budidaya ikan air tawar. Bogor: Balai Riset Perikanan Budidaya air tawar. (Technical Report)
Taslihan A, M Murjani, C Purbomartono dan E Kusnendar. 2000. Bakteri Patogen Penyebab Penyakit Mulut Merah Pada Ikan Kerapu Tikus (Cromileptus altivelis). Jurnal Perikanan UGM II (2) 57 – 62
Tizard I. 1982. Pengantar Imunologi Veteriner. Edisi kedua. Fakultas Kedokteran Hewan Ontario, Universitas Guelph. WB. Saunders Company. Ontario, Canada. Hal. 18-31.
Varvarigos P. 2001. Gram positive cocco bacteria (Micrococcaceae, Streptococcaceae) causing systemic disease in intensively farmed fish in Greece. www.elsever.com/locate/aqua.online. [Diakses : 10/2006].
Weinstein MR, M Litt, DA Kertesz, P Wyper, D Rose, M Coulter, A Mcgeer, R Facklam, C Ostaach, BM Willey, AlBorczyk, DE Low. 1997. Invasive InfectionDue to a fish Pathogen, Streptococcus iniae. The New England Journal of Medicine. Vol. : 337 : 589-594. [Diakses 10/2006]
Yanong RPE and RF Floyd. 2002. Streptococcal Infection of Fish. IFAS EXTENSION. University of Florida. http://edis.ifas.ulf.edu/FAO057. [Diakses 7/ 2006]
Yuasa K, N Kitancharoen, Y Kataoka, FA Al-Murbaty. 1999. Streptococcus iniae, the Causative Agent of Mass Mortality in Rabbitfish Siganus canaliculatus in Bahrain. Journal of Aquatic Animal Health 11 : 87 – 99
Lampiran 1. PEMBUATAN PREPARAT HISTOLOGI
Pembuatan Histologi dilakukan tahapan sebagai berikut
1. Sample organ yang telah difiksasi dalam laruran Neutral Bauffer Formalin (BNF) 10 % didiamkan ± 2 x 24 jam, hingga mengeras (Matang);
2. Sample organ yang telah mengeras dipotong / ditrimming kasar setebal± 0,5 cm;
3. Potongan kemudian dimasukan dalam cetak miring untuk dimasukan dalam tissue processor automatis.
4. Dehidrasi adalah proses penarikan air dari jaringan dan mencegah terjadinya pengerutan sampel yang diuji. Sampel jaringan didehidrasi dalam alkohol bertingkat (Alkohol 70%, 80%, 90%, 95% dan Alkohol Absolut). Proses ini umumnya dilakukan pada masing-masing cairan alkohol selama 2 jam.
5. Clearing adalah proses penjernihan dengan menggunakan Xylol (I dan II). 6. Embedding adalah proses pembuatan blok parafin dengan menggunakan
parafin histoplast.
7. Sectioning adalah pemotongan jaringan dengan menggunakan mikrotom dengan ketebalan 4 – 5 µm. Gelas objek yang berisi jaringan ditempatkan pada inkubator (suhu 37oC) selama 24 jam.
8. Staining adalah proses pewarnaan jaringan. Pewarnaan HE :
a) Preparat Histopatologi dicelupkan secara bertahap ke dalam larutan xylol (I dan II), Alkohol Absolut, Alkohol 95%, Alkohol 80%, masing-masing dilakukan selama 2 menit, kecuali perendaman Alkohol 95% dan Alkohol 80% dilakukan selama 1 menit;
b) Dicuci pada air mengalir (air kran) selama 1 menit;
c) Preparat direndam dalam larutan Mayer’s Haematoxylin selama 8 menit;
e) Dicelupkan ke dalam larutan Lithium Carbonat selama 15 – 30 detik;
f) Dicuci dengan air mengalir selama 2 menit;
g) Preparat direndam dalam larutan Eosin selama 2 - 3 menit; h) Dicuci pada air mengalir selama 30 – 60 detik;
i) Preparat dicelupkan kedalam larutan alkohol 95% dan Alkohol Absolut I sebanyak 10 celupan;
j) Direndam secara bertahap ke dalam larutan Alkohol Absolut II, Xylol I, dan Xylol II, masing-masing selama 2 menit kecuali Xylol II, perendaman dilakukan selama 1 menit
Pewarnaan Gram Twort :
Hilangkan lilin dengan xylene, dari hidrasi secara bertahap dengan alkohol sampai dengan air;
Genangi slide dengan 1% crystal violet selama 2 menit; Bilas cepat dengan air kran;
Genangi slide dengan Lugol’s iodine selama 3 menit; Bilas cepat dengan air kran;
Diferensiasi dengan aceton, sampai pewarnaan biru/hitam berhenti mengalir dari preparat (hanya 1-3 detik jangan sampai diferensiasi berlebihan), untuk menghentikan diferensiasi bilaslah slide dengan air kran;
Counter stain dengan twort’s stain (working solution) selama 5 menit;
Bilas dengan alkohol, dehidrasi, bersihkan dengan xylene dan tempel dengan cover glass (kaca penutup).
Hasil :
Bakteri dan parasit berwarna biru/biru tua (titik-titik) 9. Mounting
Lampiran 2. Data tingkah laku ikan Nila (Oreochromis niloticus) yang diinfeksi Streptococcus iniae
Perla kuan Tingkah laku hari ke 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 K Nafsu makan
kurang Kurang Normal Normal Normal Normal Normal Normal Normal Normal Normal Normal Gerakan
operkulum
Normal Normal Normal Normal Normal Normal Normal Normal Normal Normal Normal Normal Garakan
renang
Lemah Lemah Normal Normal Normal Normal Normal Normal Normal Normal Normal Normal
Pasase 1
Nafsu makan
kurang Kurang kurang Kurang kurang Kurang Normal Normal Normal Normal Normal Normal Gerakan operkulum Menink at Menin kat Menink at Menin kat Menink at Menin kat
Normal Normal Normal Normal Normal Normal Garakan renang Lemah Keperm ukan Lemah Keperm ukan
Lemah Lemah Lemah Lemah Lemah Lemah Lemah Lemah Normal Normal Pasase
2
Nafsu makan
kurang Kurang kurang Kurang Normal Normal Normal Normal Normal Normal Normal Normal Gerakan operkulum Menink at Menin kat Menink at Menin kat Menink at
Normal Normal Normal Normal Normal Normal Normal Garakan renang Lemah Keperm ukan Lemah Keperm ukan Lemah Keperm ukan Lemah Keperm ukan
Lampiran 3. Data waktu Kematian ikan kerapu macan (Epinephelus fuscogutattus) pada uji LD50
Dosis (SEL)
Kematian ikan pada hari dan jam ke n (Ekor) Rerata waktu kematian (Jam) 1 2 3 4 5 6 7 12 24 48 60 72 84 96 108 120 132 144 156 168 180 I K 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 ∞ 106 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 2 0 0 156 108 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 2 2 1 163,6 1010 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 3 0 56 1012 5 0 0 0 1 0 0 0 1 0 0 0 1 0 60 II K 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 ∞ 106 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 3 1 168,5 108 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 2 0 168 1010 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 2 1 168 1012 0 0 0 0 0 0 1 0 1 0 0 4 1 0 103
Lampiran 4. Perubahan patologi anatomi ikan Kerapu macan (Epinephelus Fuscogutattus) yang diinfeksi Streptococcus iniae
No PATOLOGI ANATOMI Jumlah ikan
yang menciri
Ikan menciri dari seluruh ikan uji
1 Lesi pada area Injeksi 1 1/28 = 3.5%
2 Warna tubuh menjadi gelap 11 11/28 = 39.2%
3 Hemoragi pada bagian bawah Operkulum
12 12/28 = 42,8 %
4 Perut bengkak 4 4/28 = 14.2%
6 Sisik rontok 4 4/28 = 14.2%
7 Gelembung renang bengkak 1 1/28 = 3.5%
8 Hati pucat
Hati bengkak dan pucat
5 1 5/28 = 17.8 % 1/28 = 3.5 9 limpa bengkak 1 1/28 = 3.5% 10 Empedu bengkak 1 1/28 = 3.5%