BAB II TINJAUAN PUSTAKA
2.10 Parameter Penelitian
Pada penelitian ini akan dilakukan beberapa pengukuran parameter diantaranya sebagai berikut:
1. Chemical Oxygen Demand (COD)
Angka COD merupakan ukuran bagi pencemaran oleh zat-zat organik secara alamiah dapat dioksidasi melalui proses mikrobiologi dan mengakibatkan berkurangnya oksigen terlarut di dalam air (Alaerts dan Santika, 1987).
Bahan buangan organik akan dioksidasi oleh dikromat yang digunakan sebagai sumber oksigen (oxidizing agent) menjadi gas CO2 dan H2O serta jumlah ion chrom Jumlah oksigen yang dibutuhkan untuk mengoksidasi senyawa organik yang terdapat dalam air kimiawi dapat ditentukan dengan cara penambahna potassium permanganat atau potassium dikromat berlebih dalam suasan asam pana suhu 60-70˚C. Kelebihan potassium permanganat dapat dinetralisir dengan penambahan Na2C2O4 (Widyaningsih, 2011).
2. Volatile Suspended Solid (VSS)
VSS merupakan pengukuran banyaknya biomassa mikroba yang terdapat dalam unit pengolahan air limbah. VSS lebih cocok untuk mengukur banyaknya biomassa daripada jumlah organisme. VSS dapat pula menunjukkan kandungan bahan organik yang terdapat dalam air limbah (Davis, 2010). VSS dapat diukur dengan cara pembakaran hasil TSS pada suhu 500-550 °C. Pada suhu tersebut, uap air dan
karbon dioksida akan terbebas ke udara. Solid yang tersisa setelah pembakaran (abu) merupakan padatan anorganik (Spellman, 2003).
3. Volatile Fatty Acid (VFA)
Penyisihan COD pada pengolahan secara anaerobik dapat berdampak pada kandungan total VFA atau sering disebut asam lemak volatile yang dihasilkan selama proses berlangsung. Penyisihan COD dapat mencegah terjadinya akumulasi VFA, sehingga bakteri metanogen dapat bekerja secara optimum dalam mengubah asam asetat, karbon, dan hidrogen menjadi gas metana (Saddoud dan Sayadi, 2007).
Nilai VFA terdiri atas kandungan asam asetat, asam propionat, dan asam butirat, serta senyawa lain dengan kuantitas yang sangat kecil (Dijkstra, dkk., 2005).
Konsentrasi VFA adalah salah satu hal terpenting yang perlu diperhatikan dalam mengontrol pengolahan secara anaerobik (Ahring, dkk., 1995). VFA dihasilkan oleh fermentasi asidogenesis yang selanjutnya dapat digunakan sebagai sumber karbon untuk mendukung proses biologi, produksi metana, atau berfungsi sebagai substrat pilihan untuk produksi biopolimer (Pratt, dkk., 2012). Hasil penelitian Siegert dan Banks (2005), menyatakan bahwa kehadiran peningkatan konsentrasi VFA dalam sistem anaerobik terbukti dapat menghambat kinerja mikroba pada proses hidrolisis selulosa dan glukosa. Pada pH 6 terjadi proses penghambatan (inhibition) yang disebabkan oleh kandungan total VFA berlebih, yaitu 9 g/L. Hal ini diperkuat dengan pendapat Siegert dan Banks, yang menyatakan fermentasi glukosa akan terhambat pada VFA dengan konsentrasi melebihi 4 g/L.
BAB III
METODE PENELITIAN 3.1 Lokasi dan Waktu Penelitian
Penelitian dilakukan di Laboratorium Hidrolika Teknik Sipil, Fakultas Teknik USU.
Pengujian sampel limbah cair industri tahu dilakukan di Laboratorium Pengembangan, PTKI (Politeknik Teknik Kimia Industri) Medan. Penelitian berlangsung pada Agustus-September 2017.
3.2 Peralatan dan Bahan Penelitian 3.2.1 Peralatan Penelitian
a. Alat untuk pengambilan limbah adalah jerigen 5 liter b. Bioreaktor anaerob
c. Peralatan water displacement
d. Botol sampel berbahan plastik 50 ml e. Alat untuk pengukuran COD
Alat yang digunakan untuk analisis COD adalah water bath (yamato), gelas erlenmeyer 250 ml, buret (pyrex) dan statif, pipet volume 10 ml (precicolor), gelas ukur (pyrex), pipet tetes, bola karet, labu ukur 100 mL (pyrex), timbangan analitik kapasitas 220 g dengan keteletian 0,0001 g.
f. Alat untuk pengukuran VSS
Alat yang digunakan dalam analisis VSS adalah botol sampel 30 mL dan 50 mL, timbangan analitik (vibra), cawan petri, penjepit, oven (Memmert model 100-800), tanur (hermolyne), desikator (Schott Duran), vacum filter, dan kertas saring Whatman, pompa vakum, dan corong hisap 1000 mL.
g. Alat untuk pengukuran pH
Alat yang digunakan dalam analisis pH adalah gelas beaker 100 mL (Herma) dan pH meter.
h. Alat untuk pengukuran VFA
Alat yang digunakan dalam analisis VFA adalah alat destilasi, hot plate (rommelsbacher), pompa air, kondensor leibig, gelas erlenmeyer 250 ml dan 500 ml, buret (pyrex), pipet volume 10 mL (precicolor), pipet tetes, batu didih, dan bola karet.
3.2.2 Bahan Penelitian
Bahan baku yang digunakan dalam penelitian ini meliputi air limbah cair tahu dan kotoran sapi sebagai inokulum. Penelitian ini menggunakan bahan analisis COD, yang terdiri atas larutan KMnO4 0,025 N, larutan Na2C2O4, AgSO4, H2SO4 1:2, dan aquades.
Bahan yang dibutuhkan untuk analisis VSS adalah kertas saring dan aquades. Pada analisis VFA menggunakan larutan NaOH 0,1 N, HCl 0,1 N, H2SO4 15%, dan indikator PP. Bahan larutan pengontrol pH adalah larutan NaOH 40%. Bahan pengawet sampel untuk analisa COD adalah H2SO4 97% dan untuk pengawet sampel VFA adalah HgCl2. 3.3 Prosedur Kerja
3.3.1 Persiapan Alat dan Bahan
Limbah cair diperoleh dari industri tahu yang berada di Kecamatan Medan Polonia, sedangkan kotoran sapi yang digunakan sebagai inokulum diperoleh dari peternakan sapi yang berada di daerah Sei Mencirim, Medan Sunggal. Penelitian ini menggunakan bioreaktor anaerobik satu tahap dan dua tahap yang masing-masing berupa wadah plastik dengan volume 10 liter dan volume efektif 7 liter dan dilengkapi kran untuk pengambilan sampel dan juga peralatan water displacement yang berfungsi untuk menghitung volume biogas yang dihasilkan dari pendegradasian bahan organik.
3.3.2 Aklimatisasi
Bibit yang dipakai sebelumnya harus diaklimatisasi. Tujuan aklimatisasi adalah mempersiapkan mikroba pada lingkungan kerja yang baru agar dapat hidup dan bekerja menghasilkan produk sesuai yang diinginkan (Munawaroh, dkk., 2013).. Bibit yang dipakai berasal dari kotoran sapi. Lingkungan asal mikroba ini berbeda dengan lingkungan kerja baru hingga membutuhkan aklimatisasi. Kotoran sapi segar dicampur dengan aquades dengan perbandingan 1:1 kemudian disaring untuk memisahkan padatan yang ada dikotoran sapi tersebut. Kotoran sapi yang telah disaring dicampurkan ke dengan limbah tahu dengan perbandingan kotoran sapi dan limbah cair tahu 1:4.
Aklimatisasi dilakukan dengan dua kondisi, yang pertama dengan kondisi pH asam yaitu 5,5 untuk inokulum tahap asidogenesisi, dan pH netral yaitu 7 untuk inokulum tahap metanogenesis (Iriani, dkk., 2017). Kemudian dimasukkan ke dalam bioreaktor diinkubasi dalam keadaan anaerob. Inkunasi dilakukan sampai proses tersebut bisa
menghasilkan biogas. Hal tersebut menunjukkan bahwa mikroba yang ditanam didalam biodigester sudah dapat beraptasi (Utami, A. R, 2011)
3.3.3 Running Bioreaktor Anaerob Satu Tahap
Disediakan limbah cair tahu sebanyak 5,6 liter dan kotoran sapi yang telah diaklimatisasi dalam suasana pH netral yaitu 7 sebanyak 1,4 liter (rasio kotoran sapi : limbah cair tahu adalah 1:4 (Purnomo, 2010), kemudian dihomogenkan dan dilakukan pemantauan pH agar tetap netral (pH 7), ditambahkan NaOH jika diperlukan.
Dimasukkan campuran limbah cair tahu dengan kotoran sapi ke dalam bioreaktor anaerob, dialirkan gas nitrogen selama 10 menit, kemudian tutup rapat bioreaktor (Anggraini, 2014). Proses ini berlangsung selama 40 hari dan dipantau laju volumetrik gas dan diambil 100 ml sampel untuk pengukuran COD, VSS, VFA. Pengambilan sampel dilakukan setiap 3 hari (Kahar, dkk., 2016).
3.3.4 Running Bioreaktor Anaerob Dua Tahap
Proses anaeraob dua tahap berlangsung pada satu bioreaktor dengan kapasitas 10 liter dan volume efektif 7 liter. Disediakan limbah cair tahu sebanyak 5,6 liter dan kotoran sapi yang teraklimatisasi dalam suasana pH asam sebanyak 1,4 liter (rasio kotoran sapi : limbah cair tahu adalah 1:4) (Purnomo, 2010), kemudian dihomogenkan (Anggraini, 2014). Dimasukkan campuran limbah cair tahu dengan kotoran sapi ke dalam bioreaktor anaerob, dialirkan gas nitrogen selama 10 menit, kemudian tutup rapat bioreaktor.
Proses pada tahap pertama adalah proses hidrolisa dan pembentukan asam, dimana dalam proses tersebut dilakukan pemantauan pH agar tetap dalam suasana asam (pH 5,5). Proses tahap pertama berlangsung selama 2 hari. Pengambilan sampel dlakukan setiap 12 jam. Kemudian pada hari ke-3 berlangsung tahap kedua yaitu pembentukan metan, dimana dilakukan pemantauan pH dan ditambahkan NaOH agar pH naik dan dijaga tetap konstan pada pH 7 (Agustina, 2011). Dan ditambahkan kotoran sapi yang teraklimatisasi dalam suasana pH netral sebagai inokulum tahap metanogenesis. Proses tahap kedua ini berlangsung sampai hari ke 40. dipantau laju volumetrik gas dan diambil 100 ml sampel untuk pengukuran COD, VSS, VFA. Pengambilan sampel dilakukan setiap 3 hari (Kahar, dkk., 2016).
Gambar 3.1 Bioreaktor Anaerob Keterangan Gambar:
(a) Statif
(b) Water Displacement (c) Inlet
(d) Inlet Gas Nitrogen (e) Outlet
3.3.5 Analisa Sampel
1. Analisa Chemical Oxygen Demand (COD)
Analisa sampel untuk pengukuran COD dilakukan untuk megetahui laju pendegradasian substrat. Metode analisis uji COD mengacu pada Japanese Industrial Standar K 0102-1981 Tokyo. Analisa COD menggunakan metode open refluks. Prosedur percobaan dapat dilihat pada Lampiran 1.
Perhitungan penetapan kadar COD menggunakan Persamaan 3.1
COD ... (3.1) Keterangan:
a = Volume titrasi dengan KMnO4 (ml)
b = Volume titrasi blanko dengan KMnO4 (ml) f = faktor KMnO4
V = Volume sampel (ml) 0,2 = 1 KmnO4 ~ 1 gr O2
(a)
(b)
(c) (d)
(e)
2. Analisa Volatile Suspended Solid (VSS)
Analisa VSS dilakukan untuk mengetahui laju pertumbuhan mikroorganisme. Analisa VSS dilakukan sesuai dengan prosedur yang dapat dilihat pada Lampiran 1.
Besarnya nilai VSS yang diperoleh dapat dihitung dengan menggunakan Persamaan 3.2:
VSS = ... (3.2) Keterangan:
d = berat cawan dan residu (termasuk kertas saring) setelah pemanasan 105˚C (mg) a = berat cawan dan residu (termasuk kertas saring) setelah pembakaran 550˚C (mg) V = volume sampel (ml)
3. Analisa Volatile Fatty Acid (VFA)
Analisa VFA dilakukan untuk mengetahui laju produksi metabolit. Pada penelitian ini VFA yang dianalisa dalam bentuk asam asetat (CH3COOH). Metode yang digunakan dalam analisa VFA adalah destilasi uap (steam destilation) (AOAC, 1991). Pengukuran Volatile Fatty Acid dilakukan sesuai prosedur pada Lampiran 1.
Konsentrasi VFA total dihitung dengan menggunakan Persamaan 3.3:
VFA = ... (3.3) Keterangan:
a = Volume titrasi sampel HCl (ml)
b = Volume titrasi blanko dengan HCl (ml) V = Volume sampel (ml)
4. Analisa Produksi Biogas
Analisa produksi biogas ditinjau dari laju volumetrik biogas dan komposisi biogas.
Untuk analisa laju volumetrik, biogas yang dihasilkan dari hasil pendegradasian bahan organik dalam sampel limbah cair tahu dihubungkan dengan peralatan water displacement yang berfungsi untuk menghitung volume biogas yang dihasilkan dari pendegradasian bahan organik.
3.4 Analisa Data
Analisa data dilakukan terhadap data yang diperoleh dari hasil analisis setiap parameter yakni parameter COD, VSS, VFA dan produksi biogas.
3.4.1 Analisa Nilai COD, VSS, VFA dan Volume Kumulatif Biogas
Analisis dilakukan terhadap data COD, VSS, VFA dan Volume Kumulatif Biogas pada limbah cair tahu selama running reaktor. Data setiap parameter disajikan dalam bentuk tabel dan diplotkan dalam bentuk grafik dengan sumbu X adalah waktu pengamatan dan sumbu Y merupakan konsentrasi setiap parameter.
3.4.2 Metode Regresi
Untuk mencari hubungan persamaan digunakan metode regresi dari dua variabel.
Efisiensi dari penurunan COD dianalisis secara regresi untuk mengetahui besar pengaruh penurunan COD terhadap waktu.
3.4.3 Analisa Yield Biogas
Analisis yield Biogas dilakukan untuk mengetahui biogas yang dihasilkan dalam 1 gram COD yang terkonversi. Hasil yield biogas dapat dihitung dengan Persamaan 3.4.
Yield Biogas = ... (3.4) Keterangan:
V = Volume kumulatif biogas (L)
COD0 = Konsentrasi COD saat awal pengolahan (g) CODt = Konsentrasi COD saat akhir pengolahan (g)
3.5 Flowchart Penelitian
3.5.1 Persiapan Alat dan Bahan
Alur proses persiapan Alat dan Bahan dapat digambarkan flowchart pada Gambar 3.1.
Gambar 3.2 Flowchart Persiapan Bahan Baku
3.5.2 Running Bioreaktor Anaerob Satu Tahap
Alur proses running pada bioreaktor anaerob satu tahap dapat digambarkan flowchart pada Gambar 3.2.
Gambar 3.3 Flowchart Running Bioreaktor Anaerob Satu Tahap Mulai
Disediakan 5,6 liter limbah cair tahu dan kotoran sapi 1,4 liter.
Dihomogenkan, dan dilakukan pengukuran pH.
Selesai
Dimasukkan campuran limbah cair dengan kotoran sapi ke dalam bioreaktor anaerob, ditambahkan NaOH agar pH naik dan dijaga tetap netral (pH 7), dialirkan gas nitrogen selama
10 menit, kemudian bioreaktor ditutup rapat.
Setiap hari pH dikontrol, dan setiap 3 hari dianalisa laju volumetrik biogas dan diambil 50 ml sampel untuk pengukuran COD, VSS, VFA. Kemudian diakhir pengolahan dilakukan uji kromatografi untuk mengetahui komposisi gas.
Mulai
Pengambilan limbah cair tahu dan kotoran sapi
Perakitan reaktor
Selesai
3.5.3 Running Bioreaktor Anaerob Dua Tahap
Alur proses running pada bioreaktor anaerob dua tahap dapat digambarkan flowchart pada Gambar 3.3.
Gambar 3.4 Flowchart Running Bioreaktor Anaerob Dua Tahap Mulai
Disediakan 5,6 liter limbah cair tahu dan kotoran sapi 1,4 liter. Dihomogenkan, dan dilakukan pengukuran pH.
Selesai
Dimasukkan campuran limbah cair dengan kotoran sapi ke dalam bioreaktor anaerob, pada tahap satu dikontrol pH agar tetap dalam suasana asam (pH 5,5), dialirkan gas nitrogen selama 10 menit, kemudian bioreaktor ditutup
rapat.
Setelah 2 hari dari tahap pertama, ditambahkan NaOH agar pH naik dan dijaga tetap netral (pH 7) pada tahap kedua
Setiap hari pH dikontrol. Setiap 12 jam (tahap pertama) dan setiap 3 hari hingga hari ke 40 dianalisa laju volumetrik biogas dan diambil 50 ml sampel untuk pengukuran COD, VSS, VFA. Kemudian diakhir pengolahan dilakukan uji kromatografi untuk mengetahui komposisi gas.
BAB IV
HASIL DAN PEMBAHASAN
4.1. Karakteristik Bahan Baku
4.1.1. Karakteristik Limbah Cair Tahu
Pada penelitian ini, limbah cair tahu diambil dari outlet pabrik tahu yang berada di kecamatan Medan Polonia. Untuk mengetahui karakteristik limbah cair tahu yang akan diolah maka dilakukan analisis awal limbah cair industri tahu. Karakteristik limbah cair industri tahu dapat dilihat pada Tabel 4.1.
Tabel 4.1 Karakteristik Limbah Cair Tahu
No. Parameter Satuan Hasil Analisa
1. COD mg/l 2489
2. TSS mg/l 760
3. pH - 3,9
(Sumber: Hasil Analisa, 2017)
Berdasarkan Tabel 4.1 dapat dilihat bahwa limbah cair tahu memiliki konsentrasi COD yaitu 2489 mg/l, konsentrasi TSS yaitu 760 mg/l, dan nilai pH yaitu 3,9. Hal ini sejalan dengan teori bahwa limbah cair tahu memiliki konsentrasi COD berkisar 1500-14000 mg/l (Herlambang, 2002), konsentrasi TSS berkisar 640-800 mg/l, konsentrasi BOD berkisar 900-5800 mg/l, dan nilai pH berkisar 3,4-3,9 (Departemen pertanian, 2006).
Kandungan senyawa organik COD dan BOD yang cukup tinggi pada limbah cair tahu menunjukkan bahwa limbah dominan mengandung senyawa organik yang bersifat kompleks (Indarto, 2010). Angka COD biasanya lebih besar 2-3 kali angka BOD (Razif dan Ali, 1996). Menurut Eckenfelder (1989), jika nilai BOD kurang dari sepertiga dari nilai COD, maka limbah tersebut banyak mengandung zat anorganik.
Dari hasil analisa karakteristik awal dapat diketahui limbah cair tahu memiliki nilai COD lebih dari 1000 mg/l, maka limbah tersebut dapat diolah dengan proses anaerob.
Hal ini sejalan dengan pendapat Asmadi dan Suharno (2012) bahwa konsentrasi COD minimum untuk mencapai keberhasilan pengolahan anaerob adalah 1000 mg/l, sementara batas maksimum untuk pengolahan anaerob adalah 30000 mg/l (Eckenfelder, 1995). Melalui proses anaerob senyawa-senyawa organik kompleks akan terurai menjadi senyawa organik sederhana serta menghasilkan produk samping berupa biogas.
Adanya proses pemecahan atau penguraian senyawa organik menjadi senyawa yang lebih sederhana secara tidak langsung juga dapat menurunkan nilai COD (Avlenda, 2009).
4.1.2. Karakteristik Kotoran Sapi sebagai Inokulum
Pengolahan anaerob melibatkan aktivitas mikroorganisme campuran baik yang bersifat fakultatif anaerobik maupun anaerobik obligat untuk merombak bahan organik menjadi produk akhir dalam bentuk gas seperti karbondioksida dan metan (Benefield dan Rendal 1980; Stafford et al, 1980). Proses anaerob berlangsung lambat, maka diperlukan inokulum untuk mempercepat proses perombakan bahan organik, biasanya digunakan lumpur aktif organik, kotoran hewan atau cairan isi rumen (Ginting, 2007). Pada penelitian ini inokulum yang digunakan adalah kotoran sapi. Menurut Sufyandi (2001), kotoran sapi cocok dijadikan sebagai inokulum dalam proses fermentasi, karena kotoran sapi telah mengandung bakteri penghasil gas metan.
Kotoran sapi diencerkan dengan air (1:1) dan disaring untuk menghilangkan partikel-partikel kasar. Cairan yang lolos saringan diaklimatisasi dengan limbah cair tahu dengan perbandingan 1:4 dalam kondisi anaerob secara batch. Aklimatisasi dilakukan guna untuk mempersiapkan mikroba pada lingkungan kerja yang baru agar dapat hidup dan bekerja menghasilkan produk sesuai yang diinginkan (Munawaroh, dkk., 2013).
Aklimatisasi dilakukan dalam dua suasana pH (Indri, 2017), yaitu suasana asam (pH 5,5) untuk inokulum proses anaerob dua tahap – tahap pertama (tahap asidifikasi) dan suasana netral (pH 7) untuk inokulum proses anaerob dua tahap – tahap kedua (tahap metanogenesis), juga untuk inokulum proses anaerob satu tahap. Pengkonsian pH dilakukan dengan menambahkan larutan NaOH. Proses aklimatisasi berlangsung selama 10 hari, berakhirnya proses aklimatisasi ditandai dengan terbentuknya biogas yang mengindikasikan bakteri sudah dapat beradaptasi (Utami, A. R, 2011). Kotoran sapi yang telah diaklimatisasi akan dijadikan inokulum untuk proses pengolahan anaerob satu tahap dan dua tahap.
Menurut Dhadse et al (2012) bakteri yang terkandung dalam kotoran sapi terbagi atas dua kelompok yaitu bakteri metanogenik yang meliputi Methanobrevibacter ruminatium, Methanobacterium formicium, Methanosarcina frisa, dan Methanthix
soehngenii. dan bakteri non metanogenik meliputi Clostridium, Propionibacterium, Bacteroides, dan Peptostreptococcus.
Parameter yang dianalisis untuk memperkirakan konsentrasi mikrooorganisme adalah Volatile Suspended Solid (VSS). Dalam penentuannya, VSS diperoleh dengan memanaskan residu hasil analisa zat padat total pada suhu ± 550OC. Bagian yang terbakar atau hilang selama pemanasan disebut sebagai residu volatile (Volatile Suspended Solid) atau zat padat organik sedangkan bagian yang tersisa disebut residu terikat atau zat padat anorganik (Suyasa, 2015). Hasil uji karakteristik inokulum yang telah teraklimatisasi ditampilkan pada Tabel 4.2.
Tabel 4.2 Karakteristik Inokulum
No. Parameter Satuan
Kadar Teraklimatisasi dalam
kondisi asam Teraklimatisasi dalam kondisi netral
1. TSS mg/l 5916,52 5686,05
2. VSS mg/l 4437,38 4206,91
3. pH - 5,5 7
(Sumber: Hasil Analisa, 2017)
Berdasarkan Tabel 4.2 dapat dilihat konsentrasi VSS yang diperoleh setelah aklimatisasi dalam suasana pH asam dan netral berturut-turut adalah 4437,38 mg/l dan 4206,91 mg/l. Konsentrasi VSS yang didapatkan dalam percobaan ini telah memenuhi syarat untuk pengolahan anaerobik yaitu, konsentrasi VSS lebih dari 4000 mg/l atau minimal 2000 – 4000 mg/l (Syahrin, dkk., 2016).
4.1.3. Karakteristik Bahan Campuran
Pengolahan anaerobik pada limbah cair tahu dilakukan dengan sistem batch. Bioreaktor terbuat dari bahan plastik berupa jerigen yang dilengkapi outlet pengambilan sampel dan perlengkapan water displacement guna mengetahui bolume biogas yang dihasilkan, Volume total bioreaktor adalah 10 L dengan volume efektif yaitu 7 L. Limbah cair tahu dicampur dengan inokulum sebanyak 20% dari volume kerja yaitu 1,4 L. Adapun hasil uji karakteristik bahan campuran dapat dilihat pada Tabel 4.3.
Tabel 4.3 Karakteristik Bahan Campuran
Berdasarkan Tabel 4.3 dapat dilihat bahwa pada R1 dan R2 dioperasikan dalam suasana pH yang berbeda. Pada bioreaktor anaerob satu tahap (R1) pH diatur dalam suasana netral. Sedangkan pada bioreaktor anaerobik dua tahap (R2), tahap pertama (R2-1) dimana terjadi proses asidifikasi dioperasikan selama dua hari dalam kondisi asam yaitu pH 5,5 (Madyanaova, 2005), pada tahap kedua (R2-1) dimana terjadi proses metanogenesis pH diatur dalam suasana netral, yaitu 7 (Benefield dan Rendal, 1980).
4.2. Hasil Pengoperasian Bioreaktor Anaerob
Pada penelitian ini pengolahan limbah cair tahu menggunakan bioeraktor anaerob dioperasikan secara satu tahap dan dua tahap dengan sistem batch. Selama pengoperasian bioreaktor anaerob ini, dilakukan pengaturan dan pengamatan profil pH.
Hasil percobaan ini akan dianalisis melalui beberapa parameter, yaitu penurunan kadar Chemical Oxygen Demand (COD), pertumbuhan mikroorganisme yang diamati melalui parameter Volatile Suspended Solid (VSS), produksi Volatile Fatty Acid (VFA) dan produksi biogas sebagai produksi samping pengolahan anaaerob. Hal ini diperlukan untuk mengetahui perbandingan pengaruh anaerob satu tahap dengan anaerob dua tahap terhadap hasil pengolahan limbah cair tahu.
4.2.1. Pengamatan Profil pH pada Bioreaktor Anaerob Satu Tahap dan Dua Tahap
Faktor pH sangat berperan pada pengolahan anaerob karena pada rentang pH yang tidak sesuai, mikroba tidak dapat tumbuh dengan maksimum dan bahkan dapat menyebabkan kematian (Simamora dkk, 2006). Pada penelitian ini pengukuran pH dilakukan dengan menggunakan pH meter. Hasil pengamatan pH selama proses pengolahan secara anaerob pada R1, R2-1, R2-2 dapat dilihat pada Gambar 4.1.
(a)
(b)
(c)
Gambar 4.1 Profil pH digester pada (a) R1 (Bioreaktor Anaerob Satu Tahap) (b) R2-1 (Bioreaktor Anaerob Dua Tahap – Tahap Pertama)
(c) R2-2 (Bioreaktor Anaerob Dua Tahap – Tahap Kedua) 6,0
Profil pH R2, R2-1, dan R2-2 diamati setiap 12 jam selama dua hari, kemudian selanjutnya setiap tiga hari hingga akhir pengolahan (hari ke-40). Berdasarkan Gambar 4.1a, b, dan c dapat dilihat bahwa perubahan derajat keasaman (pH) selama proses pengolahan tidak signifikan. Gambar 4.1a menunjukkan pH pada R1 cenderung mengalami kenaikan, dimana pH berada dalam rentang 7 – 7,4. ). Nilai pH mengalami kenaikan pada hari ke-5 hingga hari ke-8 menjadi pH 7,3. Kemudian mengalami penurunan hingga hari ke-14 menjadi pH 7, lalu berangsur naik hingga pada hari ke-40 menjadi pH 7,4. Pada awal pengolahan pH bahan campuran (limbah cair tahu dengan kotoran sapi sebagai inokulum) berada dalam suasana netral (pH 7). Pengaturan pH dilakukan dengan menambahkan natrium hidroksida (NaOH). Pada tahap ini nilai pH relatif meningkat, hal ini mengindikasikan terjadinya degradasi protein, dimana ammonia (NH3-N) bereaksi dengan air membentuk ammonium bicarbonate (NH4-N) sebuah buffer alami (Sofyan and Salmariza, 2015).
Derajat keasaman (pH) pada R2-1 stabil diangka 5,5 seperti yang ditampilkan Gambar 4.1b. Pada awal pengolahan pH bahan campuran diatur dalam suasana asam (pH 5,5), dan hingga t=24 jam stabil di pH 5,5. ). Keadaan pH yang stabil pada R2-1 menunjukkan produksi VFA dan ammonium bicarbonate berkesinambungan dalam jumlah yang seimbang (Syaichurrozi, 2015).
Profil pH pada R2-2 sebagaimana yang ditampilkan pada Gambar 4.1c berada dalam rentang 7 – 7,6. Pengamatan pH pada R2-2 berlangsung selama 38 hari yang dimulai setelah t=48 jam pada R2-1. Setelah melewati proses R2-1 selama dua hari, limbah cair tahu dikeluarkan dan kembali diatur pH pada kondisi optimum proses metanogenesis yaitu pH 7 (netral) dengan menambahkan NaOH lalu kembali ditambahkan inokulum sebelum akhirnya dimasukkan ke dalam bioreaktor. Dari pengamatan pH pada R2-2 diketahui bahwa perubahan pH pada R2-2 sama dengan R1 yaitu cenderung mengalami kenaikan. Hal ini menunjukkan pada proses ini asam-asam organik dipecah, akibatnya pH campuran mengalami kenaikan
Menurut Campbell dan Reece (2008), pH merupakan faktor penting proses penguraian bahan organik secara anaerob karena pH mempengaruhi aktivitas mikroorganisme.
Dalam penelitian ini, profil pH pada R1, R2-1, dan R2-2 menunjukkan bahwa derajat keasaman (pH) pada masing-masing proses masih mendukung proses anaerobik pada
R1, R2-1 dan R2-2. Menurut Malina dan Pohland (1992) pH optimum untuk tahap pembentukan asam berada dalam kisaran 5,0-6,5. Sedangkan derajat keasaman (pH) optimum untuk mikroba metanogensis berada dalam kisaran 6,4-7,8 (Ahmad, 1999); 6,6 – 7,6 (McCarty, 1964, dari Madyanova, 2005). Diatas batas pH tersebut, penguraian tetap berjalan dengan efisien yang berkurang. Sedangkan dibawah batas tersebut, efisiensi akan menurun cepat.
Proses penanganan limbah secara anaerob agar dapat berjalan baik dan efisien, maka perlu diperhatikan beberapa faktor yang memepengaruhinya. Faktor-faktor tersebut diantaranya berupa keasaman yang dinyatakan dengan pH (Jenie dan Rahayu, 1993).
Dalam penelitian Lang (2007), profil pH pada tahap asidifikasi pengolahan limbah cair kelapa sawit secara anaerob dua tahap berada dalam rentang 5,5 – 6,0. Proses asidogenesis merupakan proses penguraian bahan kompleks organik tersuspensi menjadi monomer organik terlarut yang kemudian diurai menjadi asam-asam organik volatile. Terurainya bahan organik tersebut dapat tampak dari meningkatnya parameter VFA (Soetopo dkk, 2014).
4.2.2. Pengaruh Bioreaktor Anaerob Satu Tahap dan Dua Tahap terhadap
4.2.2. Pengaruh Bioreaktor Anaerob Satu Tahap dan Dua Tahap terhadap