Pengaruh Asam Askorbat untuk Mengurangi Kering alur Sadap Parsial Tanaman Karet (Heveabrasiliensis Muell. Arg) pada Klon PB 260 dan IIR 42

(1)

(2)

(3)

Lampiran 3. Data Thiol 0 bulan

Perlakuan Ulangan Total Rataan

1 2 3

Sidik Ragam Thiol 0 bulan

(4)

1 2 3

K1A0 0,785 0,945 0,819 2,549 0,850

K1A1 0,845 1,465 1,022 3,332 1,111

K1A2 0,601 0,890 0,922 2,413 0,804

K1A3 0,948 0,675 1,173 2,796 0,932

K2A0 0,634 0,743 0,542 1,919 0,640

K2A1 0,861 0,703 0,624 2,188 0,729

K2A2 0,554 0,642 0,900 2,096 0,699

K2A3 0,743 0,479 0,916 2,138 0,713

Total 5,971 6,542 6,918 19,431 6,477

Sumber Db JK KT F P

Block 2 0,05 0,0283 0,86 0,53

K 1 0,31 0,3146 9,59 0,09

Error (a) 2 0,06 0,0327

A 3 0,11 0,0399 0,96 0,43

A x K 3 0,05 0,0194 0,47 0,7

Error (b) 12 0,49 0,0411

Total 23 1,07

(5)

1 2 3

K1A0 0,660 0,045 0,505 1,210 0,403

K1A1 0,319 0,554 0,654 1,527 0,509

K1A2 0,470 0,464 0,578 1,511 0,504

K1A3 0,501 0,479 0,637 1,618 0,539

K2A0 0,440 0,562 0,405 1,408 0,469

K2A1 0,973 0,440 0,675 2,088 0,696

K2A2 0,649 0,561 0,619 1,829 0,610

K2A3 0,698 0,651 0,655 2,004 0,668

Total 4,709 3,756 4,729 13,195 4,398

Sumber Db JK KT F P

Block 2 0,07 0,0386 1,57 0,38

K 1 0,08 0,0890 3,62 0,19

Error (a) 2 0,04 0,0245

A 3 0,11 0,0372 1,39 0,29

A x K 3 0,01 0,0038 0,14 0,93

Error (b) 12 0,32 0,0267

Total 23 0,63

(6)

Lampiran 6. Data PI 0 bulan

1 2 3

K1A0 13,700 14,550 15,650 43,900 14,633

K1A1 11,950 16,100 18,050 46,100 15,367

K1A2 20,900 23,650 18,300 62,850 20,950

K1A3 18,250 14,250 23,500 56,000 18,667

K2A0 10,400 1,600 11,100 23,100 7,700

K2A1 7,950 10,900 12,300 31,150 10,383

K2A2 9,750 9,200 12,200 31,150 10,383

K2A3 9,500 9,900 12,200 31,600 10,533

Total 102,400 100,150 123,300 325,850 108,617

Sidik Ragam PI 0 bulan

Sumber Db JK KT F P

Block 2 40,74 20,3707 5,4 0,15

K 1 351,51 351,5176 93,28 * 0,01

Error (a) 2 7,53 3,7682

A 3 70,29 23,4314 2,66 0,09

A x K 3 24,54 8,1826 0,92 0,45

Error (b) 12 105,67 8,8060

Total 23 600,28

(7)

1 2 3

Perlakuan _Ulangan Total Rataan

1 2 3

(8)

1 2 3

(9)

Lampiran 9. Data Sukrosa 0 bulan

1 2 3 Lampiran 9. Transformasi √ x Data Sukrosa 0 bulan

1 2 3

Sidik Ragam Sukrosa 0 bulan

(10)

Lampiran 10. Data Sukroa 2 bulan

1 2 3 Lampiran 10. Tranformasi √ x Data Sukroa 2 bulan

1 2 3

(11)

Lampiran 11. Data Sukroa 4 bulan

1 2 3 Lampiran 11. Transformasi √ x Data Sukroa 4 bulan

1 2 3

(12)

Lampiran 12. Data aktivitas superoksida dismutase (SOD) 1

1 2 3

Lampiran 11 . Transformasi √ x Data aktivitas superoksida dismutase (SOD) 1

1 2 3

Sidik Ragam aktivitas superoksida dismutase (SOD) 1

(13)

Lampiran 13. Data aktivitas superoksida dismutase (SOD) 2

1 2 3 Lampiran 13. Transformasi √ x Data aktivitas superoksida dismutase (SOD) 2

1 2 3

Sidik Ragam aktivitas superoksida dismutase (SOD) 2

(14)

Lampiran 14 . Data Produksi 1 Lampiran . Data Produksi 1

1 2 3

Lampiran 14. Transformasi √ x Data Produksi 1

(15)

Lampiran 15. Data Produksi 2

1 2 3

(16)

1 2 3

K1A0 1,23 1,60 0,99 3,82 1,27

K1A1 7,59 9,80 6,10 23,48 7,83

K1A2 9,14 8,56 11,76 29,47 9,82

K1A3 6,03 7,76 7,21 21,00 7,00

K2A0 1,26 0,64 1,90 3,80 1,27

K2A1 3,92 5,95 5,83 15,70 5,23

K2A2 7,38 2,75 2,50 12,63 4,21

K2A3 4,92 7,16 2,41 14,49 4,83

Total 41,47 44,22 38,69 124,38 41,46

Sidik Ragam Produksi 3

Sumber Db JK KT F P

Block 2 1,91 0,9556 0,61 0,6194

K 1 40,41 40,4175 25,98 * 0,0364

Error (a) 2 3,11 1,5552

A 3 126,14 42,0491 12,85 *** 0,0005

A x K 3 23,99 7,998 2,44 0,1143

Error (b) 12 39,24 3,2705

Total 23 234,80

(17)

1 2 3

Lampiran 17. Trnasformasi √ x Data Produksi 4

(18)

1 2 3

(19)

1 2 3

(20)

1 2 3

perlakuan Ulangan TOTAL Rataan

(21)

1 2 3

(22)

Lampiran 22. Data IP 1 ( 2 bulan aplikasi)

1 2 3

perlakuan Ulangan TOTAL Rataan

1 2 3

Sidik Ragam IP 1 ( 2 bulan aplikasi)

(23)

Lampiran 23. Data IP 2 ( 4 bulan aplikasi)

1 2 3

Sidik Ragam IP 2 ( 4 bulan aplikasi)

(24)

Lampiran 24 . Data total solid content (TSC) 1

1 2 3

(25)

1 2 3

(26)

Perlakuan Ulangan TOTAL Rataan

1 2 3

K1A0 21,90 40,74 23,46 86,10 28,70

K1A1 29,55 18,26 32,38 80,19 26,73

K1A2 27,02 20,00 34,68 81,69 27,23

K1A3 26,23 31,33 23,36 80,92 26,97

K2A0 51,44 39,43 34,40 125,27 41,76

K2A1 19,28 37,14 20,58 77,00 25,67

K2A2 21,25 59,26 36,93 117,44 39,15

K2A3 40,00 19,51 23,46 82,97 27,66

TOTAL 236,67 265,67 229,23 731,57 243,86

1 2 3

K1A0 36,55 29,39 17,70 83,63 27,88

K1A1 40,41 25,10 22,31 87,83 29,28

K1A2 18,07 25,31 28,16 71,54 23,85

K1A3 32,66 33,06 29,10 94,82 31,61

K2A0 26,97 20,00 29,39 76,36 25,45

K2A1 41,98 20,00 32,51 94,49 31,50

K2A2 19,34 27,57 26,03 72,95 24,32

K2A3 40,65 32,93 31,30 104,88 34,96

(27)

Lampiran 25 . Data Protein 1

perlakuan Tabel Protein 1 Total Rataan

1 2 3

K1A0 398,816 409,473 412,556 1220,845 406,948 K1A1 397,027 398,653 374,204 1169,884 389,961 K1A2 411,008 352,713 380,773 1144,494 381,498 K1A3 390,399 406,019 394,467 1190,885 396,962 K2A0 395,930 430,664 417,003 1243,597 414,532 K2A1 337,002 435,411 394,911 1167,324 389,108 K2A2 387,669 420,392 390,523 1198,584 399,528 K2A3 384,332 408,311 364,278 1156,921 385,640

Total 3102,183 3261,636 3128,715 9492,534

Lampiran 25 . Data Protein 2

perlakuan Tabel Protein 2 Total Rataan

1 2 3

K1A0 30,242 44,373 42,871 117,486 39,162 K1A1 6,172 93,499 63,650 163,321 54,440 K1A2 70,363 43,968 39,500 153,831 51,277 K1A3 78,245 45,973 66,706 190,924 63,641 K2A0 38,816 80,224 42,270 161,310 53,770 K2A1 60,986 69,299 75,137 205,422 68,474 K2A2 50,858 48,768 94,655 194,281 64,760 K2A3 49,219 78,428 29,080 156,727 52,242

(28)

Lampiran Gambar 1

Tanaman KAS Parsial

(29)

Lampiran Gambar 2

Produksi PB 260 ,0 ppm Produksi PB 260, 150 ppm asam askorbat asam askorbat

(30)

Lampiran Gambar 3

Produksi IRR 42, 0 ppm Produksi IRR 42, 150 PPM asam askorbat asam askorbat

(31)

Lampiran Gambar 4

(32)

DAFTAR PUSTAKA

Abraham, T., J. Mathew, P. Srinivas, an C. K. Jacob. 2006. Incidence of taping panel drynes on populer rubber clones in southren rubber clones in southern rubber growing region of india. In Jacob, J., R R. Krishnakumar and N.M Mathew. (Eds). Taping Panel Dryness Of Rubber Research Institute of India. India. 55-63.

Anwar C. 2001.Manajemen dan Teknologi Budidaya Karet.FABA Indonesia Konsultan.

Ardiansyah M., Mawarni L., Rahmawati N.2014. Respon Pertumbuhan dan Produksi Kedelai Hasil Seleksi Terhadap Pemberian Asam Askorbat dan Inokulasi Fungi Mikoriza Arbuskular di Tanah Salin. Univrsitas Sumatra Utara. Medan.

Ardianti, A., Guntarti, A., Zainab. 2014. Uji Aktivitas Antioksidan Fraksi Eter Hasil Hidrolisis Infusa Daun Binahong (Antedera Cordifolia (Ten) steenis) Dengan Metode DPPH (1.1- Diphenil-2-Picryihydrazl) . Universitas Ahmad Dahlan. Yogyakarta.

Arif, B., dan Islan, B. 2006.Penanggulangan Alur Sadap dan Penyakit Lapuk Cabang dan Batang Pada Tanaman Karet Dengan Formula Antco F-96.Balai Penelitian Sumbawa.

Arlyny F, A.2008.Program Ekspresi Gen Responsif Terhadap ReactiveOxygen

Species pada Hevea brasiliensis AkibatPelukaan dan Etilena Eksogen.

Institut Pertanian Bogor. Bogor.

Astuti S. Muchtadi D., Astawan M., Purwantara B., and Wresdiyanti T. 2009. Pengaruh Pemberian Tepung Kedelai Kaya Isoflavon Terhadap Kadar Malonaldehid (MDA), Aktivitas Superoksida Dismutase (SOD) Testis dan Profil Cu,Zn- SOD Tubuli Seminiferi Testis Tikus Jantan. Fakultas Kedokteran Hewan. Institut Pertanian Bogor. Bogor.

Bangun, M. K. 1991. Rancanagn Percobaan. Fakultas Pertanian USU. Medan.

BPS. 2014. Statistik Karet Indonesia. Badan Pusat Statistik BPS.Statistics Indonesia.

Budiman, H. 2012. Budidaya Karet Unggul. Pustaka Baru. Yogyakarta.

(33)

Dische, Z, M. 1962. Carbohydrate Chem Acad. Press, I1:488

Gebelin V., Leclercq, J., Hu, S., Tang C., and Montoro P. 2013. Regulation of MIR Genes in Response to Abiotik Stress in Hevea brasiliensis Int. J. Mol. Sci. 2013.14, 19587-19604; doi: 10.3390?ijms 141019587. International Journal of Molecular Sciences ISSN 1422-0067 www.mdp.com/journal/ijms

Gohet, J., L. Prevot, J.M. Eschbach, A. Clement,and J.L. Jacob. 1996. Clone, Growth, and Stimulation : Latex Production Factors. Plantations3(1): 30−38.

Hernofialdi, Rini, E A., Machmud R.2011.Pengaruh Pemberian Vitamin C Terhadap Kadar Inter Seluler Adhesion Molecule -1 (ICAM-1) Pada remaja laki laki dengan Obesitas di Kota Padang. Universitas Andalas. Padang.

Island,B, dan Dwi, S,A. 2013. Prospek Pengembangan Karet Diwilayah Daerah Aliran Sungai.Balai Penelitian Sumbawa.

Jacob, J. And . Krisnakumar. 2006. Tapping Panel Dryness Syndrome: What We Know And What We Do Not Know. In Jacob, J,R R. Krisnakumar and N. M. Mathew. (Eds). Tapping Panel Dryness Of Rubber Trees. Rubber Research Institute of India. India. 3-27.

Janudianto, Prahmono A, Napitupulu H, Rahayu S. 2013. Panduan budidaya karet untuk petani skala kecil.Rubber cultivation guide for small-scale farmers. Lembar Informasi AgFor 5. Bogor, Indonesia: World AgroforestryCentre (ICRAF) Southeast Asia Regional Program.

Julahir, H, S. 2009. Pengaruh Pemberian Vitamin C terhadap jumlah sel ledying dan jumlah sperma mancit dewasa yang dipapari Monosodium glutamate.Universitas Sumatra Utara. Medan.

Karintus. 2011. Pengaruh Macam Entres dan Konsentrasi BAP pada Pertumbuhan Okulasi Karet (Havea brasiliensis). Universitas Sebelas Maret. Surakarta.

Kurniawan, M., Izzati, M., Nurchayati.(2010). Kandungan Klorofil, Karonenoid dan Vitamin C pada Beberapa Spesies Tumbuhan Aquatik. Universitas Dipenogoro. Semarang.

Lacote, R. 2007. Some Considerations Concerning the Yield Potential of Some Clones HB in IRC2007. IRRDB and CRRI : Siem Reap. Cambodia

(34)

Marchino, F,Yusrizal M.Z, dan Irfan S. 2010. Pertumbuhan Stum Mata Tidur Beberapa Klon Entres Tanaman Karet (Hevea brasiliensis Muell.) Pada Batang Bawah PB 260 di Lapangan.Universitas Andalas, Padang.

Maryani. 2007. Aneka Tanaman Perkebunan, Pusat Pengembangan Universitas Riau. Pekanbaru.

Maslachah L., Sugihartuti R.,dan Kurniasanti R .2008. Hambatan Produksi Reactive Oxygen Species Radikal Superoksida (O2.-) oleh Antioksidan Vitamin E (α- tocopherol ) pada Tikus Putih (Rattus norvegicus)yang Menerima Stressor Renjatan Listrik. Universitas Erlangga. Surabaya.

Milford, G.FJ., E.C. Paarderkooper, And H.C. Yee. 1969. Latex Vessel Plugging : Its Importance To Yeild Ang Clonal Behaviour. J.Rubb. Res. Inst. Malaya 21,274282

Nugroho P, S. 2010. Karakterisasi Biologi Isolat-isolat Rigidupon Micropons Pada Tanaman Karet (Hevea brasiliensisMuell.). Universitas Sebelas Maret. Surakarta.

Peraturan Menteri Pertanian Republik Indonesia.2014. Pedoman Budidaya Karet (Hevea brasiliensis) yang Baik. Jakarta.

Rejab, I,B., Pastur V, and Mauch-Mani B. 2014.Plant Responses to Simultaneous Biotic and Abiotic Stress Molecular Mechanisms. Universal of Nechatel. Switzerland.

Sarvajeet Singh Gill, Narendra Tuteja. 2010. Plant Physiology and Biochemistry . Aruna Asaf Ali Marg, New Delhi. India.

Setiawan, D. H., danAndoko, A. 2005. Petunjuk Lengkap Budidaya Karet. Agromedia Pustaka. Jakarta.

Sianturi, H. S., 2001. Budidaya Tanaman Karet. Fakultas Pertanian USU. Medan.

Steenis, C. G. K., 2005. Flora. PT. Pradyna Paramita. Jakarta

Sulistyowati, Y. 2006. Pengaruh Pemberian Likopen Terhadap Status Antioksidan (Vitamin C dan Gluthathion Proksidase) Tikus (Rattus norvigatus galur

sprague dowly) Hiperkolesterolemik. Universitas Diponogoro. Semarang.

(35)

Suwarto, dan Yoke, O., 2010. Budidaya Tanaman Perkebunan Unggul. Penebar Swadaya. Jakarta

Syukur.2013. Kajian Okulasi Benih Karet(Hevea BrasiliensisMuell. Arg) Dengan Perbedaan Mata Tunas (Entres) dan Klon.Balai Pelatihan Pertanian Jambi

Taussky H. Hand E. Shorr. 1953. A micro colorimetric methods for the determination of inorganic phosphorus. J. Biol Chem 202: 675-685.

Tistama, R., Sumarmadji., dan Siswanto. 2006.Kejadian Kering Alur Sadap dan Teknik Pemulihannya pada Tanaman Karet.Balai Penelitian Sei Putih.

Tistama, R. 2013. Faktor Histologis dan Fisiologis Yang Berkaitan Dengan Produksi Lateks.Workshop Eksploitasi Tanaman Karet Menuju Produktivitas Tinggi dan Umur Ekonomis Optimal.Medan, 13.

(36)

BAHAN DAN METODE Tempat dan Waktu Penelitian

Penelitian dilaksanakan dikebun percobaan PB260 dan IR42 tahun

2006-2007. Balai Penelitian Sungai Putih, Kecamatan Galang,Kabupaten Deli Serdang,

tepatnya di ketinggian tempat ± 54 meter di atas permukaan laut, dari bulan Mei

sampai dengan Oktober 2015.

Bahan dan Alat

Bahan yang digunakan merupakan tegakan tanaman karet berumur 7-8 tahun

yang ditanam pada tahun 2006-2007 dengan jarak tanam 4 x 6 m dengan sistem sadap

1/2S d/3ET.2.5 (1/m 6/y), bahan kimia untuk diagnosis lateks, bahan kimia untuk

melihat histologi jaringan pembuluh lateks, asam askorbat.

Alat dan bahan yang diperlukan dalam penelitian ini adalah spidol marker,cat

minyak, pisau, sadap, spectrofometer, sentrifius microskop cahaya, alat ukur seperti

meteran dan timbangan, buku data, alat tulis, kamera beserta alat-alat lain yang

mendukung penelitian ini.

Metode Penelitian

Penelitian ini dilakukan dengan menggunakan Rancangan Petak Terbagi

(RPT/ Split Plot Design) dengan dua faktor perlakuan yaitu :

Petak utama : Klon Tanaman Karet (Main Plot)

K1 : Klon PB 260

K2 : Klon IRR 42

Anak Petak : Konsentrasi Asam Askorbit (Sub Plot)

(37)

A1 : 150 ppm

A2 : 300 ppm

A3 : 450 ppm

Sehingga diperoleh 8 kombinasi perlakuan yaitu

K1A0 K1A1 K1A2 K1A3

K2A0 K2A1 K2A2 K2A3

Jumlah ulangan : 3

Jumlah tanaman per perlakuan : 3

Jumlah kombinasi perlakuan : 8

Jumlah seluruh tanaman : 72

Adapun model liner dari sidik ragam penelitian sebagai berikut:

Yijk = µ + Bk + Ki + εik + Aj + (KA)ij+ δijk i = 1,2, j = 1,2,3,4 k= 1,2,3

Yijk = Nilai pengamatan karena pengaruh faktor K taraf ke-i dari faktor klon dan

faktor A taraf ke- J dari faktor taraf asam askorbat pada ulangan ke-k

μ = Nilai tengah umum.

Bk = Pengaruh blok atau ulangan ke-k.

Ki = Pengaruh aditif taraf ke – i dari faktor klon tanaman.

εik = Pengaruh acak dari petak utama, yang muncul pada taraf ke – i dari

faktor Klon tanaman dalam kelompok ke- K.

Aj = Pengaruh faktor A taraf ke – j dari faktor asam askorbat.

(KA)ij = Pengaruh interaksi faktor klon tanaman taraf ke – i dan interaksifaktor

(38)

δijk = Pengaruh sisa untuk anak petak atau pengaruh sisa karena pengaruh faktor

klon taraf ke-i dan faktor asam askorbat ke-j pada kelompok ke-k.

Data hasil pengamatan disusun dalam sidik ragam untuk masing masing

peubah amatan jika pengaruh perlakuan terhadap peubah yang diamati menunjukan

(39)

PELAKSANAAN PENELITIAN Plotting area Penelitian

Tahap awal dari penelitian ini adalah ploting areal penelitian dimana akan

dilakukan pengujian sampel. Tanaman akan dijadikan tanaman sampel ditandai

dengan jelas dengan cat dan diberi tali untuk menghindari kesalahan pengamatan dan

agar tanaman yang dijadikan tanaman sampel tidak disadap oleh penyadap.

Pengerokan Bidang Sadap

Setelah didapatkan sampel tanaman sampel tanaman yang mengalami

kejadian KAS maka sebelum pemberian asma askorbat terlebih dahulu bidang sadap

yang akan diberi perlakuan dikerok (bark scarpping) dengan pisau kerok untuk

mnghilangkan kulit luarnya kurang lebih 1-2 mm.

Perlakuan Pemberian Asam Askorbat

Asam askorbat yang diberikan sesuai dengan perlakuan dicampur dengan

gliserin dan dioleskan pada bidang sadap tanaman yang sudah dikerok. Interval

pemberian perlakuan adalah 1 kali dalam 1 minggu selama 4 bulan.

Pengamatan kondisi anatomis dan fisiologi

Pengamatan kondisi tersebut diamati dengan cara mengambil sampel lateks

(tanaman menunjukan gejala sembuh) dan kulit kulit untuk pengamatan

masing-masing peubah yang diamati.

Parameter Pengamatan Fisiologis lateks

Pengamatan kondisi fisiologis, yaitu kadar sukrosalateks, kadar fosfat

(40)

cara mengambil sampel lateks. Pengamatan ini dilakukan pada saat, 0, 2, 4, bulan

setelah pengaplikasian.

Peubah Amatan Thiol (R – SH) (mM)

Diukur dari serum asam Trikolro Asetat (TCA). Pengukuran dilakukan pada

sampel lateks yang sudah diambil serumnya melalui perendaman larutan trikloro –

asetat (McMullen, A, I. 1960. Berdasarkan prinsip reaksinya dengan asam dithiobis

– nitrobenzoat (DTNB) untuk membentuk TNB yang berwarna kuning yang

terabsorbsi pada λ 421 nm (nanometer) dengan spektrofotometer Beckman DU 650. Diukur pada setiap 2 bulan pengaplikasian.

Sukrosa (mM)

Diukur menggunakan metode anthrone (Dische, Z, M. 1962). Pengukuran

dilakukan pada sampel lateks yang sudah diambil serumnya melalui perendaman

larutan trikloroasetat kemudian dilarutkan pada larutan trikloro asetat sehingga

berupa serum. Dehidrasi sukrosa dalam asam sulfat pekat (H2SO4 70%) dan

pemanasan akan memberikan turunan furfural yang bereaksi dengan anthrone

mengadakan reaksi warna biru yang selanjutnya diukur absorbannya pada λ 627 nm (nanometer) dengan spektrofotometer Beckman DU 650 diukur pada setiap 2 bulan

pengaplikasian.

Fosfat Anorganik (Pi)

Diukur berdasarkan prinsip pengikatan oleh amonium molibdad

(Taussky H. H and E. Shor. 1953) . Pengukuran dilakukan pada sampel lateks yang

(41)

yang telah digerus dengan nitrogen cair kemudian dilarutkan pada larutan

trikloro-asetat sehingga berupa serum, kemudian tereduksi oleh FeSO4 yang telah

dicampurkandalam reaksi asam sehingga menjadi warna biru yang kemudian diukur

absorbannya pada λ 627 nm (nanometer) dengan spektrofotometer Beckman DU 650

diukur pada setiap 2 bulan pengaplikasian.

Produksi

Pengamatan terhadap produktivitas tanaman karet dilakukan 2 bulan setelah

perlakuan dan diamati setiap 10 hari sekali sehingga dapat dilihat apakah tanaman

yang telah mendapat perlakuan dapat menghasilkan lateks layaknya tanaman yang

sehat.

Produksi = Produksi (g/p/s) TSC x100

Pengukuran indeks penyumbatan (IP)

Indeks penyumbatan merupakan perbandingan dari laju pengaliran lateks

permenit dengan volume lateks total dikalikan 100. (Milford, et al,1969). Pengamatan

dilakukan di bulan ke 3 dan ke 4, diamati pada saat mulai penyadapan (pukul 5.30

WIB) di ukur volume lateks pada 5 menit pertama dan volume lateks pada akhir atau

total dengan gelas ukur pada setiap satuan percobaan.

Pengukuran kadar karet kering (KKK) /total solid content (TSC)

Pengukuran KKK dengan mengukur TSC (semua padatan selain patikel karet

ikut diukur) dilakukan dengan cara mengambil beberapa tetes contoh lateks segar

(42)

jam dengan suhu 65 0C hingga berat konstan. Persentase TSC diperoleh dengan

membandingkan berat basah dan berat kering dikalikan dengan 100% .

Superoksida dismutase (SOD)

Sampel lateks disentrifugasi 12 rpm selama 30 menit, jika serum belum

terpisah sampel disentrifugasi kembali 12 rpm selama 15 menit kemudian simpan

pada suhu 40C selama 15 menit. Vortex sebentar, kemudian ditambahkan aliquot

lisat. Pemeriksaan nilai aktivitas SOD dilakukan sesuai dengan metode yang

tercantum dalam kit SOD Randox. Satu unit enzim aktivitas SOD didevinisikan

sebagai aktifitas SOD/ mg protein. Kemudian di baca di spektrofotometer Beckman

DU 650. Diukur 2 kali, sebelum dan setelah 4 bulan pengaplikasian.

Analisis total protein

Lateks segar dikumpulkan dalam 1,5 ml tabung ependorf lalu sampel lateks di

sentrifugase untuk memisahkan fraksi karet dari total serum, kemudiam dikumpulkan

, eliquoted dan disimpan pada -800C lalu Kemudian di baca di spektrofotometer

Beckman DU 650 dengan absorbansi 595 nm. Dimana kadar protein ditentukan

sesuai metode Bradford (1976) diukur 2 kali, sebelum dan setelah 4 bulan

(43)

HASIL DAN PEMBAHASAN

Hasil

Fisiologi thiol lateks karet 0 bulan

Pengamatan fishiologi thiol lateks 0 bulan dari sidik ragam dapat dilihat pada

lampiran. Hasil sidik ragam diperoleh bahwa klon, konsentrasi asam askorbat dan

interaksi menunjukan tidak berbeda nyata

Rataan fisiologis thiol lateks 0 bulan dari klon dan konsentrasi asam askorbat

dapat dilihat pada tabel 1.

Tabel 1. fisiologi thiol lateks 0 bulan dengan perlakuan klon tanaman dan konsentrasi asam akorbat

lampiran. Hasil sidik ragam diperoleh bahwa klon , konsentrasi asam askorbat dan

interaksi menunjukan tidak berbeda nyata.

dapat dilihat pada tabel 2

(44)

lampiran . Hasil sidik ragam diperoleh bahwa klon , konsentrasi asam askorbat dan

interaksi menunjukan tidak berbeda nyata

dapat dilihat pada tabel 3.

Tabel 3. fisiologi thiol lateks 4 bulan dengan perlakuan klon tanaman dan konsentrasi asam askorbat

Fisiologi Fosfat Anorganik ( PI ) lateks karet 0 bulan

Pengamatan fishiologi Fosfat Anorganik ( PI ) lateks 0 bulan dari sidik ragam

dapat dilihat pada lampiran. Hasil sidik ragam diperoleh bahwa klon tanaman

menunjukan berbeda nyata pada fisiologis Fosfat Anorganik ( PI ) 0 bulan ,sedangkan

konsentrasi asam askorbat dan interaksi menunjukan tidak berbeda nyata.

Rataan fisiologis Fosfat Anorganik ( PI ) lateks 0 bulan dari klon dan

konsentrasi asam askorbat dapat dilihat pada tabel 4.

Tabel 4. fisiologi Fosfat Anorganik ( PI ) lateks 0 bulan dengan perlakuan klon tanaman dan konsentrasi asam akorbat

(45)

Keterangan : Data yang diikuti oleh huruf yang sama pada kolom yang sama tidak berbeda nyata berdasarkan Uji jarak berganda Duncan pada tara 5%

dapat dilihat pada lampiran . Hasil sidik ragam diperoleh bahwa klon , konsentrasi

asam askorbat dan interaksi menunjukan tidak berbeda nyata.

Rataan fisiologis Fosfat Anorganik ( PI ) lateks 2 bulan dari klon dan

Tabel 5. fisiologi Fosfat Anorganik ( PI ) lateks 2 bulan dengan perlakuan klon tanaman dan konsentrasi asam akorbat

Klon

dapat dilihat pada lampiran . Hasil sidik ragam diperoleh bahwa klon , konsentrasi

Rataan fisiologis Fosfat Anorganik ( PI ) lateks 4 bulan dari klon tanam dan

Tabel 6. fisiologi Fosfat Anorganik ( PI ) lateks 4 bulan dengan perlakuan klon tanaman dan taraf asam akorbat

(46)

Fisiologi sukrosa lateks karet 0 bulan

Pengamatan fishiologi sukrosa lateks 0 bulan dari sidik ragam dapat dilihat

pada lampiran . Hasil sidik ragam diperoleh bahwa klon tanaman dan konsentrasi

asam askorbit terjadi interaksi berbedanyata.

Rataan fisiologis sukrosa lateks 0 bulan dari klon tanaman dan konsentrasi

asam askorbat dapat dilihat pada tabel 7.

Tabel 7. fisiologi sukrosa lateks 0 bulan dengan perlakuan klon tanaman dan konsentrasi asam akorbat

Tabel 7 dapat dilihat bahwa interaksi perlakuan klon tanaman dengan

konsentrasi asam askorbat tertinggi terdapat pada K2A3 (34,10) berbeda nyata

dengan K2A2 (24,20) serta dengan K1A0 (10,47) K1A1 (10,69) K1A2 (14,21) K1A3

(6,90) K2A2 (11,39) namun K2A0 (28,13) tidak berbeda nyata dengan K2A3 (34,10)

pada lampiran . Hasil sidik ragam diperoleh bahwa klon , konsentrasi asam askorbat

dan interaksi menunjukan tidak berbeda nyata.

Rataan fisiologis sukrosa lateks 2 bulan dari klon tanam dan konsentrasi asam

(47)

Tabel 8. fisiologi sukrosa lateks 2 bulan dengan perlakuan klon tanaman dan

pada lampiran. Hasil sidik ragam diperoleh bahwa klon , konsentrasi asam askorbat

dan interaksi menunjukan tidak berbeda nyata.

Rataan fisiologis sukrosa lateks 4 bulan dari klon tanam dan konsentrasi asam

askorbat dapat dilihat pada tabel 9.

Tabel 9. fisiologi sukrosa lateks 4 bulan dengan perlakuan klon tanaman dan konsentrasi asam akorbat.

Superoksida dismutase (SOD) 0 bulan

Pengamatan Superoksida dismutase (SOD) lateks 0 bulan dari sidik ragam

dapat dilihat pada lampiran. Hasil sidik ragam di peroleh bahwa mnunjukan berbeda

nyata pada interaksi antar klon tanaman dan konsentrasi asam askorbat.

Rataan Superoksida dismutase (SOD) lateks 0 bulan dari klon tanam dan

(48)

Tabel 10. Superoksida dismutase (SOD) lateks 0 bulan dengan perlakuan klon tanaman dan konsentrasi asam akorbat.

Klon

Keterangan : Data yang diikuti oleh huruf yang sama pada kolom yang sama tidak berbeda nyata berdasarkan Uji jarak berganda Duncan pada tara 5%

Tabel 10 dapat dilihat bahwa inetraksi rataan klon tanaman dan konsentrasi

asam askorbat tertinggi terdapat pada K1A1 (67,40) berbeda nyata dengan perlakuan

K1A2 (41,93), K2A1 (20,70), K1A3 (20,07), K2A0 (15,27), K2A2 (14,87), K1A0

(12,20).

Superoksida dismutase (SOD) 4 bulan

Pengamatan Superoksida dismutase (SOD) lateks 4 bulan dari sidik ragam

dapat dilihat pada lampiran. Hasil sidik ragam diperoleh bahwa klon tanaman,

konsentrasi asam askorbat dan interaksi menunjukan tidak berbeda nyata.

Rataan Superoksida dismutase (SOD) lateks 4 bulan dari klon tanam dan

konsentrasi asam askorbat dapat dilihat pada tabel 11.

Tabel 11. Superoksida dismutase (SOD) lateks 4 bulan dengan perlakuan klon tanaman dan konsentrasi asam akorbat.

Klon

(49)

Pengamatan Produksi lateks ke 1, setelah 4 kali aplikasi di bulan ke 1 dari

sidik ragam dapat dilihat pada lampiran. Hasil sidik ragam diperoleh bahwa klon

tanaman, konsentrasi asam askorbat dan interaksi menunjukan tidak berbeda nyata.

Rataan produksi lateks ke 1, setelah 4 kali aplikasi di bulan ke 1 dari klon

tanam dan konsetrasi asam askorbat dapat dilihat pada tabel 12.

Tabel 12. produksi lateks ke 1, setelah 4 kali aplikasi di bulan ke 1 dengan perlakuan klon tanaman dan konsentrasi asam akorbat.

Klon

Produksi lateks ke 2, setelah 8 kali aplikasi di bulan ke 2

Pengamatan Produksi lateks ke 2, setelah 8 kali aplikasi di bulan ke 2 dari

sidik ragam dapat dilihat pada lampiran. Hasil sidik ragam diperoleh bahwa klon

tanaman menunjukan berbeda nyata pada produksi ke 2, setelah 8 kali aplikasi di

bulan ke 2, sedangkan konsentrasi asam askorbat tidak berbeda nyata.

Rataan produksi lateks ke 2, setelah 8 kali aplikasi di bulan ke 2 dari klon

tanam dan konsentrasi asam askorbat dapat di lihat pada tabel 13.

Tabel 13. produksi lateks ke 2, setelah 8 kali aplikasi di bulan ke 2 dengan perlakuan klon tanaman dan konsentrasi asam akorbat.

Klon

(50)

berdasarkan Uji jarak berganda Duncan pada taraf 5%

Tabel 13 dapat dilihat bahwa jenis klon tanama rataan produksi tertinggi

terdapat pada K1 (1,67 g) berbeda nyata dengan K2 (1,13 g).

Produksi lateks ke 3, 10 hari setelah aplikasi ke 9 di bulan ke 3

Pengamatan Produksi lateks ke 3, 10 hari setelah aplikasi ke 9 di bulan ke 3

dari sidik ragam dapat dilihat pada lampiran. Hasil sidik ragam diperoleh bahwa klon

tanaman dan konsentrasi asam askorbat menunjukan berbeda nyata pada produksi ke

3, 10 hari setelah aplikasi ke 9 di bulan ke 3.

Rataan produksi lateks ke 3, 10 hari setelah aplikasi ke 9 di bulan ke 3 dari

klon tanam dan konsentrasi asam askorbat dapat di lihat pada tabel 14.

Tabel 14. produksi lateks ke 3, 10 hari setelah aplikasi ke 9 di bulan ke 3 dengan perlakuan klon tanaman dan konsentrasi asam akorbat.

Klon

Keterangan : Data yang diikuti oleh huruf yang sama pada kolom yang sama tidak berbeda nyata Berdasarkan Uji jarak berganda Duncan pada taraf 5%

Tabel 14 di ketahui bahwa rataan jenis klon tanaman tertinggi di dapat pada

K1 (6,48 g) berbeda nyata dengan K2 (4,88 g), sedangakan konsentrasi asam askorbat

A2 (7,02 g), A1 ( 6,53 g) dan A3 (5,91 g) berbeda nyata dengan A0 (3,25 g).

(51)

terdapat interkasi antara klon tanaman dan konsentrasi asam askorbat menunjukan

berbeda nyata pada produksi ke 4, 10 hari setelah aplikasi ke 10 di bulan ke 3.

klon tanaman dan konsentrasi asam askorbat dapat di lihat pada tabel 15.

Klon

Tabel 15 dapat di lihat bahwa interaksi rataan klon tanaman dan taraf asam

askorbat tertinggi terdapat pada K1A2 (10,07 G), K1A1 (8,72), K1A3 (7,87) berbeda

nyata dengan K2A1(6,15 g) K2A3 (6,03 g) K2A2 (3,38 g) K1A1 (1,41 g) K2A1

(1,08).

dari sidik ragam dapat dilihat pada lampiran. Hasil sidik ragam diperoleh bahwa

konsentrasi asam askorbat menunjukan berbeda nyata pada produksi ke 5, 10 hari

setelah aplikasi ke 11 di bulan ke 3, sedangkan jenis klon tanaman dan interaksi tidak

berbeda nyata.

(52)

Klon

Tabel 16 di ketahui bahwa rataan jenis klon tanaman tertinggi di dapat pada

konsentrasi asam askorbat A1 (5,89 g), A3 ( 4,68 g) dan A2 (4,66 g) berbeda nyata

dengan A0 (1,46 g).

konsentrasi asam askorbat menunjukan berbeda nyata pada produksi ke 6, 10 hari

setelah aplikasi ke 12 di bulan ke 4, sedangkan jenis klon tanaman dan interaksi tidak

berbeda nyata.

Tabel 17. Produksi lateks ke 6, 10 hari setelah aplikasi ke 12 di bulan ke 4 dengan perlakuan klon tanaman dan konsentrasi asam akorbat.

Klon

(53)

Tabel 17. di ketahui bahwa rataan konsentrasi tertinggi di dapat pada

konsentrasi asam askorbat A3 (8,23 g) A1 ( 8,20 g) dan A2 (5,97 g) berbeda nyata

dengan A0 (1,35 g).

dari sidik ragam dapat dilihat pada lampiran. Hasil sidik ragam diperoleh bahwa jenis

klon tanaman dan konsentrasi asam askorbat menunjukan berbeda nyata pada

produksi ke 7, 10 hari setelah aplikasi ke 13 di bulan ke 4, sedangkan interaksi tidak

berbeda nyata.

Klon

Keterangan : Data yang diikuti oleh huruf yang sama pada kolom yang sama tidak berbeda nyata berdasarkan Uji jarak berganda Duncan pada taraf 5%

Tabel 18 di ketahui bahwa rataan jenis klon tanaman tertinggi di dapat K1

(9,28) berbeda nyata dengan K2 (3,26 g) dan rataan konsentrasi tertinggi di dapat

pada konsentrasi asam askorbat A2 (8,67 g) A1 ( 7,48 g) serta A3 (7,17 g) berbeda

(54)

terdapat interkasi antara klon tanaman dan konsentrasi asam askorbat menunjukan

berbeda nyata pada produksi ke 8, 10 hari setelah aplikasi ke 14 di bulan ke 4,

sedangkan jenis klon tanaman dan konsentrasi tidak berbeda nyata.

Klon

Keterangan : Data yang diikuti oleh huruf yang sama pada kolom yang sama tidak berbeda nyata berdasarkan Uji jarak berganda Duncan pada taraf 5%

Tabel 19 dapat di lihat bahwa interaksi rataan klon tanaman dan konsentrasi

asam askorbat tertinggi terdapat pada K1A1 (13,55 g), K1A3 (10.68 g),

berbeda nyata dengan K1A2 (7,38 g), K2A2 (4,43 g), K2A3 (4,28 g), K2A1(2,57 g),

K2A0(1,15 g), K1A0 (1,03 g).

(55)

Pengamatan IP (indeks penyumbatan) 2 bulan aplikasi dari sidik ragam dapat

dilihat pada lampiran. Hasil sidik ragam diperoleh bahwa klon tanaman, konsentrasi

Rataan IP (indeks penyumbatan) 2 bulan aplikasi dari klon tanaman dan

Tabel 20. IP (indeks penyumbatan) 2 bulan aplikasi dengan perlakuan klon tanaman dan konsentrasi asam akorbat.

IP (indeks penyumbatan) 4 bulan aplikasi

Pengamatan IP (indeks penyumbatan) 4 bulan aplikasi dari sidik ragam dapat

dilihat pada lampiran. Hasil sidik ragam diperoleh bahwa klon tanaman, konsentrasi

Rataan IP (indeks penyumbatan) 4 bulan aplikasi dari klon tanaman dan

(56)

Pembahasaan

Respon pemberian konsentrasi asam askorbat pada klon yang berbeda terhadap status fishiologi tanaman karet yang terkena KAS parsial

Hasil pengamatan dan sidik ragam dapat dilihat bahwa jenis klon tanaman dan

konsentrasi asam askorbat tidak berbedanyata terhadap respon fisiologis thiol. Nilai

nilai fisiologis thiol yang dilakukan aplikasi selama 4 bulan mengalami peningkatan

hal ini sesuai dengan pernyataan Tistama et all ( 2006) yang menyatakan komponen

fisiologis lateks lainnya adalah thiol. Thiol (R-SH) berperan dalam mengaktifkan

beberapa enzim yang berhubungan dengan cekaman lingkungan. Status thiol

berhubungan pada saat mendapat tekanan sistem ekploitasi. Semakin tinggi intensitas

eksploitasi semakin rendah setatus thiol dalam lateks. Pada tanaman yang mengalami

KAS setatus thiolnya lebih rendah dibandingkan dengan tanaman sehat. Kemunkinan

jaringan kulit mengalami proses keletihan yang dapat diikuti dengan kematian secara

parsial sel-sel pembuluh lateks.

konsentrasi asam askorbat tidak berbedanyata terhadap respon fisiologis fosfat

anorganik (PI). Nilai nilai fisiologis fosfat anorganik (PI) yang dilakukan aplikasi

selama 4 bulan mengalami peningkatan hal ini sesuai dengan pernyataan

Krisnakumar et al (2001) yang menyatakan tanaman yang terkena KAS terjadi

hambatan perubahan mevalonat menjadi isopenteril piroposfat (IPP). Hambatan

tersebut terjadi akibat kurangnya suplai ATP sebagai sumber energi pada reaksi

perubahan mevalonat menjadi IPP . Pada tahapan tersebut merupakan proses reaksi

(57)

status fosfat anorganik yang rendah didalam lateks pada tanaman terserang KAS.

Kandungan PI memang cendrung menurun jika tanaman dieksploitasi dengan sistem

sadap yang lebih intensip.

konsentrasi asam askorbat tidak berbedanyata terhadap respon fisiologis Sukrosa.

Nilai nilai fisiologis sukrosa yang dilakukan aplikasi selama 4 bulan mengalami

penurunan hal ini sesuai dengan pernyataan tistama et al (2006) yang meyatakan dari

hasil pengamatan terhadap kandungan sukrosa pada tanaman yang sehat an tanaman

yang terkena KAS sebagian , ternyata kandungan sukrosa dari pada tanaman yang

sehat. hal ini membuktikan dua hal, pertama : adanya suplai sukrosa ynang normal

pada tanaman yang terserang KAS, kedua: adanya hamabatan biosintesis karet

sehingga sukrosa tidak dimanfaatkan dalam proses tersebut sehingga terjadi

penumpukan.

Respon pemberian konsentrasi asam askorbat pada klon yang berbeda terhadap status ROS tanaman karet yang terkena KAS parsial

konsentrasi asam askorbat tidak berbedanyata terhadap respon enzim SOD dan

Indeks Penyumbata (IP) . Hal ini dikarenakan funsi enzim yang menghadapi ROS

berbeda beda dan ketidak seimbangan aktifitas enzim SOD, APX, katalase serta

Indek Penyumbatan (IP) terganggu karna tertekan toksisitas ROS hal ini sesuai

(58)

dalam menghadapi ROS mengakibatkan tingkat ekspresi gen responsif terhadap ROS

beragam pada berbagai perlakuan. Seperti telah disebutkan sebelumnya bahwa

tingkat cekaman oksidatif dapat ditentukan dari jumlah ROS seperti superoksida,

peroksida, dan radikal hidroksil. Oleh karena itu, keseimbangan aktifitas enzim SOD,

APX, dan katalase sangat penting untuk menekan level toksisitas ROS di dalam sel.

Saat aktifitas katalase rendah di tanaman, aktifitas enzim lain, yaitu APX akan

meningkat.

Hasil penelitian yang telah dilakukan jenis klon tanaman terhadap perlakuan

yang dilakukan yaitu jenis klon tanaman dan kosentrasi asam askorbat. Jenis klon

tanaman yang kondisi labil dikarnkan kekurangan giji dan logam berat hal ini sesuai

dengan pernyataan Sarvajeet dan Narendra ( 2010 ) Dalam kondisi labil, molekul

ROS memulung berbagai mekanisme pertahanan antioksidan. Kesetimbangan antara

produksi dan pemulungan ROS mungkin terganggu oleh berbagai faktor stresbiotik

dan abiotik seperti salinitas, radiasi UV, kekeringan, logam berat, suhu ekstrim,

kekurangan gizi dan udara. Melalui berbagai reaksi, O2 mengarah pada pembentukan

H2O2, OH dan ROS lainnya. ROS terdiri O2, H2O2, 1O2, HO2, OH, ROOH, ROO, dan

RO yang sangat reaktif dan beracun dan penyebab kerusakan protein, lipid,

karbohidrat, DNA yang akhirnya menghasilkan kematian sel.

Respon pemberian konsentrasi asam askorbat pada klon yang berbeda terhadap status produksi tanaman yang terkena KAS parsial

Hasil penelitian yang telah dilakukan menunjukan bahwa jenis klon tanaman

pada tanaman yang terkena KAS parsial terhadap pemberian berbagai jenis

(59)

amatan produksi 1,3,4 dan 7 tetapi belum berpengaruh nyata terhadap peubah amatan

produksi 2,5,6 dan 8.

Adanya perbedaan respon produksi tanaman pada pengamatan produksi

bahwa antara klon tanaman karet PB 260 menunjukan berbeda nyata dalam produksi

dimana dari tabel dapat diketahui rataan tertingi produksi 1 K2 (0,46 g), produksi 3

K1 (6,48 g), produksi 4 K1 (7,02 g), produksi 7 K1 (9,28 g) dan produksi K1 (8,19 g)

namun berbeda nyata pada klon tanaman karet IRR 42 produksi 1 K1 (0,46 g),

produksi 3 K1 (4,88 g), produksi 4 K1 (4,16 g), produksi 7 K1 (3,26 g), dan

roduksi 8 K2 (8,16 g) hal ini di sebabkan klon PB 260 penghasil lateks dan klon IRR

42 penghasil lateks-kayu. Hal ini sesuai dengan pernyaatan Peraturan Menteri

Pertanian Republik Indonesia (2013) yang menyatakan untuk Rekomendasi klon-klon

karet untuk periode tahun 2010-2014 berdasarkan hasil rumusan Lokakarya Nasional

Pemuliaan Tanaman Karet Tahun 2009, yaitu sebagai berikut: Klon Anjuran

Komersial a.) klon penghasil lateks terdiri: IRR 104, IRR 112, IRR 118, IRR 220,

BPM 24, PB 260, PB 330, dan PB 340; b.) klon penghasil lateks-kayu terdiri: IRR 5,

IRR 39, IRR 42, IRR 107,dan RRIC 100.

Hasil penelitian yang telah dilakukan menunjukan bahwa jenis konsentrasi

asam askorbat pada jenis klon tanaman yang terkena KAS parsial menunjukan

pengaruh yang nyata terhadap peubah amatan produksi 3,4,5,6,7 dan 8 tetapi belum

berpengaruh nyata terhadap peubah amatan produksi 1 dan 2.

Adanya perbedaan respon produksi tanaman pada pengamatan produksi

bahwa konsentrasi asam askorbat menunjukan berbeda nyata dalam produksi dimana

(60)

(5,91 g), produksi 4 A1 (7,44 g), A2 (6,72 g), A3 (6,95 g), produksi 5 A1 (5,89 g),

A2 (4,66 g), A3 (4,68 g), produksi 6 A1 (8,20 g), A2 (5,97 g), A3 (8,23 g), produksi 7

A1 (7,48 g), A2 (8,67 g), A3 (7,17 g), produksi 8 A1 (8,06 g), A2 (5,90 g), A3

(7,48 g) namun berbeda nyata pada produksi 3 A0 (3,25 g), produksi 4 A0 (1,24 g),

produksi 5 A0 (1,46 g), produksi 6 A0 (1,35 g), produksi 7 A0 (1,75 g), produksi 8

A0 (1,09 g). Hal ini disebabkan karna asam askorbat atau vitamin c adalah

antioksidan yang dapat melawan radikal bebas. Hal ini sesuai dengan pernyataan

Ardianti et all (2014) yang menatakan Antioksidan merupakan senyawa yang mampu

menghambat laju oksidasi. Antioksidan ini memiliki banyak komponen dan

merupakan zat alami yang dihasilkan sendiri oleh tubuh atau didapat dari makanan

yang kita makan. Antioksidan bekerja dengan cara menghentikan pembentukan

radikal bebas, menetralisir serta memperbaiki kerusakan-kerusakan yang terjadi.

Radikal bebas merupakan atom atau melekul yang memiliki satu atau lebih elektron

yang tidak berpasangan. Radikal bebas dianggap pasangan elektronnya. Radikal

bebas dapat bereaksi dengan molekul sel tubuh dengan cara mengikat elektron dari

melekul sel tersebut dan dapat menyebabkan reaksi berantai yang merusak tubuh.

Hasil penelitian yang telah dilakukan, terdapat interaksi yang nyata terhadap

perlakuan yang telah di lakukan dalam peubah amatan produksi ke 4 dan ke 8, dari

tabel dapat diketahui interaksi tertinggi produksi ke 4 K1A2 (10,07 g) dan produksi

ke 8 K1A1 (13,55 g) namun berbeda nyata pada produksi ke 4 K2A0 (1,08 g) dan

produksi ke 8 K1A1 (1,03 g). Hal ini disebabkan bahwa asam askorbat sebagai

antioksidan yang mampu meningkatkan substrat enzim dan mampu mentoleransi

(61)

pendekatan untuk mendorong toleransi stres oksidatif yang akan

meningkatkansubstrat enzim pada tingkat sel adalah asamaskorbat. Asam askorbat

berfungsi sebagai antioksidan, kofaktor enzim dan sebagai modulator sel sinyal dalam

beragam proses fisiologis penting, termasuk biosintesis dinding sel, metabolit

sekunder dan fitohormon, toleransi stres, fotoproteksi, pembelahan dan pertumbuhan

sel.

KESIMPULAN DAN SARAN Kesimpulan

Hasil penelitian yang telah dilkukan di dapat kesimpulan bahwa:

1. Klon tanaman karet PB 260 memiliki produksi lebih tinggi dibandingkan

(62)

2. Tidak ada pengaruh konsentrasi asam askorbat terhadap peubah amatan

fisiologi (Thiol, sukrosa, PI), aktivitas superoksida dismutase (SOD) dan

indeks penyumbatan (IP).

3. Interaksi antara jenis klon tanaman karet dan konsentrasi asam askorbat

berpengaruh nyata terhadap peubah amatan produksi tanaman.

4. Kosentrasi asam askorbat 150 ppm sudah dapa berpengaruh nyata terhadap

peubah amatan produksi tanaman karet yang terkena KAS parsial yang

merupakan antioksidan melawan radikal bebas.

Saran

Dari hasil penelitian konsentrasi asam askorbat perlu di teliti lebih lanjut

untuk melihat analisis parameter produksi dan cekaman ROS, agar di peroleh

konsentrasi berapa untuk mendapatkan hasil produksi lateks yang tinggi serta yang

(63)

TINJAUAN PUSTAKA Botani Tanaman

Menurut Steenis et al, (2005) kedudukan tanaman karet dalam tatanama

(sistematika) sebagai berikut: Kingdom: Plantae, Divisio: Spermatophyta,

Sub-diivisio: Angiospermae, Kelas: Dicotyledoneae, Ordo: Euphorbiales, Famili:

Euphorbiaceae, Genus:Hevea, Spesies : Hevea brassiliensis Muell. Arg.

Akar tanaman karet merupakan akar tunggang yang mampu menopang batang

tanaman yang tumbuh tinggi ke atas, dengan akar seperti itu pohon karet dapat berdiri

kokoh, meskipun tingginya mencapai 25 meter (Setiawan dan Andoko, 2005).

Karet merupakan pohon yang tumbuh tinggi dan berbatang cukup besar.

Tinggi pohon dewasa mencapai 15-25 meter. Batang tanaman biasanya tumbuh lurus

dan memiliki percabangan yang tinggi. Dibeberapa kebun karet ada kecondongan

arah tumbuh tanamanya agak miring ke arah utara. Batang tanaman ini mengandung

getah yang dikenal dengan nama lateks (Nugroho, 2010).

Daun karet berselang-seling, tangkai daunnya panjang, terdiri dari 3 anak

daun yang licin berkilat. Petiola tipis, hijau, panjang 3,5-30 cm. Helaian anak daun

bertangkai pendek dan berbentuk lonjong-oblong atau oblong-obovate, pangkal

sempit dan tegang, ujung runcing; sisi atas daun hijau tua dan sisi bawah agak cerah,

panjangnya 5-35 cm dan lebar 2,5-12,5 cm (Sianturi, 2001).

Bunga karet terdiri dari bunga jantan dan betina yang terdapat dalam malai

payung tambahan yang jarang. Pangkal tenda bunga berbentuk lonceng. Pada

ujungnya terdapat lima taju yang sempit. Panjang tenda bunga 4-8 mm. Bunga betina

(64)

buah yang beruang 3. Kepala putik yang akan dibuahi dalam posisi duduk juga

berjumlah 3 buah. Bunga jantan mempunyai 10 benang sari yang tersusun menjadi

suatu tiang. Kepala sari terbagi dalam 2 karangan, tersusun 9 satu lebih tinggi dari

yang lain. Paling ujung adalah suatu bakal buah yang tidak tumbuh sempurna

(Maryani, 2007).

Karet merupakan buah berpolong (diselaputi kulit yang keras) yang sewaktu

masih muda buah berpaut erat dengan rantingnya. Buah karet dilapisi oleh kulit tipis

berwarna hijau dan didalamnya terdapat kulit yang keras dan berkotak. Tiap kotak

berisi sebuah biji yang dilapisi tempurung, setelah tua warna kulit buah berubah

menjadi keabu - abuan dan kemudian mengering. Pada waktunya pecah dan jatuh,

tiap ruas tersusun atas 2 – 4 kotak biji. Pada umumnya berisi 3 kotak biji dimana

setiap kotak terdapat 1 biji. Biji karet terdapat dalam setiap ruang buah. Jumlah biji

biasanya ada tiga kadang empat (Budiman, 2012).

Buah beruang tiga, jarang yang beruang 4 hingga 6, diameter buah 3-5 cm

dan terpisah 3,4,6. Coci berkatupdua, pericarp berbentuk endokarp berkayu. Biji

besar, bulat persegi empat, tertekan pada satu atau dua sisinya, berkilat berwarna

coklat muda, dengan noda oda coklat tua, panjang 2-3,5 dan tebal 1,5-2,5 cm

(Sianturi, 2001).

Syarat Tumbuh Iklim

Secara garis besar tanaman karet dapat tumbuh baik pada kondisi iklim

sebagai berikut: suhu rata-rata harian 280C (dengan kisaran 25–350C) dan curah hujan

(65)

pertahun. Pada daerah yang sering hujan pada pagi hari akan mempengaruhi kegiatan

penyadapan bahkan akan mengurangi hasil produktifitasnya. Keadaan daerah yang

cocok untuk tanaman karet adalah daerah-daerah Indonesia bagian barat, yaitu

Sumatera, Jawa dan Kalimatan, sebab iklimnya lebih basah (Budiman, 2012).

Tanaman karet memerlukan curah hujan optimal antara 2.500 mm sampai

4.000 mm/tahun,dengan hari hujan berkisar antara 100 sd. 150 HH/tahun. Namun

demikian, jika sering hujan pada pagi hari, produksiakan berkuran (Anwar, 2001).

Kelembaban nisbi (RH) yang sesuai untuk tanaman karet adalah rata – rata

berkisar antara 75% - 90%. Kelembapan yang terlalu tinggi tidak baik untuk

pertumuhan karet, karena dapat membuat laju aliran transpirasi tanaman karet

menjadi kecil sehingga absorbsi unsur hara dari tanah menjadi lambat. Selain itu

tanaman sering mengalami gutasi dan terjadi kelelahan lateks akibat retakan kulit.

Angin yang bertiup kencang dapat mengakibatkan patah batang, cabang atau

tumbang. Angin kencang pada musim kemarau sangat berbahaya, laju

evapotranspirasi menjadi besar (Sianturi, 2001).

Tanah

Berbagai jenis tanah dapat sesuai dengan syarat tumbuh tanaman karetbaik

tanah vulkanis muda dan tua, bahkan pada tanah gambut < 2 m. Tanah vulkanis

mempunyai sifat fisika yang cukup baik terutama struktur, tekstur, sulum, kedalaman

air tanah, aerasi dan drainasenya, tetapi sifat kimianya secara umum kurang baik

karena kandungan haranya rendah. Tanah alluvial biasanya cukup subur, tetapi sifat

fisikanya terutama drainase dan aerasenya kurang baik. Reaksi tanah berkisar antara

(66)

Tanaman karet bukanlah tanaman manja, dapat tumbuh pada tanah- tanah

yang mempunyai sifat fisik baik, atau sifat fisiknya dapat diperbaiki. Tanah yang

dikehendaki adalah bersolum dalam, kedalaman lapisan padas lebih dari 1 m,

pemukaan air tanah rendah yaitu ± 10 – 20 cm. Sangat toleran terhadap kemasaman

tanah, dapat tumbuh pada pH 3,8 hingga 8,0 , tetapi pada pH yang lebih tinggi sangat

menekan pertumbuhan (Siaturi, 2001).

Klon Tanaman Karet

Untuk meningkatkan produktivitas perkebunan karet rakyat, pemerintah telah

menempuh berbagai upaya antara lain perluasan tanaman, penyuluhan, intensifikasi,

rehabilitasi dan peremajaan serta penyebaran klon – klon unggul benih karet. Dalam

menunjang keberhasilan peningkatan produktivitas perkebunan karet, telah dilakukan

usaha khususnya terhadap benih karet (Syukur, 2013).

Rekomendasi klon-klon karet untuk periode tahun 2010-2014 berdasarkan

hasil rumusan Lokakarya Nasional Pemuliaan Tanaman Karet Tahun 2009,

yaitu sebagai berikut: Klon Anjuran Komersial a.) klon penghasil lateks

terdiri: IRR 104, IRR 112, IRR 118, IRR 220, BPM 24, PB 260, PB 330, dan PB 340;

b.) klon penghasil lateks-kayu terdiri: IRR 5, IRR 39, IRR 42, IRR 107,dan RRIC

100 (Peraturan Menteri Pertanian Republik Indonesia, 2013).

Potensi Klon PB260 Penghasil lateks Pertumbuhan jagur Resisten :

Corynespora Colletotrichum & Oidium.Produksi Lateks: 1.5-2.5 ton/ha/th. Warna :

putih kekuningan. Lateks diolah: sheet (Janudianto et al., 2013).

Klon dari jenis IRR ini terdiri dari klon penghasil lateks (IRR 104),

(67)

penghasil kayu (IRR 70, IRR 71, dan IRR 72). Klon IRR termasuk dalam klon

anjuran yang diharapkan dapat menjadi salah satu solusi untuk meningkatkan

produktivitas tanaman karet yang ada di Indonesia. Klon IRR memiliki potensi

produksi mencapai 2,9 – 3,2 ton karet kering per ha per tahun, sehingga sangat

potensial untuk dijadikan sebagai batang atas (Marchino et al., 2010).

Pada umumnya klon yang berproduksi tinggi tanpa stimulasi mempunyai

kadar Pi tinggi dan sukrosa rendah, yang menunjukkan aktifitas metabolisme yang

tinggi. Sebaliknya, kadar Pi rendah dan sukrosa tinggi pada klon berproduksi rendah,

yang menunjukkan rendahnya aktifitas metabolisme lateks (Lacote, 2007).

Thiol (R-SH) berfungsi sebagai antioksidan, sehingga stress oksidatif sebagai

akibat aktifnya metabolisme dalam sel dapat ditekan. Kadar R-SH yang rendah

menunjukkan terlalu intensifnya eksploitasi sehingga perlu dikurangi dengan

menurunkan intensitas sadapan maupun stimulasi (Gohet et al.,1996).

Kering Alur Sadap (KAS)

Penyakit kekeringan alur sadap mengakibatkan kekeringan alur sadap

sehingga tidak mengalirkan lateks, namun penyakit ini tidak mematikan tanaman.

Penyakit ini disebabkan oleh penyadapan yang terlalu sering, terlebih jika disertai

dengan penggunaan bahan perangsang lateks ethepon. Adanya kekeringan alur sadap

mula-mula ditandai dengan tidak mengalirnya lateks pada sebagian alur sadap.

Kemudian dalam beberapa minggu saja keseluruhan alur sadap ini kering tidak

mengeluarkan lateks. Bagian yang kering akan berubah warnanya menjadi cokelat

karena pada bagian ini terbentuk gum (blendok). Kekeringan kulit tersebut dapat

(68)

pulihan atau sebaliknya. Gejala lain yang ditimbulkan penyakit ini adalah terjadinya

pecah-pecah pada kulit dan pembengkakan atau tonjolan pada batang tanaman

(Anwar,2001).

Sel pembuluh lateks mngalami penyumbatan dan menjadi sel tilasoid. Sel

tilasoid ini melebar ke arah sel sel tetangga dan meluas sehingga jaringan tilasoidpun

berbentuk. Bidang sadap yang memiliki jaringan tilasoid ini bila disadap pada

awalnya akan mengalami kekeringan alur sadap sebagian (KAS parsial), kemudian

meluas dan dikenal sebagai KAS total (Tistama et al., 2006).

Kejadian KAS menurut Abraham et al, (2006). Diklasifikasikan menjadi

tanaman tidak terserang KAS (0%), rendah (0-25%), sedang (25-50%), tinggi

(50-75%), dan sangat tinggi (>75%). Klasifikasi tersebut digunakan untuk mengetahui

luas kejadian KAS dibidang panel sadapan. Persentase kejadian KAS dapat diperoleh

dari perbandingan panjang luas yang tidak mengeluarkan lateks dengan total panjang

keseluruhan bidang sadap dikalikan 100%.

Kering alur sadap dapat menyebar dengan cepat dalam angka waktu 2-4 bulan

keseluruh kulit bidang sadap. Penyebaran KAS diduga mengikuti alur pembuluh

lateks dan arah sadap. Proses penyebaran KAS pada bidang sadap BO-1 mengarah

keseluruh BO-1 dibawah irisan sadap. Penyebaran berikutnya menyebar ke bidang

panel BO-2 dibagian bawah yang dilanjutkan ke bagian atas hingga bertemu

mencapai HO-1. Pola penyebaran KAS di B1-1 hingga B1-2 kulit juga sama. Proses

penyebaran yang cepat disbabkan oleh kecepatan terbentuknya tilasoid lebih tinggi

(69)

Kejadian KAS banyak terjadi di perkebunan karet akibat penerapan sistem

eksploitasi yang tidak tepat. Fakta yang sring kali ditemukan di lapangan yaitu

praktisi kebun tidak membedakan konsentrasi dan interval aplikasi stimulan untuk

klon quick starter maupun klon slow starter, pemberian stimulan saat musim gugur

daun ,banyak terdapat luka kayu, dan konsumsi kulit yang boros

(Jacob and Krishnakumar, 2006).

Deteksi dini dampak intensitas exploitasi terhadap tanaman karet dapat

dilakukan dengan analisis fisiologi berupa ukrosa, PI (fosfat anorganik) dan thiol.

Status ketiga unsur tersebut dapat digunakan untuk menilai kondisi keletihan

fisiologis tanaman. Titik kritis status ketiga unsur tersebut sangat tergantung kepada

klon, unsur dan dinamika fisiologis tanaman atau variasi musiman. Secara umum

dapat digambarkan bahwa titik kritis untuk sukrosa < 4 mM, untuk pi >25 mM dan

untuk thiol < 0,4Mm. Dalam penilaian ini biasanya masih membutuhkan peubah

peubah yang lain (produksi g/p/s, kadar karet kering dan sebagainya. Namun cara ini

dapat secara preventif mengatsi terjadinya KAS. Beberapa perkebunan menerapkan

analisis lateks setahun sekali untuk menetapkan sistem sadap tahun berikutnya

(Tistama et al., 2006).

Gangguan fisiologis pada tanaman karet yaitu sebagian atau seluruh alur

sadapnya kering dan tidak mengalir lateks, atau bisa disebut brown bast (BB) atau

tapping dryness (TPD) atau kering alur sadap (KAS) dan sebagian petani pekebun

ada yang menyebut mati kulit, diduga disebabkan oleh terjadinya ketidak seimbangan

(70)

yakini antara lain disebabkan karena gangguan stimulan yang tidak mengikuti

anjuran. Akibatnya antara lain menurunnya kemampuan pohon untuk memproduksi

lateks (Arief dan Island, 2006).

Hasil pengamatan terhadap kandungan sukrosa pada tanaman yang sehat dan

tanaman yang terkena KAS sebagian , ternyata kandungan sukrosa dari pada

tanaman yang sehat . hal ini membuktikan dua hal, pertama : adanya suplai sukrosa

yang normal pada tanaman yang terserang KAS, kedua: adanya hamabatan biosintesis

karet sehingga sukrosa tidak dimanfaatkan dalam proses tersebut sehingga terjadi

penumpukan (Tistama et al, 2006).

Tanaman yang terkena KAS terjadi hambatan perubahan mevalonat menjadi

isopenteril piroposfat (IPP). Hambatan tersebut terjadi akibat kurangnya suplai ATP

sebagai sumber energi pada reaksi perubahan mevalonat menjadi IPP. Pada tahapan

tersebut merupakan proses reaksi yang membutuhkan banyak energi. Status ATP

yang rendah juga diiringi dengan status fosfat anorganik yang rendah didalam lateks

pada tanaman terserang KAS. Kandungan PI memang cendrung menurun jika

tanaman dieksploitasi dengan sistem sadap yang lebih intensip

(Krisnakumar et al, 2001).

Komponen fisiologis lateks lainnya adalah thiol. Thiol (R-SH) berperan dalam

mengaktifkan beberapa enzim yang berhubungan dengan cekaman lingkungan. Status

thiol berhubungan pada saat mendapat tekanan sistem ekploitasi. Semakin tinggi

(71)

mengalami KAS setatus thiolnya lebih rendah dibandingkan dengan tanaman sehat.

Kemunkinan jaringan kulit mengalami proses keletihan yang dapat diikuti dengan

kematian secara parsial sel-sel pembuluh lateks (Tistama et al, 2006).

Reactive Oxygen Species (ROS)

Radikal bebas dibentuk oleh metabolisme xenobiot atau metabolismesel aerob

secara normal. Reactive oxygen species (ROS) adalah radikal bebas yang berperan

penting pada beberapa proses fisiologis organ tubuh. Pembentukan ROS dapat

menginduksi peroksidasi lipid yang bersifat sitotoksik akibat inisiasi suatu reaksi

rantai kedalam membran, diikuti reaksi propagasi sehingga secara keseluruhan akan

mengakibatkan kerusakan sel (Astuti et al.,2009).

Dalam kondisi labil, molekul ROS memulung berbagai mekanisme

pertahanan antioksidan. Kesetimbangan antara produksi dan pemulungan ROS

mungkin terganggu oleh berbagai faktor stres biotik dana biotik seperti salinitas,

radiasi UV, kekeringan, logam berat, suhu ekstrim, kekurangan gizi dan udara.

Melalui berbagai reaksi, O2mengarah pada pembentukan H2O2, OH dan ROS lainnya.

ROS terdiri O2, H2O2, 1

O2, HO2, OH, ROOH, ROO, dan RO yang sangat reaktif dan

beracun dan penyebab kerusakan protein, lipid, karbohidrat, DNA yang akhirnya

menghasilkan kematian sel (Sarvajeet dan Narendra, 2010).

Reactive Oxygen Species (ROS) secara alami dihasilkan didalam

metabolisme tanaman. Selama stress biotik dan abiotik, ROS tersebut terakumulasi di

dalam jaringan jauh lebih cepat dibandingkan dengan reaksi yang dapat

(72)

katalase secara enzimatik maupun melalui mekanisme non enzimatik lainnya mampu

menghilangkan ROS dari jaringan tanpa menimbulkan kerusakan. Oleh karena

peroksidase dan katalase memiliki peranan utama didalam proses penghilangan

molekul H2O2 didalam jaringan biologis (Gebelin et al., 2013).

Reactive Oxygen Species (ROS) merupakan oksidan yang sangat reaktif dan

mempunyai aktivitas yang berbeda. Dampak negatif senyawa tersebut timbul karena

aktivitasnya, sehingga dapat merusak komponen sel yang sangat penting untuk

mempertahankan integritas sel. Setiap ROS yang terbentuk dapat memulai suatu

reaksi berantai yang terus berlanjut sampai ROS itu dihilangkan oleh ROS yang lain

atau sistem antioksidannya (Maslachah et al., 2008).

Fungsi enzim yang berbeda-beda dalam menghadapi ROS mengakibatkan

tingkat ekspresi gen responsif terhadap ROS beragam pada berbagai perlakuan.

Seperti telah disebutkan sebelumnya bahwa tingkat cekaman oksidatif dapat

ditentukan dari jumlah ROS seperti superoksida, peroksida, dan radikal hidroksil.

Oleh karena itu, keseimbangan aktifitas enzim SOD, APX, dan katalase sangat

penting untuk menekan level toksisitas ROS di dalam sel. Saat aktifitas katalase

rendah di tanaman, aktifitas enzim lain, yaitu APX akan meningkat

(Arlyny, 2008).

Asam Askorbat

Vitamin C dalam tubuh aktif dalam 2 bentuk yaitu asam askorbat dan

dehidroaskorbic acid (DHA). Vitamin C dalam bentuk asam askorbat berperan

(73)

radikal bebas, sedangkan dalam bentuk DHA akan menghambat secara langsung

aktifasi nuclear factorkappabeta (NF-kB) faktor transkripsi inflamasi. Beberapa

penelitian melaporkan bahwa vitamin C lebih efektif dibandingkan dengan α-

tokoferol dalam mengurangi proses patofisiologi akibat stres oksidatif seperti

aterosklerosis, karena vitamin C mempunyai kemampuan menangkap oksigen dan

nitrogen reaktif secara efektif, dan vitamin ini mempunyai kemampuan untuk

regenerasi α-tokoferol sehingga avaibilitas vitamin α-tokoferol ini dalam tubuh tetap

terjaga.Setelah bereaksi dengan radikal bebas,vitamin C pun akan menjadi produk

radikal, namun karena degradasinya sangat singkat (10-5 detik) sehingga ia tidak

reaktif, salah satu alasan vitamin C disukai sebagai antioksidan (Julahir, 2010).

Vitamin C diproduksi oleh tumbuhan dalam jumlah yang besar. Fungsi

vitamin C bagi tumbuhan dalah sebagai agen antioksidan yang dapat menetralkan

singlet oksigen yang sangat reaktif, berperan dalam pertumbuhan sel, berfungsi

seperti hormon, dan ikut berperan dalam proses fotosintesis. Vitamin C hanya dapat

dibentuk oleh tumbuhan dan terdapat pada sayuran serta buah-buahan dalam jumlah

yang besar.Hal ini disebabkan karena tumbuhan memiliki enzim mikrosomal

L-gulonolakton oksidase, sebagai komponen dalam pembentukan asam askorbat

(Kurniawan et al., 2010).

Antioksidan merupakan senyawa yang mampu menghambat laju oksidasi.

Antioksidan ini memiliki banyak komponen dan merupakan zat alami yang

dihasilkan sendiri oleh tubuh atau didapat dari makanan yang kita makan.

Antioksidan bekerja dengan cara menghentikan pembentukan radikal bebas,