PEMBERIAN SINBIOTIK DENGAN FREKUENSI BERBEDA PADA PAKAN UDANG VANAME Litopenaeus vannamei UNTUK PENCEGAHAN IMNV (INFECTIOUS MYONECROSIS VIRUS)

(1)

PEMBERIAN SINBIOTIK DENGAN FREKUENSI BERBEDA

PADA PAKAN UDANG VANAME Litopenaeus vannamei UNTUK

PENCEGAHAN IMNV (INFECTIOUS MYONECROSIS VIRUS)

GHITA RYAN SEPTIANI

DEPARTEMEN BUDIDAYA PERAIRAN FAKULTAS PERIKANAN DAN ILMU KELAUTAN

INSTITUT PERTANIAN BOGOR 2011

(2)

PERNYATAAN MENGENAI SKRIPSI

DAN SUMBER INFORMASI

Dengan ini saya menyatakan bahwa skripsi yang berjudul:

PEMBERIAN SINBIOTIK DENGAN FREKUENSI BERBEDA

PADA PAKAN UDANG VANAME Litopenaeus vannamei UNTUK

PENCEGAHAN IMNV (INFECTIOUS MYONECROSIS VIRUS)

adalah benar merupakan hasil karya yang belum diajukan dalam bentuk apapun kepada perguruan tinggi manapun. Semua sumber data dan informasi yang berasal atau dikutip dari karya yang diterbitkan maupun tidak diterbitkan dari penulis lain telah disebutkan dalam teks dan dicantumkan dalam Daftar Pustaka di bagian akhir skripsi ini.

Bogor, Desember 2011

GHITA RYAN SEPTIANI C14070037

(3)

ABSTRAK

GHITA RYAN SEPTIANI. Pemberian sinbiotik dengan frekuensi berbeda pada

pakan udang vaname Litopenaeus vannamei untuk pencegahan IMNV (Infectious

Myonecrosis Virus). Dibimbing oleh Widanarni dan Sukenda.

Udang vaname (Litopenaeus vannamei) merupakan salah satu komoditas ekspor unggulan di bidang perikanan. Namun penyakit bakterial dan viral sering menjadi kendala dalam budidaya udang vaname. Salah satu penyakit viral yang saat ini banyak menyerang udang vaname adalah IMNV (Infectious Myonecrosis Virus). Penelitian ini dilakukan untuk menguji efektivitas pemberian pakan sinbiotik dengan frekuensi berbeda terhadap sintasan, pertumbuhan, dan respons imun udang vaname yang diinfeksi IMNV. Udang yang digunakan memiliki bobot 0,493±0,035 gram/ekor, dipelihara sebanyak 15 ekor dalam akuarium berukuran 60x35x30 cm yang diisi air laut sebanyak 30 liter. Penelitian dilakukan dengan 5 perlakuan yaitu A (tanpa pemberian sinbiotik dan diinfeksi IMNV), B (tanpa pemberian sinbiotik dan tanpa infeksi IMNV), C (pemberian sinbiotik setiap hari dan diinfeksi IMNV), D (pemberian sinbiotik dua kali seminggu dan diinfeksi IMNV), dan E (pemberian sinbiotik satu kali seminggu dan diinfeksi IMNV). Hasil penelitian menunjukkan bahwa pemberian sinbiotik dengan frekuensi setiap hari memberikan pengaruh yang lebih baik dibanding perlakuan lainnya. Udang yang dipelihara dengan pemberian pakan sinbiotik setiap hari dan diinfeksi IMNV memiliki sintasan yang tinggi (80%) serta respons imun yang lebih baik.

(4)

ABSTRACT

GHITA RYAN SEPTIANI. The giving of sinbiotic with the different frequency

in feed of white shrimp Litopenaeus vannamei for prevention of IMNV (Infectious Myonecrosis Virus). Supervised by Widanarni and Sukenda.

White shrimp Litopenaeus vannamei is the prioritized export of Indonesian fisheries commodity. However, outbreak of main bacterial and viral diseases are often decreased the white shrimp production. One of the viral disease which often attacks white shrimp is IMNV (Infectious Myonecrosis Virus). This study evaluated the effectiveness of sinbiotic with different frequencies of survival rate, growth, and immune response of white shrimp infected by IMNV. The weight of the shrimp is 0,493±0,035 grams/head, it was kept as many as 15 shrimps in aquarium (60x35x30)cm. The aquarium filled with sea water as much as 30 liters. The study was conducted with five treatments consisted of A (without the giving of sinbiotic and infected by IMNV), B (without the giving of sinbiotic and without infection of IMNV), C (the giving of sinbiotic every day and infected by IMNV), D (the giving of sinbiotic twice a week and infected by IMNV), and E (the giving of sinbiotic once a week and infected by IMNV). The results showed that the giving of sinbiotic every day give a better effect than other treatments. Shrimp maintained with daily feeding sinbiotic and infected by IMNV have a high survival rate (80%) and give a better immune response than others.

(5)

PEMBERIAN SINBIOTIK DENGAN FREKUENSI BERBEDA

PADA PAKAN UDANG VANAME Litopenaeus vannamei UNTUK

PENCEGAHAN IMNV (INFECTIOUS MYONECROSIS VIRUS)

GHITA RYAN SEPTIANI

SKRIPSI

Sebagai salah satu syarat untuk memperoleh gelar Sarjana Perikanan pada Program Studi Teknologi dan Manajemen Perikanan Budidaya

Departemen Budidaya Perairan Fakultas Perikanan dan Ilmu Kelautan

Institut Pertanian Bogor

DEPARTEMEN BUDIDAYA PERAIRAN FAKULTAS PERIKANAN DAN ILMU KELAUTAN

INSTITUT PERTANIAN BOGOR 2011

(6)

Judul : Pemberian sinbiotik dengan frekuensi berbeda pada pakan udang vaname Litopenaeus vannamei untuk pencegahan IMNV (Infectious

Myonecrosis Virus)

Nama : Ghita Ryan Septiani Nrp : C14070037

Disetujui,

Pembimbing I Pembimbing II

Dr. Ir. Widanarni, M.Si. Dr. Ir. Sukenda, M.Sc. NIP : 19670927 199403 2 001 NIP. 19671013 199302 1 001

Diketahui,

Ketua Departemen Budidaya Perairan

Dr. Ir. Odang Carman, M.Sc. NIP : 19591222 198601 1 001

(7)

KATA PENGANTAR

Puji syukur penulis panjatkan kehadirat Allah SWT yang telah memberikan rahmat dan karunia-Nya, sehingga penyusunan skripsi dengan judul "Pemberian sinbiotik dengan frekuensi berbeda pada pakan udang vaname Litopenaeus

vannamei untuk pencegahan IMNV (Infectious Myonecrosis Virus)" dapat

diselesaikan. Penelitian ini dilaksanakan pada bulan Juni sampai dengan Juli 2011 bertempat di Laboratorium Kesehatan Ikan, Laboratorium Lingkungan Akuakultur, dan Laboratorium Nutrisi Ikan, Departemen Budidaya Perairan, Fakultas Perikanan dan Ilmu Kelautan, Institut Pertanian Bogor.

Ucapan terima kasih penulis sampaikan kepada Dr. Ir. Widanarni, M.Si. dan Dr. Ir. Sukenda, M.Sc. sebagai dosen pembimbing atas bimbingan yang telah diberikan selama ini, serta kepada Dr. Ir. Odang Carman, M.Sc. sebagai dosen penguji tamu. Penulis juga menyampaikan terima kasih kepada Ibunda Surini dan Ayahanda Iryanto atas dukungan dan bimbingannya, serta kepada Febry Ryan Priyatna, Zelika Rizky Sholeha, Firly Ryan Nouvaly dan Suryaman. Ucapan terima kasih juga disampaikan kepada Bapak Ranta dan Kak Rahman yang telah membantu penulis dalam pengerjaan penelitian ini, serta kepada Dama, Dwi, Ika, Kak Angga, Kak Fariq, Bu Dian, Mba Eza, Kang Adna, Kang Asep, Mba Yuli, teman-teman LKI’ers (Iling, Mumun, Trian, Lita, Iis, Yue, Vika, Yesy, Ood, Ezy, Hendar, dan Novi), teman-teman BDP 44, dan semua pihak yang telah memberikan dukungannya kepada penulis dalam menyelesaikan skripsi ini.

Bogor, Desember 2011

Ghita Ryan Septiani

(8)

DAFTAR RIWAYAT HIDUP

Penulis dilahirkan di Cirebon pada tanggal 17 September 1989 dari pasangan Bapak Iryanto dan Ibu Surini. Penulis merupakan anak kedua dari empat bersaudara.

Pendidikan formal yang dilalui penulis adalah SMAN 1 Sumber, Cirebon dan lulus pada tahun 2007. Pada tahun yang sama penulis lulus seleksi masuk IPB melalui jalur Undangan Seleksi Masuk IPB (USMI) dan memilih Mayor Teknologi dan Manajemen Perikanan Budidaya, Departemen Budidaya Perairan, Fakultas Perikanan dan Ilmu Kelautan serta dengan Minor Manajemen Fungsional.

Selama mengikuti perkuliahan, penulis pernah melakukan praktik lapang akuakultur (PLA) di PT. Centralpertiwi Bahari Rembang dan PT. Triwindu Graha Manunggal Anyer dengan judul laporan “Pembenihan Udang Vaname (Litopenaeus vannamei)”. Penulis juga aktif menjadi pengurus Himpunan Mahasiswa Akuakultur sebagai staf divisi Pengembangan Sumberdaya Masyarakat (2009/2010) serta sebagai kepala divisi Publikasi dan Pengembangan Sumber Daya (2010/2011). Penulis juga pernah menjadi asisten mata kuliah Dasar-dasar Mikrobiologi Akuatik program Sarjana semester genap (2009/2010) dan (2010/2011), Mikrobiologi Akuatik program Diploma semester ganjil (2011/2012), Mikrobiologi Akuakultur program Pascasarjana semester ganjil (2011/2012), dan Penyakit Organisme Akuatik program Sarjana semester ganjil (2011/2012). Penulis merupakan salah satu anggota penerima dana DIKTI pada PKM bidang pengabdian masyarakat (2010) yang berjudul “Pelatihan Produksi Ikan Hias dengan Metode Induced Breeding Di Kampung Setu, Desa Parigi Mekar, Kecamatan Ciseeng, Kabupaten Bogor”.

Tugas akhir dalam pendidikan tinggi diselesaikan dengan menulis skripsi yang berjudul “Pemberian sinbiotik dengan frekuensi berbeda pada pakan

udang vaname Litopenaeus vannamei untuk pencegahan IMNV (Infectious Myonecrosis Virus)".

(9)

DAFTAR ISI

Halaman

DAFTAR TABEL ... x

DAFTAR GAMBAR ... xi

DAFTAR LAMPIRAN ... xii

I. PENDAHULUAN ... 1

II. METODOLOGI ... 3

2.1. Penyiapan Prebiotik ... 3

2.1.1. Ekstraksi Oligosakarida/Prebiotik ... 3

2.1.2. Pengukuran Total Padatan Terlarut ... 3

2.2. Pengujian Sinbiotik secara In Vivo ... 4

2.2.1. Persiapan Wadah ... 4

2.2.2. Persiapan Hewan Uji ... 4

2.2.3. Persiapan Pakan Uji ... 4

2.2.4. Pengujian Pakan Uji pada Udang Vaname ... 5

2.3. Parameter Pengamatan ... 6

2.3.1. Sintasan ... 6

2.3.2. Laju Pertumbuhan Harian ... 6

2.3.3. Rasio Konversi pakan ... 6

2.3.4. Total Hemosit ... 7

2.3.5. Aktivitas Phenoloxidase (PO) ... 7

2.3.6. Diferensial Hemosit ... 8

2.3.7. Indeks Fagositik... 8

2.3.8. Gejala Klinis ... 8

2.3.9. Kualitas Air ... 8

2.4. Analisis Data ... 8

III. HASIL DAN PEMBAHASAN ... 9

3.1. Hasil ... 9

3.1.1. Sintasan ... 9

3.1.2. Laju Pertumbuhan Harian... 9

3.1.3. Rasio Konversi pakan... 10

3.1.4. Total Haemocyte Count (THC)... 11

3.1.5. Aktivitas Phenoloxidase (PO) ... 11

3.1.6. Diferensial Haemocyte Count ... 12

3.1.7. Indeks Fagositik ... 13 3.1.8. Gejala Klinis ... 14 3.1.9. Kualitas Air... 14 3.2. Pembahasan ... 15 IV. KESIMPULAN ... 21 4.1. Kesimpulan ... 21 4.2. Saran ... 21 DAFTAR PUSTAKA ... 22 LAMPIRAN ... 25

(10)

DAFTAR TABEL

Halaman 1. Perlakuan pemberian sinbiotik dan uji tantang ... 5 2. Nilai kualitas air pada media pemeliharaan udang vaname ... 15

(11)

DAFTAR GAMBAR

Halaman 1. Sintasan udang vaname selama 30 hari perlakuan sinbiotik (a) dan

akhir penelitian setelah uji tantang dengan IMNV (b) ... 9 2. Laju pertumbuhan harian udang pada akhir perlakuan sinbiotik ... 10 3. Nilai rasio konversi pakan udang vaname pada akhir sinbiotik ... 10 4. Total Haemocyte Count udang vaname pada akhir perlakuan

sinbiotik dan pasca infeksi IMNV ... 11 5. Aktivitas enzim phenoloksidase udang vaname pada akhir

perlakuan sinbiotik dan pasca infeksi IMNV ... 12 6. Persentase sel hyaline udang vaname pada akhir perlakuan

sinbiotik dan pasca infeksi IMNV ... 12 7. Persentase sel granular udang vaname pada akhir perlakuan

sinbiotik dan pasca infeksi IMNV ... 13 8. Persentase indeks fagositik udang vaname pada akhir perlakuan

sinbiotik dan pasca infeksi IMNV ... 13 9. Perubahan makro anatomi udang uji setelah infeksi IMNV ... 14

(12)

DAFTAR LAMPIRAN

Halaman 1. Analisis statistik terhadap sintasan udang vaname pada akhir

perlakuan sinbiotik ... 26 2. Analisis statistik terhadap sintasan udang vaname pasca infeksi

IMNV ... 26 3. Analisis statistik terhadap laju pertumbuhan harian udang vaname

pada akhir perlakuan sinbiotik ... 27 4. Analisis statistik terhadap rasio konversi pakan udang vaname

pada akhir perlakuan sinbiotik ... 27 5. Analisis statistik terhadap total haemocyte count udang vaname

pada akhir perlakuan sinbiotik ... 28 6. Analisis statistik terhadap total haemocyte count udang vaname

pasca infeksi IMNV... 29 7. Analisis statistik terhadap aktivitas phenoloxydase udang vaname

pada akhir perlakuan sinbiotik ... 29 8. Analisis statistik terhadap aktivitas phenoloxydase udang vaname

pasca infeksi IMNV... 30 9. Analisis statistik terhadap jumlah sel hyaline udang vaname pada

akhir perlakuan sinbiotik ... 30 10. Analisis statistik terhadap jumlah sel hyaline udang vaname pasca

infeksi IMNV ... 31 11. Analisis statistik terhadap jumlah sel granular udang vaname pada

akhir perlakuan sinbiotik ... 32 12. Analisis statistik terhadap jumlah sel granular udang vaname pasca

infeksi IMNV ... 32 13. Analisis statistik terhadap indeks fagositik udang vaname pada

akhir perlakuan sinbiotik ... 33 14. Analisis statistik terhadap indeks fagositik udang vaname pasca

(13)

1

I. PENDAHULUAN

Udang vaname (Litopenaeus vannamei) merupakan salah satu komoditas ekspor unggulan di bidang perikanan yang persentasenya cukup tinggi. Kementerian Kelautan dan Perikanan (KKP) pada tahun 2009 menetapkan target produksi udang vaname meningkat sampai 209% untuk tahun 2014, berarti harus terjadi peningkatan produksi dari 244.650 ton pada tahun 2009 menjadi 511.000 ton pada tahun 2011 (Ditjen Perikanan Budidaya 2010). Upaya yang dapat dilakukan untuk memenuhi target tersebut adalah dengan cara melakukan budidaya udang vaname secara intensif melalui peningkatan padat tebar udang vaname. Namun demikian, serangan penyakit sering menjadi masalah dalam budidaya udang vaname secara intensif.

Penyakit yang sering menjadi kendala dalam kegiatan budidaya udang vaname adalah penyakit bakterial dan viral. Salah satu penyakit viral yang saat ini banyak menyerang udang vaname adalah IMNV (Infectious Myonecrosis Virus) (Costa et al. 2009). Menurut Tang et al (2005), gejala klinis yang umum terjadi pada udang yang terserang IMNV adalah rusaknya jaringan dan adanya warna putih pada otot. Menurut Coelho et al. (2009), infeksi IMNV dapat menimbulkan tingkat mortalitas di atas 60% pada tambak udang dan dapat menyerang udang pada stadia post-larva (PL), juvenil, dan dewasa. Oleh karena itu, perlu dilakukan pengendalian terhadap serangan virus tersebut. Salah satu alternatif yang dapat dilakukan untuk mengendalikan penyakit tersebut adalah melalui aplikasi sinbiotik (kombinasi antara probiotik dan prebiotik).

Verschuere et al. (2000) menyatakan bahwa probiotik adalah agen mikroba hidup yang memberikan pengaruh menguntungkan pada inang melalui penyeimbangan mikroflora intestinalnya. Probiotik juga dapat didefinisikan sebagai kultur hidup satu jenis mikroba atau lebih yang memberikan pengaruh menguntungkan bagi inang melalui peningkatan sistem imun, memperbaiki kualitas lingkungan hidup inang, dan memperbaiki nilai nutrisi pakan. Probiotik yang digunakan pada penelitian ini adalah Vibrio alginolyticus (SKT-b). Berdasarkan hasil penelitian Widanarni et al. (2003), V. alginolyticus (SKT-b) merupakan salah satu probiotik yang memiliki kemampuan untuk menghambat

(14)

2 pertumbuhan bakteri patogen Vibrio harveyi dalam uji in vitro dan in vivo. Selain itu Gullian et al. (2004) menyatakan bahwa V. alginolyticus mampu meningkatkan pertumbuhan dan respon imun pada udang vaname L. vannamei.

Menurut Lisal (2005), konsep probiotik ini memiliki kelemahan, yaitu kemampuan bertahan, kolonisasi, dan kompetisi nutrien dari bakteri probiotik untuk masuk ke dalam satu lingkungan ekosistem yang sudah mengandung berbagai jenis bakteri lainnya. Lisal (2005) menyatakan bahwa jika terjadi perubahan lingkungan yang ekstrim, maka bakteri dalam saluran pencernaan akan dengan cepat mengalami wash out. Dalam hal ini, dibutuhkan pendekatan yang dapat mengatasi keterbatasan tersebut, salah satunya adalah melalui pemberian prebiotik.

Prebiotik merupakan bahan pangan yang tidak dapat dicerna oleh inang, namun memiliki pengaruh yang menguntungkan terhadap inang dengan menstimulir pertumbuhan mikroflora normal di dalam saluran pencernaan inang (Schrezenmeir & Vrese 2001). Prebiotik yang digunakan dalam penelitian ini adalah ekstrak oligosakarida yang berasal dari tepung ubi jalar varietas Sukuh

Ipomoea batatas L. Perpaduan antara probiotik dan prebiotik disebut sinbiotik.

Menurut Schrezenmeir & Vrese (2001) sinbiotik merupakan kombinasi seimbang dari probiotik dan prebiotik dalam mendukung kelangsungan hidup dan pertumbuhan bakteri yang menguntungkan dalam saluran pencernaan mahluk hidup.

Penelitian ini bertujuan untuk menguji efektivitas pemberian sinbiotik dengan frekuensi berbeda pada pakan udang vaname untuk pencegahan infeksi IMNV melalui pengamatan terhadap sintasan, pertumbuhan, dan respon imun udang.

(15)

3

II. METODOLOGI

2.1 Penyiapan Prebiotik

2.1.1 Ekstraksi Oligosakarida/Prebiotik

Sebanyak 500 gram tepung ubi jalar dicampur air dengan perbandingan 1:1 (w/v) dan dikukus selama 30 menit pada suhu 100oC. Setelah itu tepung ubi jalar dikeringkan dalam oven pada suhu 55oC selama 18 jam. Selanjutnya, digiling dan disaring menggunakan ayakan hingga tepung kukus ubi jalar dapat terkumpul. Proses ekstraksi oligosakarida/prebiotik mengacu pada metode Muchtadi (1989). Tepung kukus ubi jalar disuspensikan ke dalam etanol 70% dengan perbandingan 1:10, diaduk menggunakan magnetic stirer selama 15 jam. Kemudian disaring menggunakan kertas saring steril. Setelah itu disentrifuse selama 10 menit dengan kecepatan 5000 rpm dan dilakukan penyaringan kembali. Filtrat yang diperoleh dipekatkan menggunakan evaporator vakum pada suhu 40oC. Hasil evaporator diencerkan dengan akuades steril menggunakan perhitungan total padatan terlarut (TPT).

2.1.2 Pengukuran Total Padatan Terlarut

Pengujian total padatan terlarut (TPT) ini mengacu pada metode Apriyantono et al. (1989). Cawan porselin dimasukkan ke dalam oven selama 1 jam dengan suhu 100oC, kemudian dimasukkan ke dalam desikator dan ditimbang (a gram). Setelah itu, sebanyak 1 ml ekstrak oligosakarida hasil ekstraksi dari ubi jalar ditempatkan pada cawan porselin tersebut, kemudian ditimbang (b gram). Cawan porselin berisi ekstrak oligosakarida tersebut dimasukkan ke dalam oven dengan suhu 100oC selama 24 jam. Setelah itu cawan didinginkan dalam desikator selama 10 menit, kemudian cawan tersebut ditimbang (c gram). Total padatan terlarut dihitung dengan rumus:

TPT= c−a

b x 100%

Hasil dari pemekatan ekstraksi ubi jalar tersebut selanjutnya diencerkan dengan menggunakan akuades steril hingga mencapai kadar TPT (Total Padatan Terlarut) sebesar 5% (Marlis 2008).

(16)

4

2.2 Pengujian Sinbiotik secara In Vivo 2.2.1 Persiapan Wadah

Wadah yang digunakan dalam penelitian ini adalah 15 akuarium berukuran 60 cm x 30 cm x 35 cm. Sebelum digunakan, akuarium dicuci terlebih dahulu menggunakan deterjen dan dikeringkan. Kemudian akuarium didesinfeksi menggunakan kaporit 100 ppm selama 24 jam. Setelah itu akuarium yang telah didesinfeksi dibilas dengan air tawar hingga bersih, kemudian sebanyak 30 liter air laut dimasukkan pada masing-masing akuarium.

2.2.2 Persiapan Hewan Uji

Hewan uji yang digunakan dalam penelitian ini adalah benur udang vaname stadia PL10 yang berasal dari PT. Global Gen, Labuan, Banten. Sebelum diberi perlakuan, benur terlebih dahulu dipelihara selama 30 hari dalam akuarium. Bobot benur yang digunakan adalah 0,493±0,035 gram/ekor. Masing-masing akuarium dilengkapi shelter sebagai tempat udang berlindung ketika molting. Pengelolaan kualitas air dilakukan dengan penyiponan dan pergantian air setiap pagi hari sebanyak 10% dari total volume akuarium. Sebelum diberi perlakuan, udang uji dipuasakan selama 24 jam dengan tujuan menghilangkan sisa pakan dalam tubuh.

2.2.3 Persiapan Pakan Uji

Persiapan pakan uji meliputi tahap kultur bakteri probiotik, serta pencampuran pakan. Kultur bakteri probiotik SKT-b dilakukan pada media Sea

Water Complete (SWC-agar miring) (5 g bactopeptone, 1 g yeast extract, 3 ml

gliserol, 15 g agar, 750 ml air laut, dan 250 ml akuades) yang diinkubasi selama 24 jam pada suhu ruang. Kemudian bakteri probiotik SKT-b diinokulasikan ke dalam media SWC cair dan diinkubasi dalam waterbath shaker pada suhu 29-30oC dengan kecepatan 140 rpm selama 24 jam. Setelah itu, suspensi bakteri dipindahkan ke dalam tabung corning 25 ml kemudian disentrifuse selama 10 menit dengan kecepatan 5.000 rpm untuk memisahkan padatan sel bakteri dengan supernatan. Pellet sel bakteri yang diperoleh kemudian dicuci sebanyak 2 kali dengan larutan PBS (Phosphate Buffer Saline) 25 ml, dihomogenisasi dengan vortex dan disentrifuse selama 10 menit dengan kecepatan 5.000 rpm. Setelah dilakukan pencucian, PBS dibuang kemudian ditambahkan kembali larutan PBS sebanyak 10 ml dan dihomogenisasi dengan vortex. Hasil dari vortex ini adalah

(17)

5 probiotik yang akan dicampurkan ke dalam pakan. Pembuatan sinbiotik dilakukan dengan cara mengkombinasikan probiotik dan prebiotik pada pakan yang akan diberikan. Dosis probiotik yang digunakan sebesar 1% dari jumlah pakan yang akan diberikan (Wang 2007), dan prebiotik sebesar 2% dari jumlah pakan yang akan diberikan (Mahious et al. 2006). Pencampuran dilakukan dengan menambahkan kuning telur sebanyak 2% dari total pakan yang berfungsi sebagai perekat (Wang 2007). Sebelum diberikan ke udang, pakan dikeringudarakan terlebih dahulu selama 10-15 menit untuk mengurangi kelembaban.

2.2.4 Pengujian Pakan Uji pada Udang Vaname

Pakan uji yang digunakan dalam penelitian ini berupa pelet komersil dengan kandungan protein sebesar 40%. Pengujian terdiri dari 5 perlakuan (Tabel 1) dengan 3 kali ulangan, yaitu:

Tabel 1. Perlakuan pemberian sinbiotik dan uji tantang

Pemeliharaan udang dengan pemberian perlakuan sinbiotik dilakukan selama 30 hari. Udang uji sebanyak 15 ekor dipelihara dalam akuarium dengan volume air laut 30 liter. Pemberian pakan dilakukan lima kali dalam sehari pada pukul 07.00, 11.00, 15.00, 19.00, dan 23.00 WIB. Pada perlakuan C, pakan dengan penambahan sinbiotik diberikan pada udang uji setiap hari, namun pada perlakuan D dan E pakan yang telah ditambahkan sinbiotik diberikan secara periodik masing-masing adalah dua kali seminggu dan satu kali seminggu (Tabel 1). Jumlah pakan yang diberikan didasarkan pada Feeding Rate (FR) menurut SNI 01-7246-2006 dengan persentase FR yang menurun secara bertahap mulai 15% hingga 5% sesuai dengan bobot udang pada masing-masing perlakuan.

Setelah udang uji diberi perlakuan sinbiotik selama 30 hari, kemudian dilakukan uji tantang secara oral menggunakan IMNV melalui pemberian pakan

Perlakuan Keterangan

Perlakuan A Pemberian pakan komersil tanpa penambahan sinbiotik kemudian diinfeksi IMNV (kontrol (+))

Perlakuan B Pemberian pakan komersil tanpa penambahan sinbiotik dan tanpa infeksi IMNV (kontrol (-))

Perlakuan C Pemberian setiap hari pakan komersil dengan penambahan sinbiotik kemudian diinfeksi IMNV

Perlakuan D Pemberian dua kali seminggu pakan komersil dengan penambahan sinbiotik kemudian diinfeksi IMNV

Perlakuan E Pemberian satu kali seminggu pakan komersil dengan penambahan sinbiotik kemudian diinfeksi IMNV

(18)

6 menggunakan cacahan udang yang positif terinfeksi IMNV terhadap udang uji. Uji tantang dilakukan selama 3 hari dan pengamatan dilakukan selama 14 hari.

2.3 Parameter Pengamatan 2.3.1 Sintasan

Sintasan atau tingkat kelangsungan hidup udang dalam penelitian ini dihitung pada akhir perlakuan sinbiotik dan akhir penelitian pasca infeksi IMNV. Sintasan dihitung berdasarkan rumus (Effendie 1997):

SR = Nt

No x 100%

Keterangan :

SR = Kelangsungan hidup (%)

Nt = Jumlah udang pada akhir pemeliharaan (ekor) No = Jumlah udang pada awal pemeliharaan (ekor)

2.3.2 Laju Pertumbuhan Harian

Laju pertumbuhan spesifik atau Spesific Growth Rate (SGR) dalam penelitian ini dihitung pada akhir perlakuan sinbiotik dengan menggunakan formula di bawah ini (Huisman 1987):

𝑆𝐺𝑅 = 𝑊𝑡 𝑊𝑜

𝑡

− 1 × 100% Keterangan :

SGR = Laju pertumbuhan harian (%)

Wt = Bobot rata-rataudang pada akhir perlakuan (gram) Wo = Bobot rata-rata udang pada awal pemeliharaan (gram) t = Periode pemeliharaan (hari)

2.3.3 Rasio Konversi Pakan

Rasio konversi pakan selama pemeliharaan dengan perlakuan sinbiotik dihitung menggunakan rumus (Zonneveld et al. 1991):

FCR = F

Bt + Bm − Bo Keterangan :

FCR = Konversi pakan F = Jumlah pakan (gram)

(19)

7 Bt = Biomassa udang pada saat akhir perlakuan (gram)

Bm = Biomassa udang yang mati saat perlakuan (gram) Bo = Biomassa udang pada saat awal perlakuan (gram)

2.3.4 Total Hemosit

Pengamatan terhadap respon imun udang dilakukan pada akhir perlakuan sinbiotik dan pasca infeksi IMNV. Prosedur penghitungan total hemosit mengacu pada metode Blaxhall dan Daishley (1973). Haemolymph diambil sebanyak 0,1 ml dari pangkal kaki renang pertama dengan syringe 1 ml yang sudah berisi 0,3 ml antikoagulan Na-sitrat 3,8%. Campuran dihomogenkan, kemudian tetesan pertama dibuang sedangkan tetesan selanjutnya diteteskan pada haemositometer. Total hemosit dilihat dan dihitung jumlah selnya per ml di bawah mikroskop.

2.3.5 Aktivitas Phenoloxidase (PO)

Pengukuran PO dilakukan berdasarkan prosedur yang dikemukan oleh Liu dan Chen (2004). Aktivitas PO haemocyte diukur berdasarkan formasi dopachrome yang dihasilkan oleh L-DOPA. Sebanyak 1 ml campuran hemolim-antikoagulan disentrifuse pada 1.500 rpm selama 10 menit pada temperatur 4 oC. Supernatan dikeluarkan dan pelet disuspensikan kembali secara perlahan-lahan ke dalam 1 ml larutan cacodylate-citrate buffer (0,01 M sodium cacodylate, 0,45 M sodium chloride, 0,10 M trisodium citrate, pH 7) kemudian disentrifuse kembali. Pelet kemudian diambil dan disuspensikan dalam 200 µl cacodylate-citrate buffer (0,01 M sodium cacodylate, 0,45 M sodium chloride, 0,10 M trisodium citrate, pH 7).

Suspensi sel sebanyak 100 µl kemudian diinkubasi dengan 50 µl trypsin (1 mg/ml cacodylate buffer) selama 10 menit pada temperatur 25-26 oC. Selanjutnya ditambahkan 50 µl L-DOPA (3 mg/ml cacodylate buffer) setelah 5 menit, dan ditambahkan 800 µl cacodylate buffer. Densitas optikal (OD) diukur dengan menggunakan spektrofotometer dengan panjang gelombang 490 nm. Larutan standar mengandung 100 µl suspensi haemocyte, 50 µl cacodylate buffer (pengganti tripsin), dan 50 µl L-DOPA digunakan untuk mengukur background aktivitas PO pada semua larutan uji.

(20)

8

2.3.6 Diferensial Hemosit

Diferensial hemosit dihitung berdasarkan metode yang dilakukan Martin dan Graves (1995). Jumlah hemosit dihitung hingga 100 sel dan ditentukan persentase tiap jenisnya (hyaline dan granular). Persentase tiap jenis sel hemosit dihitung dengan rumus:

Persentase jenis sel hemosit = Jumlah tiap jenis sel hemosit

Total hemosit x 100%

2.3.7 Indeks Fagositik

Penghitungan indeks fagositik mengacu pada metode Anderson dan Siwicki (1993). Aktivitas fagositik diukur berdasarkan persentase sel-sel fagosit yang menunjukkan proses fagositosis dari 100 sel fagosit yang diamati. Indeks fagositik dihitung dengan rumus:

Indeks fagositik = Jumlah sel fagosit yang melakukan fagositosis

jumlah sel fagosit x 100%

2.3.8 Gejala Klinis

Pengamatan gejala klinis dilakukan dengan melihat perubahan atau kelainan pada anatomi makro udang. Gejala klinis yang diamati ialah terbentuknya otot berwarna putih pada bagian ruas tubuh udang, dan warna kemerahan pada bagian ekor.

2.3.9 Pengamatan Kualitas Air

Pengamatan kualitas air dilakukan pada air stok awal dan air media pemeliharaan masing-masing perlakuan pada akhir penelitian. Parameter kualitas air yang diukur adalah suhu, pH, DO, salinitas, dan TAN.

2.4 Analisis Data

Penelitian ini menggunakan rancangan percobaan berupa Rancangan Acak Lengkap dengan tiga ulangan. Data yang diperoleh dianalisis dengan menggunakan analisis ragam dengan tingkat kepercayaan 95%. Kemudian dilakukan uji lanjut dengan uji Duncan’s Multiple Range dengan menggunakan program komputer SPSS 16 untuk melihat perbedaan antar perlakuan.

(21)

9

III. HASIL DAN PEMBAHASAN

3.1 Hasil 3.1.1 Sintasan

Parameter utama dalam penelitian ini adalah nilai sintasan dari masing-masing perlakuan. Penghitungan nilai sintasan dibagi menjadi dua tahap. Tahap pertama dilakukan setelah 30 hari perlakuan sinbiotik, sedangkan tahap kedua dilakukan pada akhir penelitian pasca infeksi IMNV. Nilai sintasan yang diperoleh dapat dilihat pada Gambar 1.

Keterangan:

A (kontrol +), B (kontrol -), C (pemberian pakan sinbiotik setiap hari), D (pemberian pakan sinbiotik dua kali seminggu) dan E (pemberian pakan sinbiotik satu kali seminggu)

Gambar 1. Sintasan udang vaname selama 30 hari perlakuan sinbiotik (a) dan akhir penelitian setelah uji tantang dengan IMNV (b)

Setelah 30 hari perlakuan sinbiotik, berdasarkan hasil uji lanjut dengan menggunakan uji Duncan, diketahui bahwa tidak terdapat perbedaan yang nyata antar perlakuan yaitu dengan nilai sintasan berkisar antara 90-96,67% (p>0,05; Lampiran 1). Sedangkan hasil pengamatan pasca uji tantang menggunakan IMNV diperoleh hasil bahwa perlakuan C menghasilkan sintasan yang tinggi yaitu 80% dan tidak berbeda nyata dengan perlakuan B, D, dan E, namun berbeda nyata dengan perlakuan A (p<0,05; Lampiran 2).

3.1.2 Laju Pertumbuhan Harian

Penghitungan laju pertumbuhan harian udang vaname dalam penelitian ini dilakukan setelah 30 hari pemberian perlakuan sinbiotik. Pengaruh pemberian perlakuan sinbiotik terhadap laju pertumbuhan harian udang vaname dapat dilihat pada Gambar 2. 90 96.67 91.67 96.67 93.33 0 20 40 60 80 100 A B C D E S in ta sa n ( % ) Perlakuan a a a a a a 53.33 91.11 ₈₀ 62.22 64.44 0 20 40 60 80 100 A B C D E S in ta sa n ( % ) Perlakuan a c bc ab ab b

(22)

10 Keterangan:

Gambar 2. Laju pertumbuhan harian udang pada akhir perlakuan sinbiotik

Berdasarkan Gambar 2, diketahui bahwa laju pertumbuhan harian perlakuan C, D, dan E (6,93-6,97%) tidak memiliki perbedaan yang nyata, namun ketiga perlakuan tersebut memberikan perbedaan yang nyata terhadap perlakuan A dan B (6,65-6,66%) (p<0,05; Lampiran 3).

3.1.3 Rasio Konversi Pakan

Pengaruh pemberian pakan sinbiotik terhadap konversi pakan dapat dilihat pada Gambar 3. Berdasarkan hasil uji lanjut menggunakan uji Duncan, diketahui bahwa setelah 30 hari perlakuan sinbiotik diperoleh nilai konversi pakan pada perlakuan C dan D (1,54-1,58%) berbeda nyata dengan perlakuan A dan B (1,86%) (p<0,05; Lampiran 4).

Keterangan:

Gambar 3. Nilai rasio konversi pakan udang vaname pada akhir perlakuan sinbiotik 6.65 6.66 6,97 6.94 6.93 0.00 1.00 2.00 3.00 4.00 5.00 6.00 7.00 8.00 A B C D E S G R ( % ) Perlakuan b a a b b 1.86 1.86 1.54 _1.58 _1.65 0.00 0.50 1.00 1.50 2.00 A B C D E F C R ( % ) Perlakuan ab a a b b

(23)

11

3.2.4 Total Haemocyte Count (THC)

Pengukuran THC dilakukan pada akhir masa perlakuan sinbiotik dan pasca infeksi IMNV. Hasil pengukuran THC disajikan pada Gambar 4.

Keterangan:

Gambar 4. Total Haemocyte Count udang vaname pada akhir perlakuan sinbiotik dan pasca infeksi IMNV

Berdasarkan hasil pengukuran THC yang didapat pada akhir masa perlakuan sinbiotik diketahui bahwa THC pada perlakuan C dan D memiliki nilai tertinggi (3,03-3,05)x107sel/ml, serta menunjukkan perbedaan yang nyata dengan perlakuan lainnya. Jumlah sel hemosit pada perlakuan E lebih rendah dibanding perlakuan C dan D namun lebih tinggi dibanding perlakuan kontrol, serta menunjukkan perbedaan yang nyata (p<0,05; Lampiran 5).

Nilai THC pasca uji tantang mengalami penurunan pada semua perlakuan, namun penurunan THC pada perlakuan B (kontrol (-)) tidak terlalu signifikan. Jumlah sel hemosit tertinggi pada pengukuran pasca uji tantang terdapat pada udang yang diberi perlakuan C yaitu sebesar 2,76x107 sel/ml, serta menunjukkan perbedaan yang nyata dengan perlakuan lainnya. Jumlah sel hemosit pada perlakuan D dan E lebih rendah dibanding perlakuan C, namun lebih tinggi dibanding perlakuan A (kontrol(+)) dan memberikan perbedaan yang nyata (p<0,05; Lampiran 6).

3.1.5 Aktivitas Phenoloxidase (PO)

Pengaruh pakan sinbiotik terhadap aktivitas phenoloxidase (PO) pada udang vaname dapat dilihat pada Gambar 5.

1.42 0,95 1.58 1.53 3.03 2.76 3.05 1.48 2,34 1.48 0.0 0.5 1.0 1.5 2.0 2.5 3.0 3.5 4.0

Akhir perlakuan sinbiotik Pasca infeksi IMNV

H e m osit ( x 10 7se l/ m l) Waktu A B C D E a a c c b a _b _c _{b b}

(24)

12 Keterangan:

Gambar 5. Aktivitas enzim phenoloxidase udang vaname pada akhir perlakuan sinbiotik dan pasca infeksi IMNV

Aktivitas PO di akhir perlakuan sinbiotik sebelum uji tantang pada perlakuan C dan D memiliki nilai yang tinggi yaitu 0,32 dan 0,33 serta menunjukkan perbedaan yang nyata dengan perlakuan A, B, dan E (p<0,05; Lampiran 7). Aktivitas PO udang uji mengalami penurunan pasca uji tantang. Nilai PO tertinggi yang diperoleh pada pasca uji tantang terdapat pada perlakuan B dan C (0,18-0,21) dan menunjukkan perbedaan yang nyata dengan perlakuan A, D, dan E (0,06-0,08) (p<0,05; Lampiran 8)

3.1.6 Diferensial Haemocyte Count

Tipe hemosit udang dapat diklasifikasikan berdasarkan keberadaan granula sitoplasma, yaitu sel hyaline dan granular. Hasil penghitungan jumlah sel hyaline dan sel granular dapat dilihat pada Gambar 6 dan 7.

Keterangan:

Gambar 6. Persentase sel hyaline udang vaname pada akhir perlakuan sinbiotik (a) dan pasca infeksi IMNV (b)

0,22 0,06 0,22 _0,21 0,32 0,18 0,33 0,08 0,22 0,07 0 0.05 0.1 0.15 0.2 0.25 0.3 0.35 0.4

Ph e n ol ox idase Waktu A B C D E a a b b a a b b a a 33.33 23.29 32.78 30.77 39.77 _38.61 38.1 _37.85 35.06 32.5 0 10 20 30 40 50

S el h yal in e (% ) Waktu A B C D E b b a a a a b c c b

(25)

13 Berdasarkan penghitungan yang dilakukan diketahui bahwa jumlah sel

hyaline yang tinggi terdapat pada perlakuan C dan D (38,1-39,77%), serta

menunjukkan perbedaan yang nyata dengan perlakuan A, B, dan E (32,78-35,06%) (p<0,05; Lampiran 9). Sedangkan sel granular berbanding terbalik dengan hyaline. Sel granular dengan jumlah yang rendah terdapat pada perlakuan C dan D, serta menunjukkan perbedaan yang nyata dengan perlakuan A, B, dan E (p<0,05; Lampiran 11).

Keterangan:

Gambar 7. Persentase sel granular udang vaname pada akhir perlakuan sinbiotik dan pasca infeksi IMNV

3.1.7 Indeks Fagositik

Nilai indeks fagositik selama penelitian dapat dilihat pada Gambar 8. Berdasarkan hasil pengamatan yang dilakukan diketahui bahwa nilai indeks fagositik selama penelitian cukup bervariasi. Berdasarkan hasil uji statistik setelah 30 hari masa perlakuan sinbiotik, nilai indeks fagositik perlakuan C, D, dan E berbeda nyata dengan perlakuan A dan B (p<0,05; Lampiran 13).

Keterangan:

Gambar 8. Persentase indeks fagositik udang vaname pada akhir perlakuan sinbiotik dan pasca infeksi IMNV

66.67 76.71 67.22 _69.23 60.2361.9 61.39 62.15 64.94 67.5 0 20 40 60 80 100

S el gr a n u la r (% ) Waktu A B C D E b b a a b c b a a b 28.5 22.34 28.74 _30.14 64.76 56.12 56.82 42.54 52.96 40.68 0 20 40 60 80

In d e k s F ago si ti k (% ) Waktu A B C D E b c a a b a b d _c c

(26)

14 Nilai indeks fagositik pasca infeksi IMNV mengalami penurunan kecuali pada perlakuan B (kontrol (-)). Namun nilai tertinggi tetap diperoleh pada perlakuan C dengan nilai 56,12%, dan memberikan perbedaan yang nyata dengan perlakuan lainnya (p<0,05; Lampiran 14).

3.1.8 Gejala Klinis

Pengamatan gejala klinis dilakukan untuk mengetahui perkembangan infeksi IMNV terhadap udang uji. Berdasarkan pengamatan yang dilakukan diketahui bahwa terjadi perubahan makro anatomi udang uji pasca infeksi. Perubahan awal yang terjadi adalah munculnya nekrosis pada bagian abdomen udang. Selain itu gejala klinis juga ditunjukkan dengan terbentuknya otot putih pada ruas-ruas tubuhnya, dan muncul warna kemerahan pada ekor udang (Gambar 9).

Udang normal Nekrosis pada ruas tubuh

Nekrosis pada ruas tubuh dan warna kemerahan pada ekor

Gambar 9. Perubahan makro anatomi udang uji setelah infeksi IMNV

3.1.9 Kualitas Air

Kualitas air selama masa pemeliharaan diukur pada awal dan akhir masa pemeliharaan. Parameter kualitas air yang diamati meliputi temperatur, pH, kandungan oksigen terlarut (DO), salinitas, dan TAN selama pemeliharaan (Tabel 2).

(27)

15 Tabel 2. Nilai kualitas air pada media pemeliharaan udang vaname

Parameter Perlakuan Literatur SNI 01-7246-2006 Tandon awal A B C D E Suhu (oC) 27-30 28-30 28-30 28-30 28-30 28-30 28.5-31.5oC pH 7,83 7,72 7,73 7,65 7,75 7,73 7.5-8.5 DO (mg/l) 5,1 4,1 4,3 3,9 4,7 4,5 > 3.5 Salinitas (ppt) 26 24-26 24-26 24-26 24-26 24-26 15-35 TAN (ppm) 0,14 0,31 0,29 0,37 0,32 0,34 < 1

Nilai kualitas air selama masa pemeliharaan pada semua perlakuan masih berada pada kisaran untuk pertumbuhan udang vaname. Sehingga diasumsikan perubahan kelangsungan hidup, pertumbuhan, konversi pakan, dan respon imun yang terjadi pada udang uji bukan diakibatkan oleh kualitas air media pemeliharaan.

3.2 Pembahasan

Sintasan merupakan peluang hidup suatu individu dalam waktu tertentu (Effendie 1997). Penghitungan nilai sintasan dalam penelitian ini dibagi menjadi dua tahap. Tahap pertama dilakukan setelah 30 hari perlakuan sinbiotik, sedangkan tahap kedua dilakukan pada akhir penelitian pasca infeksi IMNV. Setelah 30 hari perlakuan sinbiotik (Gambar 1), diketahui bahwa tidak terdapat perbedaan yang nyata antar perlakuan. Sedangkan hasil pengamatan pasca uji tantang menggunakan IMNV diperoleh hasil bahwa perlakuan C menghasilkan sintasan yang tertinggi yaitu 80% dan tidak berbeda nyata dengan perlakuan B, D, dan E, namun berbeda nyata dengan perlakuan A.

Berdasarkan hasil tersebut diketahui bahwa pemberian sinbiotik memberikan pengaruh yang baik terhadap kelangsungan hidup udang vaname yang diinfeksi IMNV. Hal tersebut diduga karena probiotik V. alginolyticus (SKT-b) dapat meningkatkan respon imun udang. Gullian et al. (2004) menyatakan bahwa V. alginolyticus mampu meningkatkan pertumbuhan dan respon imunitas pada udang vaname. Peningkatan respon imun tersebut terlihat pada jumlah sel hemosit yang dihasilkan oleh udang uji (Gambar 4). Jumlah hemosit pada perlakuan C memiliki nilai yang tinggi sehingga udang lebih siap dalam menghadapi patogen. Rodriguez dan Lee Moullac (2000) menyatakan bahwa hemosit pada krustase memainkan peranan penting dalam sistem pertahanan tubuh terhadap patogen seperti virus, bakteri, fungi, protozoa, dan

(28)

16 metazoa. Selain itu, penambahan prebiotik juga mampu meningkatkan kerja dari bakteri probiotik. Schrezenmeir & Vrese (2001) menyatakan bahwa prebiotik mampu menstimulir pertumbuhan atau aktivitas metabolik bakteri di dalam usus. Hasil penelitian Li et al. (2009) menunjukkan bahwa penambahan gabungan probiotik Bacillus dan prebiotik isomaltooligosaccharides pada udang vaname yang diinfeksi WSSV memberikan nilai sintasan 41,38% lebih tinggi dibanding perlakuan kontrol.

Udang uji pada perlakuan D juga menunjukkan jumlah hemosit yang tinggi dan tidak berbeda nyata dengan perlakuan C, namun pada perlakuan D nilai sintasan yang dihasilkan rendah. Hal tersebut diduga karena jumlah sel hemosit yang melakukan proses fagositosis pada udang perlakuan D (56,82%) lebih rendah dibanding perlakuan C (64,76%) dan menunjukkan perbedaan yang nyata (Gambar 8). Sehingga udang pada perlakuan C lebih mampu menghadapi patogen. Rodriguez dan Lee Moullac (2000) menyatakan bahwa nilai indeks fagositik yang tinggi menggambarkan bahwa organisme tersebut memiliki kemampuan untuk memproduksi sel-sel fagosit dalam darah dengan jumlah lebih banyak, sehingga ketika terjadi paparan mikroorganisme patogen, sel darah siap melakukan proses fagositosis.

Menurut Effendie (1997), pertumbuhan merupakan pertambahan ukuran baik bobot maupun panjang dalam suatu periode atau waktu tertentu. Penghitungan laju pertumbuhan harian udang vaname dalam penelitian ini dilakukan setelah 30 hari pemberian perlakuan sinbiotik. Berdasarkan Gambar 2, diketahui bahwa laju pertumbuhan harian udang pada perlakuan C, D, dan E memiliki nilai yang tinggi (6,93-6,97%) dan memberikan perbedaan yang nyata terhadap perlakuan A dan B. Hal tersebut menunjukkan bahwa pemberian sinbiotik pada udang melalui pakan memberikan pengaruh yang baik. Lisal (2005) menyatakan bahwa penambahan sinbiotik mampu meningkatkan mikroflora normal di dalam usus sehingga pakan dapat dimanfaatkan dengan baik untuk pertumbuhan. Berdasarkan pengujian terhadap aktivitas amilolitik dan proteolitik bakteri probiotik SKT-b yang dilakukan Widagdo (2011), diketahui bahwa bakteri tersebut menghasilkan enzim amilase dan protease. Enzim-enzim tersebut diduga telah membantu kecernaan pakan sehingga pertumbuhan udang yang diberi pakan

(29)

17 sinbiotik meningkat. Menurut Atlas et al. (1984), mikroba amilolitik adalah mikroba yang mampu menghasilkan enzim amilase yang akan mendegradasi zat pati menjadi maltosa dan glukosa yang digunakan sebagai sumber karbon dan energi. Sedangkan mikroba proteolitik adalah mikroba yang mampu menghasilkan enzim protease yang akan merombak protein menjadi asam amino yang kemudian dimanfaatkan sebagai sumber karbon dan energi.

Effendi (2004) menyatakan bahwa Feed Conversion Ratio (FCR) atau rasio konversi pakan merupakan suatu ukuran yang menyatakan jumlah pakan yang dibutuhkan untuk menghasilkan 1 kg daging. Gambar 3 menunjukkan bahwa setelah 30 hari perlakuan sinbiotik diperoleh nilai konversi pakan pada perlakuan C dan D (1,54-1,58%) berbeda nyata dengan perlakuan A dan B (1,86%). Berdasarkan hasil yang diperoleh diketahui bahwa pemberian pakan sinbiotik terhadap udang vaname memberikan pengaruh yang baik terhadap nilai FCR. Hal tersebut diduga disebabkan oleh bakteri probiotik SKT-b yang mampu menghasilkan enzim amilase dan protease. Berdasarkan hasil penelitian Widagdo (2011), diketahui bahwa SKT-b merupakan bakteri yang memiliki aktivitas enzim amilase dan protease. Sehingga kemampuan probiotik SKT-b dalam menghasilkan enzim-enzim tersebut yang diduga menyebabkan nilai konversi pakan udang lebih baik. Price dan Stevens (1996) dalam Yandri et al. (2008) menyatakan bahwa protease merupakan suatu enzim yang berfungsi memecah ikatan peptida untuk menghasilkan asam amino dan peptida sederhana lainnya. Protease adalah salah satu enzim yang penting dalam proses pencernaan, termasuk di dalamnya tripsin dan kemotripsin yang bertanggung jawab terhadap hampir 60% pada proses pencernaan udang (Lemos et al. 2000).

Hemosit memiliki peranan yang penting dalam sistem imun udang. Hemosit berperan dalam proses fagositosis, enkapsulasi, degranulasi, dan agregasi nodular terhadap patogen atau partikel asing, serta berperan dalam produksi dan pelepasan proPO (Sahoo et al. 2008). Berdasarkan Gambar 4, hasil pengukuran THC yang didapat pada akhir masa perlakuan sinbiotik diketahui bahwa THC pada perlakuan C dan D memiliki nilai tertinggi (3,03-3,05)x107sel/ml, serta menunjukkan perbedaan yang nyata dengan perlakuan lainnya. Jumlah sel hemosit pada

(30)

18 perlakuan E lebih rendah dibanding perlakuan C dan D namun lebih tinggi dibanding perlakuan kontrol, serta menunjukkan perbedaan yang nyata.

Nilai THC pasca uji tantang mengalami penurunan pada semua perlakuan, namun penurunan THC pada perlakuan B (kontrol (-)) tidak terlalu signifikan. Jumlah sel hemosit tertinggi pada pengukuran pasca uji tantang terdapat pada udang yang diberi perlakuan C yaitu sebesar 2,76x107 sel/ml, serta menunjukkan perbedaan yang nyata dengan perlakuan lainnya. Jumlah sel hemosit pada perlakuan D dan E lebih rendah dibanding perlakuan C, namun lebih tinggi dibanding perlakuan A (kontrol(+)) dan memberikan perbedaan yang nyata.

Berdasarkan hasil yang diperoleh, diketahui bahwa walaupun jumlah sel hemosit mengalami penurunan, namun perlakuan dengan pemberian sinbiotik tetap memberikan nilai THC yang lebih tinggi dibanding kontrol (+). Hal tersebut diduga karena adanya pengaruh sinbiotik yang diberikan dalam pakan udang. Bachere (2000) menyatakan bahwa proses imun pertama pada krustase adalah rekognasi mikroorganisme penyerang yang dimediasi oleh hemosit. Pembentukan hemosit ini dapat dirangsang oleh beta glukan dan probiotik.

Phenoloxidase (PO) merupakan suatu enzim yang bertanggung jawab

terhadap proses melanisasi pada krustase sebagai respon terhadap penyerang asing (Sritunyalucksana dan Soderhall 2000). Enzim phenoloxidase (PO) terdapat dalam hemolim sebagai inactive pro-enzyme yang disebut proPO. Transformasi proPO menjadi PO melibatkan beberapa reaksi yang dikenal sebagai proPO activing

system (sistem aktivasi proPO). Sistem ini terutama diaktifkan oleh beta glukan,

peptidoglikan, dan LPS.

Aktivitas PO di akhir perlakuan sinbiotik sebelum uji tantang pada perlakuan C dan D memiliki nilai yang tinggi yaitu 0,32 dan 0,33 serta menunjukkan perbedaan yang nyata dengan perlakuan A, B, dan E (Gambar 5). Hal tersebut menunjukkan bahwa penambahan sinbiotik mampu meningkatkan aktivitas PO pada udang. Hasil penelitian Li et al. (2009) menunjukkan bahwa penambahan gabungan probiotik Bacillus dan prebiotik isomaltooligosaccharides pada udang vaname yang diinfeksi WSSV, mampu menghasilkan nilai PO sebesar 31,93% lebih tinggi dibanding perlakuan kontrol. Aktivitas PO udang uji mengalami penurunan pasca uji tantang. Aktivitas PO berkaitan dengan jumlah

(31)

19 total sel hemosit, karena salah satu fungsi dari hemosit udang adalah dalam produksi dan pelepasan PO ke dalam hemolim dalam bentuk inactive pro-enzyme (Manoppo 2011). Sehingga pada umumnya semakin banyak jumlah hemosit semakin tinggi pula produksi PO, begitu pula sebaliknya.

Tipe hemosit udang dapat diklasifikasikan berdasarkan keberadaan granula sitoplasma, yaitu sel hyaline dan granular (Johansson et al. 2000). Sel hyaline merupakan tipe sel yang paling kecil dengan rasio nukleus sitoplasma tinggi dan tanpa granular. Sel granular merupakan tipe sel paling besar dengan nukleus yang lebih kecil dan terbungkus dengan granula. Berdasarkan Gambar 6, penghitungan yang dilakukan diketahui bahwa jumlah persentase sel hyaline yang tinggi terdapat pada perlakuan C dan D (38,1-39,77%), serta menunjukkan perbedaan yang nyata dengan perlakuan A, B, dan E (32,78-35,06%). Sedangkan persentase sel granular berbanding terbalik dengan sel hyaline (Gambar 7). Sel granular dengan jumlah yang rendah terdapat pada perlakuan C dan D, serta menunjukkan perbedaan yang nyata dengan perlakuan A, B, dan E. Total diferensial hemosit merupakan jumlah persentase dari sel hyaline dan sel granular. Masing-masing tipe sel aktif dalam reaksi kekebalan tubuh. Sel hyaline terlibat dalam fagositosis, sedangkan sel granular aktif dalam enkapsulasi, pelepasan proPO dan cytotoxicity (Johansson et al. 2000). Fase saat pergantian kulit pada udang berpengaruh terhadap jumlah sel hyaline dan granular. Rodriguez dan Lee Moullac (2000) menyatakan bahwa jumlah sel hyaline yang tinggi terdapat pada fase molting, sedangkan jumlah sel granular yang tinggi dalam hemolim terjadi selama fase

intermoult.

Salah satu mekanisme respon imun yang dibentuk oleh tubuh udang dalam mempertahankan diri dari serangan infeksi adalah melalui proses fagositosis (Rodriguez dan Lee Moullac 2000). Nilai indeks fagositik selama penelitian dapat dilihat pada Gambar 8. Berdasarkan hasil pengamatan yang dilakukan diketahui bahwa nilai indeks fagositik selama penelitian cukup bervariasi. Berdasarkan hasil uji statistik setelah 30 hari masa perlakuan sinbiotik, nilai indeks fagositik perlakuan C, D, dan E berbeda nyata dengan perlakuan A dan B.

Nilai indeks fagositik pasca infeksi IMNV mengalami penurunan kecuali pada perlakuan B (kontrol (-)). Namun nilai tertinggi tetap diperoleh pada

(32)

20 perlakuan C dengan nilai 56,12%, kemudian diikuti perlakuan D dan E. Hal tersebut menunjukkan bahwa pemberian sinbiotik mampu meningkatkan respon imun udang. Rodriguez dan Lee Moullac (2000) menyatakan bahwa nilai indeks fagositik yang tinggi menggambarkan bahwa organisme tersebut memiliki kemampuan untuk memproduksi sel-sel fagosit dalam darah lebih banyak, sehingga ketika terjadi paparan mikroorganisme patogen, sel darah siap melakukan proses fagositosis. Sel yang melakukan aktivitas fagositosis pada udang adalah sel hyaline. Johansson et al. (2000) menyatakan bahwa sel hyaline terlibat dalam proses fagositosis.

Pengamatan gejala klinis dilakukan untuk mengetahui perkembangan infeksi IMNV terhadap udang uji. Berdasarkan pengamatan yang dilakukan diketahui bahwa terjadi perubahan makro anatomi udang uji pasca infeksi (Gambar 9). Perubahan awal yang terjadi adalah munculnya nekrosis pada bagian abdomen udang. Selain itu gejala klinis juga ditunjukkan dengan terbentuknya otot putih pada ruas-ruas tubuhnya, dan muncul warna kemerahan pada ekor udang. Senapin et al. (2007) menyatakan bahwa ciri-ciri umum udang yang terinfeksi IMNV meliputi nekrosis pada otot, terutama pada segmen abdominal dan ekor, timbulnya perubahan warna pada otot menjadi putih hingga warna seperti udang rebus. Kematian biasanya terjadi pada saat gejala klinis sudah parah seperti ekor merah dan sebagian atau seluruh tubuh udang memutih.

(33)

21

IV. KESIMPULAN DAN SARAN

4.1. Kesimpulan

Hasil penelitian menunjukkan bahwa pemberian sinbiotik dalam pakan dengan frekuensi setiap hari memberikan pengaruh yang lebih baik dibanding perlakuan lainnya. Udang yang dipelihara dengan pemberian pakan sinbiotik setiap hari dan diinfeksi IMNV memiliki sintasan yang tinggi yaitu sebesar 80%. Selain itu, perlakuan pemberian pakan sinbiotik mampu meningkatkan respon imun udang.

4.2 Saran

Perlu dilakukan penelitian lanjutan untuk penerapan pemberian sinbiotik melalui pakan pada budidaya udang vaname skala massal.

(34)

22

DAFTAR PUSTAKA

Anderson and Siwicki AK., 1993. Basic Haemotology and Serologi For Fish Health Program. Paper Presented. In Second Symposium on Disease in Asian Aquaculture ”Aquatic Animal Health and The Eviroment” Phuket, Thailand. 25-29th October 1993.

Apriyantono, A., Fardiaz, D., Puspitasari, N.L., Sedarnawati, Budiyanti., 1989. Petunjuk Laboratorium Pengujian Pangan. IPB Press, Bogor.

Atlas, R.M., Brown, A.E., Dobra, K.W., Miller, L., 1984. Experimental Microbiology. Fundamental and Applications. Macmillan Publishing Company, New York.

Bachere, E., 2000. Shrimp immunity and desease control. Aquaculture 191:3-11 Blaxhall and Daysley. 1973. Routine Haematological Methods For Use with Fish

Blood. Journal Fish Biology 5:577-581.

Coelho, M.G.L., Silva, A.C.G., Nova, C.M.V.V., Neto, J.M.O., Lima, A.C.N., Feijo, R.G., Apolinario, D.F., Maggioni, R., Gesteira, T.C.V., 2009. Susceptibility of the wild southern brown shrimp (Farfantepenaeus subtilis) to infectious hypodermal and hematopoietic necrosis (IHHN) and infectious myonecrosis (IMN). Aquaculture 294, 1–4

Costa, A.M., Buglione, C.C., Bezerra, F.L., Martins, P.C.C., Barracco, M.A., 2009. Immune assessment of farm-reared Penaeus vannamei shrimp naturally infected by IMNV in NE Brazil. Aquaculture 291, 141-146.

Ditjen Perikanan Budidaya, 2010. Program peningkatan produksi budidaya tahun 2010-2014. Di dalam: Forum Akselerasi Pembangunan Perikanan Budidaya 2010, Batam 25-28 Januari 2010.

Effendi, I., 2004. Pengantar Akuakultur. Penebar Swadaya, Depok.

Effendie, M.I., 1997. Biologi Perikanan. Yayasan Pustaka Nusantara, Yogyakarta. Gullian, M., Thompson, F., Rodriguez, J., 2004. Selection of probiotic bacteria

and study of their immunostimulatory effect in Penaeus vannamei. Aquaculture 233, 1-14.

Huisman, E.A., 1987. Principles of Fish Production. Department of Fish Culture and Fisheries, Waganingen Agriculture University, Netherland.

Johansson, M.W., Keyser, P., Sritunyalucksana, K., Soderhall, K., 2000. Krustasen haemocytes and haemotopoiesis. Aquaculture 191, 45-52.

(35)

23 Lemos, D., Ezquerra J.M., Garcia-Carreno F.L., 2000. Protein digestion in

penaeid shrimp: digestive proteinases, proteinase inhibitors and feed digestibility. Aquaculture 186, 89-105.

Li, J., Beiping T., Kangsen M., 2009. Dietary probiotic Bacillus OJ and isomaltooligosaccharides influence the intestine microbial populations, immune responses and resistance to white spot syndrome virus in shrimp (Litopenaeus vannamei). Aquaculture 291, 35–40.

Lisal, J.S., 2005. Konsep porbiotik dan prebiotik untuk modulasi mikrobiota usus besar. Medical Nusantara 26, 256-262.

Liu C.H., Chen J.C., 2004. Effect of Ammonia On The Immune Response Of White Shrimp Litopenaeus vannamei And Its Susceptibility To Vibrio

alginolyticus. Fish and Shellfish Immunol 16: 321-334.

Mahious, Getesoupe, Hervi, M., Metailler, R., Ollevier, 2006. Effect of dietary inulin and oligosaccharides as prebiotics for weaning turbot, Psetta maxima (Linnaeus, C.1758). Aquaculture Internasional 14 (3), 219-229.

Manoppo, H., 2011. Peran nukleotida sebagai imunostimulan terhadap respon imun nonspesifik dan resistensi udang (Litopenaeus vannamei). [Disertasi]. Program Pascasarjana, Institut Pertanian Bogor. Bogor.

Marlis, A., 2008. Isolasi oligosakarida ubi jalar (Ipomoea batatas L.) dan pengaruh pengolahan terhadap potensi prebiotiknya. [Tesis]. Program Pascasarjana, Institut Pertanian Bogor. Bogor.

Martin, G.G., and Graves L.B., 1995. Structure and Classification Of Shrimp Haemocytes. J Morfology. 185:339-348.

Muchtadi, D., 1989. Evaluasi Nilai Gizi Pangan. Depdikbud, Ditjen Dikti-PAU IPB.

Rodriguez, L., Le Moullac G., 2000. State of the art immunological tools and health controlof penaeid shrimp. Aquaculture 191: 109-119

Sahoo, P.K., Das, A., Mohanty, S., Mohanty, B.K., Pilai, B.R., Mohanty, J., 2008. Dietary β-1,3 glucan improve the immunity and disease resistance of freshwater prawn Macrobrachium rosenbergii challenged with Aeromonas

hydrophyla. Aquaculture Research 39, 1574-1578

Schrezenmeir, J. & Vrese, M., 2001. Probiotics, Prebiotics and Synbiotic-Approaching a Definition. American Journal of Clinical Nutrition, 73: 2; 361-364.

Senapin, S., K. Phewsaiya, M. Briggs, T.W. Flegel. 2007. Outbreaks of infectious myonecrosis virus (IMNV) in Indonesia confirmed by genome sequencing

(36)

24 and use of an alternative RT-PCR detection method. Aquaculture 266, 32-38.

SNI [Standar Nasional Indonesia]. 2006. Produksi udang vaname L. vannamei di tambak dengan teknologi intensif. Badan Standardisasi Nasional.

Sritunyalucksana, K., Soderhall, 2000. The proPO and clotting system in crustaceans. Aquaculture 191, 53-69

Tang, K.F., Pantoja, C.R., Poulos, B.T., Redman, R.M., Lightner, D.V., 2005. In situ hybridization demonstrates that Litopenaeus vannamei, L. stylirostris and Penaeus monodon are susceptible to experimental infection with infectious myonecrosis virus (IMNV). Dis. Aquat. Org. 63, 261–265.

Verschuere, L., Rombaut, G., Sorgeloos, P., Verstraete, W., 2000. Probiotic bacteria as biological control agents in Aquaculture. Microbiolgical and Molecular Biology Review 64, 655-671.

Wang, B.Y., 2007. Effect of probiotics on growth performance and digestive enzyme activity of the shrimp penaeus vannamei. Aquaculture 269, 259-264.

Widagdo, P., 2011. Aplikasi probiotik, prebiotik, dan sinbiotik melalui pakan pada udang vaname Litopenaeus vannamei yang diinfeksi bakteri Vibrio

harveyi [Skripsi]. Departemen Budidaya Perairan, Fakultas perikanan dan

ilmu Kelautan, Institut Pertanian Bogor. Bogor.

Widanarni, Suwanto, A., Sukenda, Lay, B.W., 2003. Potency of Vibrio isolates for biocontrol of vibriosis in tiger shrimp (Penaeus monodon) larvae. Biotropia 20, 11-23.

Yandri, Suhartati, T., Herasari, D., Hadi S. 2008. The chemical modification of protease enzyme isolated from locale bacteria isolate, Bacillus subtilis itbccb148 with cyanuric chloride-polyethylenglycol. European Journal of Scientific Research 23, 177-186.

Zonneveld, N., Huisman, E.A., Boon, J.H., 1991. Prinsip-Prinsip Budidaya Ikan. Gramedia Pustaka Utama, Jakarta.

(37)

25

(38)

26 Lampiran 1. Analisis statistik terhadap sintasan udang vaname pada akhir

perlakuan sinbiotik

Perlakuan N Rata-rata Std. Deviasi Std. Eror

A 3 90,00 5.00000 2.88675 B 3 96,67 2.88675 1.66667 C 3 91,67 2.88675 1.66667 D 3 96,67 2.88675 1.66667 E 3 93,33 7.63763 4.40959 Anova

Sumber Keragaman Jumlah Kuadrat Derajat Bebas Kuadrat Tengah F Hitung Peluang

Perlakuan 106.667 4 26.667 1.231 0.358 Galat _216.667 ₁₀ _21.667 Total _323.333 ₁₄ Uji Duncana Perlakuan N α = 0.05 1 A 3 90,00 C 3 91,67 E 3 93,33 B 3 96,67 D 3 96,67 Sig. 0.563

Lampiran 2. Analisis statistik terhadap sintasan udang vaname pasca infeksi IMNV

A 3 53.3333 6.66500 3.84804 B 3 91.1100 3.84515 2.22000 C 3 80.0000 6.67000 3.85093 D 3 62.2233 3.85093 2.22333 E 3 64.4467 10.36737 5.75910 Anova SK JK DB KT F Hitung P Perlakuan 2743.434 4 685.859 6.430 0.008 Galat 1066.711 10 106.671 Total _3810.145 ₁₄

(39)

27 Uji Duncana Perlakuan N α = 0.05 1 2 3 A 3 53.3333 D 3 62.2233 62.2233 E 3 64.4467 64.4467 C 3 80.0000 80.0000 B 3 91.1100 Sig. 0.237 0.071 0.217

Lampiran 3. Analisis statistik terhadap laju pertumbuhan harian udang vaname pada akhir perlakuan sinbiotik

A 3 6.6470 0.15156 0.08750 B 3 6.6560 0.12400 0.07159 C 3 6.9650 0.01947 0.01124 D 3 6.9407 0.06553 0.03783 E 3 6.9313 0.02501 0.01444 Anova SK JK DB KT F Hitung P Perlakuan .313 4 0.078 8.978 0.002 Galat _.087 ₁₀ _0.009 Total .401 14 Uji Duncana Perlakuan N α = 0.05 1 2 A 3 6.6470 B 3 6.6560 E 3 6.9313 D 3 6.9407 C 3 6.9650 Sig. 0.908 0.683

Lampiran 4. Analisis statistik terhadap rasio konversi pakan udang vaname pada akhir perlakuan sinbiotik

A 3 1.85450 0.021920 0.015500

B 3 1.85850 0.044548 0.031500

C 3 1.54100 0.142836 0.101000

D 3 1.57750 0.116673 0.082500

(40)

28 Anova SK JK DB KT F Hitung P Perlakuan .183 4 0.046 5.859 0.040 Galat _.039 ₅ _0.008 Total _.222 ₉ Uji Duncana Perlakuan N α = 0.05 1 2 C 3 1.54100 D 3 1.57750 E 3 1.65350 1.65350 A 3 1.85450 B 3 1.85850 Sig. 0.270 0.074

Lampiran 5. Analisis statistik terhadap total haemocyte count udang vaname pada akhir perlakuan sinbiotik

A 3 1.41700 0.134350 0.095000 B 3 1.58000 0.223446 0.158000 C 3 3.03000 0.212132 0.150000 D 3 3.05250 0.432042 0.305500 E 3 2.34200 0.073539 0.052000 Anova SK JK DB KT F Hitung P Perlakuan 4.796 4 1.199 19.651 0.003 Galat .305 5 0.061 Total _5.101 ₉ Uji Duncana Perlakuan N α = 0.05 1 2 3 A 3 1.41700 B 3 1.58000 E 3 2.34200 C 3 3.03000 D 3 3.05250 Sig. 0.538 1.000 0.931

(41)

29 Lampiran 6. Analisis statistik terhadap total haemocyte count udang vaname pada

pasca infeksi IMNV

A 3 0.9450 0.13435 0.09500 B 3 1.5300 0.21213 0.15000 C 3 2.7600 0.31113 0.22000 D 3 1.4830 0.08061 0.05700 E 3 1.4800 0.11314 0.08000 Anova SK JK DB KT F Hitung P Perlakuan 3.600 4 0.900 25.116 0.002 Galat _.179 ₅ _0.036 Total _3.779 ₉ Uji Duncana Perlakuan N α = 0.05 1 2 3 A 3 0.9450 E 3 1.4800 D 3 1.4830 B 3 1.5300 C 3 2.7600 Sig. 1.000 0.806 1.000

Lampiran 7. Analisis statistik terhadap aktivitas phenoloxidase udang vaname pada akhir perlakuan sinbiotik

A 3 0.22250 0.010607 0.007500 B 3 0.21750 0.002121 0.001500 C 3 0.31650 0.031820 0.022500 D 3 0.33150 0.043134 0.030500 E 3 0.21800 0.046669 0.033000 Anova SK JK DB KT F Hitung P Perlakuan .027 4 0.007 6.421 0.033 Galat _.005 ₅ _0.001 Total .032 9

(42)

30 Uji Duncana Perlakuan N α = 0.05 1 2 B 3 0.21750 E 3 0.21800 A 3 0.22250 C 3 0.31650 D 3 0.33150 Sig. 0.885 0.660

Lampiran 8. Analisis statistik terhadap aktivitas phenoloxidase udang vaname pasca infeksi IMNV

A 3 0.05550 0.000707 0.000500 B 3 0.21250 0.038891 0.027500 C 3 0.18150 0.007778 0.005500 D 3 0.07650 0.010607 0.007500 E 3 0.07600 0.031113 0.022000 Anova SK JK DB KT F Hitung P Perlakuan .041 4 0.010 19.147 0.003 Galat .003 5 0.001 Total .043 9 Uji Duncana Perlakuan N α = 0.05 1 2 A 3 0.05550 E 3 0.07600 D 3 0.07650 C 3 0.18150 B 3 0.21250 Sig. 0.414 0.236

Lampiran 9. Analisis statistik terhadap jumlah sel hyaline udang vaname pada akhir perlakuan sinbiotik

A 3 33.3333 1.52753 0.88192

B 3 32.7800 1.50243 0.86743

C 3 39.7700 1.82321 1.05263

D 3 38.1033 1.74684 1.00854

(43)

31 Anova SK JK DB KT F Hitung P Perlakuan 110.455 4 27.614 10.198 0.001 Galat _27.077 ₁₀ _2.708 Total _137.532 ₁₄ Uji Duncana Perlakuan N α = 0.05 1 2 B 3 32.7800 A 3 33.3333 E 3 35.0600 D 3 38.1033 C 3 39.7700 Sig. 0.136 0.243

Lampiran 10. Analisis statistik terhadap jumlah sel hyaline udang vaname pasca infeksi IMNV

A 3 23.2900 1.06381 0.61419 B 3 30.7700 1.41078 0.81451 C 3 38.6100 1.76757 1.02051 D 3 37.8500 1.73156 0.99972 E 3 32.5033 1.49152 0.86113 Anova SK JK DB KT F Hitung P Perlakuan 461.151 4 115.288 50.260 0.000 Galat 22.938 10 2.294 Total _484.089 ₁₄ Uji Duncana Perlakuan N α = 0.05 1 2 3 C 3 23.2900 D 3 30.7700 E 3 32.5033 B 3 37.8500 A 3 38.6100 Sig. 1.000 0.191 0.553

(44)

32 Lampiran 11. Analisis statistik terhadap jumlah sel granular udang vaname pada

akhir perlakuan sinbiotik

A 3 66.6667 1.52753 0.88192 B 3 67.2200 1.50243 0.86743 C 3 60.2300 1.82321 1.05263 D 3 61.9000 1.74138 1.00539 E 3 64.9400 1.60390 0.92601 Anova SK JK DB KT F Hitung P Perlakuan 110.409 4 27.602 10.208 0.001 Galat _27.039 ₁₀ _2.704 Total _137.448 ₁₄ Uji Duncana Perlakuan N α = 0.05 1 2 C 3 60.2300 D 3 61.9000 E 3 64.9400 A 3 66.6667 B 3 67.2200 Sig. 0.242 0.136

Lampiran 12. Analisis statistik terhadap jumlah sel granular udang vaname pasca infeksi IMNV

A 3 76.7100 1.06381 0.61419 B 3 69.2300 1.41078 0.81451 C 3 61.3900 1.76757 1.02051 D 3 62.1500 1.73156 0.99972 E 3 67.5033 1.48716 0.85861 Anova SK JK DB KT F Hitung P Perlakuan 461.155 4 115.289 50.317 0.000 Galat _22.912 ₁₀ _2.291 Total _484.067 ₁₄

(45)

33 Uji Duncana Perlakuan N α = 0.05 1 2 3 C 3 61.3900 D 3 62.1500 E 3 67.5033 B 3 69.2300 A 3 76.7100 Sig. 0.552 0.193 1.000

Lampiran 13. Analisis statistik terhadap indeks fagositik udang vaname pada akhir perlakuan sinbiotik

A 3 28.5033 1.30822 0.75530 B 3 28.7400 1.31913 0.76160 C 3 64.7600 2.96885 1.71407 D 3 56.8200 2.60225 1.50241 E 3 52.9600 2.42877 1.40225 Anova SK JK DB KT F Hitung P Perlakuan 3362.569 4 840.642 168.558 0.000 Galat 49.872 10 4.987 Total 3412.442 14 Uji Duncana Perlakuan N α = 0.05 1 2 3 A 3 28.5033 B 3 28.7400 E 3 52.9600 D 3 56.8200 C 3 64.7600 Sig. 0.899 0.060 1.000

Lampiran 14. Analisis statistik terhadap indeks fagositik udang vaname pasca infeksi IMNV

A 3 22.3467 1.02890 0.59404

B 3 30.1400 1.38459 0.79940

C 3 56.1233 2.57170 1.48477

D 3 42.5400 1.95087 1.12634

(46)

34 Anova SK JK DB KT F Hitung P Perlakuan 1987.111 4 496.778 147.253 0.000 Galat _33.736 ₁₀ _3.374 Total _2020.848 ₁₄ Uji Duncana Perlakuan N α = 0.05 1 2 3 4 A 3 22.3467 B 3 30.1400 E 3 40.6767 D 3 42.5400 C 3 56.1233 Sig. 1.000 1.000 .242 1.000