ii
ABSTRAK
DIAN UTAMI PUTRI. Kinerja Reproduksi Ikan Nila Oreochromis niloticus
pada Media Bioflok. Dibimbing oleh MUHAMMAD ZAIRIN JUNIOR dan
JULIE EKASARI.
Teknologi bioflok telah berhasil diterapkan untuk meningkatkan pertumbuhan ikan nila, tetapi sedikit yang diketahui tentang kontribusi bioflok pada kinerja reproduksi. Penelitian ini bertujuan untuk mengevaluasi pengaruh penerapan teknologi bioflok terhadap kinerja reproduksi ikan nila Oreochromis niloticus. Pada penelitian ini digunakan ikan nila dengan ukuran panjang dan bobot awal rata-rata masing-masing 16,59 + 0,48 cm dan 84,56 + 4,81 g. Penelitian ini terdiri dari dua perlakuan yaitu kontrol dan BFT (Biofloc Technology) dengan empat kali ulangan. Hasil analisis sidik ragam menunjukkan bahwa bioflok mempengaruhi nilai indeks gonad somatik (P<0,05) pada hari ke-84, indeks hepar somatik pada hari ke-56 (P<0,05). Perlakuan bioflok juga menghasilkan fekunditas ikan dan jumlah larva lebih tinggi daripada kontrol (P<0,05). Berdasarkan hasil yang diperoleh, maka dapat disimpulkan bahwa bioflok mampu meningkatkan kinerja reproduksi ikan nila Oreochromis niloticus.
Kata kunci: bioflok, reproduksi, ikan nila.
---
ABSTRACT
DIAN UTAMI PUTRI. Reproductive Performance of Oreochromis niloticus on Biofloc System. Supervised by MUHAMMAD ZAIRIN JUNIOR and JULIE EKASARI.
Biofloc technology system (BFT) has been successfully applied for nile tilapia growth, but yet for contribution on reproductive performance. This study aimed to evaluate the effect of the application of BFT on reproductive performance of Oreochromis niloticus. This study used tilapia with an average body weight of 84.56 + 4.81 g. Analysis of variance showed that gonadal somatic index (P <0.05) on day 84, liver somatic index at day 56 (P <0.05), fecundity and larvae production from biofloc treatment is higher than controls. But in egg diameter and survival rate have no effect significantly from BFT application (P<0,05).
1
I.
PENDAHULUAN
Teknologi bioflok merupakan teknologi budidaya yang didasarkan kepada prinsip asimilasi nitrogen anorganik (amonia, nitrit, dan nitrat) oleh komunitas mikroba (bakteri heterotrof) dalam media budidaya sebagai sumber makanan (De Schryver et al. 2008). Avnimelech (2012) mengemukakan bahwa tujuan dikembangkannya teknologi bioflok ini adalah untuk memperbaiki dan mengontrol kualitas air budidaya, biosekuriti, membatasi penggunaan air, serta efisiensi penggunaan pakan. Bioflok merupakan suspensi yang terdapat di dalam air yang berupa fitoplankton, bakteri, agregat hidup, bahan organik dan pemakan bakteri (Avnimelech 2007).
Penelitian mengenai penerapan teknologi bioflok terhadap kualitas air, telah dilakukan Avnimelech (1999) yaitu dengan pemberian karbohidrat berupa glukosa dan tepung tapioka dalam bak pemeliharaan ikan nila dengan kepadatan 80ekor/m3 dapat menurunkan konsentrasi TAN secara nyata. Selain dapat memperbaiki kualitas air, penerapan teknologi bioflok juga dapat meningkatkan pertumbuhan ikan nila (Maryam 2010). Sementara penelitian mengenai kontribusi bioflok pada kinerja reproduksi telah dilakukan pada udang Litopenaeus stylirostris (Emerenciano et al. 2011). Pada penelitian tersebut dilaporkan bahwa kinerja pemijahan L. stylirostris pada kondisi flok lebih baik daripada dalam kontrol (Emerenciano et al. 2011).
Ikan nila merupakan jenis ikan air tawar yang sangat potensial dikembangkan di Indonesia. Ikan ini memiliki laju pertumbuhan yang cepat, mudah bereproduksi, berdaging tebal, dan mudah dibudidayakan (Molina et al.
2
protein mikroba yang dapat dimanfaatkan oleh ikan sehingga terbukti mampu mengurang nitrogen anorganik dan menggantikan protein pakan. Sementara penelitian Emerenciano et al. (2011) melaporkan bahwa kinerja reproduksi udang
3
II.
BAHAN DAN METODE
2.1 Rancangan Penelitian
Rancangan penelitian yang digunakan adalah rancangan acak lengkap (RAL) yang terdiri dari dua perlakuan yaitu perlakuan kontrol dan perlakuan BFT (Bioflocs Technology) dengan empat kali ulangan.
2.2 Metode Pemeliharaan
Ikan nila yang digunakan berasal dari Balai Pengembangan Benih Ikan Air Tawar (BPBIAT) Wanayasa, berumur 125 hari dengan ukuran panjang 16,59 + 0,48 cm dan bobot 84,56 + 4,81 g. Ikan uji ditebar pada masing-masing bak pemeliharaan dengan kepadatan 60 ekor/bak dengan rasio jantan dan betina 1:4. Wadah pemeliharaan ikan yang digunakan berupa kolam beton berukuran 3m x 2m x 0,7m sebanyak 8 unit. Pakan yang diberikan berupa pelet tenggelam komersial dengan kandungan protein 30% (Tabel 1).
Tabel 1. Kandungan nutrisi pelet komersial nila Oreochromis niloticus dalam bobot kering
No. Komposisi proksimat Kandungan (%)
1. Kadar abu 16,04
2. Protein 33,00
3. Lemak 7,04
4. Serat kasar 7,13
5. BETN 36,79
*) Sesuai dengan analisis proksimat pakan
Prosedur penelitian meliputi masa persiapan dan masa pemeliharaan. Pada masa persiapan, semua bak disikat dan dibersihkan dari lumut dan kotoran lain yang menempel, diikuti dengan pengeringan selama 1 hari. Selanjutnya dilakukan pemasangan instalasi aerasi dengan 12 titik aerasi per bak. Pada hari berikutnya air ditambahkan sebanyak 3 m3 dan dibiarkan tergenang selama 3 hari sebelum ikan ditebar. Sebelum diberi perlakuan, ikan diadaptasikan terlebih dahulu dalam bak pemeliharaan selama 3 hari.
4
disesuaikan dengan respon makan ikan secara visual. Penambahan molase dilakukan setiap 2 kali sehari setengah jam setelah pemberian pakan. Sampling dilakukan setiap 14 hari sekali dengan mengambil contoh 5 ekor induk betina per bak (20 ekor per perlakuan). Pengukuran kualitas air berupa suhu dilakukan setiap hari, sedangkan pengukuran DO, pH, dan TAN dilakukan setiap seminggu sekali. Larva dan benih ikan yang dihasilkan pada masing-masing bak pemeliharaan dikumpulkan dan dihitung setiap hari.
2.3 Prosedur Penambahan Karbon
Sumber karbon organik yang digunakan dalam penelitian ini adalah molase dengan konsentrasi C sebesar 40%. Penambahan molase pada media budidaya dilakukan dengan mengadaptasi perhitungan yang dilakukan oleh Avnimelech (1999). Berdasarkan perhitungan tersebut (Lampiran 1) maka didapatkan jumlah molase yang ditambahkan ke dalam media budidaya adalah sebanyak 1,11 kali jumlah pakan yang diberikan. Penambahan molase dilakukan setiap 2 kali sehari setengah jam setelah pemberian pakan.
2.4 Parameter Penelitian
Data yang dikumpulkan selama penelitian meliputi bobot tubuh, indeks gonad somatik (IGS), indeks hepar somatik (IHS), jumlah telur, diameter telur, jumlah anakan, dan tingkat kelangsungan hidup.
Untuk mengetahui perubahan yang terjadi di gonad secara kuantitatif dilakukan pengukuran indeks gonad somatik (IGS). IGS ditentukan dengan rumus yang dikemukakan oleh Effendie (2002), yaitu:
Keterangan:
IGS = indeks gonad somatik (%) Wg = bobot gonad (g)
W = bobot tubuh ikan (g)
Indeks hepar somatik (IHS) adalah rasio bobot hati terhadap bobot tubuh (Ishibashi et al. 1994). IHS dapat diketahui dengan menggunakan rumus (Sulistyo
et al. 2000):
G Wg
5
Fekunditas menurut Bagenal (1978) adalah jumlah telur matang yang ada dalam ovarium sebelum dikeluarkan dalam pemijahan. Perhitungan fekunditas dilakukan berdasarkan rumus Bagenal (1978):
WgW
Keterangan:
Wg = bobot gonad (g) Ws = bobot sub sampel (g)
N = Jumlah telur dalam sub sampel
Telur ikan yang digunakan untuk pengukuran parameter ini berasal dari induk betina yang disampling. Dari masing-masing induk tersebut, 100 butir telur per gonad diukur diameternya dengan mengukur jarak panjang (a) dan lebar (b) telur yang kemudian dirata-ratakan, selanjutnya diukur menggunakan mikroskop dengan perbesaran 40 yang dilengkapi dengan micrometer yang kemudian dikonversi menjadi mm.
( )
Jumlah larva dihitung secara manual satu per satu kemudian diletakkan di hapa pemeliharaan larva. Sintasan atau tingkat kelangsungan hidup adalah persentase ikan yang hidup dari jumlah seluruh ikan yang dipelihara dalam suatu wadah setelah masa pemeliharaan. Ikan yang diambil sebagai sampel setiap dua minggu dihitung ikan hidup. Tingkat kelangsungan hidup ikan dapat dihitung dengan menggunakan rumus (Effendie, 2002):
Keterangan:
No = Jumlah ikan awal Nt = Jumlah ikan akhir
6
Tabel 2. Kisaran parameter kualitas air pada media pemeliharaan
Perlakuan
Parameter Kualitas Air
Suhu (oC)
DO
(mg/l) pH
TAN (mg/l)
Kontrol 27,8-32,0 4,7-6,6 7,28-8,29 0,166-1
Bioflok 27,8-32,2 3,6-6,5 7,39-8,13 0,146-0,847
Optimal
25,0-32,0 Hepher dan Pruginin (1981)
>3,0 Henley
(2005)
6,0-9,0 Popma dan Masser (1999)
0,5-1,0 Boyd (1990)
2.5 Analisis Data
7
III.
HASIL DAN PEMBAHASAN
3.1 Hasil
3.1.1 Indeks Gonad Somatik (IGS)
Hasil pengamatan nilai IGS secara keseluruhan berkisar antara 0,89-3,50% (Gambar 1). Hasil analisis sidik ragam menunjukkan bahwa bioflok mempengaruhi nilai IGS secara signifikan (P<0,05) (Lampiran 2) terutama pada hari ke-84. Nilai IGS tertinggi diperoleh ikan yang diberi bioflok sebesar 3,50% pada hari ke-56 sedangkan nilai indeks gonad somatik tertinggi pada ikan yang tanpa diberi bioflok sebesar 2,94% (Gambar 1).
Gambar 1. Indeks gonad somatik (IGS) induk ikan nila Oreochromis sp. betina yang dipelihara pada sistem BFT dan kontrol selama 84 hari masa pemeliharaan
3.1.2 Indeks Hepar Somatik (IHS)
Nilai IHS pada perlakuan kontrol berkisar antara 1,03-2,46%, sedangkan nilai IHS pada perlakuan bioflok berkisar antara 1,03-2,28%. Hasil analisis sidik ragam menunjukkan bahwa pada perlakuan bioflok dapat mempengaruhi indeks hepar somatik pada hari ke-56 (P<0,05). (Lampiran 3). Pada hari ke-56, nilai IHS pada perlakuan kontrol sebesar 1,71% dan pada perlakuan bioflok sebesar 2,08%.
0 0,5 1 1,5 2 2,5 3 3,5 4 4,5
0 14 28 42 56 70 84
IG
S
(%)
Hari ke-
kontrol
8
Gambar 2. Indeks hepar somatik (IHS) induk ikan nila Oreochromis sp. betina yang dipelihara pada sistem BFT dan kontrol selama 84 hari masa pemeliharaan
3.1.3 Fekunditas
Fekunditas tertinggi ditemukan pada ikan dengan perlakuan bioflok yaitu sebesar 1.317 butir telur sedangkan fekunditas ikan pada perlakuan tanpa bioflok yang tertinggi yaitu sebesar 1.067 butir telur (Gambar 3). Hasil analisis sidik ragam menunjukkan bahwa pada perlakuan bioflok dapat mempengaruhi fekunditas (P<0,05) (Lampiran 4).
Gambar 3. Fekunditas induk ikan nila Oreochromis sp. yang dipelihara pada sistem BFT dan kontrol selama 84 hari masa pemeliharaan
0 0,5 1 1,5 2 2,5 3
0 14 28 42 56 70 84
IH
S (
%)
Hari ke-
kontrol
BFT
0 200 400 600 800 1000 1200 1400 1600
0 14 28 42 56 70 84
F
ek
un
dita
s
(bu
tir
telur)
Hari ke-
kontrol
9 3.1.4 Diameter Telur
Hasil pengamatan ukuran diameter telur menunjukkan bahwa ikan nila memiliki pola reproduksi tipe asinkronis. Analisis statistik menunjukkan bahwa perlakuan bioflok tidak mempengaruhi diameter telur (P>0,05) (Lampiran 5). Diameter telur tertinggi pada perlakuan bioflok sebesar 1,66 mm sedangkan pada perlakuan tanpa bioflok, diameter telur tertinggi sebesar 1,55 mm (Gambar 4).
Gambar 4. Diameter telur pada induk ikan nila Oreochromis sp. yang dipelihara pada sistem BFT dan kontrol selama 84 hari masa pemeliharaan
3.1.5 Jumlah Larva
Jumlah kumulatif larva selama 84 hari masa pemeliharaan menunjukkan bahwa perlakuan bioflok menghasilkan anakan yang lebih tinggi secara signifikan (P<0,05) (Lampiran 6) yaitu sebanyak 8.491 ekor, sedangkan pada kontrol sebanyak 5.154 ekor (Gambar 5).
Gambar 5. Jumlah total larva yang dihasilkan oleh induk ikan nila Oreochromis
sp. yang dipelihara pada sistem BFT dan kontrol selama 84 hari masa pemeliharaan 0 0,2 0,4 0,6 0,8 1 1,2 1,4 1,6 1,8
0 14 28 42 56 70 84
10 3.1.6 Sintasan
Hasil analisis sidik ragam menunjukkan bahwa pada perlakuan bioflok tidak memberikan pengaruh terhadap sintasan atau tingkat kelangsungan hidup ikan nila (P>0,05) (Lampiran 7) dengan rata-rata untuk masing-masing perlakuan adalah 99,17% untuk kontrol dan 97,50% untuk BFT.
Gambar 6. Tingkat kelangsungan hidup induk ikan nila ikan nila Oreochromis sp. yang dipelihara pada sistem BFT dan kontrol selama 84 hari masa pemeliharaan
3.2 Pembahasan
Reproduksi merupakan suatu proses biologi mulai dari diferensiasi seksual hingga dihasilkannya individu baru (larva) yang melibatkan kinerja dari beberapa jenis hormon (Bernier et al. 2009). Kegiatan reproduksi terjadi sesudah ikan mencapai masa dewasa, dan diatur oleh kelenjar-kelenjar endokrin serta hormon-hormon yang dihasilkannya. Perkembangan gonad ikan nila dipengaruhi oleh beberapa faktor seperti hormon, makanan, dan faktor lingkungan. Stickney (1979) mengemukakan bahwa ikan nila pada kondisi budidaya lebih cepat matang gonad dibandingkan dengan ikan nila yang hidup di perairan alami. Karena pada kondisi budidaya, pakan yang diberikan berdasarkan kebutuhan ikan tersebut.
Menurut Lagler et al. (1977) ada dua faktor yang memengaruhi kematangan gonad yaitu faktor dalam dan luar. Faktor dalam meliputi perbedaan spesies, umur, ukuran, serta sifat fisiologi ikan itu sedangkan faktor luar adalah makanan, suhu, dan arus. Selama perkembangan gonad, sebagian besar hasil metabolisme ditujukan untuk perkembangan gonad. Hal ini menyebabkan terjadi perubahan-perubahan dalam gonad. Pengetahuan tentang tahap kematangan gonad diperlukan untuk mengetahui waktu pemijahan, ukuran pertama kali matang
99,17 97,50
0,0 20,0 40,0 60,0 80,0 100,0 120,0
kontrol BFT
SR (
%)
Perlakuan
11
gonad, hubungannya dengan pertumbuhan ikan dan faktor lingkungan yang memengaruhinya (Effendie 2002).
Pengamatan kematangan gonad dapat dilakukan dengan dua cara, yang pertama cara histologi dilakukan di laboratorium, yang kedua cara pengamatan morfologi yang dapat dilakukan di laboratorium dan dapat pula dilakukan di lapangan. Pada penelitian ini, pengamatan kematangan gonad dilakukan melalui pengamatan morfologi. Dasar yang dipakai untuk menentukan tingkat kematangan gonad dengan cara morfologi ialah bentuk, ukuran panjang dan berat, warna dan perkembangan isi gonad yang dapat dilihat seperti diameter telur (Effendie 2002).
Ukuran tingkat perkembangan ovarium dapat dinyatakan dalam satuan indeks dari persentase bobot gonad per bobot tubuh dan dinyatakan sebagai satuan IGS. Nilai IGS untuk masing-masing TKG menurut Azwar (1997) disajikan pada Tabel 3.
Nilai IGS untuk masing-masing TKG menurut Azwar (1997) sebagai berikut:
Tabel 3.Nilai IGS untuk masing-masing TKG (Azwar 1997)
TKG Nilai IGS (%)
Ciri-ciri
I <0,20 ovarium berwarna putih, transparan, oosit dan oogonia hanya dapat terlihat dengan menggunakan mikroskop. Sel telur terdiri dari oosit stadum 1 (oosit awal) dengan inti besar di tengah.
II 0,21-0,80
terbanyak pada kisaran
0,21-0,60
ovarium berwarna kuning terang, butiran oosit mulai terlihat dengan mata, secara mikroskopis terlihat adanya oosit stadium 2, namun oosit belum terisi kuning telur (previtelogenesis), ovarium terdiri dari oosit stadium 1 dan 2, sebagian besar oosit masih stadium 1.
III 0,61-2,20
Terbanyak pada kisaran
0,61-1,80
ovarium berwarna kuning tua, terdiri dari oosit stadium 1, 2, dan 3 (oost vitelogenesis), oosit terbanyak masih pada fase previtelogenesis. Oosit mudah dipisahkan.
IV 2,21-4,20
terbanyak pada kisaran
2,41-4,20
ovarium berwarna coklat gelap, butiran terlihat jelas dan mudah dipisahkan. Sebagian besar oosit pada stadium 3 dan 4 dapat mencapai 64,92%.
12
Pada Gambar 1, nilai IGS menunjukkan pola yang meningkat terutama untuk perlakuan bioflok. Pada hari ke-14, ke-28, dan ke-42 induk ikan mencapai fase persiapan dari tahap siklus reproduksi. Selanjutnya pada hari ke-56 sebagian besar induk ikan mencapai tingkat kematangan gonad (TKG IV). Kemudian pada hari ke-70 dan hari ke-84 mulai terlihat penurunan pada semua perlakuan. Hasil ini menunjukkan bahwa induk ikan nila telah selesai melakukan ovulasi atau pelepasan telur pada tahap pertama proses reproduksinya (Darwisito 2006). Pada perlakuan bioflok hari ke-84, nilai IGS terlihat masih stabil sedangkan pada perlakuan kontrol nilai IGS terlihat terus menurun (Gambar 1). Hal ini diduga karena performa ikan nila pada perlakuan bioflok, masih baik untuk melakukan ovulasi lagi.
Hati mempunyai peranan dalam sintesis material yang akan diakumulasikan pada ovarium saat siklus reproduksi, oleh karena itu pada masa reproduksi terjadi peningkatan aktivitas hati yang dicirikan dengan meningkatnya bobot hati. Rasio bobot hati terhadap tubuh (IHS) pada induk ikan akan meningkat menjelang vitelogenesis, dan rasio akan menurun menjelang ovulasi (Ishibashi et al. 1994). Pola perubahan IHS berlawanan dengan pola perubahan IGS, pada saat IHS menurun terjadi peningkatan IGS yang menunjukkan adanya mobilisasi material dari hati ke ovarium.
Menurut Jensen (1979) peningkatan bobot hati menjelang perkembangan ovarium disebabkan oleh peningkatan fraksi lipid. Selama proses perkembangan ovarium, fraksi lipid akan ditransfer dari cadangan lipid tubuh dan lipid hati ke ovarium. Terjadinya mobilisasi lipid ke ovarium dapat diperlihatkan dari fluktuasi kandungan lipid plasma selama siklus reproduksi. Gambar 2 menunjukkan bahwa nilai IHS pada semua perlakuan meningkat pada hari ke-14, hal ini diduga bahwa pada hari ke-14 merupakan waktu dimana terjadi proses sintesis vitelogenesis tertinggi.
13
berpengaruh terhadap rekrutmennya. Sedangkan induk ikan yang telah berkali-kali memijah fekunditasnya cenderung meningkat dengan ukuran telur dan larva yang lebih besar. Kondisi ini akan menurun sejalan dengan mulai menurunnya kondisi ikan yang memengaruhi kualitas dan kuantitas telur yang dihasilkan (Bagenal 1957).
Secara alami ikan nila dapat memijah sepanjang tahun di daerah tropis. Pada umumnya pemijahan ikan nila terjadi 6-7 kali/tahun dengan kisaran fekunditas antara 300-3.000 butir telur per pemijahan (Kordi 2000; Stickney 1979). Gambar 3 menunjukkan bahwa induk ikan nila pada perlakuan bioflok secara signifikan memiliki fekunditas yang lebih tinggi (P<0.05) (Lampiran 4) yaitu sebesar 1.317 butir telur daripada fekunditas ikan pada perlakuan kontrol yaitu sebesar 1.067 butir telur. Jumlah larva ikan yang dihasilkan juga lebih tinggi (P<0,05) pada ikan nila dengan perlakuan bioflok yaitu sebanyak 8.491 ekor, sedangkan pada kontrol sebanyak 5.154 ekor. Perkembangan gonad dan fekunditas dipengaruhi oleh nutrien pakan penting tertentu (Izquierdo et al. 2001). Bioflok termasuk komunitas mikroba heterotrof dalam media budidaya yang dapat digunakan sebagai sumber makanan (De Schryver dan Verstraete 2009). De Schryver et al.
(2008) menyatakan bahwa bioflok mengandung protein, asam lemak tak jenuh, dan lipid yang tinggi sehingga cocok digunakan sebagai pakan untuk ikan. Dengan demikian, nutrien yang terkandung dalam bioflok tersebut diduga mampu meningkatkan fekunditas ikan nila.
14
Tingkat kelangsungan hidup merupakan peluang hidup suatu individu dalam waktu tertentu (Effendie 2002). Tingkat kelangsungan hidup ikan nila antar perlakuan tidak berbeda nyata (Lampiran 7). Namun pada perlakuan bioflok, tingkat kelangsungan hidup ikan nila lebih rendah dibandingkan pada perlakuan kontrol. Hal ini diduga disebabkan karena pada masa pemeliharaan, pernah terjadi penurunan DO atau oksigen terlarut dalam air yang menyebabkan kematian pada ikan pada media perlakuan bioflok yang padat oleh bakteri pembentuk flok yang juga membutuhkan oksigen terlarut yang cukup tinggi.
Berbagai parameter yang diamati pada penelitian menunjukkan bahwa perlakuan BFT berpengaruh pada kinerja reproduksi ikan nila. Emerenciano et al.
(2011) menyatakan bahwa pada media bioflok, respon udang lebih cepat untuk ablasi dengan tingkat pemijahan lebih tinggi yang diduga akibat konsumsi biomassa bakteri yang dapat menyebabkan kinerja reproduksi yang lebih baik pada kondisi flok. Pakan merupakan komponen penting dalam proses pematangan gonad khususnya ovarium, karena proses vitelogenesis pada dasarnya merupakan proses akumulasi nutrien dalam kuning telur. Pada dasarnya kualitas telur sangat ditentukan oleh kualitas pakan yang diberikan. Defisiensi nutrien terutama asam amino, vitamin, dan mineral dapat menyebabkan perkembangan telur terhambat dan akhirnya terjadi kegagalan ovulasi dan pemijahan (Ediwarman 2006). Perkembangan gonad terjadi apabila terdapat kelebihan energi untuk pemeliharaan tubuh, sedangkan kekurangan gizi dapat menyebabkan telur mengalami atresia (Mayunar 2000). Dari beberapa faktor yang dapat mempengaruhi pematangan gonad, kualitas pakan mempunyai kaitan yang sangat erat dengan kualitas telur yang dihasilkan (Watanabe et al. 1984; Mokoginta 1992). Pengaruh pakan terhadap perkembangan gonad dilaporkan oleh Lovell (1988) bahwa kematangan gonad ikan channel catfish sangat berhubungan dengan keseimbangan komposisi nutrisi pakan terutama komposisi protein yang sangat dibutuhkan untuk perkembangan gonad.
15
Besarnya energi yang dikonsumsi oleh ikan dipengaruhi oleh ketersediaan energi di dalam pakan, kondisi fisik ikan, dan kondisi perairan (suhu dan oksigen terlarut). Disamping itu, keseimbangan energi protein dan asam lemak sangat berpengaruh terhadap tingkat perkembangan gonad dan kualitas telur yang dihasilkan. Hasil pengamatan yang telah dilakukan oleh Sari (2012) terhadap kandungan nutrisi bioflok yang tumbuh pada air media pemeliharaan ikan pada perlakuan bioflok yaitu protein sebesar 37,37% dan lemak sebesar 11,88%, sedangkan pada perlakuan kontrol yaitu protein sebesar 34,31% dan lemak sebesar 11,02%.
Protein merupakan komponen esensial yang dibutuhkan untuk reproduksi. Protein merupakan komponen dominan kuning telur, sedangkan jumlah dan komposisi kuning telur menentukan besar kecilnya ukuran telur, dan ukuran telur merupakan indikator kualitas telur (Kamler 1992). Lipid adalah komponen kedua setelah protein. Lipid sangat penting sebagai sumber energi dan asam lemak esensial untuk pertumbuhan dan perkembangan normal, serta memegang peranan penting dalam proses reproduktif terutama fase awal perkembangan larva ikan (Wilson 1995).
Menurut Watanabe et al. (1984), pakan induk yang kekurangan asam lemak esensial menghasilkan laju pematangan gonad yang rendah, sedangkan proporsi lipid yang lebih rendah dengan omega-3 HUFA tinggi dapat meningkatkan kematangan gonad. Selain itu, flok adalah sumber asam amino bebas (Ju et al.
16
IV.
KESIMPULAN
i
KINERJA REPRODUKSI IKAN NILA
Oreochromis niloticus
PADA MEDIA BIOFLOK
DIAN UTAMI PUTRI
DEPARTEMEN BUDIDAYA PERAIRAN
FAKULTAS PERIKANAN DAN ILMU KELAUTAN
INSTITUT PERTANIAN BOGOR
ii
ABSTRAK
DIAN UTAMI PUTRI. Kinerja Reproduksi Ikan Nila Oreochromis niloticus
pada Media Bioflok. Dibimbing oleh MUHAMMAD ZAIRIN JUNIOR dan
JULIE EKASARI.
Teknologi bioflok telah berhasil diterapkan untuk meningkatkan pertumbuhan ikan nila, tetapi sedikit yang diketahui tentang kontribusi bioflok pada kinerja reproduksi. Penelitian ini bertujuan untuk mengevaluasi pengaruh penerapan teknologi bioflok terhadap kinerja reproduksi ikan nila Oreochromis niloticus. Pada penelitian ini digunakan ikan nila dengan ukuran panjang dan bobot awal rata-rata masing-masing 16,59 + 0,48 cm dan 84,56 + 4,81 g. Penelitian ini terdiri dari dua perlakuan yaitu kontrol dan BFT (Biofloc Technology) dengan empat kali ulangan. Hasil analisis sidik ragam menunjukkan bahwa bioflok mempengaruhi nilai indeks gonad somatik (P<0,05) pada hari ke-84, indeks hepar somatik pada hari ke-56 (P<0,05). Perlakuan bioflok juga menghasilkan fekunditas ikan dan jumlah larva lebih tinggi daripada kontrol (P<0,05). Berdasarkan hasil yang diperoleh, maka dapat disimpulkan bahwa bioflok mampu meningkatkan kinerja reproduksi ikan nila Oreochromis niloticus.
Kata kunci: bioflok, reproduksi, ikan nila.
---
ABSTRACT
DIAN UTAMI PUTRI. Reproductive Performance of Oreochromis niloticus on Biofloc System. Supervised by MUHAMMAD ZAIRIN JUNIOR and JULIE EKASARI.
Biofloc technology system (BFT) has been successfully applied for nile tilapia growth, but yet for contribution on reproductive performance. This study aimed to evaluate the effect of the application of BFT on reproductive performance of Oreochromis niloticus. This study used tilapia with an average body weight of 84.56 + 4.81 g. Analysis of variance showed that gonadal somatic index (P <0.05) on day 84, liver somatic index at day 56 (P <0.05), fecundity and larvae production from biofloc treatment is higher than controls. But in egg diameter and survival rate have no effect significantly from BFT application (P<0,05).
iii
KINERJA REPRODUKSI IKAN NILA
Oreochromis niloticus
PADA MEDIA BIOFLOK
DIAN UTAMI PUTRI
SKRIPSI
Sebagai salah satu syarat untuk memperoleh gelar Sarjana Perikanan pada Program Studi Teknologi & Manajemen Perikanan Budidaya
Departemen Budidaya Perairan, Fakultas Perikanan dan Ilmu Kelautan,
Institut Pertanian Bogor
DEPARTEMEN BUDIDAYA PERAIRAN
FAKULTAS PERIKANAN DAN ILMU KELAUTAN
INSTITUT PERTANIAN BOGOR
iv
PERNYATAAN MENGENAI SKRIPSI
DAN SUMBER INFORMASI
Dengan ini saya menyatakan bahwa skripsi yang berjudul:
KINERJA REPRODUKSI IKAN NILA
Oreochromis niloticus
PADA MEDIA BIOFLOK
Adalah benar merupakan hasil karya yang belum diajukan dalam bentuk apa pun pada perguruan tinggi mana pun. Semua sumber data dan informasi yang berasal atau dikutip dari karya yang diterbitkan maupun tidak diterbitkan dari penulis lain telah disebutkan dalam teks dan dicantumkan dalam Daftar Pustaka di bagian akhir Skripsi ini.
Bogor, September 2012
v
Judul : Kinerja Reproduksi Ikan Nila Oreochromis niloticus pada Media Bioflok
Nama : Dian Utami Putri NIM : C14080077 Departemen : Budidaya Perairan
Disetujui,
Pembimbing I Pembimbing II
Prof. Dr. Muhammad Zairin Junior Julie Ekasari, M.Sc. NIP. 19590218 198601 1 001 NIP. 19770725 200501 2 002
Diketahui,
Ketua Departemen Budidaya Perairan
Dr. Sukenda
NIP. 19671013 199302 1 001
Tanggal Lulus :
vi
KATA PENGANTAR
Puji syukur dipanjatkan kehadirat Allah SWT, yang telah melimpahkan rahmat dan karunia-Nya kepada penulis sehingga dapat menyelesaikan skripsi ini. Tema yang dipilih dalam penelitian yang dilaksanakan sejak Januari 2012 sampai dengan Agustus 2012 adalah reproduksi ikan, dengan judul “Kinerja Reproduksi Ikan Nila Oreochromis niloticus pada Media Bioflok”.
Penulis mengucapkan terima kasih kepada :
1. Prof. Dr. M. Zairin Junior dan Julie Ekasari, M.Sc. selaku dosen pembimbing atas semua arahan dan pengetahuan yang diberikan dalam penelitian serta penulisan skripsi ini. Dr. Dedi Jusadi selaku Pembimbing Akademik, Dr. Widanarni dan Dadang Shafruddin, M.S selaku dosen penguji tamu.
2. Ayahanda Belly Phan al Koko Wardana, Ibunda Cicih Susiati serta adik Novita, Kurniawan, dan Angga yang selalu memberikan doa, dukungan moral maupun material.
3. Bapak Ranta, Bapak Wasjan, Bapak Henda, Bapak Aam, Ibu Retno dan Ibu Ida yang telah membantu dalam penelitian ini serta Bapak Agus yang telah mengizinkan menggunakan bak penelitian dan Ibu Lina yang telah mengizinkan menggunakan peralatan laboratorium.
4. Nora Putri Sari atas kerjasamanya dalam penelitian ini. Teman-teman lingkungan: Ulfa, Diska, Rosita, Kak Yayan yang selalu ada saat senang maupun duka, serta Desil, Ai, Titi, Nurlita, Jeanni, Dendi, Wahyu, Eko, Asep, Abror, Eriza, Widi, Putri, Aqil, Taqin, Burhan, Brilian, Bayu, Kurnia, Arin, dan teman-teman PATMO lainnya atas bantuan dan dukungannya dalam penelitian ini.
Semoga skripsi ini dapat bermanfaat bagi semua pihak yang berkepentingan.
vii
DAFTAR RIWAYAT HIDUP
Penulis dilahirkan pada tanggal 9 Juli 1990 di kota Jambi. Penulis merupakan anak pertama dari pasangan Belly Phan alias Koko Wardana dan Cicih Susiati.
Pendidikan formal yang dilalui penulis adalah TK Nasional Sariputra, SD Nasional Sariputra, SMP Al Chasanah Tanjung Duren, serta SMA Negeri 33 Cengkareng dan lulus pada tahun 2008. Pada tahun yang sama, penulis diterima sebagai mahasiswa Institut Pertanian Bogor melalui jalur Seleksi Nasional Masuk Perguruan Tinggi Negeri (SNMPTN) dan penulis memasuki Departemen Budidaya Perairan, Fakultas Perikanan dan Ilmu Kelautan, Institut Pertanian Bogor pada tahun 2009.
Selama masa perkuliahan, penulis aktif di organisasi kemahasiswaan Himpunan Mahasiswa Akuakultur periode 2009-2010. Penulis juga aktif menjadi Asisten Praktikum pada beberapa mata kuliah yaitu Fisiologi Reproduksi Ikan (2012), dan Industri Pembenihan Organisme Akuatik (2012). Selain itu, untuk meningkatkan pengetahuan di bidang perikanan budidaya, penulis pernah mengikuti magang liburan di Balai Besar Pengembangan Budidaya Air Tawar (BBPBAT) Sukabumi (2009), Stasiun Lapang Kegiatan Budidaya Ikan Gurame PT Semata Tasikmalaya (2010), dan Praktik Lapangan Akuakultur pembenihan patin siam di Balai Pengembangan Budidaya Air Tawar (BPBAT) Subang (2011).
viii
DAFTAR ISI
Halaman
ix
DAFTAR TABEL
Halaman
x
DAFTAR GAMBAR
Halaman
1. Indeks gonad somatik (IGS) induk ikan nila Oreochromis sp. betina yang dipelihara pada sistem BFT dan kontrol selama 84 hari masa pemeliharaan .... 7 2. Indeks hepar somatik (IHS) induk ikan nila Oreochromis sp. betina yang
dipelihara pada sistem BFT dan kontrol selama 84 hari masa pemeliharaan .... 8 3. Fekunditas induk ikan nila Oreochromis sp. betina yang dipelihara pada sistem
BFT dan kontrol selama 84 hari masa pemeliharaan ... 8 4. Diameter telur ikan nila Oreochromis sp. betina yang dipelihara pada sistem
BFT dan kontrol selama 84 hari masa pemeliharaan ... 9 5. Jumlah total larva ikan nila Oreochromis sp. betina yang dipelihara pada sistem
BFT dan kontrol selama masa pemeliharaan ... 9 6. Tingkat kelangsungan hidup induk ikan nila ikan nila Oreochromis sp. betina
xi
DAFTAR LAMPIRAN
Halaman
1. Perhitungan jumlah molase ... 21 2. Analisis ragam indeks gonad somatik (IGS) nila pada hari ke-14, 28, 42, 56,
70, 84 ... 22 3. Analisis ragam indeks hepar somatik (IHS) nila pada hari ke-14, 28, 42, 56, 70,
1
I.
PENDAHULUAN
Teknologi bioflok merupakan teknologi budidaya yang didasarkan kepada prinsip asimilasi nitrogen anorganik (amonia, nitrit, dan nitrat) oleh komunitas mikroba (bakteri heterotrof) dalam media budidaya sebagai sumber makanan (De Schryver et al. 2008). Avnimelech (2012) mengemukakan bahwa tujuan dikembangkannya teknologi bioflok ini adalah untuk memperbaiki dan mengontrol kualitas air budidaya, biosekuriti, membatasi penggunaan air, serta efisiensi penggunaan pakan. Bioflok merupakan suspensi yang terdapat di dalam air yang berupa fitoplankton, bakteri, agregat hidup, bahan organik dan pemakan bakteri (Avnimelech 2007).
Penelitian mengenai penerapan teknologi bioflok terhadap kualitas air, telah dilakukan Avnimelech (1999) yaitu dengan pemberian karbohidrat berupa glukosa dan tepung tapioka dalam bak pemeliharaan ikan nila dengan kepadatan 80ekor/m3 dapat menurunkan konsentrasi TAN secara nyata. Selain dapat memperbaiki kualitas air, penerapan teknologi bioflok juga dapat meningkatkan pertumbuhan ikan nila (Maryam 2010). Sementara penelitian mengenai kontribusi bioflok pada kinerja reproduksi telah dilakukan pada udang Litopenaeus stylirostris (Emerenciano et al. 2011). Pada penelitian tersebut dilaporkan bahwa kinerja pemijahan L. stylirostris pada kondisi flok lebih baik daripada dalam kontrol (Emerenciano et al. 2011).
Ikan nila merupakan jenis ikan air tawar yang sangat potensial dikembangkan di Indonesia. Ikan ini memiliki laju pertumbuhan yang cepat, mudah bereproduksi, berdaging tebal, dan mudah dibudidayakan (Molina et al.
2
protein mikroba yang dapat dimanfaatkan oleh ikan sehingga terbukti mampu mengurang nitrogen anorganik dan menggantikan protein pakan. Sementara penelitian Emerenciano et al. (2011) melaporkan bahwa kinerja reproduksi udang
3
II.
BAHAN DAN METODE
2.1 Rancangan Penelitian
Rancangan penelitian yang digunakan adalah rancangan acak lengkap (RAL) yang terdiri dari dua perlakuan yaitu perlakuan kontrol dan perlakuan BFT (Bioflocs Technology) dengan empat kali ulangan.
2.2 Metode Pemeliharaan
Ikan nila yang digunakan berasal dari Balai Pengembangan Benih Ikan Air Tawar (BPBIAT) Wanayasa, berumur 125 hari dengan ukuran panjang 16,59 + 0,48 cm dan bobot 84,56 + 4,81 g. Ikan uji ditebar pada masing-masing bak pemeliharaan dengan kepadatan 60 ekor/bak dengan rasio jantan dan betina 1:4. Wadah pemeliharaan ikan yang digunakan berupa kolam beton berukuran 3m x 2m x 0,7m sebanyak 8 unit. Pakan yang diberikan berupa pelet tenggelam komersial dengan kandungan protein 30% (Tabel 1).
Tabel 1. Kandungan nutrisi pelet komersial nila Oreochromis niloticus dalam bobot kering
No. Komposisi proksimat Kandungan (%)
1. Kadar abu 16,04
2. Protein 33,00
3. Lemak 7,04
4. Serat kasar 7,13
5. BETN 36,79
*) Sesuai dengan analisis proksimat pakan
Prosedur penelitian meliputi masa persiapan dan masa pemeliharaan. Pada masa persiapan, semua bak disikat dan dibersihkan dari lumut dan kotoran lain yang menempel, diikuti dengan pengeringan selama 1 hari. Selanjutnya dilakukan pemasangan instalasi aerasi dengan 12 titik aerasi per bak. Pada hari berikutnya air ditambahkan sebanyak 3 m3 dan dibiarkan tergenang selama 3 hari sebelum ikan ditebar. Sebelum diberi perlakuan, ikan diadaptasikan terlebih dahulu dalam bak pemeliharaan selama 3 hari.
4
disesuaikan dengan respon makan ikan secara visual. Penambahan molase dilakukan setiap 2 kali sehari setengah jam setelah pemberian pakan. Sampling dilakukan setiap 14 hari sekali dengan mengambil contoh 5 ekor induk betina per bak (20 ekor per perlakuan). Pengukuran kualitas air berupa suhu dilakukan setiap hari, sedangkan pengukuran DO, pH, dan TAN dilakukan setiap seminggu sekali. Larva dan benih ikan yang dihasilkan pada masing-masing bak pemeliharaan dikumpulkan dan dihitung setiap hari.
2.3 Prosedur Penambahan Karbon
Sumber karbon organik yang digunakan dalam penelitian ini adalah molase dengan konsentrasi C sebesar 40%. Penambahan molase pada media budidaya dilakukan dengan mengadaptasi perhitungan yang dilakukan oleh Avnimelech (1999). Berdasarkan perhitungan tersebut (Lampiran 1) maka didapatkan jumlah molase yang ditambahkan ke dalam media budidaya adalah sebanyak 1,11 kali jumlah pakan yang diberikan. Penambahan molase dilakukan setiap 2 kali sehari setengah jam setelah pemberian pakan.
2.4 Parameter Penelitian
Data yang dikumpulkan selama penelitian meliputi bobot tubuh, indeks gonad somatik (IGS), indeks hepar somatik (IHS), jumlah telur, diameter telur, jumlah anakan, dan tingkat kelangsungan hidup.
Untuk mengetahui perubahan yang terjadi di gonad secara kuantitatif dilakukan pengukuran indeks gonad somatik (IGS). IGS ditentukan dengan rumus yang dikemukakan oleh Effendie (2002), yaitu:
Keterangan:
IGS = indeks gonad somatik (%) Wg = bobot gonad (g)
W = bobot tubuh ikan (g)
Indeks hepar somatik (IHS) adalah rasio bobot hati terhadap bobot tubuh (Ishibashi et al. 1994). IHS dapat diketahui dengan menggunakan rumus (Sulistyo
et al. 2000):
G Wg
5
Fekunditas menurut Bagenal (1978) adalah jumlah telur matang yang ada dalam ovarium sebelum dikeluarkan dalam pemijahan. Perhitungan fekunditas dilakukan berdasarkan rumus Bagenal (1978):
WgW
Keterangan:
Wg = bobot gonad (g) Ws = bobot sub sampel (g)
N = Jumlah telur dalam sub sampel
Telur ikan yang digunakan untuk pengukuran parameter ini berasal dari induk betina yang disampling. Dari masing-masing induk tersebut, 100 butir telur per gonad diukur diameternya dengan mengukur jarak panjang (a) dan lebar (b) telur yang kemudian dirata-ratakan, selanjutnya diukur menggunakan mikroskop dengan perbesaran 40 yang dilengkapi dengan micrometer yang kemudian dikonversi menjadi mm.
( )
Jumlah larva dihitung secara manual satu per satu kemudian diletakkan di hapa pemeliharaan larva. Sintasan atau tingkat kelangsungan hidup adalah persentase ikan yang hidup dari jumlah seluruh ikan yang dipelihara dalam suatu wadah setelah masa pemeliharaan. Ikan yang diambil sebagai sampel setiap dua minggu dihitung ikan hidup. Tingkat kelangsungan hidup ikan dapat dihitung dengan menggunakan rumus (Effendie, 2002):
Keterangan:
No = Jumlah ikan awal Nt = Jumlah ikan akhir
6
Tabel 2. Kisaran parameter kualitas air pada media pemeliharaan
Perlakuan
Parameter Kualitas Air
Suhu (oC)
DO
(mg/l) pH
TAN (mg/l)
Kontrol 27,8-32,0 4,7-6,6 7,28-8,29 0,166-1
Bioflok 27,8-32,2 3,6-6,5 7,39-8,13 0,146-0,847
Optimal
25,0-32,0 Hepher dan Pruginin (1981)
>3,0 Henley
(2005)
6,0-9,0 Popma dan Masser (1999)
0,5-1,0 Boyd (1990)
2.5 Analisis Data
7
III.
HASIL DAN PEMBAHASAN
3.1 Hasil
3.1.1 Indeks Gonad Somatik (IGS)
Hasil pengamatan nilai IGS secara keseluruhan berkisar antara 0,89-3,50% (Gambar 1). Hasil analisis sidik ragam menunjukkan bahwa bioflok mempengaruhi nilai IGS secara signifikan (P<0,05) (Lampiran 2) terutama pada hari ke-84. Nilai IGS tertinggi diperoleh ikan yang diberi bioflok sebesar 3,50% pada hari ke-56 sedangkan nilai indeks gonad somatik tertinggi pada ikan yang tanpa diberi bioflok sebesar 2,94% (Gambar 1).
Gambar 1. Indeks gonad somatik (IGS) induk ikan nila Oreochromis sp. betina yang dipelihara pada sistem BFT dan kontrol selama 84 hari masa pemeliharaan
3.1.2 Indeks Hepar Somatik (IHS)
Nilai IHS pada perlakuan kontrol berkisar antara 1,03-2,46%, sedangkan nilai IHS pada perlakuan bioflok berkisar antara 1,03-2,28%. Hasil analisis sidik ragam menunjukkan bahwa pada perlakuan bioflok dapat mempengaruhi indeks hepar somatik pada hari ke-56 (P<0,05). (Lampiran 3). Pada hari ke-56, nilai IHS pada perlakuan kontrol sebesar 1,71% dan pada perlakuan bioflok sebesar 2,08%.
0 0,5 1 1,5 2 2,5 3 3,5 4 4,5
0 14 28 42 56 70 84
IG
S
(%)
Hari ke-
kontrol
[image:36.595.103.504.88.769.2]8
Gambar 2. Indeks hepar somatik (IHS) induk ikan nila Oreochromis sp. betina yang dipelihara pada sistem BFT dan kontrol selama 84 hari masa pemeliharaan
3.1.3 Fekunditas
Fekunditas tertinggi ditemukan pada ikan dengan perlakuan bioflok yaitu sebesar 1.317 butir telur sedangkan fekunditas ikan pada perlakuan tanpa bioflok yang tertinggi yaitu sebesar 1.067 butir telur (Gambar 3). Hasil analisis sidik ragam menunjukkan bahwa pada perlakuan bioflok dapat mempengaruhi fekunditas (P<0,05) (Lampiran 4).
Gambar 3. Fekunditas induk ikan nila Oreochromis sp. yang dipelihara pada sistem BFT dan kontrol selama 84 hari masa pemeliharaan
0 0,5 1 1,5 2 2,5 3
0 14 28 42 56 70 84
IH
S (
%)
Hari ke-
kontrol
BFT
0 200 400 600 800 1000 1200 1400 1600
0 14 28 42 56 70 84
F
ek
un
dita
s
(bu
tir
telur)
Hari ke-
kontrol
[image:37.595.108.496.86.791.2]9 3.1.4 Diameter Telur
Hasil pengamatan ukuran diameter telur menunjukkan bahwa ikan nila memiliki pola reproduksi tipe asinkronis. Analisis statistik menunjukkan bahwa perlakuan bioflok tidak mempengaruhi diameter telur (P>0,05) (Lampiran 5). Diameter telur tertinggi pada perlakuan bioflok sebesar 1,66 mm sedangkan pada perlakuan tanpa bioflok, diameter telur tertinggi sebesar 1,55 mm (Gambar 4).
Gambar 4. Diameter telur pada induk ikan nila Oreochromis sp. yang dipelihara pada sistem BFT dan kontrol selama 84 hari masa pemeliharaan
3.1.5 Jumlah Larva
Jumlah kumulatif larva selama 84 hari masa pemeliharaan menunjukkan bahwa perlakuan bioflok menghasilkan anakan yang lebih tinggi secara signifikan (P<0,05) (Lampiran 6) yaitu sebanyak 8.491 ekor, sedangkan pada kontrol sebanyak 5.154 ekor (Gambar 5).
Gambar 5. Jumlah total larva yang dihasilkan oleh induk ikan nila Oreochromis
sp. yang dipelihara pada sistem BFT dan kontrol selama 84 hari masa pemeliharaan 0 0,2 0,4 0,6 0,8 1 1,2 1,4 1,6 1,8
0 14 28 42 56 70 84
[image:38.595.101.496.14.836.2] [image:38.595.114.501.95.488.2]10 3.1.6 Sintasan
Hasil analisis sidik ragam menunjukkan bahwa pada perlakuan bioflok tidak memberikan pengaruh terhadap sintasan atau tingkat kelangsungan hidup ikan nila (P>0,05) (Lampiran 7) dengan rata-rata untuk masing-masing perlakuan adalah 99,17% untuk kontrol dan 97,50% untuk BFT.
Gambar 6. Tingkat kelangsungan hidup induk ikan nila ikan nila Oreochromis sp. yang dipelihara pada sistem BFT dan kontrol selama 84 hari masa pemeliharaan
3.2 Pembahasan
Reproduksi merupakan suatu proses biologi mulai dari diferensiasi seksual hingga dihasilkannya individu baru (larva) yang melibatkan kinerja dari beberapa jenis hormon (Bernier et al. 2009). Kegiatan reproduksi terjadi sesudah ikan mencapai masa dewasa, dan diatur oleh kelenjar-kelenjar endokrin serta hormon-hormon yang dihasilkannya. Perkembangan gonad ikan nila dipengaruhi oleh beberapa faktor seperti hormon, makanan, dan faktor lingkungan. Stickney (1979) mengemukakan bahwa ikan nila pada kondisi budidaya lebih cepat matang gonad dibandingkan dengan ikan nila yang hidup di perairan alami. Karena pada kondisi budidaya, pakan yang diberikan berdasarkan kebutuhan ikan tersebut.
Menurut Lagler et al. (1977) ada dua faktor yang memengaruhi kematangan gonad yaitu faktor dalam dan luar. Faktor dalam meliputi perbedaan spesies, umur, ukuran, serta sifat fisiologi ikan itu sedangkan faktor luar adalah makanan, suhu, dan arus. Selama perkembangan gonad, sebagian besar hasil metabolisme ditujukan untuk perkembangan gonad. Hal ini menyebabkan terjadi perubahan-perubahan dalam gonad. Pengetahuan tentang tahap kematangan gonad diperlukan untuk mengetahui waktu pemijahan, ukuran pertama kali matang
99,17 97,50
0,0 20,0 40,0 60,0 80,0 100,0 120,0
kontrol BFT
SR (
%)
Perlakuan
11
gonad, hubungannya dengan pertumbuhan ikan dan faktor lingkungan yang memengaruhinya (Effendie 2002).
Pengamatan kematangan gonad dapat dilakukan dengan dua cara, yang pertama cara histologi dilakukan di laboratorium, yang kedua cara pengamatan morfologi yang dapat dilakukan di laboratorium dan dapat pula dilakukan di lapangan. Pada penelitian ini, pengamatan kematangan gonad dilakukan melalui pengamatan morfologi. Dasar yang dipakai untuk menentukan tingkat kematangan gonad dengan cara morfologi ialah bentuk, ukuran panjang dan berat, warna dan perkembangan isi gonad yang dapat dilihat seperti diameter telur (Effendie 2002).
[image:40.595.107.509.408.824.2]Ukuran tingkat perkembangan ovarium dapat dinyatakan dalam satuan indeks dari persentase bobot gonad per bobot tubuh dan dinyatakan sebagai satuan IGS. Nilai IGS untuk masing-masing TKG menurut Azwar (1997) disajikan pada Tabel 3.
Nilai IGS untuk masing-masing TKG menurut Azwar (1997) sebagai berikut:
Tabel 3.Nilai IGS untuk masing-masing TKG (Azwar 1997)
TKG Nilai IGS (%)
Ciri-ciri
I <0,20 ovarium berwarna putih, transparan, oosit dan oogonia hanya dapat terlihat dengan menggunakan mikroskop. Sel telur terdiri dari oosit stadum 1 (oosit awal) dengan inti besar di tengah.
II 0,21-0,80
terbanyak pada kisaran
0,21-0,60
ovarium berwarna kuning terang, butiran oosit mulai terlihat dengan mata, secara mikroskopis terlihat adanya oosit stadium 2, namun oosit belum terisi kuning telur (previtelogenesis), ovarium terdiri dari oosit stadium 1 dan 2, sebagian besar oosit masih stadium 1.
III 0,61-2,20
Terbanyak pada kisaran
0,61-1,80
ovarium berwarna kuning tua, terdiri dari oosit stadium 1, 2, dan 3 (oost vitelogenesis), oosit terbanyak masih pada fase previtelogenesis. Oosit mudah dipisahkan.
IV 2,21-4,20
terbanyak pada kisaran
2,41-4,20
ovarium berwarna coklat gelap, butiran terlihat jelas dan mudah dipisahkan. Sebagian besar oosit pada stadium 3 dan 4 dapat mencapai 64,92%.
12
Pada Gambar 1, nilai IGS menunjukkan pola yang meningkat terutama untuk perlakuan bioflok. Pada hari ke-14, ke-28, dan ke-42 induk ikan mencapai fase persiapan dari tahap siklus reproduksi. Selanjutnya pada hari ke-56 sebagian besar induk ikan mencapai tingkat kematangan gonad (TKG IV). Kemudian pada hari ke-70 dan hari ke-84 mulai terlihat penurunan pada semua perlakuan. Hasil ini menunjukkan bahwa induk ikan nila telah selesai melakukan ovulasi atau pelepasan telur pada tahap pertama proses reproduksinya (Darwisito 2006). Pada perlakuan bioflok hari ke-84, nilai IGS terlihat masih stabil sedangkan pada perlakuan kontrol nilai IGS terlihat terus menurun (Gambar 1). Hal ini diduga karena performa ikan nila pada perlakuan bioflok, masih baik untuk melakukan ovulasi lagi.
Hati mempunyai peranan dalam sintesis material yang akan diakumulasikan pada ovarium saat siklus reproduksi, oleh karena itu pada masa reproduksi terjadi peningkatan aktivitas hati yang dicirikan dengan meningkatnya bobot hati. Rasio bobot hati terhadap tubuh (IHS) pada induk ikan akan meningkat menjelang vitelogenesis, dan rasio akan menurun menjelang ovulasi (Ishibashi et al. 1994). Pola perubahan IHS berlawanan dengan pola perubahan IGS, pada saat IHS menurun terjadi peningkatan IGS yang menunjukkan adanya mobilisasi material dari hati ke ovarium.
Menurut Jensen (1979) peningkatan bobot hati menjelang perkembangan ovarium disebabkan oleh peningkatan fraksi lipid. Selama proses perkembangan ovarium, fraksi lipid akan ditransfer dari cadangan lipid tubuh dan lipid hati ke ovarium. Terjadinya mobilisasi lipid ke ovarium dapat diperlihatkan dari fluktuasi kandungan lipid plasma selama siklus reproduksi. Gambar 2 menunjukkan bahwa nilai IHS pada semua perlakuan meningkat pada hari ke-14, hal ini diduga bahwa pada hari ke-14 merupakan waktu dimana terjadi proses sintesis vitelogenesis tertinggi.
13
berpengaruh terhadap rekrutmennya. Sedangkan induk ikan yang telah berkali-kali memijah fekunditasnya cenderung meningkat dengan ukuran telur dan larva yang lebih besar. Kondisi ini akan menurun sejalan dengan mulai menurunnya kondisi ikan yang memengaruhi kualitas dan kuantitas telur yang dihasilkan (Bagenal 1957).
Secara alami ikan nila dapat memijah sepanjang tahun di daerah tropis. Pada umumnya pemijahan ikan nila terjadi 6-7 kali/tahun dengan kisaran fekunditas antara 300-3.000 butir telur per pemijahan (Kordi 2000; Stickney 1979). Gambar 3 menunjukkan bahwa induk ikan nila pada perlakuan bioflok secara signifikan memiliki fekunditas yang lebih tinggi (P<0.05) (Lampiran 4) yaitu sebesar 1.317 butir telur daripada fekunditas ikan pada perlakuan kontrol yaitu sebesar 1.067 butir telur. Jumlah larva ikan yang dihasilkan juga lebih tinggi (P<0,05) pada ikan nila dengan perlakuan bioflok yaitu sebanyak 8.491 ekor, sedangkan pada kontrol sebanyak 5.154 ekor. Perkembangan gonad dan fekunditas dipengaruhi oleh nutrien pakan penting tertentu (Izquierdo et al. 2001). Bioflok termasuk komunitas mikroba heterotrof dalam media budidaya yang dapat digunakan sebagai sumber makanan (De Schryver dan Verstraete 2009). De Schryver et al.
(2008) menyatakan bahwa bioflok mengandung protein, asam lemak tak jenuh, dan lipid yang tinggi sehingga cocok digunakan sebagai pakan untuk ikan. Dengan demikian, nutrien yang terkandung dalam bioflok tersebut diduga mampu meningkatkan fekunditas ikan nila.
14
Tingkat kelangsungan hidup merupakan peluang hidup suatu individu dalam waktu tertentu (Effendie 2002). Tingkat kelangsungan hidup ikan nila antar perlakuan tidak berbeda nyata (Lampiran 7). Namun pada perlakuan bioflok, tingkat kelangsungan hidup ikan nila lebih rendah dibandingkan pada perlakuan kontrol. Hal ini diduga disebabkan karena pada masa pemeliharaan, pernah terjadi penurunan DO atau oksigen terlarut dalam air yang menyebabkan kematian pada ikan pada media perlakuan bioflok yang padat oleh bakteri pembentuk flok yang juga membutuhkan oksigen terlarut yang cukup tinggi.
Berbagai parameter yang diamati pada penelitian menunjukkan bahwa perlakuan BFT berpengaruh pada kinerja reproduksi ikan nila. Emerenciano et al.
(2011) menyatakan bahwa pada media bioflok, respon udang lebih cepat untuk ablasi dengan tingkat pemijahan lebih tinggi yang diduga akibat konsumsi biomassa bakteri yang dapat menyebabkan kinerja reproduksi yang lebih baik pada kondisi flok. Pakan merupakan komponen penting dalam proses pematangan gonad khususnya ovarium, karena proses vitelogenesis pada dasarnya merupakan proses akumulasi nutrien dalam kuning telur. Pada dasarnya kualitas telur sangat ditentukan oleh kualitas pakan yang diberikan. Defisiensi nutrien terutama asam amino, vitamin, dan mineral dapat menyebabkan perkembangan telur terhambat dan akhirnya terjadi kegagalan ovulasi dan pemijahan (Ediwarman 2006). Perkembangan gonad terjadi apabila terdapat kelebihan energi untuk pemeliharaan tubuh, sedangkan kekurangan gizi dapat menyebabkan telur mengalami atresia (Mayunar 2000). Dari beberapa faktor yang dapat mempengaruhi pematangan gonad, kualitas pakan mempunyai kaitan yang sangat erat dengan kualitas telur yang dihasilkan (Watanabe et al. 1984; Mokoginta 1992). Pengaruh pakan terhadap perkembangan gonad dilaporkan oleh Lovell (1988) bahwa kematangan gonad ikan channel catfish sangat berhubungan dengan keseimbangan komposisi nutrisi pakan terutama komposisi protein yang sangat dibutuhkan untuk perkembangan gonad.
15
Besarnya energi yang dikonsumsi oleh ikan dipengaruhi oleh ketersediaan energi di dalam pakan, kondisi fisik ikan, dan kondisi perairan (suhu dan oksigen terlarut). Disamping itu, keseimbangan energi protein dan asam lemak sangat berpengaruh terhadap tingkat perkembangan gonad dan kualitas telur yang dihasilkan. Hasil pengamatan yang telah dilakukan oleh Sari (2012) terhadap kandungan nutrisi bioflok yang tumbuh pada air media pemeliharaan ikan pada perlakuan bioflok yaitu protein sebesar 37,37% dan lemak sebesar 11,88%, sedangkan pada perlakuan kontrol yaitu protein sebesar 34,31% dan lemak sebesar 11,02%.
Protein merupakan komponen esensial yang dibutuhkan untuk reproduksi. Protein merupakan komponen dominan kuning telur, sedangkan jumlah dan komposisi kuning telur menentukan besar kecilnya ukuran telur, dan ukuran telur merupakan indikator kualitas telur (Kamler 1992). Lipid adalah komponen kedua setelah protein. Lipid sangat penting sebagai sumber energi dan asam lemak esensial untuk pertumbuhan dan perkembangan normal, serta memegang peranan penting dalam proses reproduktif terutama fase awal perkembangan larva ikan (Wilson 1995).
Menurut Watanabe et al. (1984), pakan induk yang kekurangan asam lemak esensial menghasilkan laju pematangan gonad yang rendah, sedangkan proporsi lipid yang lebih rendah dengan omega-3 HUFA tinggi dapat meningkatkan kematangan gonad. Selain itu, flok adalah sumber asam amino bebas (Ju et al.
16
IV.
KESIMPULAN
17
DAFTAR PUSTAKA
Avnimelech Y. 1999. Carbon/nitrogen ratio as a control element in aquaculture systems. Aquaculture 176:227-235.
___________. 2007. Feeding with microbial flocs by tilapia in minimal discharge bioflocs technology ponds. Aquaculture Engineering 34:172-178.
___________. 2012. Biofloc technology- a practical guide book, 2nd edition. United States: The World Aquaculture Society.
Azwar ZI. 1997. Pengaruh askorbil fosfat magnesium sebagai sumber vitamin C terhadap perkembangan ovarium dan penampilan larva ikan nila (Oreochromis sp.). [Sekolah Pascasarjana]. Institut Pertanian Bogor, Bogor.
Bagenal TB. 1957. Annual variations in fish fecundity. Journal of the Marine Biological Association of the United Kingdom. 36:377-382.
Bagenal TB. 1978. Aspects of fish fecundity. Ecology of Fresh water Fish Production. Black Well Scientific Publications, Oxfoad. 75-101 p.
Bernier JN, Kraak GVD, Farerell AP, Brauner CJ. 2009. Fish endocrinology. Elsevier Academic Press. Amsterdam, Netherlands.
Boyd CE. 1990. Water quality in ponds for aquaculture. Auburn University. Alabama: Birmingham Publishing Co.
Darwisito S. 2006. Kinerja reproduksi ikan nila Oreochromis niloticus yang mendapat tambahan minyak ikan dan vitamin E dalam pakan yang dipelihara pada salinitas media berbeda. [Disertasi]. Sekolah Pascasarjana, Institut Pertanian Bogor, Bogor.
De Schryver P, Crab R, Defoirdt T, Boon N, Verstraete W. 2008. The basics of bio-flocs technology: The added value for aquaculture. Aquaculture 277: 125-137.
De Schryver P, Verstraete W. 2009. Nitrogen removal from aquaculture pond water by heterotrophic nitrogen assimilation in lab-scale sequencing batch reactors. Bioresource Technology 100:1162-1167.
Ediwarman. 2006. Pengaruh tepung ikan lokal dalam pakan induk terhadap pematangan gonad dan kualitas telur ikan baung (Hemibagrus nemurus
Blkr.). [Disertasi]. Sekolah Pascasarjana, Institut Pertanian Bogor, Bogor.
Effendie MI. 2002. Biologi perikanan. Yayasan Pustaka Nusatama, Yogyakarta.
18
Emerenciano M, Cuzon G, Goguenheim J, Gaxiola G. 2011. Floc contribution on spawning performance of blue shrimp Litopenaeus stylirostris. Aquaculture Research. 1-11.
Henley F. 2005. A Guide to the farming of tilapia. Jamaica: Jamaica Broilers Groups.
Hepher B, Pruginin Y. 1981. Commercial fish farming: with special reference to fish culture in Israel. New York.
Izquierdo MS, Fernandez-Palacios H, Tacon AGJ. 2001. Effect of broodstock nutrition on reproductive performance of fish. Aquaculture 197 : 25-42.
Jensen AJ. 1979. Energy content analysis from weight and liver index measurements of mature pollock (Pollachius virens). Journal of the Fisheries Research Board of Canada 36:1207-1213.
Ju ZY, Foster I, Conquest L, Dominy W, Kuo WC, Horgen FD. 2008. Determination of microbial comunity structures of shrimp floc cultures by biomarkers and analysis of floc amino acid profiles. Aquaculture Research 39: 118-133.
Kamler E. 1992. Early life history of fish. An energetics approach. London: Chapman and Hall. 267 pp.
[KKP] Kementrian Kelautan dan Perikanan. 2010. Rencana strategis kementrian kelautan dan perikanan 2010-2014. Jakarta.
Kordi GMH. 2000. Budidaya ikan nila di tambak sistem monosex kultur. Effhar dan Dahara Prize. Semarang.
Lagler KF, Bardach JE, Miller RH, Passino DM. 1977. Ichthyology. John Willey &Sons Inc. Toronto. Canada. 556 p.
Lovell RT. 1984. Ascorbic acid metabolism in fish Proc. Ascorbic acid in Domestic Animal: The Royal Danish Agricultural Soc, Copenhagen: 206-212.
Maryam S. 2010. Budidaya super intensif ikan nila merah Oreochromis sp. dengan teknologi bioflok: profil kualitas air, kelangsungan hidup dan pertumbuhan. [Skripsi]. Fakultas Perikanan dan Ilmu Kelautan, Institut Pertanian Bogor, Bogor.
Mayunar. 2000. Aplikasi hormon Human Chorionic Gonadotropin (HCG) pada pemijahan ikan kakap putih Lates calcarifer. Prosiding Seminar Nasional Perikanan Penangkapan dan Budidaya Perairan. Hal. 124-133.
Mokoginta I. 1992. Essential fatty acid requirements of catfish (Clarias batracus
19
Molina JPA, Apolinar SM, Antonio LG, Sergio EMD, Maurilia RC. 2009. Effect of potential probiotic bacteria on growth and survival of Tilapia
Oreochromis niloticus L., Cultures In Laboratory Under High Density and Suboptimum Temperature. Aquaculture Research40:887-894.
Moriarty DJW. 1997. The role of microorganisms in aquaculture ponds. Aquaculture 15:333-349.
NRC (National Research Council). 1993. Nutrien requirement of fish. National Academy of Science, Washington D.C. 115 pp.
Popma T, Masser M. 1999. Tilapia life history and biology. Southern Regional Aquaculture Center Publication No. 283.
Sari NP. 2012. Komposisi mikroorganisme penyusun dan kandungan nutrisi bioflok dalam media pemeliharaan induk ikan nila Oreochromis niloticus
dengan aplikasi teknologi bioflok (BFT). [Skripsi]. Fakultas Perikanan dan Ilmu Kelautan, Institut Pertanian Bogor, Bogor.
Stickney RR. 1979. Principles of warm water aquaculture. John Willey and Sons, New York. Chichester, Brisbane, Toronto. 375 p.
Sulistyo I, Fontaine P, Rincarh J, Gardeur JN, Migaud H, Capdeville B, Kestemont P. 2000. Reproductive cycle and plasma level of steroid in male eurasian perch Perca fluviatilis. Aquatic Living Resources13(2):99-106.
Watanabe T, Arakawa I, Kitajima C, Fujita S. 1984. Effect of nutritional composition of diets on chemical components of red sea bream broodstock and eggs produced. Nippon Suisan Gakkaishi 50: 1207-1215.
21
Lampiran 1.Perhitungan jumlah molase
Penambahan molase pada media budidaya dilakukan dengan mengadaptasi perhitungan yang dilakukan oleh Avnimelech (1999). Asumsi-asumsi yang digunakan dalam penelitian antar lain:
1. Kadar protein pakan 33% 2. C dalam pakan 15%
3. Kadar nitrogen dalam protein 16%
4. Kadar nitrogen yang terbuang ke media budidaya 75% 5. C/N rasio target 15
6. Kadar karbon dalam molase (%C) 40%
Misalkan ∑ pakan : A
∑ C : A x 0,15 = 0,15A
∑ protein pakan : 33% x A = 0,33A kg
∑ N : 0,33A x 0,16 = 0,0528A
∑ N yang dibuang : 0,0528A x 0,75 = 0,0396A
∑ C yang ditambah : 0,0396A x 15 = 0,594A C dari molase : 0,594A – 0,15A = 0,444A
∑ molase : 0,444A x (100/40) = 1,11 A
22
Lampiran 2.Analisis ragam indeks gonad somatik (IGS) nila pada hari ke-14, 28, 42, 56, 70, 84
Hari ke- Sumber
Keragaman db JK KT F-hit Pr>F
14
Perlakuan 1 2,1206 2,1206 1,30 0,2609 Galat 38 61,8597 1,6278
Umum 39 63,9803
28
Perlakuan 1 9,6924 9,6924 4,05 0,0513 Galat 38 90,9030 2,3921
Umum 39 100,5954
42
Perlakuan 1 1,0048 1,0048 0,43 0,5137 Galat 38 87,8534 2,3119
Umum 39 88,8583
56
Perlakuan 1 3,1231 3,1231 1,51 0,2274 Galat 37 76,6958 2,0728
Umum 38 79,8189
70
Perlakuan 1 2,3136 2,3136 1,07 0,3078 Galat 38 82,2850 2,1653
Umum 39 84,5986
Perlakuan 1 10,0870 10,0870 7,22* 0,0111 84 Galat 34 47,4819 1,3965
Umum 35 57,5690
Keterangan : * berbeda nyata antara perlakuan pada selang kepercayaan 95%
Tukey
Grouping Mean N Perlakuan Uji Tukey IGS
hari ke-14 A A 1,2130 1,7525 20 20 BFT K Uji Tukey IGS
hari ke-28 A A 2,7810 1,7965 20 20 BFT K Uji Tukey IGS
hari ke-42 A A 2,5455 2,8625 20 20 BFT K Uji Tukey IGS
hari ke-56 A A 2,9368 3,5030 19 20 BFT K Uji Tukey IGS
hari ke-70 A A 2,7215 3,2025 20 20 BFT K Uji Tukey IGS
23
Lampiran 3. Analisis ragam indeks hepar somatik (IHS) nila pada hari ke-14, 28, 42, 56, 70, 84
Hari ke- Sumber
Keragaman db JK KT F-hit Pr>F
14
Perlakuan 1 0,3078 0,3078 0,63 0,4318 Galat 37 18,0352 0,4874
Umum 38 18,3431
28
Perlakuan 1 0,4115 0,4115 0,87 0,3574 Galat 38 18,0193 0,4741
Umum 39 18,4308
42
Perlakuan 1 0,5130 0,5130 1,02 0,3189 Galat 38 19,1137 0,5029
Umum 39 19,6267
56
Perlakuan 1 1,1617 1,1617 4,96* 0,0328 Galat 33 7,7236 0,2340
Umum 34 8,8854
70
Perlakuan 1 0,0000 0,0000 0,00 1,000 Galat 38 21,8791 0,5757
Umum 39 21,8791
Perlakuan 1 0,0275 0,0275 0,10 0,7502 84 Galat 38 10,1853 0,2680
Umum 39 10,2128
Keterangan : * berbeda nyata antara perlakuan pada selang kepercayaan 95%
Tukey
Grouping Mean N Perlakuan Uji Tukey IHS
hari ke-14 A A 2,4590 2,2813 20 19 BFT K Uji Tukey IHS
hari ke-28 A A 1,9468 2,1497 20 20 BFT K Uji Tukey IHS
hari ke-42 A A 1,6795 1,9060 20 20 BFT K Uji Tukey IHS
hari ke-56 A B 1,7094 2,0751 16 19 BFT K Uji Tukey IHS
hari ke-70 A A 1,9010 1,9010 20 20 BFT K Uji Tukey IHS
24
Lampiran 4. Analisis ragam fekunditas nila pada hari ke-14, 28, 42, 56, 70, 84
Hari ke- Sumber
Keragaman db JK KT F-hit Pr>F
14
Perlakuan 1 305401 305401 4,59* 0,0395 Galat 34 2263502 66573
Umum 35 2568904
28
Perlakuan 1 27559 27559 0,18 0,6771 Galat 31 4833548 155920
Umum 32 4861107
42
Perlakuan 1 1355261 1355261 8,35* 0,0066 Galat 35 5682300 162351.
Umum 36 7037561
56
Perlakuan 1 1108224 1108224 6,77* 0,0132 Galat 38 6224581 163804
Umum 39 7332805
70
Perlakuan 1 805,921 805,921 0,01 0, 9137 Galat 36 2434106 67614
Umum 37 2434912
Perlakuan 1 470407 470407 5,66* 0, 0245 84 Galat 28 2329065 83180
Umum 29 2799472
Keterangan : * berbeda nyata antara perlakuan pada selang kepercayaan 95%
Tukey
25
Lampiran 5. Analisis ragam diameter telur nila pada hari ke-14, 28, 42, 56, 70, 84
Hari ke- Sumber
Keragaman db JK KT F-hit Pr>F
14
Perlakuan 1 0,6011 0,6011 5,67* 0,0236 Galat 31 3,2863 0,1060
Umum 32 3,8874
28
Perlakuan 1 0,2000 0,2000 1,49 0,2309 Galat 34 4,5712 0,1344
Umum 35 4,7712
42
Perlakuan 1 0,0355 0,0355 0,32 0,5732 Galat 33 3,6183 0,1096
Umum 34 3,6538
56
Perlakuan 1 0,0180 0,0180 0,13 0,7158 Galat 38 5,1011 0,1342
Umum 39 5,1191
70
Perlakuan 1 0,1056 0,1056 1,42 0,2424 Galat 34 2,5374 0,0746
Umum 35 2,6430
Perlakuan 1 0,1504 0,1504 1,74 0,1959 84 Galat 33 2,8490 0,0863
Umum 34 2,9994
Keterangan : * berbeda nyata antara perlakuan pada selang kepercayaan 95%
Tukey
26
Lampiran 6. Analisis ragam jumlah larva nila hingga akhir pemeliharaan
Hari ke- Sumber
Keragaman db JK KT F-hit Pr>F
0-84
Perlakuan 1 22271138 22271138 11,29* 0,0152 Galat 6 11840164 1973360
Umum 7 34111302
Keterangan : * berbeda nyata antara perlakuan pada selang kepercayaan 95%
Tukey
Grouping Mean N Perlakuan Uji Tukey
jumlah larva hari ke-0-84
B A
5154 8491
4 4
27
Lampiran 7. Analisis ragam sintasan nila hingga akhir pemeliharaan
Hari ke- Sumber
Keragaman db JK KT F-hit Pr>F
0-84
Perlakuan 1 13,8611 3,4652 3,75 0,1531 Galat 6 2,7722 0,9240
Umum 7 16,6333
Keterangan : * berbeda nyata antara perlakuan pada selang kepercayaan 95%
Tukey
Grouping Mean N Perlakuan Uji Tukey
sintasan hari ke-0-84
A A
99,16 97,50
4 4
28
Lampiran 8. Hasil analisis kualitas air
Nilai rata-rata suhu (oC) pada air media pemeliharaan ikan nila pada perlakuan kontrol dan bioflok.
Masa pemeliharaan (Minggu)
Pagi Sore
Kontrol Bioflok Kontrol Bioflok 1 28 28,0 30,0 30,0 2 28,1 28,2 29,6 29,7 3 29,0 29,0 30,7 30,7 4 29,2 29,3 31,1 31,1 5 29,2 29,3 32,0 32,1 6 28,7 28,8 31,2 31,2 7 29,0 29,0 31,1 31,3 8 29,2 29,3 31,9 32,0 9 29,0 29,0 32,0 32,2 10 28,2 28,2 31,1 31,2 11 27,8 27,8 30,0 30,1 12 28,1 28,1 30,3 30,3 13 28,6 28,9 30,3 30,4
Nilai DO (mg/l) pada air media pemeliharaan ikan nila pada perlakuan kontrol dan bioflok.
Masa pemeliharaan
(Minggu)
Kontrol Bioflok
29
Nilai pH pada air media pemeliharaan ikan nila pada perlakuan kontrol dan bioflok.
Masa pemeliharaan
(Minggu)
Kontrol Bioflok
1 7.28 7.39 2 8.05 8.07 3 7.58 7.43 4 7.77 7.79 5 7.63 8.13 6 7.71 7.81 7 7.96 7.93 8 8.29 8.12 9 7.61 7.71 10 8.25 8 11 8.18 7.98 12 7.39 7.53 13 7.62 7.52
Nilai TAN (mg/l) pada air media pemeliharaan ikan nila pada perlakuan kontrol dan bioflok
Masa pemeliharaan
(Minggu)
Kontrol Bioflok
i
KINERJA REPRODUKSI IKAN NILA
Oreochromis niloticu
