KAJIAN AWAL KANDUNGAN GIZI DAN ANTIBAKTERI
BEBERAPA IKAN LAUT DALAM DI PERAIRAN
SELATAN JAWA
Oleh :
Fanni Al Fanany
C34101073
PROGRAM STUDI TEKNOLOGI HASIL PERIKANAN
FAKULTAS PERIKANAN DAN ILMU KELAUTAN
RINGKASAN
FANNI AL FANANY. C34101073. Kajian Awal Kandungan Gizi dan Antibakteri Beberapa Ikan Laut Dalam di Perairan Selatan Jawa. Dibimbing oleh
SUGENG HERI SUSENO.
Perkembangan pengetahuan kelautan pada umumnya berjalan seiring dengan berkembangnya teknologi pemanfaatan sumber daya laut untuk memenuhi kebutuhan hidup. Hal ini memudahkan manusia dalam mengeksploitasi sumber daya ikan di laut. Akibatnya terjadi overfishing pada beberapa daerah penangkapan ikan seperti di selat Malaka, laut Jawa dan laut Banda yang menyebabkan makin sedikitnya stok ikan tangkapan. Oleh karena itu perlu adanya daerah tangkapan baru sebagai alternatif pengganti daerah tangkapan di pesisir dan daerah pelagis. Daerah laut yang diperkirakan dapat menjadi alternatif penangkapan ikan adalah perairan laut dalam. Selain itu, ikan laut dalam yang hidup pada habitat yang ekstrim tidak menutup kemungkinan mengandung bahan obat-obatan seperti pada sponge, sea weed dan holothuria.
Penelitian ini bertujua n untuk mengkaji kandungan nilai gizi dan senyawa antibakteri beberapa ikan laut dalam di selatan Jawa. Beberapa ikan laut dalam yang diteliti mempunyai tingkat kesegaran antara agak segar dan tidak segar. Ikan laut dalam dari jenis Coelorincus longissimus, Coryphaenoides sp.,famili Pereichthydae, Ophidiidae sp., famili Nomeidae, Diapus fragillis, Parascolopsis sp., Glytophidian sp, Hydrolagus sp., famili Ophidiidae, dan satu jenis ikan yang belum teridentifikasi mempunyai kandungan protein antara 11,18-18,16%, lemak 1,28-6,95%, abu 0,57-3,92%, dan air 70,49-86,26%. Ikan laut dalam jenis famili Nomeidae, Parascolopsis sp., Hydrolagus sp., famili Ophidiidae, famili Pereichthydae, dan satu jenis ikan yang belum teridentifikasi mengandung 17 asam amino yang terdiri dari 9 asam amino esensial dan 8 asam amino non esensial. Asam amino esensial meliputi : histidin, arginin, treonin, valin, metionin, isoleusin, leusin, fenilalanin dan lisin. Sedangkan 8 asam amino non esensial meliputi : asam aspartat, asam glutamat, serin, glisin, alanin, prolin, tirosin dan sistein. Asam glutamat mendominasi kandungan asam amino dari ikan laut dalam yaitu antara 0,5130-0,7850%. Banyaknya kandungan asam glutamat pada beberapa ikan laut dalam menyebabkan daging ikan laut dalam beraroma gurih manis.
Ekstrak beberapa daging ikan laut dalam yang diteliti dari jenis famili Nomeidae, Parascolopsis sp., Hydrolagus sp., famili Ophidiidae, famili Pereichthydae, dan satu jenis ikan yang belum teridentifikasi tidak aktif menghambat pertumbuhan bakteri Staphylococcus aureus dan Escherichia coli. Adapun ekstrak- metanol daging ikan laut dalam jenis famili Nomeidae, Hydrolagus sp., famili Ophidiidae, famili Pereichthydae, dan satu jenis ikan yang belum teridentifikasi memiliki tingkat toksisitas rendah sampai tidak toksik.
KAJIAN AWAL KANDUNGAN GIZI DAN ANTIBAKTERI
BEBERAPA IKAN LAUT DALAM DI PERAIRAN
SELATAN JAWA
Skripsi
sebagai salah satu syarat untuk memperoleh gelar Sarjana Perikanan pada Fakultas Perikanan dan Ilmu Kelautan
Institut Pertanian Bogor
Oleh :
Fanni Al Fanany C34101073
PROGRAM STUDI TEKNOLOGI HASIL PERIKANAN FAKULTAS PERIKANAN DAN ILMU KELAUTAN
SKRIPSI
Judul : KAJIAN AWAL KANDUNGAN GIZI DAN
ANTIBAKTERI BEBERAPA IKAN LAUT DALAM DI PERAIRAN SELATAN JAWA
Nama : Fanni Al Fanany
NIP : C34101073
Menyetujui, Pembimbing I
Sugeng Heri Suseno, S.Pi. M.Si.
NIP.132 234 941
Mengetahui,
Dekan Fakultas Perikanan dan Ilmu Kelautan
Dr. Ir. Kadarwan Soewardi, M.Sc.
NIP. 130 805 031
KATA PENGANTAR
Segala puji bagi Allah SWT yang memberikan kekuatan dan keistiqomahan pada diri ini untuk menyelesaikan karya ilmiah ini. Dan sholawat serta salam pada suri tauladan umat manusia nabi Muhammad SAW yang membawakan islam pada diri ini.
Terima kasih penulis ucapkan kepada Bapak Sugeng Heri Suseno, S.Pi. M.Si selaku dosen pembimbing yang telah memberikan banyak tugas pada diri ini , baik itu tugas yang berkaitan dengan penelitian ini maupun tidak. Tapi diri ini senang karena dari tugas-tugas tersebut sangat sekali pelajaran yang berharga bagi diri saya terutama dalam menyelesaikan karya ilmiah ini. Ucapan terima kasih juga penulis ucapkan pada ibu Ir. Iriani Setyaningsih, MS., dan ibu Desniar, S.Pi,m M.Si. selaku dosen penguji. Ucapan terima kasih juga penulis ucapkan kepada ibu, ayah (semoga Allah memuliakan mereka berdua di dunia dan diakhirat), seluruh anggota keluarga (mbak Laila, cak Husnul, mbak Fit, cak Barok, mbak Mila, dek Arfis dan spesial adikku “Mimin” yang lucu, semoga jadi anak yang sholehah), semua teman-teman THP spesial A’38 (Rameh banget dan semoga selalu kompak selalu) dan teman-teman seperjuangku di FPIK dan IPB yang mempunyai telah andil besar dalam menjaga diri untuk tetap berada dijalan-Nya, serta adik-adik di FORCES D’Tuko, D’Kani, D’Nanang, D’Ocha, D’Widya dll tolong jaga FORCES- ya). Dan tak lupa, saya ucapkan salam terima kasih pada crew Al-IZZAH (selamat atas prestasinya juara I nasyid dalam festival ramadhan).
Saya harap semoga karya ilmiah ini dapat bermanfaat bagi sebanyak-banyaknya umat manusia dan Allah SWT ridloi karya ilmiah ini.
Bogor, September 2005
RIWAYAT HIDUP
Penulis dilahirkan di Gresik, tanggal 08 Desember 1982 dari ayah Achmad Jamil dan ibu Cholifah. Penulis merupakan putra keenam dari delapan bersaudara. Penulis sekolah dasar di Madrasah Ibtidaiyah Muhammadiyah 1 Ujungpangkah, Gresik dan sekolah menengah pertama di Madrasah Tsana wiyah Muhammadiyah 3 Ujungpangkah, Gresik. Kemudian penulis melanjutkan sekolah menengah umum di SMU Negeri 14 Bandung.
Penulis masuk ke Institut Pertanian Bogor pada tahun 2001 melalui jalur Ujian Masuk Perguruan Tinggi Negeri. Penulis memilih Program Studi Teknologi Hasil Perairan, Departemen Teknologi Hasil Perairan, Fakultas Perikanan dan Ilmu Kelautan.
DAFTAR ISI
Halaman
DAFTAR ISI ... ... ...v
DAFTAR TABEL ...vii
DAFTAR GAMBAR ...viii
DAFTAR LAMPIRAN ...x
1. PENDAHULUAN 1.1 Latar Belakang Penelitian ...1
1.2 Tujuan Penelitian ...2
1.3 Waktu dan Tempat ... 2
2. TINJAUAN PUSTAKA 2.1 Laut Dalam ...3
2.2 Ikan Laut Dalam ...5
2.3 Mutu Ikan ...10
2.4 Asam Amino ...11
2.5 Analisis Asam Amino dengan High Ferformance Liquid Chromatography (HPLC) ...13
2.6 Bakteri ...13
2.6.1 Escherichia coli ...14
2.6.2 Staphylococcus aureus ...15
2.7 Ekstraksi ...15
2.8 Antimikroba ...16
2.9 Uji Toksisitas ...17
2.9.1 Uji toksisitas dengan Artemia salina ...17
3. METODOLOGI 3.1 Bahan dan Alat ...19
3.2 Metode Penelitian ...20
3.2.1 Uji organoleptik ...21
3.2.2 Analisis proksimat ...21
3.2.3 Analisis asam amino ...24
3.2.4 Ekstrasi senyawa antibakteri ikan laut dalam ...25
3.2.5 Uji senyawa antibakteri ...26
Halaman 4. HASIL DAN PEMBAHASAN
4.1 Karakteristik Beberapa Ikan Laut Dalam ...32
4.2 Tingkat Kesegaran Beberapa Ikan Laut Dalam ...33
4.3 Hasil Analisis Proksimat ...35
4.4 Hasil Analisis Asam Amino ...41
4.5 Ekstraksi Daging Ikan Laut Dalam ...45
4.6 Uji Aktivitas Antibakteri ...47
4.7 Uji Toksisitas ...52
5. KESIMPULAN DAN SARAN 5.1 Kesimpulan ...58
5.2 Saran ...59
DAFTAR PUSTAKA ...60
LAMPIRAN ...64
Nomor Halaman
1. Zona-zona fauna laut dalam ...3
2. Karakteristik lingkungan laut (daerah beriklim sedang dan tropika) ...4
3. Kandungan proksimat beberapa ikan laut dalam di New Zealand ...10
4. Kategori toksisitas bahan ...18
5. Panjang ikan dan tingkat kedalaman beberapa ikan laut dalam di perairan selatan Jawa ...33
6. Hasil uji organoleptik beberapa ikan laut dalam perairan selatan Jawa ...34
7. Hasil rata-rata uji organoleptik beberapa ikan laut dalam di perairan selatan Jawa ...34
8. Hasil analisis proksimat dari beberapa ikan laut dalam di perairan selatan Jawa ... ...35
9. Komposisi gizi beberapa ikan pelagis dalam 100 g BDD ... 38
10. Karakteristik zona epipelagis dan mesopelagis ...39
11. Tipe-tipe ikan berdasarkan kandungan protein dan lemaknya ...40
12. Tipe-tipe beberapa ikan laut dalam berdasarkan kandungan protein dan lemaknya ...40
13. Hasil Analisis asam amino dari beberapa ikan laut dalam selatan Jawa ...42
14. Rendemen hasil ekstraksi daging beberapa ikan laut dalam ...47
15. Diameter hambatan yang terbentuk pada uji aktivitas antibakteri ...48
DAFTAR GAMBAR
Nomor Halaman
1. Bakteri Eschericiha coli ...14
2. Bakteri Staphylococcus aureus ...15
3. Beberapa ikan laut dalam perairan selatan Jawa ...20
4. Diagram alir proses ekstraksi senyawa bioaktif daging ikan laut dalam ...27
5. Diagram alir proses penentuan aktifitas antibakteri pada berbagai ekstrak daging ikan laut dalam ...29
6. Diagram alir uji toksisitas dengan Artemia salina ...31
7. Diagram batang kadar protein ikan laut dalam di perairan selatan Jawa ...36
8. Diagram batang kadar lemak ikan laut dalam di perairan selatan Jawa ...36
9. Diagram batang kadar abu ikan laut dalam di perairan selatan Jawa ...36
10. Diagram batang kadar air ikan laut dalam di periran selatan Jawa ...37
11. Diagram batang asam amino pada ikan famili Nomeidae ...43
12. Diagram batang asam amino pada ikan Hydrolagus sp ...43
13. Diagram batang asam amino ikan famili Ophidiidae ...43
14. Diagram batang asam amino ikan Parascolopsisi sp ...44
15. Diagram batang asam amino ikan famili Perechthydae ...44
16. Diagram batang asam amino ikan (belum teridentifikasi) ...44
17. Diagram batang asam amino ikan Tuna ...45
18. Aktivitas antibakteri ekstrak kasar daging beberapa ikan laut dalam dari perairan selatan Jawa bakteri Staphylococcus aureus ...49
19. Aktivitas antibakteri ekstrak kasar daging beberapa ikan laut dalam dari perairan selatan Jawa bakteri Escherichia coli ...49
20. Grafik kematian Artemia salina pada ekstraksi daging ikan Nomeidae pada pelarut metanol ...53
21. Grafik kematian Artemia salina pada ekstraksi daging ikan Pereichthydae pada pelarut metanol ...54
22. Grafik kematian Artemia salina pada ekstraksi daging ikan Hydrolagus sp. pada pelarut metanol ...55
23. Grafik kematian Artemia salina pada ekstraksi daging ikan Ophididae pada pelarut metanol ...55
DAFTAR LAMPIRAN
Nomor Halaman
1. Contoh Score sheer ...65
2. Berat molekul asam amino ...65
3. Contoh perhitungan asam amino ...67
4. Contoh perhitungan persen ekstrak ...68
5. Contoh perhitungan konsentrasi ekstrak kasar daging ikan laut dalam ...69
6. Kurva standar kandungan asam amino ...71
7. Kurva kandungan asam amino ikan laut dalam jenis ikan famili Nomeidae ....72
8. Kurva kandungan asam amino ikan laut dalam jenis ikan Parascolopsis sp. ....73
9. Kurva kandungan asam amino ikan laut dalam jenis ikan Hydrolagus sp. ...74
10. Kurva kandungan asam amino ikan laut dalam jenis ikan famili Ophidiidae ...75
1. PENDAHULUAN
1.1 Latar Belakang
Perkembangan pengetahuan kelautan pada umumnya berjalan seiring dengan berkembangnya teknologi pemanfaatan sumberdaya laut untuk memenuhi kebutuhan hidup. Semakin berkembangnya teknologi terutama pada instrumen penangkapan ikan, makin memudahkan manusia dalam mengeksploitasi sumber daya ikan di laut. Akibatnya terjadi overfishing pada beberapa daerah penangkapan ikan seperti di selat Malaka, laut Jawa dan laut Sunda dengan tingkat pemanfaatan >100%, menyebabkan makin sedikitnya stok ikan tangkapan (BRKP, 2001). Selain itu, pihak Ditjen Perikanan Tangkap (2001) menyatakan bahwa produksi perikanan laut pada tahun 1999 mengalami penurunan sebesar 1,11 % dari produksi tahun 1998 yaitu dari 3.723.746 ton menjadi 3.682.444 ton. Oleh karena itu perlu adanya daerah tangkapan baru sebagai alternatif pengganti daerah tangkapan di pesisir dan daerah pelagis. Bagian dari lingkungan laut yang diperkirakan dapat menjadi alternatif penangkapan ikan adalah perairan laut dalam.
Selain itu, Soselia dan Rustam (1993) menyatakan bahwa ikan laut dalam jenis Cubiceps whiteleggi menjadi salah satu ikan ekonomis penting di masa datang.
Laut dalam merupakan bagian dari lingkungan bahari yang terletak di bawah kedalaman yang dapat diterangi sinar matahari di laut terbuka dan lebih dalam dari paparan benua (>200 m) (Nybakken, 1992). Akhir-akhir ini sumber keragaman hayati yang melimpah di laut dalam, kini mulai dieksploitasi untuk diteliti kandungannya dan dimanfaatkan bagi berbagai keperluan, terutama pangan dan obat-obatan. Dari hasil penelitian menunjukkan bahwa squalene hati dari ikan hiu laut dalam (Centrophorus atromarginatus gaman) yang hidup di kedalaman 500-1000 m di bawah permukaan laut mempunyai kemampuan yang tidak tertandingi dalam hal pencegahan terhadap infeksi dan penyakit. Selain itu, tulang rawan ikan hiu dapat sebagai salah satu obat kanker (Anonimus, 2004).
1.2 Tujuan Penelitian
Penelitian ini bertujuan untuk :
1. Mengkaji kandungan gizi pada beberapa ikan laut dalam di perairan selatan Jawa.
2. Mengkaji ada tidaknya kandungan antibakteri pada beberapa ikan laut dalam di perairan selatan Jawa.
1.3 Waktu dan Tempat
2. TINJAUAN PUSTAKA
2.1 Laut Dalam
Laut dalam adalah bagian dari lingkungan bahari yang terletak di bawah kedalaman yang dapat diterangi sinar matahari di laut terbuka dan lebih dalam dari paparan benua (>200 m). Berdasarkan asosiasi mahluk hidup terhadap lingkungan, laut dalam dibagi menjadi dua zona, yaitu zona bentik (berasosiasi dengan dasar) dan zona pelagis (berasosiasi dengan kolom air). Pencirian zona tersebut juga dihubungkan dengan intensitas cahaya. Ada dua ciri zonasi laut yaitu fotik (ada cahaya) dan zona afotik (tidak ada cahaya) (Nybakken, 1992). Pencirian zona tersebut selengkapnya disajikan pada Tabel 1.
Tabel 1. Zona- zona fauna laut dalam
Cahaya Zona Pelagis Kisaran Kedalaman Catatan : (?) = Berubah-ubah
Tabel 2. Karakteristik lingkungan laut (daerah beriklim sedang dan
2.2 Ikan Laut Dalam
• Gempylidae
Ikan yang berbentuk panjang atau persegi panjang dengan ukuran sedang hingga besar, sering dijumpai pada perairan sangat dalam. Mulut besar maksila terbuka di posterior, gigi tajam, gigi anterior sangat besar dan seperti taring, sisik sedang (moderate) dan bercucuk atau kecil bila tak bercucuk, gurat sisi lemah atau sedang (moderate) bila ada, tunggal atau ganda, kemiringannya biasanya diagonal. Sirip dorsal terbagi menjadi bagian bercucuk dengan dasar sirip yang panjang dan bagian yang berjari- jari sirip pendek, finlet sering muncul di sebelah sirip dorsal dan anal, sirip pektoral pendek dan terletak di bawah badan, sirip ventral tumbuh baik atau rudimenter, sirip kaudal berbentuk garpu. Nama Inggrisnya Snake Mackerel (Gloerfelt dan Kailola, 1984). Parin dan Paxton (1990) menyebutkan bahwa gemfish telah menjadi ikan komersial di Australia tenggara sejak lebih 15 tahun yang lalu.
• Nomeidae
Sirip dorsal tunggal dengan takik yang dalam dan nyata memisahkan porsi cucuk dan jari- jari sirip. Cucuk dari sirip dorsal pertama ramping, lebih kurang 10-11, panjang sedang, dan terlipat ke dalam suatu celah, jari-jari dari sirip dorsal lebih dari 15. Sirip anal dengan 1-3 cucuk, lebih dari 15 jari-jari. Gigi kecil pada vomer dan kadang kala pada palatin. Sisik sikloid, tipis dan mudah lepas. Lekuk ekor kompres dengan keel pada kedua sisinya. Kedalaman lekukan lebih dari 5% (20 kali panjang standar dalam inchi). Nama Inggrisnya Eyebrowfishes, Cubeheads (Gloerfelt dan Kailola, 1984). Soselia dan Rustam (1993) menyatakan bahwa Cubiceps whiteleggi menjadi salah satu ikan ekonomis penting di masa datang. Pengalaman empiris penulis, bahwa ikan rexea memiliki tekstur daging yang khas dengan bau yang gurih dan rasa mild.
• Lophiidae
lebih cucuk tunggal pada kepala, 3 pada nape (bagian dorsal tepat di belakang kepala), yang kedua memiliki jari-jari sirip, sirip anal dengan jari-jari yang berhadapan. Cucuk sirip dorsal yang pertama membentuk suatu illicium (semacam kail dengan umpan yang digunakan untuk menarik mangsa). Sirip pektoral kuat dan lebar, dasar sirip ventral terdapat sebelum dasar sirip pektoral. Nama Inggrisnya Goosefishes (Gloerfelt dan Kailola, 1984).
Lophiidae memiliki rasa yang manis, hampir sama dengan lobster. Tekstur dari bagian buntut mirip lobster, padat dan tanpa tulang. Bagian buntut merupakan satu-satunya bagian yang dapat digunakan. Belum ada usaha perikanan yang khusus menangani Lophiidae. Lophiidae masih merupakan hasil samping dari perikanan dasar dan perikanan scallop. Di pasar dapat dijumpai dalam bentuk segar, filet tanpa buntut dan dalam bentuk filet beku yang masih berkulit. Panjangnya berkisar 1,37 m dengan berat 22,5 kg. Berat filet berkisar antara 1-5 kg (Perkins, 1992). Ikan ini memiliki banyak nama dagang, yaitu monkfish, anglerfish, goosefish, beelyfish, fishing frog, dan lawyerfish. Di
Perancis disebut lotte. Tidak ditemukan adanya bahaya kesehatan (Perkins, 1992).
• Macrouridae
Kepala besar, trunk pendek dan kompres, ekor panjang dan seperti sabuk, merungcing hingga menjadi satu titik. Biasanya mempunyai dua sirip dorsal, yang pertama pendek dan tinggi, yang kedua panjang, bersambung hingga ujung ekor, sirip anal serupa dengan sirip dorsal yang kedua, sirip ventral memiliki 5-17 jari-jari sirip yang biasanya muncul pada dada atau tenggorokan, biasanya ada satu jari- jari yang di luar, sirip kaudal biasanya tidak ada. Moncong ada, berbentuk bundar dan tajam, kuat dan sering dilengkapi dengan cucuk skut. Bentuk mulut terminal sampai inferior, gigi lengkap, sungut di dagu biasanya ada, mata biasanya besar. Sisik biasanya tajam, ditutupi oleh cucuk-cucuk kecil. Organ cahaya ventral pada perut terdapat beberapa spesies. Nama Inggrisnya Rattails, Grenadirs (Gloerfelt dan Kailola, 1984).
(tipis) dan berjonjot (berlapis). Beratnya berkisar antara 1,75-2,75 kg dengan panjang berkisar antara 0,61-0,76 m (Perkins, 1992).
Sisik grenadir kencang dan bentuk tubuhnya menajam dengan cara mekanik. Kanada telah menanamkan modalnya untuk mengembangkan peralatan pengolahan untuk mengakomodasi keunikan yang dimiliki grenadir. Mereka menemukan bahwa proses pembuatan filet bukanlah suatu persoalan setelah perontok sisik menanggalkan “baju zirah” ikan tersebut (Perkins, 1992).
Walaupun belum ada perikanan yang langsung mengusahakan grenadir, di Kanada spesies ini naik dan datang sebagai hasil samping jaring insang dasar dari perikanan ikan turbot di Greenland. Walaupun ada kekurangan secara fisik pada grenadir, ikan ini memberikan gambaran yang menjanjikan sebagai ikan berdaging putih dengan rasa ringan dan dapat dipasarkan. Jika ditangani dengan benar, grenadir tidak berbahaya bagi kesehatan. Pembekuan grenadir yang hati-hati dapat memberikan daging yang kualitasnya bagus (Perkins, 1992).
• Ophidiidae
Ikan yang berbentuk kompres, tegap dan pendek atau agak panjang, panjangnya lebih kurang 100 cm. Memiliki supramaksila kecil, dengan gigi granular, bukaan insang luas, biasanya lebih dari tujuh tapis insang (gill rays) yang panjang pada lengkung insang pertama, sepasang nostril, keduanya terletak tepat di atas bibir atas, seringkali memiliki sebuah cucuk yang tajam pada sudut atas operkulum. Sisik ada. Tidak ada cucuk pada sirip-sirip, dasar sirip dorsal dan anal panjang, bersatu dengan sirip ekor. Jari-jari sirip pada dorsal sebanding atau lebih panjang dari pada sirip anal, tidak ada atau ada dua jari-jari pada sirip ventral. Dasar sirip ventral biasanya tertutup bersama dan terletak di bawah bukaan insang atau jatuh jauh ke depan. Nama Inggrisnya Brotula, Brotulids, Cusk eels (Gloerfelt dan Kailola, 1984).
Di Eropa, kingklip dipasarkan sebagai cusk eel. Di Selandia Baru disebut ling dan di Amerika Selatan disebut congrio. Di Jepang disebut kingu. Kingklip terutama dipasarkan dalam jumlah eceran dan jarang terlihat di restoran, karena kualitasnya yang bagus dan daging yang bertekstur khas. Kingklip emas, merah dan hitam dipasarkan secara internasional, tetapi di Amerika Serikat lebih menyukai yang berwarna emas dan merah (Perkins, 1992). Tidak ditemukan adanya bahaya bagi kesehatan, apabila ditangani dengan baik.
• Rajidae
Anggota famili Rajidae mempunyai bentuk yang romboid (jajaran genjang), kadang-kadang hampir seperti cakram bundar dan sempit, sering kali berekor pendek. Mempunyai dua sirip dorsal yang kecil dan terletak di dekat ujung buntut yang tumpul. Tidak ada sirip ekor, atau ekor digantikan oleh suatu lipatan kecil, umumnya ada pada permukaan sirip dorsal. Dua sirip perut yang besar dibentuk menjadi dua belah cuping (lobe). Ada suatu snout (daerah di depan mata). Moncong dan hidung memilki selaput lapisan dari suatu nostril yang kecil dan yang besar bergabung dengan tengah isthimus (daerah kerongkongan ikan pada bagian ventral mulai dari dada hingga muka) sebelum mulut. Jajaran cucuk kecil dan granula sering menutup permukaan ekor dan jantan dewasa (dengan klasper utama) mempunyai cucuk tajam yang
bertumpuk-tumpuk pada tepi cakram anterior. Nama Inggrisnya Skate (Gloerfelt dan Kailola, 1984).
Rajidae memiliki rasa yang mild, aroma yang gurih menggantikan scallop. Meskipun lunak pada saat baru ditangkap, tetapi dagingnya mengeras setelah dua hari dalam lemari es. Dagingnya berlemak rendah. Di pasar dapat ditemukan hanya bagian sayapnya (sirip pektoral) saja. Walau terkadang dapat juga keseluruhan tubuh. Di pasar tersedia dalam bentuk beku atau segar, dengan atau tanpa kulit. Berat tubuhnya dapat berkisar antara 4-5 kg atau 2,5 kg untuk masing- masing sayapnya (Perkins, 1992).
perikanan yang khusus menangkap ikan ini. Jika ditangani dengan baik, tidak ditemukan bahaya bagi kesehatan (Perkins, 1992).
• Myctophidae
Myctophidae atau ikan lentera adalah ikan pelagis dalam yang melimpah sekali pada semua lautan dan menunjukkan adanya migrasi vertikal ke lapisan atas pada malam hari. Gloerfelt dan Kailola (1984) mengemukakan hipotesis bahwa ikan ini makan di lapisan atas dan dimakan di lapisan bawah, bertindak sebagai suatu penghubung atau perantara pada sirkulasi makanan dari lapisan atas yang kaya ke lapisan bawah yang miskin makanan.
Ikan lentera mempunyai badan dan kepala yang kompres. Mata berkembang baik dan berukuran besar. Mulut besar, terminal atau subteminal dengan rahang memanjang hingga atau di bawah batas posterior mata. Gigi sangat beragam, tapi tidak ada gigi yang seperti taring. Sirip dorsal tunggal terletak tepat di depan permukaan sirip anal dan memiliki sirip adipose pada bagian dorsalnya. Cucuk rumenter sering muncul pada dasar sirip dorsal pertama, anal pertama, di luar ventral dan di atas sirip pektoral. Semua spesies memiliki sekumpulan fotofor pada kepala dan badan, serta organ cahaya lain muncul pada kepala dan atau pedunkel ekor. Susunan fotofor dan organ cahaya diperlihatkan pada spesies yang khusus dan menjadi salah satu karakteristik yang penting dalam identifikasi. Pada pemunculan organ cahaya, yang paling menarik perhatian adalah kelenjar suprakaudal yang disebut juga “pemburu buritan” (stern chaser). Diperkirakan bahwa organ ini mungkin digunakan sebagai mekanisme bertahan, diaktifkan untuk mengeluarkan cahaya pada saat pemangsa menyerang, kemudian dipadamkan untuk memberi kesempatan ikan melarikan diri sebelum penyerangan disempurnakan.
• Champsodontidae
Ikan kecil dengan bentuk tubuh yang panjang, kompres, ramping. Mulut sangat besar, miring, rahang bawah lebih panjang, gigi rahang lengkap, beberapa lebih panjang dan dapat ditekan, mata tinggi di kepala, umumnya dengan ciri yang pendek, sudut preoperkulum diakhiri dengan cucuk yang panjang-ramping; bukaan insang luas. Sisik kecil, stenoid dan granular, dua gurat sisi tak jelas dengan cabang transversal. Dua sirip dorsal yang terpisah jelas, yang pertama dengan 4-5 cucuk, yang kedua pada sirip anal dengan dasar yang panjang, masing- masing dengan 16-22 jari-jari sirip, sirip pektoral kecil, sirip ventral besar, permula annya sebelum dasar sirip pektoral, bentuk sirip ekor seperti garpu. Nama Inggrisnya Gapers, Sabre gills (Gloerfelt dan Kailola, 1984).
Informasi kandungan proksimat beberapa jenis ikan laut dalam untuk 100 gram (3,5 oz) mentah dalam porsi yang dapat dimakan diberikan oleh Nettleton (1985). Nilai ini disajikan dalam Tabel 3.
Tabel 3. Kandungan proksimat beberapa ikan laut dalam di New Zealand
Gemfish,
Dalam 100 gram daging ikan laut dalam
2.3 Mutu Ikan
segar adalah ikan yang masih mempunyai sifat sama seperti ikan hidup, baik berupa bau, rasa maupun teksturnya.
Pengamatan kesegaran ikan secara visual dapat menggunakan metoda 4 M, yaitu melihat, meraba, menekan dan mencium (Yunizal dan Wibowo, 1998). Parameter untuk menentukan kesegaran ikan dapat terdiri atas faktor fisikawi, sensorik atau organoleptik, kimiawi, maupun faktor mikrobiologi. Yang menjadi parameter fisikawi adalah kenampakan luar, kelenturan daging, keadaan mata, keadaan daging, keadaan insang dan sisik, dan keadaan ruas daging.
Yang termasuk parameter kimiawi antara lain adalah pH daging ikan, dan hasil- hasil akhir penguraian komponen-komponen daging ikan seperti misalnya kadar hipoksantin, kadar ammonia, dan kadar trimetilamin atau kadar dimetilamin. Sedangkan yang termasuk parameter sensorik umumnya dikaitkan dengan citarasa, warna dan kenampakan. Untuk parameter mikrobiologik yang paling umum digunakan adalah jumlah bakteri.
Oleh karena kualitas ikan selalu dikaitkan dengan kesegarannya dan kerusakan ikan, maka perlu diketahui bahwa mutu atau kualitas ikan sangat dipengaruhi oleh banyak faktor, antara lain yang terpenting adalah sebagai berikut (Hadiwiyoto, 1993) :
• Daerah penangkapan ikan, karena ada kaitannya dengan suhu lingkungan kehidupan ikan sehingga akan mempengaruhi jumlah dan jenis mikrofloranya. Adanya pencemaran pada daerah-daerah tertentu kemungkinan besar dapat mempengaruhi cita rasa daging ikan.
• Metode atau cara penangkapan dan pendaratan hasil perikanan termasuk juga jarak pengangkutan dari tempat penangkapan ke tempat pendaratan.
• Cara penangkapan pasca panen hasil perikanan, misalnya peralatan yang digunakan, penggunaan bahan-bahan pendingin (es), cara penyimpanan dan lain sebagainya.
• Keadaan cuaca, terutama suhu.
2.4 Asam amino
bersifat khas untuk setiap jenis protein (Winarno et al., 1980). Protein berbentuk molekul- molekul yang sangat besar, terbentuk dari asam amino yang terikat bersama. Susunan kimia berbagai asam amino mempunyai paling sedikit satu kelompok (NH3) dan satu kelompok karboksil (COOH) (Harper et al., 1988).
Asam amino dapat digolongkan berdasarkan sifat-sifat kandungan gugus R, terutama sifat polaritasnya yakni kecenderungan molekul untuk berinteraksi dengan air pada pH biologi (dekat pH 7,0). Terdapat empat golongan asam amino (Lehninger, 1993), yaitu (1) golongan dengan gugus R non polar / hidrofobik
(alanin, isoleusin, leusin, metionin, fenilalanin, prolin, triptofan, valin). (2) golongan dengan gugus R polar, tetapi tidak bermuatan (asparagin, sistein,
glutamin, glisin, serin, treonin, tirosin). (3) golongan dengan gugus R bermuatan negatif (asam aspartat dan asam glutamat). (4) golongan dengan gugus R bermutana positif (arginin, histidin dan lisin). Selain itu, berdasarkan hasil penguraiaannya, asam amino dibagi menjadi dua golongan, yaitu : golongan glukogenik (alanin, arginin, asparagin, asam aspartat, sistein, asam glutamat, glutamin, glisin, histidin, metionin, prolin, serin, treonin, triptofan dan valin) dan golongan ketogenik (leusin, lisin, dan triptofan). Sedangkan asam amino jenis fenilalanin dan tirosin termasuk dalam golongan ketogenik dan glukogenik.
Seperti tanaman, hewan dan manusia mensintesa protein yang mengandung 22 macam asam amino. Meskipun demikian tidak seperti tanaman, hewan dan manusia tidak dapat mensintesa semua asam amino. Asam amino yang tidak dapat disintesa hewan dan manusia digolongkan ke dalam asam amino esensial dan harus dipenuhi melalui bahan makanan. Sedangkan asam amino yang dapat disintesa hewan dan manusia disebut asam amino non esensial (Winarno, 1980).
2.5 Analisis Asam Amino dengan High Performance Liquid Chromatography (HPLC)
Kualitas suatu protein dapat ditentukan dengan mengetahui kandungan asam aminonya. Kandungan asam amino protein dapat ditentukan melalui analisis asam amino. Salah satu analisis asam amino adalah dengan kromatografi partisi cair-cair atau sering disebut dengan metode High Performance Liquid Chromatography (HPLC). Keuntungan menggunakan HPLC adalah daya ulangnya lebih baik, waktu yang dibutuhkan singkat, dari data kelarutan hasilnya telah dapat diramalkan, koefisien distribusinya konstan dalam kisaran konsentrasi yang agak luas dan mampu memisahkan senyawa yang sangat serupa dengan resolusi yang baik (Adnan, 1997).
Kromatografi partisi cair-cair memiliki fase stasioner (fase diam) dan fase mobile (fase gerak) yang berupa cairan atau pelarut yang tidak bercampur. Pelarut yang lebih polar biasanya digunakan sebagai fase stasioner. Secara umum dapat dikatakan bahwa kromatografi adalah suatu proses migrasi diferensial dimana komponen-komponen sampel ditahan secara selektif oleh fase diam (Sudarmadji et al., 1989). Pemisahan dengan partisi dipengaruhi terutama ole h perbedaan polaritas solut yang dipisahkan. Hal ini disebabkan polaritas merupakan faktor yang menentukan daya larut dan terjadinya adsorpsi solut. Proses partisi sangat tergantung dari daya larut solut dalam dua macam cairan, oleh karena itu sangat peka terhadap perbedaan berat molekul solut (Adnan, 1997).
Sebelum dilakukan analisis asam amino dengan kromatografi terlebih dahulu dilakukan pembuatan hidrolisat protein yang bertujuan untuk memutuskan ikatan peptidanya dengan hidrolisis asam atau hidrolisis basa. Hidrolisis asam yang umum digunakan yaitu HCl 6 N, menyebabkan kerusakan triptofan dan sedikit kerusakan juga terjadi pada serin dan treonin. Hidrolisis basa biasanya menggunakan NaOH 2-4 N dan tidak merusak triptofan tetapi menyebabkan deaminasi asam amino lain (Nur dan Adijuwana, 1989).
2.6 Bakteri
bakteri memiliki bentuk yang khas, seperti bola, batang atau spiral (Pelczar dan Chan, 1986).
Berdasarkan komposisi dari dinding sel, bakteri dibedakan menjadi bakteri gram positif dan bakteri gram negatif. Bakteri gram positif memiliki struktur dinding sel yang tebal (15-20 µm) dan berlapis tunggal, dengan komposisi dinding sel terdiri atas lipid, peptidoglikan dan asam tekoat. Bakteri gram positif rentan terhadap penisilin, namun lebih resisiten terhadap gangguan fisik (Pelczar dan Chan, 1986). Bakteri gram negatif memiliki struktur dinding sel berlapis tiga dengan ketebalan yang tipis (10-15 µm). Komposisi dinding sel terdiri atas lipid dan peptidoglikan yang berada dalam lapisan kaku. Umumnya bakteri ini kurang rentan terhadap penisilin dan kurang resisten terhadap gangguan fisik. Bakteri yang digunakan untuk uji aktivitas antibakteri pada penelitian ini adalah bakteri gram positif (Staphylococcus aureus) dan bakteri gram negatif (Escherichia coli).
2.6.1 Escherichia coli
Escherichia coli pada umumnya merupakan mikroba yang secara normal terdapat pada saluran pencernaan manusia dan hewan. Bakteri ini berbentuk batang atau koma, bersifat anaerob fakultatif dan tergolong sebagai bakteri gram negatif. Escherichia coli termasuk famili Enterobacteriaceae, berukuran panjang 2,0-6,0 µm dan lebar 1,1-1,5 µm serta tunggal atau berpasangan. Nilai pH optimum untuk pertumbuhannya adalah 7,0-7,5 serta kisaran suhu pertumbuhannya 10-40 oC, dengan suhu optimum 37 oC dan aw optimum 0,96 (Fardiaz, 1992). Bakteri ini sensitif terhadap antibiotik jenis sulfonamid, kloramfenikol, kanamisin dan penisilin (Tortora et al., 1989). Morfologi bakteri Escherichia coli (Wisconsin, 2002) dapat dilihat pada Gambar 1.
2.6.2 Staphylococcus aureus
Staphylococcus aureus termasuk ke dalam bakteri gram positif anaerob fakultatif. Bentuknya tunggal, berpasangan atau bergerombol. Diameternya 0,5-1,5 µm, tidak berkapsul dan berspora. Metabolisme secara fermentatif dan respiratif (Pelczar dan Chan, 1986). Morfologi bakteri Staphylococcus aureus (Wisconsin, 2002) dapat dilihat pada Gambar 2.
Gambar 2. Bakteri Staphylococcus aureus
Perkembangbiakan Staphylococcus aureus optimum pada suhu 35-37oC dan pH 6-7. Namun pada kisaran suhu 6,7-45,5 oC serta pH 4,0-9,8 bakteri ini masih dapat tumbuh dan berkembang biak. Staphylococcus aureus merupakan bakteri patogen yang menyebabkan keracunan dan penyakit pada hewan peliharaan. Staphylococcus aureus umumnya sensitif terhadap antibiotik ß-laktam, tertrasiklin dan kloramfenikol, tetapi resisten terhadap polimisin dan polyenes (Pelczar dan Chan, 1986).
2.7 Ekstraksi
Beberapa pertimbangan dalam memilih pelarut (Achmadi, 1992), yaitu : 1. Pelarut polar akan melarutkan senyawa polar dan pelarut non polar akan
melarutkan senyawa non polar.
2. Pelarut organik cenderung melarutkan zat terlarut organik.
3. Air cenderung melarutkan senyawa anorganik dan garam dari asam maupun basa organik.
4. Asam-asam organik yang larut dalam pelarut organik dapat diekstraksi ke dalam air dengan menggunakan basa (NaOH, Na2CO3 dan NaHCO3).
Beberapa zat terutama bahan alam dapat dipisahkan dari padatannya dengan ekstraksi sederhana (Achmadi, 1992). Teknik paling sederhana untuk mengekstraksi bahan padatan ialah dengan mencampurkannya dalam larutan pengekstraksi, dibantu dengan pengadukan menggunakan alat pengaduk, lalu dipisahkan melalui penyaringan biasa atau vakum.
2.8 Antimikroba
Zat antimikroba adalah senyawa biologis atau kimia yang dapat menghambat pertumbuhan atau aktivitas mikroba. Zat antimikroba khusus untuk bakteri disebut antibakteri, dapat bersifat bakterisidal (membunuh bakteri) dan bakteriostatik (menghambat pertumbuhan bakteri). Zat yang menghambat kapang disebut antikapang (Fardiaz, 1989). Senyawa antimikroba adalah jenis bahan tambahan makanan yang digunakan dengan tujuan untuk mencegah kebusukan atau keracunan oleh mikroorganisme pada bahan pangan (Branen dan Davidson, 1993).
Efektifitas antimikroba dalam mengawetkan bahan makanan terjadi baik dengan cara mengontrol pertumbuhan mikroorganisme maupun secara langsung memusnahkan seluruh atau sebagian mikroorganisme (Branen dan Davidson, 1993). Mekanisme zat antimikroba dalam membunuh atau menghambat pertumbuhan mikroba antara lain : (1) merusak dinding sel bakteri sehingga mengakibatkan lisis atau menghambat pembentukan dinding sel pada sel yang sedang tumbuh, (2) mengubah permeabilitas membran sitoplasma yang menyebabkan kebocoran nutrien dari dalam sel, misalnya yang disebabkan oleh senyawa fenolik, (3) menyebabkan denaturasi sel, misalnya oleh alkohol dan (4) menghambat kerja enzim di dalam sel (Pelczar dan Reid, 1977).
Beberapa faktor yang mempengaruhi efektifitas antimikroba adalah : (1) jenis, jumlah, umur dan latar balakang kehidupan mikroba, (2) konsentrasi zat antimikroba, (3) suhu dan waktu kontak dan (4) sifat fisikokimia substrat (pH, kadar air, tegangan permukaan, jenis dan zat terlarut). Sebagai pengawet makanan, zat antimikroba yang ditambahkan sebaiknya memenuhi kriteria ideal, yaitu mempunyai aktifitas yang luas, tidak beracun, ekonomis, tidak menyebabkan perubahan cita rasa dan aroma pada makanan, aktifitasnya tidak menurun dengan adanya komponen makanan, tidak resisten dan tidak hanya menghambat tetapi dapat membunuh mikroba (Frazier dan Westhoff, 1978).
2.9 Uji Toksisitas
Uji toksisitas diperlukan untuk mengevaluasi, memonitor dan memprediksi bahaya dari zat racun bagi organisme lingkungan (Trevors, 2000). Banyak metode yang digunakan untuk menguji tingkat toksisitas dari suatu bahan. Metode yang digunakan pada penelitian ini yaitu uji toksisitas menggunakan Artemia salina.
2.9.1 Uji toksisitas dengan Artemia salina
Artemia yang digunakan dalam bentuk telur istirahat yang disebut dengan kista. Kista yang berkualitas baik akan menetas sekitar 18-24 jam. Umumnya artemia tumbuh dengan baik pada kisaran suhu 25-30 oC, kadar garam antara 30-50 ppt dan pH air laut untuk budidayanya berkisar antara 7,5-8,5 (Isnansetyo dan Kurniastuty, 1995).
Uji toksisitas dengan menggunakan kultur artemia dikembangkan oleh Michael et al. (1956) yang diacu dalam Carballo et al. (2002). Teknik ini didasarkan kepada kemamp uan bahan untuk membunuh kultur artemia yang telah dibiakkan dalam air laut dengan kadar salinitas tertentu (Carballo et al., 2002).
Tingkat toksisitas ditentukan dengan nilai LC50. Nilai LC50 menunjukkan
konsentrasi dari bahan kimia di lingkungan (air atau udara) yang mampu membunuh 50% dari binatang uji pada suatu waktu tertentu (CCOHS, 1999). Nilai LC50 yang diperoleh menunjukkan kategori toksisitas dari suatu bahan.
Tabel 4 berikut menunjukkan kategori toksisitas tersebut (Kamrin, 1997).
Tabel 4. Kategori toksisitas bahan
Kategori LC50 (µg/L)
Toksisitas sangat tinggi < 100
Toksisitas tinggi 100-1000
Toksisitas sedang 1000-10000
Toksisitas rendah 10000-100000
Tidak toksik >1000000
3. METODOLOGI
3.1 Bahan dan Alat
Bahan utama yang digunakan adalah ikan laut dalam yang diperoleh dari kapal Baru Jaya IV yang singgah di Tanjung Priok dalam keadaan beku dengan suhu -5 oC. Ikan tersebut ditangkap dari perairan selatan Jawa pada kedalaman 250-1000 m dengan menggunakan jaring trawl. Penelitian ini bekerjasama dengan Balai Riset Perikanan dan Kelautan sebagai pihak penyedia sampel ikan laut dalam. Panjang ikan laut dalam yang diteliti antara 12-72,5 cm. Jenis ikan laut dalam tersebut adalah ikan Coelorincus longissimus, Coryphaenoides sp., Diapus fragillis, Hydrolagus sp., Ophidiidae sp., Glyptophidian sp., Parascoplopsis sp., ikan famili Pereichthydae, famili Nomeidae, famili Ophidiidae, dan satu jenis ikan yang belum teridentifikasi. Gambar ikan laut dalam dapat dilihat pada Gambar 3. Selain itu, bahan-bahan yang digunakan adalah bakteri uji Staphylococcus aureus, Escherichia coli, hewan uji Artemia salina. Bahan kimia yang digunakan adalah kloroform, etil asetat, metanol, yeast extract, NaCl, pepton, agar, akuades, alkohol, spiritus, kloramfenikol, Na-asetat, asetonitril, trimetilxylena, HCl, N2, trimetilasetat, penilisotiosiant, H2SO4, Tablet
Kjelteb, NaOH, petroleum benzen dan air laut.
Gambar 3. Beberapa ikan laut dalam perairan selatan Jawa
3.2 Metode Penelitian
Penelitian ini terdiri dari dua tahap, yaitu tahap pertama dan tahap kedua. Tahap pertama adalah untuk mengkaji tingkat kesegaran ikan dan kandungan gizi beberapa ikan laut dalam yang meliputi analisis proksimat dan analisis asam amino. Tahap kedua adalah ekstraksi senya wa bioakif pada daging ikan laut
Ophidiidae sp. Panjang : 17,5 cm Kedalaman : 800 m
Coelorincus longissimus Panjang : 16 cm Kedalaman : 710 m
Belum teridentifikasi Panjang : 24 cm Kedalaman : 710 m
Parascolopsis sp. Panjang : 12,2 cm Kedalaman:250-500 m Coryphaenoides sp.
Panjang : 13 cm Kedalaman : 500 m Pereichthydae
Panjang : 16 cm Kedalaman:250-500 m
Diapus fragillis Panjang : 12 cm Kedalaman:250-500 m Hydrolagus sp.
Panjang : 72,5 cm Kedalaman : 590 cm Nomeidae
Panjang : 15,5 cm Kedalaman:250-500 m
Glytophidian sp. Panjang : 18 cm Kedalaman : 800 m Ophidiidae
dalam kemudian dilanjutkan dengan melakukan uji aktifitas antibakteri dan uji toksisitas untuk mengkaji ada tidaknya kandungan senyawa antibakteri pada beberapa daging ikan laut dalam.
3.2.1 Uji organoleptik (BPPMHP, 1993)
Pengujian kesegaran ikan laut dalam dalam penelitian ini menggunakan uji organoleptik. Pengujian organoleptik merupakan cara pengujian dengan menggunakan indera manusia sebagai alat utama untuk mengukur daya penerimaannya terhadap ikan. Untuk uji organoleptik ikan segar (SNI 01-2346-1991), sasaran alat indera ini adalah konsistensi, penampakan mata, insang. Metode yang digunakan dalam pengujian organoleptik adalah scoring test yaitu menggunakan skala angka. Skala angka terdiri dari angka 1-9 dengan spesifikasi untuk tiap angka yang dapat memberi pengertian tertentu bagi panelis. Nilai pengujian dicantumkan oleh panelis pada score sheet (lembar penilaian). Nilai penilai terhadap kesegaran ikan meliputi mata, insang, lendir di permukaan, tekstur , dan bau. Hasil penilaian diambil rata-ratanya dan dikelompokkan pada kriteria ikan segar, agak segar atau tidak segar. Contoh lembar penilaian dapat dilihat pada Lampiran 1.
3.2.2 Analisis proksimat
Analisis proksimat yang dilakukan meliputi kadar protein, lemak, air, abu dan karbohidrat.
• Kadar air (Apriyantono et al., 1989)
Perhitungan :
B - C
% Kadar Air = x 100 % B - A
Keterangan : A = gram cawan
B = gram cawan dan sampel basah C = gram cawan kering
• Kadar abu (Apriyantono et al., 1989)
Cawan porselin dipijarkan sampai merah dalam tungku pengabuan bersuhu sekitar 650 oC selama 1 jam. Setelah suhu tungku turun menjadi sekitar 200 oC, cawan didinginkan dalam desikator selama 30 menit dan ditimbang (A gram). Lalu cawan ditimbang dengan sampel yang sudah dihomogenkan (B gram) dengan sampel sebanyak 5 gram. Kemudian cawan dan sampel dimasukkan ke dalam tungku pengabuan dan diatur suhu secara bertahap hingga suhu 650 oC untuk dilakukan pengabuan hingga abu berwarna putih. Setelah tungku pengabuan turun menjadi sekitar 200 oC. Cawan didinginkan selama 30 menit dan ditimbang beratnya (C gram).
Perhitungan :
C - A
% Abu = x 100% B – A
Keterangan : A = gram cawan
B = gram cawan dan sampel basah C = gram cawan kering
• Kadar protein (Apriyantono et al., 1989)
a). Destruksi
% Protein = % Nitrogen x faktor konversi (6,25) Adapun reaksi yang terjadi :
Komponen Nitrogen Organik H2SO4 CO2 + H2O + (NH4)2SO4
Katalis (Kjeltab)
Bahan katalis yang sering digunakan antara lain merkuri (Hg), Ag atau Selenium (Se). Tablet Kjelteb tersebut terdiri dari campuran unsur K2SO4 dan Se.
Kemudian dilakukan destruksi hingga warna larutan berubah menjadi bening. b). Destilasi
Labu hasil destruksi didinginkan dan dimasukkan ke dalam labu penyuling, kemudian diencerkan dengan 200 ml air yang tidak mengandung nitrogen dan ditambahkan beberapa butir batu didih serta 100 ml NaOH agar larutan menjadi basa. Labu penyuling dipasang dengan cepat di atas alat penyuling. Proses ini berlangsung sampai semua nitrogen tertangkap oleh H2SO4
yang ada di dalam erlenmeyer atau bila 2/3 bagian dari cairan dalam labu telah menguap.
c). Titrasi
HCl dimasukkan ke dalam buret, lalu dilakukan titrasi hingga warna larutan pada erlenmeyer berubah menjadi merah muda, kemudian dicatat volume HCl yang digunakan :
14,01 x (A-B) x C % N = D
Keterangan : A = ml titrasi B = ml titrasi blanko
C = Molaritas asam standar D = mg sampel
• Kadar lemak (Apriyantono et al., 1989)
pada suhu sekitar 40 oC. Setelah ekstraksi selesai, dikeluarkan selongsong yang berisi sampel. Pelarut lemak yang ada dalam labu lemak didestilasi sehingga semua pelarut lemak menguap, kemudian labu lemak dikeringkan dalam oven pada suhu 105 oC selama 3-5 jam. Labu lemak yang sudah didinginkan ditimbang dalam desikator sampai berat konstan (W3).
W3 – W2
% Lemak = x 100% W1
Keterangan : A = gram cawan
B = gram cawan dan sampel basah
C = gram cawan kering
• Kadar karbohidrat (Winarno, 1992)
Kadar karbohidrat diperoleh dengan menghitung selisih dari empat komponen yaitu kadar air, protein, lemak dan abu. Perhitungannya sebagai berikut:
% Karbohidrat = 100% - (% air + % lemak + % protein + % Abu)
3.3.3 Analisis asam amino (Nur, Adijuwana 1989)
Komposisi asam amino ditentukan dengan menggunakan HPLC. Jenis HPLC yang digunakan dalam penelitian ini adalah HPLC Water dengan prinsip pemisahan asam amino berdasarkan sifat asam dan basanya menggunakan kolom pico tag amino acid water. Prosesnya menggunakan Na-asetat : asetonitril (60 : 40) sebagai fase gerak dan trimetilxylena sebagai fase diam. Uraian proses selengkapnya adalah sebagai berikut :
a) Hidrolisis asam
Ditimbang 0,25 gram contoh dalam tabung reaksi tertutup, kemudian ditambahkan 5 ml HCl 6 N dan dialiri dengan gas N2 dan ditutup. Setelah itu,
dimasukkan ke dalam oven bersuhu 100 oC selama 18-24 jam, cairan contoh disaring dengan menggunakan kertas saring.
b) Pengeringan
Cairan contoh hasil hidrolisis dipipet sebanyak 10 µl ke dalam tabung
trietilasetat = 2 : 2 : 1). Setelah itu bahan tersebut dikeringkan dengan pompa vakum bertekanan 50 Torr (3x).
c) Derivatisasi
Larutan derivat (methanol : trimetilasetat : penilisotiosianat = 7 : 1 : 1).
Ditambahkan sebanyak 30 µl ke dalam contoh yang telah dikeringkan. Kemudian dibiarkan ± 20 menit, lalu dikeringkan dengan pompa vakum bertekanan 50 Torr.
Setelah itu, contoh yang telah kering diencerkan dengan 200 µl larutan pengencer (Na-asetat 1M), sehingga diperoleh larutan contoh yang siap dianalisis.
d) Analisis asam amino dengan alat HPLC
Kondisi alat HPLC pada saat dilakukan analisis : 1. Temperatur kolom : 38oC
Untuk analisis kuantitatif dapat dihitung dengan cara :
Keterangan :
C = Konsentrasi LA = Luas area
Fp = Faktor pengenceran
BM = Bobot molekul (Lampiran 3
3.3.4 Ekstraksi senyawa antibakteri ikan laut dalam
Senyawa antibakteri dari ikan laut dalam diperoleh dengan cara mengekstrak daging ikan laut dalam. Metode ekstraksi yang dilakukan pada penelitian ini mengikuti metode Quinn (1988) diacu dalam Darusman et al.
(1995) yang telah dimodifikasi. Sebelum proses ekstraksi dimulai, ikan laut dalam disiangi, dicuci dan diambil bagian dagingnya. Daging ikan dipotong dihaluskan dengan mortar. Beberapa gram daging ikan ditimbang dengan menggunakan timbangan analitik lalu dimasukkan ke dalam erlenmeyer. Masing-masing sampel daging ikan kemudian dicampur pelarut dengan perbandingan pelarut dan sampel daging ikan 2:1. Pelarut pertama yang digunakan adalah kloroform. Kemudian sampel dimaserasi selama 24 jam untuk memastikan senyawa antibakteri yang terdapat pada daging ikan laut dalam terlarut dalam pelarut. Selama proses ekstraksi, bagian atas erlenmeyer ditutup dengan kertas alumunium foil untuk mencegah terjadinya penguapan senyawa volatil dari bahan. Setelah 24 jam, sampel disaring dengan menggunakan kertas saring whatman untuk memisahkan filtrat dengan ampasnya sehingga diperoleh filtrat dan ampas pertama. Ampas pertama dimaserasi lagi dengan pelarut etil asetat selama 24 jam, disaring dan diperoleh filtrat dan ampas kedua. Ampas kedua dimaserasi lagi dengan pelarut metanol selama 24 jam, disaring dan diperolah filtrat dan ampas ketiga.
Kemudian filtrat I, II dan III dievaporasi dengan menggunakan rotary evaporator suhu 40 oC diperoleh ekstrak kasar kloroform, etil asetat dan metanol. Diagram alir ekstraksi senyawa bioaktif dapat dilihat pada Gambar 4.
3.3.5 Uji senyawa antibakteri
• Persiapan media cair (Lauria Broth)
Daging ikan
Penghancuran
Penimbangan
Ektraksi 24 jam (Maserasi dengan kloroform)
Penyaringan
Penyaringan Ektraksi 24 jam (Maserasi dengan etil asetat)
Penyaringan Evaporasi
Evaporasi
Ektraksi 24 jam (Maserasi dengan metanol) Evaporasi
Filtrat
Ekstrak I Filtrat
Ekstrak II
Ekstrak III Filtrat Ampas
Ampas Ampas
Gambar 4. Diagram alir proses ekstraksi senyawa bioaktif daging ikan laut dalam (metode Quinn, 1988, diacu dalam Darusman et al.,
• Persiapan media padat (Lauria Agar)
Media padat yang digunakan dalam uji antibakteri adalah media Lauria Agar. Komposisi media padat yang digunakan terdiri dari: tryp ton 1 gram, yeast extract 0,5 gram, NaCl 1 gram dan agar 1,8 gram yang semuanya dilarutkan dalam 100 ml akuades denga n pH 7,0. Media tersebut dihomogenkan dengan menggunakan hotplate pada suhu 100 oC sampai mendidih dan dipipet 15 ml ke dalam tabung reaksi. Tabung reaksi ditutup dengan menggunakan kapas dan kasa. Kasa digunakan untuk mengikat kapas agar tetap menyatu. Media tersebut kemudian disterilisasi pada 121 oC selama 15 menit. Media didinginkan pada suhu ruang.
• Uji Aktifitas Senyawa Antibakteri
Uji aktivitas senyawa antibakteri dilakukan dengan metode difusi agar (Bauer et al., 1966, diacu dalam Jamal et al., 2003). Bakteri uji Staphylococcus aureus dan Escherichia coli dengan optical density (OD600) masing- masing 0,540
dan 0,620 diambil sebanyak 20 µl kemudian dipipet kedalam media Lauria agar. Media tersebut dihomogenkan dengan menggunakan vortex dan dituangkan ke dalam cawan steril dalam kondisi aseptik. Media dalam cawan digoyang secara perlahan supaya merata dan dibiarkan mengeras. Kemudian media dibekukan dalam refrigerator selama ± 30 menit dalam posisi cawan terbalik.
Sebanyak 20 µ l larutan ekstrak diteteskan pada kertas cakram steril dan dibiarkan sampai terserap. Kemudian kertas cakram diletakkan di atas media yang telah membeku sambil sedikit ditekan dengan menggunakan pinset. Besarnya konsentrasi ekstrak yang digunakan adalah 100 µg/ml, 200 µg/ml, 300 µg/ml, 600 µg/ml dan 700 µg/ml disesuaikan dengan jumlah rendemen ekstrak masing- masing ikan laut dalam yang diperoleh. Hal ini dilakukan untuk memperoleh konsentrasi maksimal dari masing- masing jumlah ekstrak daging ikan laut dalam yang akan diuji ada tidaknya kandungan senyawa antibakteri. Sebagai kontrol, digunakan kloramfenikol dengan konsentrasi 1 µg/ml.
Bakteri 20 µl dimasukkan ke dalam 15 ml media agar
Kertas cakram diberi ekstrak 20 µl dengan masing- masing konsentrasi 100 µg/ml, 200 µg/ml, 300 µg/ml, 600 µg/ml, dan 700 µg/ml.
Inkubasi pada suhu 37 oC selama 12-18 jam dalam posisi cawan terbalik
Kertas cakram diletakkan di atas media agar yang berisi bakteri dalam cawan petri
Pendinginan dalam refrigerator selama 30 menit
Pendinginan dalam laminer Media + bakteri dimasukkan ke dalam cawan petri
Homogenisasi
Pendinginan dalam refrigerator selama 30 menit
Pengamatan dan pengukuran zona bening
diukur dengan mengurangi diameter zona bening yang terbentuk dikurangi diameter kertas cakram. Diagram alur uji aktifitas senyawa antibakteri dapat dilihat pada Gambar 5.
3.3.6 Uji toksisitas
Uji toksisitas senyawa bioaktif terhadap Artemia salina bertujuan ada tidaknya kandungan antibaktri pada ikan laut dalam. Uji toksisitas terhadap
Artemia salina dilakukan berdasarkan metode Michael et al. (1956), diacu dalam Carballo et al. (2002).
• Penetasan Artemia salina
Artemia salina yang digunakan dalam bentuk telur istirahat yang disebut kista sehingga perlu proses penetasan terhadap kista Artemia salina tersebut. Sebanyak 1,2 gram kista kering Artemia salina ditetaskan dalam 500 ml air laut, salinitas 30 ppt dengan pH air laut 7,5. Kultur Artemia salina diaerasi selama 48 jam dengan diberi pencahayaan yang cukup.
• Uji Toksisitas
Gambar 6. Diagram alir uji toksisitas dengan Artemia salina (metode Michael et al., 1956, diacu dalam Carballo et al., 2002).
Artemia salina diambil 15 ekor dengan pipet tetes dimasukkan ke dalam wadah yang berisi 20 ml air laut
Pengamatan dilakukan setelah 24 jam dengan menghitung jumlah Artemia
salina yang mati
Aerasi dan pencahayaan yang cukup
Tingkat toksisitas ditentukan dengan LC50
1,2 gram kista Artemia salina
Penetasan artemia dalam 500 ml air laut, 30 ppt, pH 7,5 dg aerasi dan pencahayaan yang cukup selama 48 jam sampai kista menetas
4. HASIL DAN PEMBAHASAN
4.1 Karakteristik Beberapa Ikan Laut Dalam
Ikan laut dalam adalah ikan yang hidup di bawah kedalaman yang dapat diterangi sinar matahari di laut terbuka dan lebih dalam dari paparan benua (>200 m). Sampel ikan laut dalam ditangkap dari perairan selatan Jawa pada bulan September 2004 dengan menggunakan jaring trawl yang berukuran besar pada tingkat kedalaman yang berbeda-beda, yaitu antara 250-1000 m. Oleh karena itu, diduga bahwa sampel beberapa ikan laut dalam yang ditangkap merupakan ikan- ikan mesopelagis. Panjang ikan dan tingkat kedalaman beberapa ikan laut dalam di perairan selatan Jawa dapat dilihat pada Tabel 5.
Ikan hasil tangkapan dimasukkan dalam cold storage kapal dengan suhu -5 oC. Adapun waktu pengambilan beberapa ikan laut dalam yang diteliti dilakukan pada tanggal 21 September 2004 langsung dari kapal Baruna Jaya IV yang singgah di pelabuhan Tanjung Priok, Jakarta Selatan. Selanjutnya ikan dimasukkan dalam freezer dengan suhu -18 oC di laboratorium Preservasi dan Rekayasa, Departemen Teknologi Hasil Perairan. Ikan laut dalam yang diteliti berjumlah 11 jenis dengan masing- masing jenis berjumlah 1-4 ekor yang terdiri dari ikan Coelorincus longissimus, Coryphaenoides sp., Parascolopsis sp., Diapus fragillis, Hydrolagus sp., Glytophidian sp., Ophidiidae sp., ikan famili Pereichthydae, famili Nomeidae, famili Ophidiidae, dan satu jenis ikan yang belum teridentifikasi. Identifikasi ikan dilakukan oleh pihak BRKP yang bekerjasama dengan pihak Jepang.
Tabel 5. Panjang ikan dan tingkat kedalaman beberapa ikan laut dalam di perairan selatan Jawa
Nama Ikan Panjang ikan (cm) Kedalaman (m)
Coelorincus longissimus 16 710
Coryphaenoides sp. 13 500
Famili Pereichthydae 16 250-500
Ophidiidae sp. 17,5 800
Famili Nomeidae 15,5 250-500
Diapus fragillis 12 250-500
Parascolopsis sp. 12,2 250-500
Glytophidian sp. 18 800
Hydrolagus sp. 72,5 590
Famili Ophidiidae 42,5 800
Belum teridentifikasi 24 710
Selain itu, beberapa ikan laut dalam yang ditangkap, rata-rata mempunyai ukuran mata yang besar. Jika dibandingkan dengan besar tubuhnya, ukuran mata ikan-ikan ini jauh lebih besar daripada ikan-ikan epipelagis. Mata yang besar memberikan kemampuan maksimum untuk mendeteksi cahaya di dalam perairan dimana intensitas cahaya sangat rendah, dan mungkin diperlukan untuk mendeteksi cahaya berintensitas rendah yang dihasilkan oleh organ-organ penghasil cahaya (Nybakken, 1992).
4.2 Tingkat Kesegaran Beberapa Ikan Laut Dalam
Kesegaran adalah parameter untuk membedakan ikan yang jelek dan ikan yang baik kualitasnya. Ikan dikatakan masih segar jika perubahan-perubahan biokimia, mikrobiologi dan fisika yang terjadi belum menyebabkan kerusakan pada ikan. Istilah “segar“ tercakup dua pengertian yaitu yang pertama, “baru saja ditangkap, tidak disimpan atau diawetkan”, dan yang kedua, “mutu masih original, belum mengalami kemunduran” (Ilyas, 1983).
menggunakan skala angka. Skala angka terdiri dari angka 1-9 dengan spesifikasi untuk tiap angka yang dapat memberi pengertian tertentu bagi panelis. Nilai pengujian dicantumkan oleh panelis pada score sheet (lembar penilaian). Hasil uji organoleptik beberapa ikan laut dalam perairan selatan Jawa dapat dilihat pada Tabel 6 sedangkan hasil rata-rata uji organoleptik beberapa ikan laut dalam di perairan selatan Jawa dapat dilihat pada Tabel 7.
Tabel 6. Hasil uji organoleptik beberapa ikan laut dalam perairan selatan Jawa
Kode Ikan A B 3 5 C D 11 12 13 14 15 Mata 4,1 3,2 2,4 4,6 4,0 5,8 4,1 1,9 1,3 2,5 3,4 Insang 3,8 4,1 5,8 2,5 5,5 2,8 5,5 3,1 3,4 4,1 5,2 Lendir di permukaan kulit 5,6 4,5 5,5 5,5 7,4 5,8 7,7 4,6 7,6 4,9 5,8 Tekstur 4,3 4,4 3,4 4,0 5,2 4,0 7,0 3,7 3,7 3,7 4,0 Bau 3,5 3,8 6,2 6,3 6,5 6,3 6,7 6,1 6,0 5,9 5,4
Keterangan (kode ikan) :
A : Coelorinchus longissimus B : Coryphaenoides sp.
C : Famili Pereichthydae D : Ophidiidae sp.
3 : Famili Nomeidae 5 : Diapus fragilis
11 : Parascolopsis sp. 12 : Glytophidian sp.
13 : Hydrolagus sp. 14 : Famili Ophidiidae
15 : Belum teridentifikasi
Tabel 7. Hasil rata-rata uji organoleptik beberapa ikan laut dalam di perairan selatan Jawa
Organoleptik Rata-rata
Mata 3,4
Insang 4,2
Lendir di permukaan kulit 5,9
Tekstur 4,4
Bau 5,7
Keterangan :
Segar : bila nilai organoleptik berkisar antara 7 – 9
Agak segar : bila nilai organoleptik berkisar antara 5 – 7
Tidak segar : bila nilai organoleptik berkisar antara 1 – 5
famili Ophidiidae, dan satu jenis ikan yang belum teridentifikasi rata-rata berada pada kisaran nilai organoleptik 3-6. Hal ini berarti kesegaran ikan berada dalam kondisi antara agak segar dan tidak segar. Faktor yang mempengaruhi mutu kesegaran ikan, adalah daerah penangkapan ikan, metode atau cara penangkapan dan pendaratan hasil perikanan termasuk juga jarak pengangkutan dari tempat penangkapan ke tempat pendaratan, cara penangkapan pasca panen hasil
perikanan, cara penyimpanan dan keadaan cuaca, terutama suhu (Hadiwiyato, 1993).
4.3 Hasil Analisis Proksimat
Analisis proksimat dilakukan untuk mengetahui kandungan gizi yang terdapat pada ikan laut dalam. Kandungan gizi tersebut melip uti protein, lemak, abu dan air. Kadar protein diketahui dengan menggunakan metode Kjeldal, kadar lemak dengan metode Soxhlet, kadar air dan abu dengan menggunakan metode Oven (Apriyantono et al., 1989). Tingkat kesegaran beberapa ikan laut dalam yang dianalisis mempunyai kisaran antara agak segar dan tidak segar. Hasil analisis proksimat dapat dilihat pada Tabel 8 dan Gambar 7 sampai Gambar 10.
Famili NomeidaeDiapus fragillisParascolopsis sp.Glytophidian sp.Hydrolagus sp.Famili Ophidiidae
Belum teridentifikasi Spesies Ikan Laut Dalam
Kadar Protein (%)
Gambar 7. Diagram batang kadar protein beberapa ikan laut dalam di perairan selatan Jawa
Hydrolagus sp.Famili O
phidii
Gambar 8. Diagram batang kadar lemak beberapa ikan laut dalam di perairan selatan Jawa
Ophidiidae sp.Famili N
omeid
80.5 78.8
Ophidiidae sp.Famili NomeidaeDiapus fragillis
Paras
Gambar 10. Diagram batang kadar air beberapa ikan laut dalam di perairan selatan Jawa
Tabel 8 dan Gambar 7 sampai Gambar 10 menunjukkan bahwa beberapa ikan laut dalam di perairan selatan Jawa dengan tingkat kesegaran antara agak segar dan tidak segar mempunyai kandungan gizi yang berbeda-beda. Kandungan protein beberapa ikan laut dalam berkisar antara 11,18-18,16%. Protein ikan merupakan komponen terbesar dalam jumlahnya setelah air, dan merupakan bagian yang sangat berguna bagi manusia. Protein ikan mengandung 10 jenis asam amino yang diperlukan oleh tubuh, yaitu asam amino esensial dan 10 jenis asam amino non esensial. Jumlah asam amino pada ikan lebih banyak dibandingkan jumlah asam amino yang ada pada daging sapi atau daging ayam (Hadiwiyoto, 1988). Selain itu, daging ikan mempunyai serat protein lebih pendek daripada serat protein daging sapi atau daging ayam, sehingga ikan lebih mudah dicerna dan diabsorpsi oleh tubuh.
tidak jenuh jumlahnya 79-83% dari seluruh asam lemak ya ng ada dalam tubuh ikan (Hadiwiyoto, 1988).
Kandungan air pada daging ikan terdapat dalam bentuk air bebas dan air terikat. Air bebas terdapat pada ruang-ruang antar sel dan plasma. Air bebas ini melarutkan berbagai vitamin, garam mineral dan senyawa-senyawa nitrogen tertentu. Air terikat terdapat dalam beberapa bentuk, yaitu terikat secara kimiawi, terikat secara fisikokimia dan terikat karena daya kapiler. Jumlah air pada daging ikan menempati urutan pertama atau komponen terbesar. Kandungan air pada ikan akan semakin bertambah dengan menurunnya tingkat kesegaran ikan. Kandungan air beberapa ikan laut dalam berkisar antara 70,49-86,10%. Tingginya kandungan air pada beberapa ikan laut dalam menyebabkan rendahnya kandungan protein ikan. Selama proses pembusukan, daging ikan menjadi rusak, kehilangan tekstur dan berair. Kerusakan komponen-komponen daging, terutama protein, dapat menyebabkan terlepasnya ikatan- ikatan air sehingga kemampuannya untuk menahan air. Air akan keluar dari sel-sel berupa tetes-tetes air sehingga menyebabkan daging ikan menjadi berair (Hadiwiyoto, 1988).
Jika dibandingkan dengan kandungan proksimat beberapa ikan pelagis seperti yang tercantum pada Tabel 9, maka kandungan proksimat beberapa ikan laut dalam lebih rendah dari pada ikan pelagis terutama dari segi kandungan proteinnya. Komposisi daging ikan bervariasi tergantung pada spesies, jenis kelamin, habitat dan musimnya (Zaitsev et al., 1969 diacu dalam Septarina, 1999). Habitat ikan laut dalam mempunyai karakteristik berbeda dengan habitat ikan pelagis. Karakteristik zona epipelagis dan mesopelagis dapat dilihat pada Tabel 10.
Tabel 10. Karakteristik zona epipelagis dan mesopelagis Zona Karakteristik
Epipelagis (0-100 atau 200 m)
Mesopelgis (100 atau 200 sampai 1000 m)
Intensitas cahaya Cukup untuk fotosintesis
Zona twilight
Persediaan makanan Terjadi produktivitas primer
Sedikit atau tidak ada produktivitas primer, organisme migrasi ke atas untuk makanan atau menunggu makanan jatuh Suhu Biasanya sekitar 28oC
sampai 10oC; kadang-kadang mendekati 0oC di musim dingin
Biasanya sekitar 15-5oC
Salinitas Biasanya sekitar 37-32‰
Biasanya sekitar 35-34.5‰;air tengah dari
lintang tinggi memiliki salinitas lebih kecil Kandungan oksigen Biasanya sekitar
7-3.5‰
Biasanya sekitar 5-4‰, dengan nilai lebih kecil dari 1 pada oksigen minimum
Kandungan nutrisi (phospat di lingkungan pelagis dan karbon
Tabel 11. Tipe-tipe ikan berdasarkan kandungan protein dan lemaknya Kandungan
Tipe Kategori
Protein (%) Lemak (%)
A Protein tinggi, lemak rendah 15 – 20 < 5 B Protein tinggi , lemak sedang 15 – 20 5 – 15 C Protein rendah, lemak tinggi < 15 > 15 D Protein sangat tinggi, lemak rendah > 20 < 5
E Protein rendah, lemak rendah < 15 < 5
Sumber : Stansby dan Olcott (1963) diacu dalam Santoso (1998).
Tabel 12. Tipe-tipe beberapa ikan laut dalam berdasarkan kandungan protein dan lemaknya
Nama Ikan Tipe Kategori
Coelorincus longissimus E Protein rendah, lemak rendah Coryphaenoides sp. A Protein tinggi, lemak rendah Famili Pereichthydae A Protein tinggi, lemak rendah
Ophidiidae sp. A Protein tinggi, lemak rendah
Famili Nomeidae B Protein tinggi, lemak sedang Diapus fragillis A Protein tinggi, lemak rendah Parascolopsis sp. A Protein tinggi, lemak rendah Glytophidian sp. A Protein tinggi, lemak rendah Hydrolagus sp. A Protein tinggi, lemak rendah Famili Ophidiidae E Protein rendah, lemak rendah
Belum teridentifikasi A Protein tinggi, lemak rendah
kategori berprotein rendah (<15%) dan berlemak rendah (<5%). Jenis ikan yang termasuk tipe E adalah Coelorincus longissimus dan famili Ophidiidae. Sedangkan ikan tipe B adalah ikan yang mempunyai kategori berprotein tinggi (>15%) dan berlemak sedang (5-10%). Jenis ikan yang termasuk tipe B adalah ikan famili Nomeidae.
4.4 Hasil Analisis Asam Amino
Analisis asam amino dilakukan untuk mengkaji jenis-jenis asam amino yang terdapat pada ikan laut dalam. Metode yang digunakan untuk mengetahui jenis-jenis asam amino adalah metode High Performance Liquid Chromatography (HPLC). Ikan laut dalam yang di analisis asam amino hanya berjumlah 6 spesies dari 11 spesies ikan. Hal tersebut disebabkan oleh terbatasnya jumlah sampel ikan laut dalam. Ikan yang dianalisis asam amino meliputi ikan dari famili Nomeidae, famili Ophidiidae, famili Pereichthydae, Parascolopsis sp, Hydrolagus sp dan satu jenis ikan yang belum teridentifikasi. Tingkat kesegaran ikan-ikan tersebut berada dalam kisaran agak segar dan tidak segar. Komposisi kandungan asam amino beberapa ikan laut dalam di perairan selatan Jawa dapat dilihat pada Tabel 13 dan Gambar 11 sampai Gambar 16
Asam amino dibagi menjadi dua, yaitu pertama, asam amino non esensial atau asam amino yang dapat diganti, yang dibentuk dari amonia dan berbagai sumber karbon. Kedua, nutritif esensial atau asam amino yang tidak dapat diganti (Lehninger, 1994). Nilai sebenarnya dari suatu protein makanan diukur berdasarkan kandungan relatif dari asam-asam amino esensialnya (Sparre, 1965). Protein dikatakan lengkap bila mengandung semua asam amino esensial dalam jumlah yang diperlukan tubuh, sedangkan protein dikatakan tidak lengkap bila
mengalami kekurangan salah satu saja asam amino esensialnya (Harper et al., 1988).
yaitu asam glutamat, treonin, leusin dan asam aspartat. Asam glutamat, asam aspartat dan treonin merupakan asam amino dari golongan glukogenik, yaitu asam amino yang dapat membentuk glukosa. Sedangkan leusin merupakan asam amino dari golongan ketogenik, ya itu asam amino yang dapat membentuk keton (Lehninger, 1994).
Komposisi asam glutamat pada beberapa ikan laut dalam lebih mendominasi dibandingkan jenis lainnya dengan jumlah 0,5130-0,7850%. Banyaknya kandungan asam glutamat pada ikan laut dalam menyebabkan daging ikan laut dalam beraroma gurih manis. Hal ini sesuai dengan apa yang dinyatakan oleh Perkins (1992) bahwa rata-rata daging ikan laut dalam mempunyai rasa yang ringan (mild) dan beraroma gurih dan manis. Contoh perhitungan asam amino dapat dilihat pada Lampiran 4.
Tabel 13. Hasil Analisis asam amino dari beberapa ikan laut dalam selatan Jawa
* Asam amino esensial
Kode 3 = Famili Nomeidae Kode 11 = Parascolopsis sp
Kode 13 = Hydrolagus sp Kode 14 = Famili Ophidiidae
Alanin Prolin Tirosin ValinMetionin Sistein Isolisin Leusin
Fenilalanin Lisin
Jenis Asam Amino
Kadar Asam Amino (%)
Gambar 11. Diagram batang asam amino pada ikan famili Nomeidae
Histidin Arginin Treonin Alan
in
Prolin Tirosin ValinMetionin Sistein Isolisin Leusin
Fenilalanin Lisin
Jenis Asam Amino
Kadar Asam Amino (%)
Gambar 12. Diagram batang asam amino pada ikan Hydrolagus sp.
mat Serin GlisinHistidin Arginin Treonin Alan
in Prolin
Tirosin Valin Metionin Sistein Isolisin Leusin Fenilalanin
Lisin
Jenis Asam Amino
Kadar Asam Amino (%)
mat Serin GlisinHistidin Arginin Treonin Alan
in Prolin
Tirosin Valin Metionin Sistein Isolisin Leusin Fenilalanin
Lisin
Jenis Asam Amino
Kadar Asam Amino (%)
Gambar 14. Diagram batang asam amino ikan Parascolopsisi sp.
Serin GlisinHistidin Arginin Treonin Alanin Prolin Tirosin Valin
Metionin Sistein Isolisin Leusin Fenilalanin
Lisin
Jenis Asam Amino
Kadar Asam Amino (%)
Gambar 15. Diagram batang asam amino ikan famili Perechthydae
mat Serin GlisinHistidin Arginin Treonin Alanin Prolin Tirosin ValinMetionin Sistein Isolisin Leusin
Fenilalanin Lisin
Jenis Asam Amino
Kadar Asam Amino (%)
Gambar 16. Diagram batang asam amino ikan (belum teridentifikasi)
aroma yang gurih dan manis. Jenis-jenis asam amino ikan tuna dapat dilihat pada
Serin GlisinHistidin Arginin Treonin Alanin Prolin Tirosin Valin
Metionin Sistein Isolisin Leusin
Gambar 17. Diagram batang asam amino ikan Tuna
4.5 Ekstraksi Daging Ikan Laut Dalam
Langkah awal yang dilakukan pada uji aktivitas antibakteri adalah ekstraksi daging ikan laut dalam. Ikan laut dalam yang diekstrak berjumlah 6 jenis yang meliputi ikan dari famili Nomeidae, famili Ophidiidae, famili Pereichthydae, Parascolopsis sp., Hydrolagus sp. dan satu jenis ikan yang belum teridentifikasi. Hal ini disesuaikan dengan jumlah sampel ikan laut dalam yang terbatas. Tingkat kesegaran ikan- ikan tersebut berada dalam kisaran agak segar dan tidak segar.
