PENENTUAN KOMPONEN DALAM SAMPEL PENENTUAN KOMPONEN DALAM SAMPEL
PERTAMAKS,PREMIUM,DAN PERTAMAKS PLUS DENGAN PERTAMAKS,PREMIUM,DAN PERTAMAKS PLUS DENGAN
MENGGUNAKAN GC (GAS
MENGGUNAKAN GC (GAS CHROMATOGRAPHY)CHROMATOGRAPHY)
Tanggal Praktikum : 5 Maret Tanggal Praktikum : 5 Maret 20122012
A.
A. Tujuan PraktikumTujuan Praktikum 1.
1. Mengenal cara pengoperasian instrument GCMengenal cara pengoperasian instrument GC 2.
2. Memahami cara kerja instrumen GC untuk analisis kualitatif Memahami cara kerja instrumen GC untuk analisis kualitatif 3.
3. Menentukan beberapa kmponen dalam sampel premium,pertamaks,danMenentukan beberapa kmponen dalam sampel premium,pertamaks,dan pertamaks plus
pertamaks plus
B.
B. Tinjauan PustakaTinjauan Pustaka
Kromatografi merupakan salah satu metode pemisahan Kromatografi merupakan salah satu metode pemisahan komponen-komponen campuran di mana cuplikan berkesetimbangan di antara dua fasa,fasa komponen campuran di mana cuplikan berkesetimbangan di antara dua fasa,fasa gerak yang membawa cuplikan dan fasa diam yang menahan cuplikan secara gerak yang membawa cuplikan dan fasa diam yang menahan cuplikan secara selektif. Selain untuk pemisahan,kromatografi juga berguna untuk analisis selektif. Selain untuk pemisahan,kromatografi juga berguna untuk analisis kualitatif atau analisis kuantitatif yang cepat (beberapa menit) dan memerlukan kualitatif atau analisis kuantitatif yang cepat (beberapa menit) dan memerlukan sedikit cuplikan (beberapa mikroliter).
sedikit cuplikan (beberapa mikroliter). (Sumar Hendayana.1994:243)(Sumar Hendayana.1994:243) Dalam proses kromatografi selalu terdapat s
Dalam proses kromatografi selalu terdapat salah satu kecenderungan yaitu:alah satu kecenderungan yaitu: 1.
1. Molekul-molekul komponen untuk melarut dalam cairan (partisi),Molekul-molekul komponen untuk melarut dalam cairan (partisi), 2.
2. Molekul-molekul komponen untuk melekat pada permukaan padatan Molekul-molekul komponen untuk melekat pada permukaan padatan halushalus (adsorbsi/penyerapan),
(adsorbsi/penyerapan), 3.
3. Molekul-molekul komponen untuk bereksi secara kimia Molekul-molekul komponen untuk bereksi secara kimia (penukar ion),(penukar ion), 4.
4. Molekul-molekul tereksklusi pada pori-pori fasa diam.Molekul-molekul tereksklusi pada pori-pori fasa diam.
Pemisahan dengan kromatografi didasarkan pada perbedaan Pemisahan dengan kromatografi didasarkan pada perbedaan kesetimbangan komponen-komponen campuran di antara fasa gerak (fasa mobil) kesetimbangan komponen-komponen campuran di antara fasa gerak (fasa mobil) dan fasa diam. Kesetimbangan ini dapat dijelaskan secara kuantitatif dengan dan fasa diam. Kesetimbangan ini dapat dijelaskan secara kuantitatif dengan istilah koefisien partisi
istilah koefisien partisi,K,yang untuk kromatografi dirumuskan sebagai:,K,yang untuk kromatografi dirumuskan sebagai: K =
K =
Dengan C
Dengan Css menyatakan konsentrasi (molar) komponen di dalam fasa diammenyatakan konsentrasi (molar) komponen di dalam fasa diam
dan C
dan CMM menyatakan konsentrasi (molar) komponen di dalam fasa gerak. Dalammenyatakan konsentrasi (molar) komponen di dalam fasa gerak. Dalam
keadaan ideal,perbandingan partisi adalah tetap dalam rentang konsentrasi keadaan ideal,perbandingan partisi adalah tetap dalam rentang konsentrasi komponen yang luas;jadi C
komponen yang luas;jadi Css berbanding berbanding lurus lurus dengan dengan CCMM. kadang-kadang. kadang-kadang
hubungan tak lurus (non linear) ditemukan. Beberapa jenis kurva distribusi hubungan tak lurus (non linear) ditemukan. Beberapa jenis kurva distribusi ditunjukkan dalam gambar 1.
ditunjukkan dalam gambar 1.
A A C Css C C C CMM
Gambar 1. Kurva distribusi Gambar 1. Kurva distribusi
Hubungan ideal,ditunjukkan oleh kurva C dalam gambar 1. Umumnya Hubungan ideal,ditunjukkan oleh kurva C dalam gambar 1. Umumnya disebabkan oleh kesetimbangan distribusi diantara dua zat cair yang tak disebabkan oleh kesetimbangan distribusi diantara dua zat cair yang tak bercampur dan tidak terj
bercampur dan tidak terjadi reaksi asadi reaksi asosiasi atau osiasi atau disosiasi dalam disosiasi dalam salah satu salah satu pelarut.pelarut. Bila terjadi reaksi maka hubungannya diperlihatkan oleh kurva B atau D. Bila terjadi reaksi maka hubungannya diperlihatkan oleh kurva B atau D. Contoh,bila fasa diamnya air dan fasa geraknya benzen,kurva seperti B teramati Contoh,bila fasa diamnya air dan fasa geraknya benzen,kurva seperti B teramati untuk komponen yang terdiri dari asam organik lemah. Hanya asam tak untuk komponen yang terdiri dari asam organik lemah. Hanya asam tak terdisosiasi larut dalam benzen. Akan tetapi,dalam air terdapat asam tak terdisosiasi larut dalam benzen. Akan tetapi,dalam air terdapat asam tak terdisosiasi dan basa konjugasinya dalam jumlah yang cukup besar,lagi pula terdisosiasi dan basa konjugasinya dalam jumlah yang cukup besar,lagi pula perbandingan zat-zat
perbandingan zat-zat ini tergantung pada ini tergantung pada konsentrasinya. Pada konsentrasi konsentrasinya. Pada konsentrasi rendahrendah bagian
bagian yang yang lebih lebih kecil kecil dari dari total total asam asam terdistribusi terdistribusi di di antara antara dua dua pelarut,danpelarut,dan perbandingan
perbandingan partisi partisi akan akan lebih lebih besar besar dari dari semula. semula. Kalau Kalau air air sebagai sebagai fasa fasa gerak gerak maka kurva D akan terjadi. Kurva B umumnya terjadi di dalam kesetimbangan maka kurva D akan terjadi. Kurva B umumnya terjadi di dalam kesetimbangan gas-cair;di mana gas sebagai fasa gerak.
gas-cair;di mana gas sebagai fasa gerak. (Hendayana,1994:244) (Hendayana,1994:244) B B O O D D
Kurva A adalah jenis adsorbsi isoterm,yang menunjukkan jumlah Kurva A adalah jenis adsorbsi isoterm,yang menunjukkan jumlah komponen teradsorbsi pada permukaan zat padat terhadap konsentrasi komponen komponen teradsorbsi pada permukaan zat padat terhadap konsentrasi komponen dalam larutan yang berkontak dengan zat padat. Pada konsentrasi komponen yang dalam larutan yang berkontak dengan zat padat. Pada konsentrasi komponen yang tinggi,semua tempat adsorbsi pada permukaan zat padat ditempati;adsorbsi tinggi,semua tempat adsorbsi pada permukaan zat padat ditempati;adsorbsi selanjutnya menjadi tak tergantung konsentrasi komponen. Kurva jenis ini dapat selanjutnya menjadi tak tergantung konsentrasi komponen. Kurva jenis ini dapat dijelaskan oleh hubungan:
dijelaskan oleh hubungan: C
Css ==
dengan n menyatakan tetapan. Persamaan ini sama dengan persamaan (1) bila dengan n menyatakan tetapan. Persamaan ini sama dengan persamaan (1) bila n=1.
n=1.
(Hendayana,1994:245) (Hendayana,1994:245)
Gambaran macam fasa gerak,fasa diam serta prinsip pemisahan serta Gambaran macam fasa gerak,fasa diam serta prinsip pemisahan serta prinsip pemisahan pada kromatografi terdapat pada tabel di bawah ini.
prinsip pemisahan pada kromatografi terdapat pada tabel di bawah ini. Tabel 1. Macam fasa gerak,fasa diam,serta prinsip pemisahan Tabel 1. Macam fasa gerak,fasa diam,serta prinsip pemisahan No.
No. FasaFasa Gerak Gerak
Fasa Fasa Diam
Diam Mekanisme Mekanisme Teknik Teknik
Pengembangan Pengembangan Sampel
Sampel 1.
1. Gas Gas Cairan Cairan Adsorpsi,partisi Adsorpsi,partisi Kolom Kolom Elusi,teknik Elusi,teknik frontal,teknik frontal,teknik pendesakan,dan pendesakan,dan elusi elusi bergradien bergradien 2.
2. Gas Gas Padatan Padatan Adsorpsi Adsorpsi KolomKolom 3.
3. Cairan Cairan Cairan Cairan Partisi Partisi Kolom,planar Kolom,planar 4.
4. Cairan Cairan Padatan Padatan Adsorpsi,penukar Adsorpsi,penukar ion,eksklusi
ion,eksklusi
Kolom,planar Kolom,planar
Salah satu jenis kromatografi adalah kromatografi gas. Kromatografi gas Salah satu jenis kromatografi adalah kromatografi gas. Kromatografi gas adalah suatu proses dimana suatu campuran dipisahkan menjadi yang adalah suatu proses dimana suatu campuran dipisahkan menjadi yang konstituen oleh fasa gas yang bergerak melewati sebuah sorben stasioner. Teknik konstituen oleh fasa gas yang bergerak melewati sebuah sorben stasioner. Teknik yang dilakukan mirip dengan kromatografi cair-cair kecuali bahwa yang dilakukan mirip dengan kromatografi cair-cair kecuali bahwa fase gerak yang berupa zat cair digantikan oleh fasa gas yang bergerak. fase gerak yang berupa zat cair digantikan oleh fasa gas yang bergerak. Kromatografi gas dibagi menjadi dua kategori utama: kromatografi Kromatografi gas dibagi menjadi dua kategori utama: kromatografi gas-cair,dimana pemisahan terjadi dengan partisi sampel antara fasa gerak berupa gas cair,dimana pemisahan terjadi dengan partisi sampel antara fasa gerak berupa gas dan
Kromatografi gas merupakan salah satu teknik pemisahan yang bisa digunakan untuk memisahkan senyawa-senyawa organik. Senyawa-senyawa tersebut harus mudah menguap dan stabil (tidak terjadi penguraian dan perubahan struktur senyawa/komponen yang akan dipisahkan) pada temperatur pengujian. Senyawa yang sukar menguap atau tidak stabil juga dapat diukur tetapi harus melalui proses derivatisasi terlebih dahulu. Contohnya lemak yang dihidrolisis menjadi asam lemak yang akan diesterifikasi dengan pelarut etanol atau methanol dan katalis BF3membentuk ester yang mudah menguap.
Kelebihan kromatografi gas, diantaranya kita dapat menggunakan kolom lebih panjang untuk menghasilkan efisiensi pemisahan yang tinggi. Gas dan uap mempunyai viskositas yang rendah,demikian juga kesetimbangan partisi antara gas dan cairan berlangsung cepat, sehingga analisis relatif cepat dan sensitifitasnya tinggi. Fase gas dibandingkan sebagian besar fase cair tidak bersifat reaktif terhadap fase diam dan zat-zat terlarut. Selain itu keuntungan menggunakan kromatografi gas adalah analisa cepat, resolusi baik, bahkan komponen dengan titik didih berdekatan mampu dipisahkan dimana pemisahan dengan destilasi biasa tidak dapat dilakukan.
Kekurangan kromatografi gas adalah bahwa ia tidak mudah dipakai untuk memisahkan campuran dalam jumlah besar. Pemisahan pada tingkat (mg) mudah dilakukan, pemisahan campuran pada tingkat (g) mungkin dilakukan, tetapi pemisahan dalam tingkat pon atau ton sukar dilakukan kecuali jika tidak ada metode lain. Selain itu teknik ini terbatas untuk zat yang mudah menguap.
Seperti kita ketahui bahwa gas selalu bergerak ke mana saja,tidak mau diam. Oleh karena itu untuk melakukan percobaan kromatografi gas diperlukan peralatan khusus. Untuk memahami bagaimana proses kromatografi gas berlangsung,perhatikanlah diagram alat kromatografi gas dalam gambar 2.
Gambar 2. Diagram alat kromatografi gas
Mekanisme kerja kromatografi gas adalah sebagai berikut. Gas dalam silinder baja bertekanan tinggi dialirkan melalui kolom yang berisi fasa diam. Cuplikan berupa campuran yang akan dipisahkan,biasanya dalam bentuk larutan,disuntikkan kedalam aliran gas tersebut. Kemudian cuplikan dibawa oleh gas pembawa ke dalam kolom dan di dalam kolom terjadi proses pemisahan. Komponen-komponen campuran yang telah terpisahkan satu persatu
meninggalkan kolom. Suatu detektor diletakkan di ujung kolom untuk mendeteksi jenis maupun jumlah tiap komponen campuran. Hasil pendeteksian direkam oleh rekorder dan dinamakan
kromatogram yang terdiri dari beberapa peak. Jumlah peak yang dihasilkan menyatakan jumlah komponen (senyawa) yang terdapat dalam campuran. Bila suatu kromatogram terdiri dari lima peak maka terdapat lima senyawa atau lima komponen dalam campuran tersebut. (Sumar
Hendayana.2006:32)
Output dari kromatografi modern adalah kromatogram,berupa peak-peak yang menggambarkan komponen-komponen dalam campuran yang dipisahkan. Peak-paeak yang muncul diharapkan berbentuk simetri daan runcing sehingga tidak tumpang tindih satu dengan lainnya (pemisahannya efektif). Akan tetapi,kadang-kadang peak yang muncul melebar bahkan tidak simetri. Faktor-faktor yang menyebabkan terjadinya pelebaran peak kromatogram (Band Broadening) antara lain:
1. Difusi Eddy
besar dan ada celah yang kecil. Sebagian melewati jalan terpendek sehingga keluar dari kolom lebih cepat,sebagian melewati jalan panjang sehingga keluar dari kolom lebih lama. Perbedaan waktu tempuh molekul-molekul tercepat dan molekul-molekul terlambat menyebabkan adanya pelebaran peak. Akibat perbedaan waktu kedatangan di detektor menyebabkan peak kromatogram melebar atau kurang efisien. Mekanisme ini dinamakan Difusi Eddy (Eddy diffusion).
Gambar 3. Difusi Eddy. Kolom berisi partikel yang tidak merata ukuran dan bentuknya.
Untuk mencegah band broadening yang disebabkan oleh faktor difusi Eddy maka ukuran partikel fasa diam harus merata.
2. Difusi Longitudinal
Molekul-molekul solut berkecenderungan untuk berdifusi ke segala arah. Semakin lama solut berada dalam kolom maka semakin besar pula kecenderungan berdifusi dan hal ini mengakibatkan melebarnya peak kromatogram. Mekanisme ini dinamakan difusi longitudinal (longitudinal diffusion). Difusi longitudinal terutama terjadi pada kromatografi gas karena difusi dalam gas 104lebih cepat daripada dalam zat cair.
3. Transfer Massa
Sebagian molekul solut berada dalam fasa gerak dan sebagian lagi berada dalam fasa diam. Bila fasa gerak mengalir secara cepat sementara sebagian molekul-molekul solut tidak dapat keluar dari fasa diam secara cepat maka sebagian solut terlambat meninggalkan kolom. Hal ini mengakibatkan melebarnya peak kromatogram sekaligus membuat pemisahan tidak efisien. Mekanisme ini dinamakan transfer massa (mass transfer). (Sumar
Hendayana.2006: 21-24)
Instrumentasi Kromatografi Gas
Gambar 5. Alat Kromatografi Gas Tipe Shimadzu- 2010
Dalam kromatografi gas, gas digunakan sebagai fasa gerak dan zat padat atau zat cair digunakan sebagai fasa diam.
Gambar 6. Diagram Alat Kromatografi Gas
Mekanisme kerja kromatografi gas adalah sebagai berikut. Gas dalam silinder baja bertekanan tinggi dialirkan melalui kolom yang berisi fasa diam. Cuplikan berupa campuran yang akan dipisahkan, biasanya dalam bentuk larutan, disuntikkan ke dalam aliran gas tersebut. Kemudian cuplikan dibawa oleh gas pembawa ke dalam kolom dan di dalam kolom terjadi proses pemisahan. Komponen-komponen campuran yang telah terpisahkan sati persatu meninggalkan kolom. Suatu detektor diletakkan di ujung kolom untuk mendeteksi jenis maupun jumlah tiap komponen campuran. Hasil pendeteksian direkam dengan rekorder dan dinamakan kromatogram yang terdiri dari beberapa peak. Jumlah peak yang dihasilkan menyatakan jumlah komponen (senyawa) yang terdapat dalam campuran. Sedangkan luas peak bergantung pada kuantitas suatu komponen dalam campuran.
1. Gas Pembawa
Gas yang dapat digunakan sebagai fasa gerak dalam kromatografi gas harus bersifat inert (tidak bereaksi) dengan cuplikan maupun dengan fasa diam. Gas-gas yang biasa digunakan adalah gas helium, argon, nitrogen, dan hidrogen. Karena gas disimpan dalam silinder baja bertekanan tinggi maka gas tersebut akan mengalir dengan sendirinya secara cepat sambil membawa komponen-komponen campuran yang akan atau yang sudah dipisahkan. Dengan demikian, gas tersebut disebut juga gas pembawa (carrier gas). Oleh
karena gas pembawa mengalir dengan cepat maka pemisahan dengan teknik kromatografi gas hanya memerlukan waktu beberapa menit saja.
Ketika gas pembawa tersebut hampir memberikan harga HETP yang sama tapi pada kecepatan alir yang berbeda. Gas N2 memerlukan kecepatan
alir yang lambat (10 cm/detik) untuk mencapai kinerja (efisiensi) yang optimum 25 cm/detik untuk gas He dan 35 cm/detik. Terlihat bahwa kinerja H2 berkurang sedikit demi sedikit dengan kenaikan kecepatan alir. Sehingga
kinerja N2 berkurang secara drastis dengan kenaikan laju alir. Hal ini berarti
bahwa H2 dapat memberikan resolusi yang hampir sama dengan yang lain
pada laju alir yang lebih cepat.
Oleh karena solut berdifusi lebih cepat melalui H2 dan He daripada
melalui N2 maka H2 dan He memberikan resolusi yang lebih baik pada
kecepatan alir tinggi. Hal ini sesuai dengan mekanisme perjalanan solut melalui kolom. Semakin cepat solut berkesetimbangan diantara fasa gerak dan fasa diam maka semakin kecil pula faktor transfer massa. Difusi solut yang cepat dalam H2 dan He membantu mempercepat kesetimbangan diantara fas
agerak dan fasa diam sehingga meningkatkan efisiensi atau menurunkan harga HETP. Dalam hal efisiensi, H2 merupakan pilihan gas pembawa yang baik.
Kalau percobaan dilakukan pada tekanan tetap, kecepatan alir akan berkurang ketika suhu dinaikkan. Keuntungan lain gas pembawa H2 adalah memberikan
efisiensi relatif stabil dengan perubahan kecepatan alir. Sayangnya H2 muda
meledak bila berkontak dengan udara. Oleh karena itu, He banyak digunakan sebagai pengganti H2.
Kotoran yang terdapat dalam gas pembawa dapat merusak kolom secara perlahan karena fasa diam bereaksi dengan kotoran tersebut. Oleh karena itu, gas berkualitas tinggi harus digunakan untuk merawat kolom dari kerusakan. Untuk menghilangkan kotoran dalam gas pembawa, biasanya gas dialirkan melalui saringan yang disebut molecular seive untuk menghilangkan air dan hidrokarbon.
2. Pemasukan cuplikan
Cuplikan yang dapat dianalisis dengan teknik kromatografi gas dapat berupa zat cair atau gas. Dengan syarat cuplikan tersebut mudah menguap dan stabil (tidak rusak pada kondisi operasional). Di tempat pemasukan cuplikan terdapat pemanas yang suhunya dapat diatur untuk menguapkan cuplikan. Suhu tempat penyuntikan cuplikan biasanya sekitar 50 derajat diatas titik didih cuplikan. Bila cuplikan rusak pada suhu tersebut maka cuplikan tersebut tidak dapat dianalisis dengan teknik krommatografi gas. Jumlah cuplikan yang disuntikan kedalam aliran fasa gerak sekitar 5µL.
Gambar 7. Hamilton microliter syringe
Tempat pemasukan cuplikan cair kedalam pak kolom biasanya terbuat dari tabung gelas didalam blok logam panas. Cuplikan disuntikan dengan bantuan alat suntik melalui karet septum kemudian diuapkan didalam tabung gelas. Gas pembawa meniup uap cuplikan melalui kolom kromatografi. Untuk kolom analitik memerlukan antara 0,1-10 µL cuplika cair sedangkan kolom preparatif memerlukan antara 20-1000 µL. Cuplikan berbentuk gas dapat dimaukan dengan bantuan alat suntik gas ( gas-tight syringe) atau kran gas ( gas-sampling valve). Kolom analitik biasanya memerlukan 0,5-10 µL sedangkan kolom preparatif dapat menampung sampai 1L gas. Untuk jenis kolom terbukan diperlukan alat pemasukan cuplikan yang lebih rumit.
Gambar 9. Sistem Pemasukan Cuplikan Untuk Kolom Kapiler Alat pemasukan cuplikan untuk kolom terbuka mengandung pipa gelas dan gelas wool yang secara perlahan dapat terkontaminasi oleh cuplikan yang tidak dapat menguap dan dapat terurai. Oleh karena itu bagian ini harus diganti secara berkala.
Alat pemasukan cuplikan untuk kolom terbuka dikelompokkan kedalam dua kategori yaitu injeksi split ( split injection) dan injeksi splitless ( spitless injection). Injeksi split dimaksudkan untuk mengurangi volume cuplikan yang masuk ke dalam kolom hanya 0,1-10% dari 0,1-2 µL, sementara sisanya dibuang.
Cuplikan dimasukkan melalui septum ke dalam daerah penguapan cuplikan sementara kran 1 ditutup. Gas pembawa dari pengontrol aliran meniup cuplikan kedalam gelas wool sehingga terjadi. Selanjutnya pada split point, sebagian cuplikan memasuki kolom dan sisanya dibuang melalui kran 2. Bagian cuplikan yang dibuang melalui kran 2 dikontrol ole h pengatur tekanan. Bila suhu injektor terlalu tinggi maka penguraian cuplikan dapat terjadi sehingga beberapa komponen hilang dan komponen baru terbentuk.
Jenis injeksi split tidak berguna untuk analisis renik karena kebanyakan cuplikan dibuang. Untuk keperluan analisis kuantitatif yang baik dan untuk analisis renik maka injeksi jenis splitless lebih cocok. Dalam hal ini, larutan enecer cuplikan dalam pelarut yang mudah menguap disuntikan
Suhu kolom mula-mula 20-25°C lebih rendah dari titik didih pelarut sehingga berkondensasi pada permulaan kolom. Ketika solut terperangkap oleh kabut pelarut maka solut-solut tersebut berkumpul pada permulaan kolom yang akan membentuk peak tajam. Sebagian pelarut (dan cuplikan) yang masih berbentuk uap dekat septum akan menyebabkan tailing (pelebaran peak). Oleh karena itu, setelah 20-60 detik kran 1 dibuka untuk mengeluarkan uap dekat septum. Dengan injeks splitness, kebanyakan cuplika (sekitar 80%) masuk kedalam kolom. Alternatif lain untuk mengkondensasi solut pada permulaan kolom disebut perangkap dingin (cold trapping ). Suhu kolom mula-mula 150°C lebih rendah dari titik didih solut. Pelarut dan solut dengan titik didih tinggi masih tetap sebagai kumpulan kabut. Pada pemanasan kolom, pemisahan solut-solut dengan titik didih tinggi terjadi.
Teknik injeksi pada kolom (on-column injection) digunakan untuk cuplikan yang dapat terurai pada pemanasan diatas titik didihnya selama injeksi. Larutan cuplikan dimasukkan langsung kedalam kolom tanpa melalui injektor panas. Suhu kolom mula-mula mendekati titik didih pelarut yang mudah menguap untuk mengkondensasi dan mengumpulkan solut-solut. Proses kromatografi terjadi ketika suhu kolom dinaikkan.
3. Kolom
Dalam kromatografi gas, kolom merupakan tempat terjadinya proses pemisahan. Untuk kromatografi gas dikenal dua jenis pak ( packed column) dan jenis terbuka (open tubular column). Jenis pak terbuat dari stainless steel sedangka jenis kolom terbuka terbuat dari pipa kapiler. Kedalam kolom jenis pak diisi zat pendukung dan fasa diam yang menempel pada zat pendukung.
Kolom pak (packed column )
Gambar 10. Jenis Kolom Pak
Kolom pak terbuat dari stainless steel atau gelas dengan garis tengah 3-6 mm dan panjang 1-5 m. Kolom diisi dengan serbuk zat padat halus atau zat padat sebagai zat pendukung yang dilapisi zat cair kental yang sukar menguap sebagai fasa diam. Jenis kolom pak ini lebih disukai untuk tujua preparatif karena dapat menampung jumlah cuplikan yang banyak.
Kolom terbuka (open tubul ar column )
dan panjangnya berkisar antara 15-100 m. Jenis kolom ini disebut juga kolom kapiler. Untuk mempermudah penyimpanan, biasanya kolom terbuka dibentuk spiral dengan garis tengah 18 cm. Bagian dalam kolom tidak terhalang oleh fasa diam sehingga panjangnya bisa mencapai 100 m. Akan tetapi, kolom terbuka tidak dapat menampung volume cuplikan yang banyak. Jumlah plat teori (N) berbanding lurus dengan panjang kolom (L). Dengan semakin panjangnya kolom diharapkan kolom akan lebih efisien. Juga dengan bertambah panjangnya kolom maka perbedaan waktu retensi senyawa satu terhadap lainnya akan bertambah yang akan memberi dampak pada peningkatan selektivitas. Tiga faktor mempengaruhi resolusi: efisiensi, selektivitas. Dan retensi. Dengan kolom terbuka, faktor-faktor tersebut akan bertambah. Jadi penggunaan kolom terbuka memberikan resolusi yang lebih tinggi daripada penggunaan kolom pak. Keuntungan lain penggunaan kolom terbuka adalah waktu analisis lebih pendek daripada penggunaan kolom pak karena fasa gerak tidak mengalami hambatan ketika melewati kolom.
Gambar 12. Macam-Macam Kolom Kapiler
Kolom terbuka terdiri dari tiga jenis. Untuk wall-coated open tubular column (wcot), fasa diam cairan kental dilapiskan secara merata pada dinding dalam kolom. Dengan rancangan support-coated open tubular column (scot), partikel zat padat pendukung seperti silika atau
alumunium ditempelkan pada dinding dalam kolom. Partikel pendukung ini terlebih dahulu dilapisi zat cair kental sebagai fas diam untuk meningkatkan luas permukaan. Dengan bertambahnya luas permukaan berarti jenis scot mempunyai volume fasa diam yang lebih besar daripada wcot sehingga memungkinkan untuk menampung volume cuplikan yang besar. Dengan kata lain jenis scot ini cocok untuk analisis renik
(konsentrasi analit yang sangat kecil). Selain itu rancangan jenis kedua ini, lebih disukai. Pada rancangan ketiga, porous-layer open tubular column (plot), partikel zat padat yang ditempelkan pada dinding dalam kolom bertindak sebagai fasa diam.
Jenis kolom terbuka berupa pipa kapiler yang umumnya terbuat dari gelas yang bahan dasarnya silika, SiO2 yang mempunyai gugus silanol
(Si-O-H). Gugus silanol ini dapat berikatan dengan solut menghasilkan peak tailing (peak yang melebar kebelakang), terutama kalau fasa diamnya sudah mengalami erosi. Peak tailing ini menyebabkan rendahnya efisiensi.
Zat padat pendukung
Kolom pak mengandung zat cair kental yang sukar menguap yang dilapiskan pada partikel yang tidak bereaksi (inert) yang disebut zat padat pendukung. Zat padat pendukung harus berupa partikel halus, kuat, dan berbentuk sama serta memiliki luas permukaan bear. Kebanyakan zat padat pendukung terbuat dari tanah diatomaceus, silika yang berasal dari rangka alga. Secar ideal, zat padat pendukung tidak boleh berinteraksi dengan solut tapi tidak ada zat pendukung tidak boleh berinteraksi dengan solut tapi tidak ada zat pendukung yang betul-betil inert. Silanisasi dengan heksametildisilana atau diklorodimetilsilana (CH3)2SiCl2 merupakan cara
yang banyak digunakan untuk mengurangi interaksi partikel silika dengan solut polar.
Bila solut berikatan sangat kuat dengan silanol maka, alternatif, teflon dapat diigunakan sebagai zat pendukung. Teflon merupakan polimer yang sangat inert.
Ukuran partikel yang sama menurunkan faktor difusi Eddy sehingga meningkatkan efisiensi. Juga ukuran partikel yang kecil mengurangi waktu yang diperlukan oleh solut untuk berkesetimbangan sehingga meningkatkan efisiensi. Akan tetapi partikel yang sangat kecil memerlukan tekanan yang lebih besar untuk mengalirkan fasa gerak melewati kolom. Ukuran partikel zat pendukung dinyatakan dalam satuan mesh yang berhubungan dengan ukuran saringan. Misalnya, partikel berukuran 100/200 mesh akan lolos pada saringan 100 mesh tapi tertahan pada saringan 200 mesh.
Fasa diam
Umumnya fasa diam yang sering digunakan dalam kromatografi gas berbetuk zat cair kental yang sukar menguap. Dengan demikian jenis kromatografi ini disebut kromatografi partisi gas-cair.
Jumlah fasa diam yang digunakan dinyatakan dalam persen zat pendukung. Jumlah yang umum berkisar antara 2-10%. Jika fasa diam melebihi 30% dari zat padat pendukukng maka efisiensi kolom mulai
berkurang. Kerugian lainnya adalah faktor kapasitas bertambah besar atau waktu retesi lebih lama. Demikian pula bila jumlah zat fasa diam kurang dari 2% maka permukaan zat padat pendukung tidak tertutup semuanya sehingga solut polar berikatan terlalu kuat dengan zat pendukung. Selain zat cair, beberapa zat padat dapat digunakan sebagai fasa diam seperti alumina (Al2O3) untuk memisahkan hidrokarbon. (Hendayana, 2006:
33-44).
4. Termostat Oven
Thermostat berfungsi untuk mengatur temperature kolom. Fungsi thermostat sangat penting sebab pemisahan fisik komponen-komponen dalam kolom sangat dipengaruhi oleh temperature didalam oven. Dilihat dari posisinya, thermostat ada tiga macam yang fungsinya untuk mengatur temperature secara terpisah, yaitu:
a. Digerbang suntik (injector), b. Thermostat oven,
c. Thermostat detector. (Budiasih, 1999: 82-83)
5. Detektor
Alat ini akan mendeteksi komponen-komponen yang meninggalkan kolom. Ada dua jenis karakteristik detector yang umum adalah integral dan diferensial. Suatu detector integral memberikan suatu pengukuran setiap saat dari jumlah total bahan yang dielusi yang telah melewatinya sampai waktu itu. Detector ini yang sekilas terlihat kasar, berguna pada saatnya karena mudah dirakit dari komponen-komponen yang ada, dan berperan sangat baik pada kelahiran GLC. Tetapi detector integral telah banyak digantikan dengan detector diferensial, yang terakhir ditemukan pada hampir sebagian besar kromatograf gas modern. (Underwood. 1998:
Gambar 14. Kromatogram Integral
Sedangkan detector diferensial menghasilkan kromatogram familiar yang terdiri dari puncak-puncak dan bukan langkah-langkah. Dua kelas besar dapat dibedakan: pertama, detector yang mengukur konsentrasi zat
yang terlarut dengan memakai beberapa sifat fisika dari aliran gas buangan, dan kedua, detector yang merespon secara langsung zat terlarut dan dengan demikian berarti mengukur laju alir massanya. (Underwood. 1998: 509)
Gambar 15. Kromatogram Differensial
Detector berfungsi mengubah isyarat dari gas pembawa dan komponen-komponen didalamnya menjadi isyarat elektronik. Hasil pembacaan detector disebut kromatogram. Idealnya suatu detector harus
memiliki sifat-sifat sebagai berikut:
Kepekaan
Stabilitas
Keserbagunaan
Waktu respons Aktivitas kimiawi
Detektor merupakan perangkat yang diletakkan pada ujung kolom tempat keluar fase gerak (gas pembawa) yang membawa komponen hasil pemisahan. Detektor pada kromatografi adalah suatu sensor elektronik
yang berfungsi mengubah sinyal gas pembawa dan komponen-komponen di dalamnya menjadi sinyal elektronik. Sinyal elektronik detektor akan sangat berguna untuk analisis kualitatif maupun kuantitatif terhadap komponen-komponen yang terpisah di antara fase diam dan fase gerak.
Beberapa sifat detektor yang digunakan dalam kromatografi gas adalah sebagai berikut :
a. Detector FID (Flame Ionization Detector)
FID merupakan detektor yang paling luas penggunaannya, bahkan dianggap sebagai detektor yang universal untuk analisis obat dalam cairan biologis menggunakan GLC. Pada detector ini, komponen-komponen sampel yang keluar dari kolom dibakar dalam nyala (campuran gas hidrogen dan udara atau oksigen). Atom karbon senyawa organik dapat menghasilkan radikal CH yang selanjutnya menghasilkan ion CHO+ dalam nyala hydrogen udara. CHO+ yang dihasilkan dalam nyala bergerak ke katoda yang berada diatas nyala. Arus yang mengalir diantara anoda dan katoda diukur dan diterjemahkan sebagai sinyal pada rekorder. Detector ini jauh lebih peka daripada TCD dan kepekaannya akan meningkat jika gas bawanya N2.
Sejumlah besar ion yang terbentuk dalam nyala masuk ke dalam celah elektrode dan menurunkan tegangan listrik dari celah elektrode mula-mula. Penurunan tegangan ini yang kemudian dicatat sebagai sinyal oleh rekorder. Intensitas sinyal ini berbanding lurus dengan konsentrasi solute dalam gas pembawa.
Keunggulan detector ini:
Kepekaannya yang lebih besar
Waktu tanggapnya lebih singkat
Cukup stabil dan tak pekaterhadap suhu hingga 400°C
Memberikan respon linier pada rentang konsentrasi yang culup
lebar
Gambar 16. Detector FID
b. Detector ECD (Electron Capture Detector)
Pada ECD terdapat pemancar radioaktif β, seperti 3H atau 63Ni yang akan mengionisasi gas pembawa. Aliran elektron sebagai hasil ionisasi gas pembawa (nitrogen atau argon/methan) dalam ECD memberikan sinyal yang berupa baseline suatu kromatogram. Bila kemudian suatu senyawa masuk ke dalam detektor, sebagian dari elektron tersebut akan ditangkap oleh senyawa sebelum mereka mencapai plat detektor. Ini mengakibatkan aliran arus listrik dalam detektor berkurang, yang oleh rekorder akan dicatat sebagai suatu peak.
Gambar 17. Detektor ECD
c. Detector TCD (Thermal Conductivity Detector)
TCD berdasar atas prinsip, suatu benda yang panas akan kehilangan panasnya pada suatu kecepatan yang tergantung kepada komposisi gas di sekitarnya. Jadi, kecepatan hilangnya panas itu dapat digunakan sebagai ukuran tentang komposisi gas. Gas pembawa yang mengandung sample atau analit masuk ke dalam kolom, maka konduktivitas gas akan turun dan suhu filamen akan meningkat serta resistansi. Lewatnya sampel melalui kolom menyebabkan Jembatan Wheatstone yang tak seimbang sehingga terjadi signal yang terbaca pada detektor.
Gambar 18. Detector TCD
6. Rekorder
Bagian alat ini akan mencetak hasil perccobaan pada lembaran kertas berupa kumplan puncak yang disebut kromatogram. Gerakan kertas yang
merupakan fungsi waktu bisa diatur. (Hendayana. 1994: 250)
Data-data yang dihasilkan dari kromatogram selanjutnya dianalisis untuk keperluan analisis kualitatif dan kuantitatif.
1. Anaisis kualitatif
Untuk mengidentifikasi tiap peak kromatogram dapat dilakukan berbagai metode analisis, yaitu:
a. Membandingkan waktu retensi analit dan standar
Waktu retensi standar dibandingkan dengan waktu retensi analit b. Ko-kromatogram
Standar ditambahkan kepada cuplikan kemudian dilakukan kromatograi gas. Jika salah satu luas peak bertambah maka peak analit yang mengalami pertambahan luasnya identik dengan standar.
Spectrometer massa/IR langsung disambungkan kekolom kromatografi gas. Setiap peak dapat direkam spektranya secara menyeluruh.
2. Analisis kuantitatif
a. Pendekatan tinggi peak
Tinggi peak kromatografi diperoleh dengan membuat base line pada suatu peak dan mengukur tinggi garis tegak lurus yang menghubungkan base line dengan peak. Pendekatan ini dilakukan jika lebar peak standard an analit tidak jauh.
Gambar 18. Menentukan Tinggi Peak
b. Pendekatan area peak
Pendekatan area peak dapat memperhitungkan lebar peak sehingga lebar peak yang berbeda antara standard an analit tidak masalah. Pendekatan ini lebih baik dari pendekatan tinggi peak, dengan % kesalahan 0,44 – 2,6 %.
Gambar 19. Menentukan Area Peak c. Metode kalibrasi
Kita harus mempersiapkan sederet larutan standar, kemudian tiap larutan standar diukur dengan kromatografi. Area peak/tinggi peak diplot terhadap konsentrasi hingga diperoleh persamaan garis, kemudian kita bisa menentukan konsentrasi sampel.
Gambar 20. Kurva Kalibrasi untuk Menentukan Konsentrasi Sampel Mode Operasional
Komponen-komponen yang ada dalam cuplikan akan terpisah satu sama lain didalam kolom akibat perbedaan distribusi di antara fasa diam dan fasa gerak. Semakin lama komponen tersebut berada dalam fasa gerak, maka komponen tersebut akan terelusi lebih dulu. Waktu yang
Suhu merupakan salah satu faktor yang mempengaruhi pemisahan komponen darisuatu campuran dengan metode kromatografi gas. Parameter yang sangat menentukanadalah pengaturan suhu injektor dan kolom. Perbedaan suhu sekitar 0,50C saja dapatmenyebabkan perbedaan yang cukup berarti.
Suhu kolom dapat mempengaruhi posisi kesetimbangan distribusi analit di antara fasa diam dan fasa gerak, dimana kesetimbangan distribusi akan lebih cepat tercapaiseiring dengan meningkatnya suhu. Dengan demikian, pada suhu rendah, analit yangmemiliki titik didih rendah akan lebih lama berada dalam fasa gerak dibandingkan analityang memiliki titik didih lebih tinggi. Akibatnya, analit bertitik didih rendah akan terelusilebih dulu. Faktor suhu, terutama suhu di dalam kolom, tentu saja menjadi salah sa tu fa kt or yang harus diperhatikan dalam sebuah analisa kuantitatif menggunakan kromatografi gas.
Pengukuran kromatografi gas dapat dilakukan dalam dua mode operasional dalam system pengaturan suhu ovennya, yaitu mode isothermal dan mode suhu terprogram.
a. Isotermal (Temperatur Konstan)
Suhu kolom dijaga tetap selama pengukuran. Mode isothermal ini digunakan ketika sampel memilki rentang titik didih yang sangat dekat. Pemisahan terjadi berdasarkan kepolaran.
Pada suhu rendah, komponen-komponen bertitik didih rendah mungkin
dapat terpisah dengan baik, tetapi yang bertitik didih tinggi akan teretensi dengan kuat pada kolom.
Pada suhu tinggi, komponen-komponen dengan titik didih tinggi mungkin
terpisah dengan baik dengan waktu retensi yang tidak terlalu besar.
Komponen-komponen bertitik didih rendah tidak akan terpisah dan
terelusi pada awal pemisahan (didekat waktu mati dari kolom) b. Suhu Terprogram
Pada pengukuran dengan cara ini, suhu kolom divariasikan selama pengukuran berlangsung. Peningkatan suhu kolom pada
analisa menggunakan kromatografigas dikenal sebagai gradien s u h u . G r a d i e n s u h u a d a l a h p e r u b a h a n s u h u p e r satuan waktu. Pengukuran dengan mode operasi ini memungkinkan analit yang memiliki titik didih yang berdekatan untuk saling memisah dengan baik, sehingga diperoleh peak yang tidak saling bertumpukan. Gambar 21. dibawah ini menunjukan perbandingan kromatogramyang dihasilkan oleh mode operasi isothermal dan mode operasi pe mo gr am an suhu.
Gambar 21. Pengaruh Suhu Terhadap Kromatogram. (a) Mode Isotemal pada Suhu 45oC, (b) Mode Isotermal pada Suhu 145oC, (c) Program
Mode operasinal ini digunakan ketika sampel memiliki rentang titik didih yang cukup jauh.
Pada percobaan kali ini, dipilih mode operasional suhu terprogram. Selama operasional berlangsung, suhu kolom dinaikkan secara teratur. Suhu awal di set pada 40oC, kemudian dinaikan 8oC per menit sampai suhunya 150oC.
Cara temperatur terprogram ini digunakan, karena : - Resolusi menjadi lebih baik
- Efesiensi kolom meningkat
- Mempertajam analisis (komponen sampel yang tidak memberikan puncak pada pemanasan konstan, akan memberikan puncak yang lebih baik pada pemanasan terprogram). (Hendayana, 2006: 45-60).
C. Alat dan Bahan 1. Alat
Instrumen GC 1 set
Botol vial 3 buah
Pipet tetes 1 buah
Pipet volume 1 ml 1 buah
2. Bahan
Larutan standar Heksana 1 mL
Larutan standar Toluena 1 mL
Larutan standar Xilena 1 mL
D. Sifat Fisika Bahan-Bahan yang Digunakan
Nama Bahan Struktur Sifat Fisika
Heksana [CH3 – CH2 – CH2 – CH2 – CH2 – CH3] Titik didih = 68,95 C pada P=760 mmHg Titik leleh = -97,50C Toluena Toluena
Titik didih 110 C pada P=760 mmHg Titik didih = 14,50C pada P= 14,5 mmHg Titik leleh = -950C Xilena O-Xilena Titik didih = 144,4 C pada P = 760 mmHg
Titik didih = 320C pada P=10 mmHg m-Xilena Titik didih = 139,1 C Titik leleh = 28,10C P-Xilena Titik didih = 138,35oC Titik leleh = 13,2oC CH3
E. Langkah Kerja
1. Membuat larutan standar
Larutan standar terdiri dari heksana 25%, toluena 25%, dan xilena 25% yang masing-masing dipipet sebanyak 0,5 ml, lalu dimasukkan ke dalam botol vial.
2. Preparasi Sampel Pertamax
Preparasi sampel dilakukan dengan cara memipet sampel pertamak sebanyak 0,5 mL, kemudian dimasukkan ke dalam botol vial, dan terakhir ditambahkan masing-masing 0,5 mL larutan standar Heksana, Toluna, dan Xilena.
3. Penyiapan Instrumen GC
Dipastikan kabel penghubung listrik telah tersambung dengan benar. Kemudian tekan tombol “ON” pada sakelar listrik. Atur laju alir dan komposisi gas pembawa. Atur suhu kolom, suhu injector dan suhu detektor. Lalu nyalakan pompa dan dibiarkan alat GC selama 1 jam.
F. Analisis Data
Percobaan kali ini adalah penentuan komponen-komponen dalam sampel pertamax dengan teknik kromatografi gas. Dalam percobaan,hanya dilakukan
analisis kualitatif pada sampel berdasarkan waktu retensi komponen sampel dengan standar. Syarat suatu zat dapat dianalisis dengan kromatografi gas adalah zat tersebut stabil pada kondisi operasional dan bersifat mudah menguap. Larutan standar yang digunakan adalah campuran heksana,toluena dan xilena. Percobaan dilakukan untuk menentukan apakah dalam sampel pertamax mengandung heksana,toluena dan atau xilena. Sampel pertamax dapat langsung dianalisis dengan menggunakan instrumen kromatografi gas tanpa perlu diderivatisasi terlebih dahulu,karena sifat sampel pertamax mudah menguap dan stabil pada temperatur pengujian. Karena zat-zat standar memiliki kepolaran yang hampir sama namun titik didih masing-masing yang jauh berbeda maka mode operasional kromatografi gas yang dipilih adalah dengan suhu terprogram,yaitu
suhu awal kolom adalah 40 dengan kenaikan suhu 8 permenit sampai suhu 122
Kondisi parameter GC-2010 Shimadzu saat percobaan sebagai berikut: 1. Injektor:
- Gas pembawa : N2dengan tekanan 4-5 bar
- Suhu :150
- Tekanan : 115,2 kPa - Laju total : 93,8 mL/min - Porge flow : 3 mL/min 2. Kolom
- Suhu : 40selama 2 menit kemudian naik 8/menit sampai 122. - Jenis kolom : DB-5 (5% Fenil dan 95 % metil polisiklosan) dengan
diameter 0,25 mm dan panjang 30 m. rentang suhu kolom adalah -60 -325/350. Kolom termasuk kolom terbuka dan bersifat nonpolar. Pemilihan kolom ini dikarenakan komponen yang akan dipisahkan bersifat nonpolar dan agar pemisahannya efisien serta selektif.
3. Detektor
- Jenis detektor : FID (Flame Ionization Detektor). Pemilihan detektor adalah karena komponen yang akan dianalisis adalah senyawa organik. - Suhu detektor : 250
- Make up flow : 30 mL/min - Gas pembakar : H2
- Laju alir H2 : 40 mL/min
- Laju alir udara : 199,8 mL/min 4. Volume zat untuk injektor : 0,5 L
Syringe yang akan digunakan untuk menginjeksikan sampel sebelumnya dibilas dulu dengan zat yang akan diinjeksikan. Pastikan tidak ada gelembung
karena analit mudah menguap. Adanya udara dalam syringe juga akan menyebabkan peak tailing.
Suhu injektor yang tinggi akan menguapkan analit dan kemudian analit terbawa oleh gas pembawa menuju kolom. Di dalam kolom,zat analit akan terkondensasi karena suhu kolom lebih rendah dari titik didih analit. Disinilah terjadi distribusi komponen-komponen ke dalam fasa gerak dan fasa diam. Dengan naiknya suhu kolom secara terprogram maka komponen dengan titik didih paling rendah dan lebih terdistribusi ke dalam fasa gerak dan keluar kolom terlebih dahulu.
Komponen yang keluar dari kolom dicampur gas H2 dan udara kemudian
dibakar pada nyala dibagian dalam detektor. Atom karbon senyawa organik dapat menghasilkan radikal CH yang selanjutnya menghasilkan ion CHO+ yang dihasilkan bergerak ke katoda. Arus yang mengalir diantara anoda dan katoda diukur dan diterjemahkan sebagai sinyal pada rekorder.
Sampel yang dianalisis adalah larutan standar,pertamax,dan larutan standar+ pertamax. Pada kromatogram larutan standar (masing-masing 0,5 mL heksana,toluena,dan xilena) terdapat lima peak dengan tiga peak yang mendominasi. Hal ini berarti terdapat minimal lima komponen dalam standar. Tiga peak dalam kromatogram yaitu peak nomor 1,2,dan 4 secara berturut-turut adalah heksana (TD:68,95),toluena (TD:110,6),dan xilena (TD:138,35).
Apabila diperhatikan peak yang dihasilkan dalam analisis GC lebih runcing daripada peak yang dihasilkan dalam analisis HPLC. Hal ini dikarenakan mobilitas gas (fasa gerak dalam GC) lebih besar dari mobilitas cairan (fasa gerak dalam HPLC).
Kromatogram yang dihasilkan pada percobaan dianalisis secara kualitatif dengan dua cara, yaitu :
1. Membandingkan waktu retensi sampel dengan waktu retensi standar
Dari kromatogram standar diketahui ada lima peak. Peak pertama adalah n-heksan, karena titik didih n-heksan lebih rendah dibandingkan toluena dan xilena. Sedangkan peak nomor 2 adalah toluene karena titik didih toluena lebih kecil dari titik didih xilena. Peak nomor 3,4, dan 5 adalah xilena
dalam bentuk orto, meta, dan para. Para-xilena adalah yang paling stabil jika dibandingkan dengan meta dan orto, oleh sebab itu luas area para-xilena akan lebih besar daripada orto dan meta. Jadi peak untuk para-xilena adalah peak nomor 4, sedangkan peak nomor 3 adalah xilena karena titik didih meta-xilena lebih kecil dari orto-meta-xilena.
Sedangkan analisis sampel pertamax menghasilkan 43 peak pada kromatogramnya. Hal tersebut menunjukkan bahwa ada minimal 43 komponen terdapat dalam pertamax. Untuk mengetahui apakah di dalam sampel mengandung heksana,toluena,dan xilena,maka dilakukan dengan cara membandingkan waktu retensi standar dan sampel pertamax.
Komponen No.peak Waktu retensi Selisih
Standar Sampel Standar Sampel
Heksana 1 5 1,885 1,880 0,005
Toluena 2 18 3,387 3,356 0,031
Xilena 4 25 5,047 4,983 0,064
Berdasarkan data di atas,diketahui bahwa sampel pertamax mengandung heksana karena waktu retensi standar dan pertamax tidak berbeda secara signifikan. Tapi,tidak bisa dikatakan bahwa pertamax
mengandung toluena dan xilena karena waktu retensi standar dan pertamax berbeda secara signifikan,yakni lebih dari 0,01 sehingga hanya bisa menduga bahwa sampel pertamax mengandung toluena dan xilena. Untuk membuktikan dugaan tersebut maka dilakukan analisis kualitatif dengan metode ko-kromatografi.
2. Ko-kromatografi
Ko-kromatografi dilakukan dengan cara menambahkan larutan standar ke dalam sampel pertamax. Apabila luas peak pada kromatogram standar + pertamax bertambah (yang teridentifikasi dari tinggi peak),maka dapat dinyatakan bahwa sampel mengandung komponen-komponen yang sama dengan standar. Hasil kromatogram standar + pertamax menunjukkan 31 peak.
Berdasarkan data tabel hasil analisis dengan metode ko-kromatigrafi di atas,diketahui bahwa terjadi peningkatan area yang signifikan pada kromatogram standar + pertamax pada peak nomor 5,13,dan 16. Peningkatan area tersebut terjadi pada peak yang sebelumnya diduga mengandung toluena dan xilena.
Sehingga dapt disimpulkan bahwa pertamax mengandung heksana,toluena,dan xilena. Jika dilihat dari faktor pembanding,maka faktor pembanding yang terbesar berturut-turut adalah heksana,xilena dan toluena
sedangkan faktor pembanding untuk peak lainnya sangat kecil. Hal tersebut menunjukkan bahwa tidak terjadi penambahan luas area karena standar tidak mengandung komponen tersebut.
Jadi,berdasarkan analisis kualitatif dengan menggunakan metode perbandingan waktu retensi dan metode ko-kromatografi,diketahui bahwa
sampel pertamax mengandung heksana,toluena,dan xilena.
G. Kesimpulan
Berdasarkan analisis krmatogram standar (campuran heksana, toluena, dan xilena), kromatogram pertamax, dan kromatoram pertamax+standar pada percobaan penentuan beberapa komponen dalam pertamax dengan menggunakan instrumen kromatografi gas yang menggunakan mode operasional suhu
