Pertumbuhan Bibit Kelapa Sawit Dengan Pupuk Hayati Pada Perbedaan Volume Media Tanam

(1)

Lampiran 1. Deskripsi Karakteristik Tenera DxP Simalungun

Rataan jumlah tandan : 13 tandan/phn/thn Rataan berat tandan : 19,2 kg

Produksi tandan buah segar

• Rerata : 28,4 ton/ha/thn

• Potensi : 33 ton/ha/thn

Rendemen : 26,5%

Produksi minyak

• Rerata : 7,53 ton/ha/thn

• Potensi : 8,7 ton/ha/thn

Inti/buah : 9,2%

Pertumbuhan meninggi : 75-80 cm/thn

Panjang pelepah : 5,47 m

Kebutuhan tanah /topsoil : 1000 kg (60%) / 500 kecambah Kebutuhan pasir : 150 kg / 500 kecambah

Standart kecambah kelapa sawit yang baik : - Berat benih minimal 0,8 gr.

(2)

(3)

Lampiran 3. Bagan Penanaman Pada Petakan

50 cm

20 cm

X

20 cm 15 cm

X

(4)

1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 15 16 17 18

- Penyiraman Dilakukan sesuai dengan kondisi di lapangan

- Penyulaman X

- Pemupukan X

- Pengendalian

Gulma Dilakukan sesuai dengan kondisi di lapangan - Pengamatan gejala

serangan HPT X X X X X X X X X X X X X X X X - Pengendalian hama

penyakit Dilakukan sesuai dengan kondisi di lapangan

(5)

Lampiran 5. Hasil Analisis Topsoil Inceptisol Kwala Bekala

No. Parameter Hasil

Penilaian Sifat Kimia Tanah

(LPT, 1983)

Kriteria

1 C-organik 1.33% ˂ 1.00 % Sangat rendah

2 N-total 0.15% ˂ 0.10 % Rendah

3 P- tersedia dalam

tanah ˂LOD ˂ 0.27 mg/kg -

4 K 0.63 0.6 – 1 Cmol.kg-1 Tinggi

5 Ca 2.69 2 – 5 Cmol.kg-1 Rendah

6 Mg 1.08 1.1 – 2.0 Cmol.kg-1 Sedang

7 pH H2O 5.16 4.5 – 5.5 Masam

*) LOD (Limit Of Detection) : 0.27 mg/kg

(6)

FAKULTAS PERTANIAN UNIVERSITAS SUMATERA UTARA

Jl. Prof. A. Sofyan No. 3 Kampus USU Medan 20155 Telp. (061) 8213236 Fax. (061) 8211924

DATA ANALISIS DERAJAT INFEKSI AKAR OLEH FMA

(7)

Lampiran 7. Data Pengamatan Tinggi Bibit 6 MST (cm)

Perlakuan Ulangan Total Rataan

I II III

Lampiran 8. Sidik ragam Tinggi Bibit 6 MST

(8)

H0V1 11.08 8.58 11.60 31.25 10.42

(9)

I II III

(10)

H0V1 14.25 12.80 11.30 38.35 12.78

(11)

I II III

(12)

H0V1 17.45 15.35 13.43 46.23 15.41

(13)

I II III

(14)

H0V1 17.98 17.08 16.15 51.20 17.07

(15)

I II III

(16)

H0V1 20.08 19.15 16.30 55.53 18.51

Lampiran 26. Sidik ragam Tinggi Tanaman 15 MST

(17)

I II III

(18)

H0V1 22.23 21.98 16.35 60.55 20.18

(19)

I II III

Lampiran 32. Sidik ragam Tinggi Tanaman 18 MST

(20)

H0V1 3.56 3.22 3.87 10.64 3.55

Lampiran 34. Sidik ragam Lilit Batang 6 MST

(21)

Lampiran 35. Data Pengamatan Lilit Batang 7 MST (mm)

I II III

(22)

H0V1 3.73 3.38 3.88 10.98 3.66

(23)

I II III

(24)

H0V1 4.28 3.84 4.01 12.13 4.04

(25)

I II III

(26)

H0V1 4.07 4.11 4.17 12.35 4.12

(27)

I II III

(28)

H0V1 5.29 4.35 4.40 14.04 4.68

(29)

I II III

(30)

H0V1 6.05 4.90 5.79 16.75 5.58

(31)

I II III

(32)

H0V1 6.53 5.91 7.45 19.88 6.63

(33)

Lampiran 59. Data Pengamatan Jumlah Daun 6 MST (helai)

I II III

Lampiran 60. Sidik ragam Jumlah Daun 6 MST

(34)

H0V1 1.75 1.75 1.50 5.00 1.67

(35)

I II III

(36)

H0V1 1.75 2.00 2.00 5.75 1.92

(37)

I II III

(38)

H0V1 2.50 2.00 2.00 6.50 2.17

(39)

I II III

(40)

H0V1 2.75 2.50 2.75 8.00 2.67

(41)

I II III

(42)

H0V1 3.00 2.75 3.50 9.25 3.08

(43)

I II III

(44)

H0V1 4.00 4.00 3.25 11.25 3.75

(45)

I II III

(46)

H0V1 22.21 19.71 21.04 62.96 20.99

Lampiran 86. Sidik ragam Total Luas Daun

(47)

Lampiran 87. Data Pengamatan Bobot Basah Akar (g)

I II III

Lampiran 88. Sidik ragam Bobot Basah Akar

(48)

H0V1 2.14 2.12 1.67 5.94 1.98

Lampiran 90. Sidik ragam Bobot Basah Tajuk

(49)

Lampiran 91. Data Pengamatan Bobot Kering Akar (g)

I II III

Lampiran 92. Sidik ragam Bobot Kering Akar (g)

(50)

H0V1 1.67 1.70 1.38 4.75 1.58

Lampiran 94. Sidik ragam Bobot Kering Tajuk

(51)

Lampiran 95. Data Pengamatan Derajat Infeksi Akar (%)

I II III

Lampiran 96. Sidik ragam Derajat Infeksi Akar

(52)

Lahan Penelitiaan di Lahan Percocaan Fakultas Pertanian USU

Pupuk Hayati Aplikasi Pupuk Hayati Aplikasi pupuk hayati 2MST

(53)

DAFTAR PUSTAKA

Amin. 2007. Respon Pertumbuhan Bibit Kelapa Sawit Terhadap Pemberian Mikoriza Vesikular Arbuskular (MVA) dan tandan Kososng Kelapa Sawit (TKKS) di Pre Nursery. Universitas Sumatera Utara.

Badan Penelitian dan Pengembangan Pertanian. 2008. Teknologi BudidayaKelapa Sawit. BPPT, Jakarta.

Balai Besar Perbenihan dan Proteksi Tanaman Perkebunan. 2013. Teknis Pembibitan Kelapa Sawit. BBPPTP, Medan.

Baath, E., Hayman D.S. 1984. Effect of soil volume and plant density on mycorrhizal infection and growth response. Plant and Soil 77, 373–376. Baryosef, B. 1988. Effect of root volume and nitrate solution concentration on

growth, fruit yield, and temporal N and water uptake by apple trees. Plant and Soil 107, 49–56.

Celebri, S.Z., O. Arvas, O. Terzioglu. 2011. The effect of nitrogen and phosphorus fertilizer application on herbage yield of natural pastures. Pak. J. Biol. Sci. 14:53-58

Costa, M.C.G. 2012. Soil and crop responses to lime fertilzers in a fire-free land use system for smallholdings in the northern Brazillian Amazon. Soil Till. Res. 121:27-37

Darmosarkoro, W., Akiyat, Sugiyono, E. S., Sutarta. 2008. Pembibitan Kelapa Sawit. PPKS RISPA, Medan.

Dewi, I.R. 2007. Bakteri Pelarut Fosfat. Makalah. Program Studi Agronomi. Universitas Padjajaran.

Direktorat Jendral Perkebunan. 2014. Produksi, Statistik Perkebunan Indonesia Komoditas Kelapa Sawit 2013 – 2015. Jakarta.

(54)

Lubis, A. U. 2008. Kelapa Sawit (Elaeis guineensis Jacq.) Di Indonesia. Edisi 2. PPKS RISPA, Medan.

Mangoensoekarjo, S., dan H. Semangun. 2003. Manajemen Agrobisnis Kelapa Sawit. Gadjah Mada University Press, Yogyakarta.

Nasahi, C. 2010. Peran Mikroba Dalam Pertanian Organik. Jurusan Hama dan Penyakit Tumbuhan Fakultas Pertanian Universitas Padjajaran, Bandung. Novriani. 2010. Inokulasi Mikoriza Arbuskula Pada Bibit Kelapa Sawit Yang di

Tanam Pada Berbagai Komposisi Media Tanam. Unsri, Palembang.

Parmer, D. 2006. Efektivitas Asam Humik dan Mikoriza Vesikular Arbuskular pada Pertumbuhan Bibi Kelapa Sawit Secara Komersil. KKP3. Jakarta. Patten, C.L. and B.R. Glick. 2002. Role of Pseudomonas Putida Indol Acetic

Acid in Development of the Host Plant Root system. Appl. Environ. Microbiol. 68:3795-3801.

Puryono, S.K.S. 1998. Perlunya Label Bibit Bermikoriza. Majalah Kehutanan Indonesia. Ed 2 Th. 1997/1998.

Pusat Data dan Informasi (PUSDATIN) Pertanian. 2014. Indonesia 2050 Pathway Calculator. Panduan Pengguna Untuk Kelapa Sawit, Jakarta.

Poorter, H. Buhler, J. Climent, J. Postma, J. Dushoten, D. 2012. Pot Size Matters A Meta Analysis Of The Effect Of Rooting Volume On Plant Growth. Fungtional Plant Biology. Forest Research Centre, Department of Forest Ecology and Genetics .Madrid, Spain.

Rahmawati, N. 2005. Pemanfaatan biofertilizer Pada Pertanian Organik. Fakultas Pertanian Universitas Sumatera Utara, Medan

Rao, N. S. Subha. 1998. Mikroorganisme Tanah dan Pertumbuhan Tanaman. Edisi Kedua. Universitas Indonesia. Jakarta.

Risza, S. 1994. Kelapa Sawit Upaya Peningkatan Produktivitas. Kanisius, Yogyakarta.

Rungkat, J. A. 2009. Peranan MVA dalam meningkatkan pertumbuhan dan produksi tanaman. Jurnal FORMAS 4 : 270-276.

Salisbury, F. B dan C. W. Ross. 1995. Fisiologi Tumbuhan. Edisi 4. Terjemahan Diah. R. Lukman dan Sumaryono. ITB Press. Bandung.

(55)

Samah, E. Nainggolan, T. dan Rahmaniah. 2001. Cendawan Mikoriza dan Pupuk Organik Kascing Meningkatkan Serapan Hara dan Air Oleh Akar. Fakultas Pertanian UMA, Medan.

Sastrosayono. 2004. Budidaya Kelapa Sawit. Agromedia Pustaka, Jakarta.

Schulzt, Subroto, P. L. G. Vek. 2005. Peranan Mikoriza Vesikular Arbuskular Terhadap Planlet Dalam Penyesuaian Diri Dari Lingkungan Luar. IPB. Bogor.

Stell, R. G. D. Dan J. H. Torrie. 1995. Prinsip dan Prosedur Statistika Penterjemah Bambang Sumantri. Gramedia Pustaka Umum, Jakarta.

(56)

Penelitian dilaksanakan di lahan percobaan Fakultas Pertanian Universitas Sumatera Utara, dengan ketinggian tempat ± 32 meter di atas permukaan laut. Penelitian dilakukan pada bulan Mei hingga September 2016.

Bahan dan Alat

Bahan yang digunakan dalam penelitian ini adalah kecambah kelap sawit

Tenera (DxP) Simalungun PPKS Medan, tanah Inceptisol Kwala Bekala, Fungi Mikoriza Arbuskular (FMA), inokulum Azotobacter chroococcum,

inokulum Peudomonas flourescens, polibek ukuran 15 cm x 30 cm, bambu dan pelepah kelapa sawit.

Adapun alat-alat yang digunakan dalam penelitian ini adalah cangkul,

meteran, kawat, gunting kawat, tugal tanah, tali plastik, arit, timbangan, ayakan 10 mesh, timbangan analitik, erlenmeyer, gelas ukur, kertas label,

penggaris, jangka sorong digital, botol sampel, mikroskop, kamera, form data, kalkulator, alat tulis.

Metode Penelitian

Penelitian menggunakan rancangan acak kelompok (RAK) dengan 2 faktor :

Faktor I : Pemberian berbagai pupuk hayati (H) dengan 3 taraf, yaitu : H0 : Kontrol ( tanpa pupuk hayati )

H1 : FMA + Azotobacter crooccum H2 : FMA + Pseudomonas flourescens

(57)

Faktor II : Perbedaan volume media tanam dalam polibek (V) dengan taraf, yaitu : V1 : 0.5 kg / polibek

V2 : 1 kg / polibek V3 : 1.5 kg / polibek V4 : 2 kg / polibek

Sehingga diperoleh 12 kombinasi perlakuan, yaitu :

H0V1 H1V1 H2V1

H0V2 H1V2 H2V2

H0V3 H1V3 H2V3

H0V4 H1V4 H2V4

Jumlah ulangan : 3 ulangan Jumlah petakan : 36 petakan Jumlah polibek / petakan : 4 tanaman

Jarak tanam : 20 cm x 20 cm

Jarak antar petakan : 30 cm

Ukuran 1 petakan : 50 cmx 50 cm Jarak antar blok : 30 cm

Ukuran parit : 30cm

(58)

Dimana :

Yijk : Data hasil pengamatan dari unit percobaan blok ke-i dengan perlakuan pupuk hayati tanam taraf ke-j dan perbedaan volume media tanam taraf ke-k

μ : Nilai tengah

ρi : Efek blok ke-i

αj : Efek pupuk hayati pada taraf ke-j

βk : Efek perbedaan volume media tanam pada taraf ke-k

(αβ)jk : Efek interaksi dari pupuk hayati pada taraf ke-j dan perlakuan perbedaan volume media tanam pada taraf ke-k

εijk : Galat dari blok ke-i, pupuk hayati pada taraf ke-j dan perbedaan volume media tanam pada taraf ke-k

Jika dari hasil analisis sidik ragam menunjukkan pengaruh yang nyata, maka dilanjutkan dengan Uji Beda Rataan berdasarkan Duncan Multiple Range Test (DMRT) pada taraf 5% (Steel and Torrie, 1989).

(59)

PELAKSANAAN PENELITIAN

Persiapan Areal Pembibitan

Areal pembibitan yang digunakan untuk penelitian terlebih dahulu dibersihkan dari gulma dan sampah lainnya. Dilakukan pembentukan petakan lahan dengan ukuran 10 m x 4 m, dibuat parit pada keliling petakan dengan kedalaman 30 cm untuk menghindari genangan air di sekitar areal pembibitan.

Pembuatan Naungan

Kontruksi naungan dibuat dengan ukuran 12 m x 5 m untuk menutupi seluruh areal petakan pembibitan. Konstruksi naungan dibuat dengan tiang bambu dan atap naungan tersusun atas pelepah kelapa sawit. Naungan yang digunakan pada bulan pertama berkisar 90%, pada bulan kedua berkisar 60%, pada bulan ketiga berkisar 30% dan pada bulan keempat 0%. Naungan berfungsi untuk mencegah dan mengurangi sinar matahari dan terpaan air hujan langsung ke bibit kelapa sawit. Tinggi naungan dibuat dengan ketinggian 2 meter dari permukaan tanah areal pembibitan.

Pembuatan Pupuk Hayati

(60)

tebal 0,07 mm. Media tanam ditimbang terlebih dahulu kemudian dimasukkan kedalam polibek sesuai dengan volume yang ditentukan, perbedaan volume media tanam yang digunakan pada penelitian ini sebagai berikut :

V1 : 0.5 kg / polibek V3 : 1.5 kg / polibek V2 : 1 kg / polibek V4 : 2 kg / polibek Pemupukan

Pemupukan dasar dilakukan sebagai pemacu pertumbuhan awal dan merangsang kerja dari mikroorganisme yang ada didalam tanah. Pemupukan dasar yang dilakukan pada penelitian ini sepertiga dari dosis anjuran pada pembibitan kelapa sawit pada umumnya. Pupuk dasar yang diberikan berupa NPKMg 1.67 g, diaplikasikan saat pengisian media tanam.

Penyediaan Bahan Tanaman (kecambah)

Kecambah kelapa sawit yang digunakan berasal dari PPKS (Pusat Penelitian Kelapa Sawit) variaetas Tenera (DxP).

Penanaman Kecambah Kelapa Sawit

Penanaman Kecambah kelapa sawit dilakukan dengan menanam kecambah kedalam polibek sedalam 2 cm, dengan radikula menghadap kebawah dan plumula menghadap keatas dan tidak tertutupi oleh media tanam. Jumlah kecambah yang ditanam per polibek sebanyak 1 kecambah, kemudian dilakukan penyiraman ringan setelah penanaman. Sebelum melakukan penanaman, kecambah sawit direndam dengan air biasa selama 5 menit, Hal ini bertujuan memicu proses imbibisi air dan permebilitas kecambah.

(61)

Aplikasi Pupuk Hayati

Aplikasi Fungi Mikoriza Arbuskula dilakukan 2 minggu setelah penanaman kecambah kelapa sawit sebanyak 10 g per polibek. Aplikasi dilakukan dengan cara mebuat lubang pada sekitar perakaran tanaman kemudian menaburkannya merata dan ditutup kembali dengan media tanam. FMA diperoleh dari Laboratorium Biologi Tanah Fakultas Pertanian Universitas Sumatera Utara

yang berasal dari tanah perkebunan kelapa sawit. Waktu aplikasi FMA dilakukan pada sore hari.

Aplikasi pupuk hayati berupa bakteri penambat nitrogen berupa inokulum cair Azotobacter chroococcum dan bakteri pelarut fosfat berupa inokulum cair Pseudomonas flourescens sebanyak 20 mL per polibek. Aplikasi dilakukan

dengan membuat parit disekeliling perakaran tanaman. Inokulum Azotobacter chroococcum dan Pseudomonas flourescens didapatkan melalui tahap isolasi dan

purifikasi di Laboratorium Biologi Tanah Fakultas Pertanian Universitas Sumatera Utara. Waktu aplikasi dilakukan pada sore hari.

Pemeliharaan

Penyiraman

(62)

Pengendalian Gulma

Pengendalian gulma dilakukan bila ditemukan adanya gulma pada areal pembibitan. Pengendalian gulma dilakukan dengan cara manual untuk menekan pertumbuhan gulma di polibek dan menggunakan arit kecil untuk menekan gulma

di areal pembibitan, interval penyiangan disesuaikan dengan keadaan gulma di areal pembibitan.

Pengamatan Gejala Serangan Hama dan Penyakit `

Pengamatan gejala serangan hama dan penyakit dilakukan pagi hari. Adapun hama yang sering menyerang pembibitan kelapa sawit adalah belalang dan semut, sedangkan penyakitnya disebabkan oleh patogen jamur / fungi.

Pengendalian Hama dan Penyakit

Untuk mengendalikan serangan hama dilakukan dengan penyemprotan insektisida berbahan aktif deltametrin konsentasi 0.2% dengan dosis 10 ml / liter air, Penyemprotan dilakukan sesuai dengan kondisi serangan hama dan penyakit pada tanaman.

Parameter Pengamatan

Tinggi Bibit (cm)

Pengukuran tinggi kelapa sawit bibit dilakukan dari pangkal batang yang diberi penanda sampai ujung daun. Daun ditegakkan lalu diukur dengan

menggunakan penggaris. Pengukuran dilakukan setelah tanaman berumur 6 minggu setelah tanam (MST) hingga tanaman berumur 18 MST dengan interval 1 minggu.

(63)

Lilit Batang (mm)

Pengukuran lilit batang dilakukan dari dua arah yang berlawanan yang dan saling tegak lurus dengan menggunakan jangka sorong digital, kemudian dirata – ratakan hasil pengukuran dari dua arah. Pengukuran dilakukan pada batang tanaman ketinggian 1cm diatas permakaan tanah. Pengukuran parameter lilit batang dilakukan sejak tanaman berumur 6 MST hingga tanaman berumur 18 MST dengan interval 1 minggu sekali .

Jumlah daun (helai)

Jumlah daun yang dihitung adalah daun yang telah membuka dengan

sempurna membentuk helaian daun. Penghitungan jumlah daun dilakukan setelah bibit berumur 6 MST hingga bibit berumur 18 MST dengan interval 1 minggu.

Total Luas Daun (cm2)

Pengukuran total luas daun dilakukan pada akhir penelitian yaitu saat bibit berumur 18 MST. Panjang daun diukur dari pangkal sampai ujung daun

(64)

Bobot Basah Tajuk (g)

Pengukuran bobot basah tajuk dilakukan pada akhir penelitian dengan cara menimbang sampel tajuk yang telah dipisahkan dari akar. Tajuk dipotong pada bagian pangkal bawah menggunakan pisau tajam kemudian ditimbang tajuk menggunakan timbangan analitik.

Bobot Kering Akar (g)

Pengukuran bobot kering akar dilakukaan pada saat akhir penelitian dengan cara menimbang sampel akar yang telah di ovenkan pada suhu 72°C selama 24 jam, kemudian ditimbang dengan timbangan analitik.

Bobot Kering Tajuk (g)

Pengukuran bobot kering tajuk dilakukaan pada saat akhir penelitian dengan cara menimbang sampel tajuk yang telah di ovenkan pada suhu 72°C selama 24 jam, kemudian ditimbang dengan timbangan analitik.

Derajat Infeksi (%)

Penghitungan persentase derajat infeksi akar bibit kelapa sawit dilakukan pada saat akhir penelitian saat berumut 18 MST. Pengukuran derajat infeksi akar dilakukan di Laboratorium Biologi Tanan Fakultas Pertanian Universitas Sumatera Utara. Bagian akar sampel dipotong 1 cm – 2cm pada tiga bagian perakaran yang berbeda secara acak. Persentase derajat infeksi akar dihitung dengan menggunakan metode panjang akar terkolonisasi. Derajat infeksi akar dihitung dengan menggunakan rumus :

% derajat infeksi akar = ∑ bidang pandang bertanda (+) ∑ bidang pandang keseluruhan

x 100 %

(65)

HASIL DAN PEMBAHASAN

Hasil

Berdasarkan hasil analisis statistik menunjukkan bahwa perlakuan pupuk hayati berpengaruh nyata terhadap seluruh parameter, yaitu parameter tinggi bibit

14-18 MST, lilit batang 14-18 MST, jumlah daun 14-18 MST, total luas daun, bobot basar akar, bobot basah tajuk, bobok kering akar, bobot kering tajuk dan derajat infeksi akar. Perlakuan volume media tanam berpengaruh tidak nyata terhadap seluruh parameter pengamatan. Interaksi antara perlakuan pupuk hayati

dan perbedaan volume media tanam berpengaruh nyata terhadap parameter lilit batang 14-18 MST, total luas daun, bobot kering akar dan derajat infeksi akar.

Tinggi Bibit (cm)

Berdasarkan data pengamatan tinggi bibit kelapa sawit disajikan pada Lampiran Tabel 23, 25, 27, 29, dan 31 sedangkan sidik ragam disajikan pada Lampiran Tabel 24, 25, 28, 30, dan 32 diketahui bahwa perlakuan pupuk hayati berpengaruh nyata terhadap tinggi bibit kelapa sawit pada 14-18 MST, sedangkan perlakuan volume media tanam serta interaksi antara perlakuan pupuk hayati dan volume media tanam berpengaruh tidak nyata terhadap parameter tinggi bibit.

(66)

MST Pupuk Hayati

Keterangan: Angka yang diikuti notasi yang sama pada baris atau kelompok kolom yang sama menunjukkan berbeda tidak nyata menurut Uji Jarak Berganda Duncan pada taraf α=5%

Hasil pada tabel 1, menunjukkan bahwa rataan tinggi bibit kelapa sawit dengan pemberian pupuk hayati lebih tinggi dibandingkan tanpa pemberian. Akan tetapi pada minggu pengamatan ke 17, pemberian pupuk hayati FMA +

(67)

Azotobacter chroccoccum menghasilkan rataan tertinggi dibandingkan dengan dua

perlakuan lainnya.

Lilit Batang (mm)

Berdasarkan data pengamatan lilit batang kelapa sawit disajikan pada Lampiran Tabel 49, 51, 53, 55, dan 57 sedangkan sidik ragam disajikan pada dLampiran Tabel 50, 52, 54, 56, dan 58 diketahui bahwa perlakuan pupuk hayati berpengaruh nyata terhadap lilit batang 14-18 MST, sedangkan perlakuan volume media tanam berpengaruh tidak nyata terhadap parameter lilit batang serta interaksi antara pupuk hayati dan volume media tanam berpengaruh nyata terhadap parameter lilit batang 14-18 MST.

(68)

MST Pupuk Hayati

flourescens 6.80bcd 6.96bc 5.47ef 6.67bcd 6.47

Rataan 5.81 6.60 6.17 5.90 6.12

15

Tanpa Pupuk Hayati 6.47f 8.31def 7.08ef 6.98f 7.21 FMA + Azotobacter

croccocum 10.02cde 15.84a 12.21b 10.76bcd 12.21 FMA + Pseudomonas

flourescens 11.36bc 11.32bc 7.74ef 10.11bcde 10.13

Rataan 9.28 11.83 9.01 9.29 9.85

16

Tanpa Pupuk Hayati 6.47f 8.31cde 7.08ef 6.98ef 7.21 FMA + Azotobacter

croccocum 10.99bcd 16.48a 12.21b 10.87bcd 12.64 FMA + Pseudomonas

flourescens 11.36bc 11.32bc 7.74de 10.32bcde 10.19

Rataan 9.61 12.04 9.01 9.39 10.01

flourescens 11.36bc 11.32c 7.74de 10.95cd 10.34

Rataan 9.81 12.53 9.01 9.60 10.24

flourescens 11.89bc 11.41bc 7.74de 11.25c 10.57

Rataan 9.98 13.01 9.28 9.70 10.49

Hasil pada Tabel 2, menunjukkan lilit batang tertinggi diperoleh pada kombinasi perlakuan pemberian FMA + Azotobacter chroccoccum dengan volume tanah 1.5 kg/polibek, sedangkan rataan terendah diperoleh pada perlakuan tanpa pupuk hayati. Akan tetapi pada pengamatan minggu 15-18 rataan lilit

(69)

batang tertinggi diperoleh pada kombinasi perlakuan pemberian pupuk hayati FMA + Azotobacter chrooccoccum dengan volume media 1 kg/ polibek.

Jumlah Daun (helai)

Berdasarkan data pengamatan jumlah daun bibit kelapa sawit disajikan pada Lampiran Tabel 75, 77, 79, 81 dan 83 sedangkan sidik ragam disajikan pada Lampiran Tabel 76, 78, 80, 82, dan 84 diketahui bahwa perlakuan pupuk hayati berpengaruh nyata terhadap jumlah daun bibit kelapa sawit pada 6-18 MST, sedangkan perbedaan volume media tanam serta interaksi antara perlakuan pupuk hayati dan perbedaan volume media tanam berpengaruh tidak nyata terhadap parameter jumlah daun.

(70)

MST Pupuk Hayati

Hasil pada Tabel 3, menunjukkan bahwa rataan jumlah daun bibit kelapa sawit dengan pemberian pupuk hayati lebih tinggi dibandingkan tanpa pupuk

hayati, akan tetapi pada pengamatan minggu ke 14 perlakuan pupuk hayati

(71)

FMA + Pseudomonas flourescens menghasilkan rataan tertinggi dibandingkan dua perlakuan lainnya.

Total Luas Daun (cm2)

Berdasarkan data pengamatan total luas daun bibit kelapa sawit disajikan

pada Lampiran Tabel 85 sedangkan sidik ragam disajikan pada Lampiran Tabel 86 diketahui bahwa perlakuan pupuk hayati berpengaruh nyata terhadap

parameter total luas daun, sedangkan perbedaan volume media tanam berpengaruh tidak nyata terhadap parameter total luas daun serta interaksi antara perlakuan pupuk hayati dan perbedaan volume media tanam berpengaruh nyata terhadap total luas daun.

Rataan total luas daun pada perlakuan pupuk hayati dan perbedaan volume media tanam dapat dilihat pada Tabel 4.

Tabel 4. Total luas daun bibit kelapa sawit dengan perlakuan pupuk hayati dan volume media tanam pada umur pengamatan 18 MST

Pupuk Hayati

Tanpa Pupuk Hayati 20.99de 21.61cde 17.08de 25.10cd 21.19 FMA + Azotobacter

croccocum 48.69a 49.32a 38.07b 37.20b 43.32 FMA + Pseudomonas

flourescens 27.98c 35.90b 31.44bc 35.14b 32.61

(72)

perlakuan tanpa pupuk hayati.

Bobot Basah Akar (g)

Berdasarkan data pengamatan bobot basah akar bibit kelapa sawit disajikan pada Lampiran Tabel 87 sedangkan sidik ragam disajikan pada Lampiran Tabel 88 diketahui bahwa perlakuan pupuk hayati berpengaruh nyata terhadap parameter bobot basah akar, sedangkan perlakuan perbedaan volume media tanam berpengaruh tidak nyata terhadap parameter bobot basah akar serta interaksi antara perlakuan pupuk hayati dan perbedaan volume media tanam berpengaruh tidak nyata terhadap parameter bobot basah akar.

Rataan bobot basah akar pada perlakuan pupuk hayati dan perbedaan volume media tanam dapat dilihat pada Tabel 5.

Tabel 5. Bobot basah akar bibit kelapa sawit dengan perlakuan pupuk hayati dan volume media tanam pada umur pengamatan 18 MST

Pupuk Hayati

Hasil pada Tabel 5, menunjukkan bahwa rataan tertinggi bobot basah akar kelapa sawit dengan pemberian pupuk hayati lebih tinggi dibandingkan tanpa pemberian pupuk hayati.

(73)

Bobot Basah Tajuk (g)

Berdasarkan data pengamatan bobot basah tajuk bibit kelapa sawit disajikan pada Lampiran Tabel 89 sedangkan sidik ragam disajikan pada Lampiran Tabel 90 diketahui bahwa perlakuan pupuk hayati berpengaruh nyata terhadap parameter bobot basah tajuk, sedangkan perlakuan perbedaan volume media tanam berpengaruh tidak nyata terhadap parameter bobot basah tajuk serta interaksi antara perlakuan pupuk hayati dan perbedaan volume media tanam berpengaruh tidak nyata terhadap parameter bobot basah tajuk.

Rataan bobot basah tajuk pada perlakuan pupuk hayati dan perbedaan volume media tanam dapat dilihat pada Tabel 6.

Tabel 6. Bobot basah tajuk bibit kelapa sawit dengan perlakuan pupuk hayati dan volume media tanam pada umur pengamatan 18 MST

Pupuk Hayati

(74)

berpengaruh tidak nyata terhadap bobot kering akar serta interaksi antara perlakuan pupuk hayati dan perbedaan volume media tanam berpengaruh nyata terhadap parameter bobot kering akar.

Bobot kering akar pada perlakuan pupuk hayati dan perbedaan volume media tanam dapat dilihat pada Tabel 7.

Tabel 7. Bobot kering akar bibit kelapa sawit dengan perlakuan pupuk hayati dan volume media tanam pada umur pengamatan 18 MST

Pupuk Hayati

Hasil pada Tabel 7, menunjukkan bobot kering akar bibit kelapa sawit tertinggi diperoleh pada kombinasi perlakuan pemberian FMA + Azotobacter chrooccocum dengan volume media 1 kg/polibek sedangkan rataan terendah

diperoleh pada perlakuan tanpa pupuk hayati.

Bobot kering Tajuk (g)

Berdasarkan data pengamatan bobot kering tajuk bibit kelapa sawit disajikan pada Lampiran Tabel 93 sedangkan sidik ragam disajikan pada Lampiran Tabel 94 diketahui bahwa perlakuan pupuk hayati berpengaruh nyata terhadap bobot kering tajuk, sedangkan perlakuan perbedaan volume media tanam

(75)

berpengaruh tidak nyata terhadap bobot kering tajuk serta interaksi antara perlakuan pupuk hayati dan perbedaan volume media tanam berpengaruh tidak nyata terhadap bobot kering tajuk.

Rataan bobot kering tajuk pada perlakuan pupuk hayati dan perbedaan volume media tanam dapat dilihat pada Tabel 8.

Tabel 8. Bobot kering tajuk bibit kelapa sawit dengan perlakuan pupuk hayati dan volume media tanam pada umur pengamatan 18 MST

Pupuk Hayati

Hasil pada Tabel 6, menunjukkan bahwa rataan tertinggi bobot kering tajuk kelapa sawit dengan pemberian pupuk hayati lebih tinggi dibandingkan tanpa pemberian pupuk hayati.

Derajat Infeksi Akar (%)

(76)

Tabel 9. Derajat infeksi akar bibit kelapa sawit dengan perlakuan pupuk hayati dan volume media tanam pada umur pengamatan 18 MST

Pupuk Hayati

croccocum 68.33bcd 73.33ab 60.00d 60.00d 63.75 FMA + Pseudomonas

flourescens 76.67a 70.00bc 65.00cd 63.33d 68.75

Rataan 61.11 62.22 59.44 58.33 60.28

Hasil pada Tabel 9, menunjukkan bahwa rataan tertinggi derajat infeksi akar bibit kelapa sawit diperoleh pada kombinasi perlakuan pemberian FMA + Pseudomonas flourescens dengan volume tanah 0.5 kg/polibek, sedangkan rataan

terendah diperoleh pada kombinasi perlakuan tanpa pupuk hayati.

Pembahasan

Pertumbuhan bibit kelapa sawit pada perlakuan pupuk hayati

Bedasarkan hasil analisis sidik ragam diketahui bahwa perlakuan pupuk

hayati berpengaruh nyata terhadap parameter tingi bibit 14-18 MST, lilit batang 14-18 MST, jumlah daun 14-18 MST, total luas daun, bobot basah akar, bobot

basah tajuk, bobot kering akar, bobot kering tajuk dan derajat infeksi akar.

Tinggi bibit kelapa sawit pada 14-18 MST (Tabel 1) menunjukkan pengaruh nyata pemberian pupuk hayati FMA + Azotobacter croccocum (H1) dan pemberian pupuk hayati FMA + Pseudomonas flourescens (H2)jika dibandingkan dengan tanpa pupuk hayati (H0). Tinggi bibit menunjukkan peningkatan jika

(77)

dilihan berdasarkan deskripsi varietas tanaman yang digunakan. Hal ini diduga karena pemberian pupuk hayati berupa FMA yang mampu bersimbiosis dengan akar tanaman dengan baik sehingga bibit kelapa sawit lebih mudah dalam penyerapan air dan hara, Azotobacter croccocum dan Pseudomonas flourescens merupakan mikroorganisme yang mampu memperbaiki dan meningkatkan kesuburan tanah sehingga mempengaruhi pertumbuhan bibit kelapa sawit. Hal ini sesuai dengan pernyataan Suhardi (2007) bahwa pupuk hayati mampu memperbaiki dan menigkatkan kesuburan tanah dan tanaman, selain itu pupuk hayati merupakan alternatif penyedia hara masa depan yang lebih ramah lingkungan.

Lilit batang bibit kelapa sawit pada 14-18 MST (Tabel 2) menunjukkan pengaruh nyata pemberian pupuk hayati FMA + Azotobacter croccocum (H1) dan pemberian pupuk hayati FMA + Pseudomonas flourescens (H2)jika dibandingkan dengan tanpa pupuk hayati (H0). Hal ini diduga karena aktivasi mikroorganisme berupa pupuk hayati yang diberikan lebih cepat bekerja dan FMA lebih cepat bersimbiosis dengan akar tanaman pada tanah dengan tingkat kesuburan yang rendah. Berdasarkan hasil analisis media tanam yang digunakan hara P berada pada <LOD, dengan pemberian pupuk hayati diduga terjadi peningkatan

(78)

dan pemberian pupuk hayati FMA + Pseudomonas flourescens (H2) jika dibandingkan dengan tanpa pupuk hayati (H0). Tinggi tanaman akan berkolerasi positif terhadap fase pertumbuhan daun, dimana jika daun tertinggi berada pada

fase perkembangan daun cepat (membuka sempurna) maka pertambahan tinggi tanaman juga meningkat cepat. Hal ini berkesinambungan dengan

pernyataan (Celebri et al., 2011) bahwa pemberian masukan hara N dan hara P pada media tanam berpengaruh signifikan terhadap tinggi tanaman, jumlah daun, kehijauan daun.

Bobot kering akar bibit kelapa sawit (Tabel 7) menunjukkan pengaruh nyata pemberian pupuk hayati FMA + Azotobacter croccocum (H1) dan pemberian pupuk hayati FMA + Pseudomonas flourescens (H2)jika dibandingkan dengan tanpa pupuk hayati (H0). Kerja sama FMA + Azotobacter croccocum memberikan konstribusi besar dalam pertumbuhan akar, peran FMA yang menghasilkan hifa eksternal mempermudah akar dalam hal penyerapan hara dan air, memberikan ruang pergerakan dan perkembangan akar menjadi lebih mudah sedangkan Azotobacter croccocum mampu menghasilkan hormon pertumbuhan tanaman, meningkatkan pasokan hara nitrogen N2 kedalam bentuk NH3 dalam jumlah yang cukup besar, mengurangi kompetisi dengan mikroba lain ditanah.

Hal ini mendasari perlakuan pupuk hayati meningkatkan bobot kering akar, Patten dan Glick (2002) menyatakan Azotobacter spp. memiliki kelebihan

dibandingkan dengan bakteri penambat N atmosfer nonsimbiotik lainnya, karena

(79)

mampu mensintesis hormon seperti IAA, memacu pertumbuhan akar secara langsung dengan menstimulasi pemanjangan atau pembelahan sel.

Pertumbuhan bibit kelapa sawit pada perlakuan volume media tanam

Bedasarkan hasil analisis sidik ragam diketahui bahwa perlakuan volume media tanam berpengaruh tidak nyata terhadap parameter tingi bibit 14-18 MST, lilit batang 14-18 MST, jumlah daun 14-18 MST, total luas daun, bobot basah

akar, bobot basah tajuk, bobot kering akar, bobot kering tajuk dan derajat infeksi akar.

(80)

bibit kelapa sawit mampu berkembang dengan cukup baik pada volume 0.5kg tanah/polibek, 1 kg tanah/polibek, 1.5 kg tanah/polibek dan 2kg tanah/polibek. Aplikasi FMA pada media tanam juga mempermudah akar

untuk menyerap hara dan air akibat jalinan hifa eksternal yang telah bersimbiosis

dengan akar tanaman. Hal ini berkesinambungan dengan pernyataan (Bar Yosef, 1998) bahwa pada pembibitan kelapa sawit volume media tanam

berpengaruh pada nilai ekonomi kebutuhan media pembibitan dan biaya transportasi bibit, perusahaan komersial banyak menggunakan volume kecil dalam menghasilkan pembibitan.

Interaksi pemberian pupuk hayati dan volume media tanam pada pertumbuhan bibit kelapa sawit

Bedasarkan hasil analisis sidik ragam diketahui bahwa interaksi perlakuan pupuk hayati dan volume media tanam berpengaruh nyata terhadap parameter lilit batang 14-18 MST, total luas daun, bobot kering akar dan derajat infeksi akar.

Total luas daun bibit kelapa sawit pada (Tabel 4) menunjukkan pengaruh nyata interaksi perlakuan pupuk hayati dan volume media tanam. Parameter pertumbuhan seperti tinggi daun dan jumlah daun akan mempengaruhi total luas daun. Pemberian pupuk hayati berupa Azotobacter chrooccocum golongan bakteri penambat nitrogen dan Pseudomonas florescens golongan bakteri pelarut fosfat akan meningkatkan ketersediaan hara N dan hara P yang dibutuhkan tanaman dalam fase pertumbuhan. N memegang peranan penting dalam pertumbuhan daun. Selain itu, volume media tanam dengan 1kg/polibek atau lebih kecil memperoleh rataan tertinggi, dalam hal ini terjadi kerja sama pupuk hayati yang lebih baik

(81)

pada volume media tanam yang lebih kecil. Hal ini sesuai dengan pernyataan (Baldwin, 1988) bahwa volume media tanam yang lebih kecil menunjukkan pertumbuhan tanaman yang lebih baik pada fase pembibitan yang disebabkan oleh jelajah akar yang terbatas mengakibatkan pertumbuhan akar cepat berkembang untuk memasok kebutuhan air dan hara.

(82)

1. Perlakuan pupuk hayati berpengaruh nyata pada seluruh parameter pengamatan, yakni tinggi bibit 14-18 MST, lilit batang 14-18 MST, jumlah daun 14-18 MST, total luas daun, bobot basah akar, bobot basah tajuk, bobot kering akar, bobot kering tajuk, dan derajat infeksi akar. 2. Perlakuan volume media tanam berpengaruh tidak nyata terhadap seluruh

parameter pengamatan, yakni tinggi bibit, lilit batang, jumlah daun, total luas daun, bobot basah akar, bobot basah tajuk, bobot kering akar, bobot kering tajuk dan derajat infeksi akar.

3. Interaksi perlakuan pupuk hayati dan volume media tanam berpengaruh nyata pada perlakuan lilit batang 14-18 MST, total luas daun, bobot kering akar dan derajat infeksi akar.

Saran

Penelitian ini sebaiknya dilanjutkan ke tahap Main Nursery dengan menambah waktu penelitian hingga 9 bulan.

(83)

TINJAUAN PUSTAKA

Pembibitan Kelapa Sawit

Pembibitan adalah kegiatan untuk mempersiapkan bahan tanam meliputi media, pemeliharaan, seleksi bibit hingga siap untuk ditanam yang dilaksakan dalam satu tahap atau lebih. Pembibitan kelapa sawit merupakan hal yang sangat penting untuk menghasilkan produksi kelapa sawit dalam jangka panjang. Pertumbuhan awal bibit menentukan keberhasilan tanaman dan adaptasi pindah tanam bibit dari pembibitan awal ke pembibitan utama (BBPPTP, 2013).

Kecambah yang ditanam harus dipelihara dengan baik agar mencapai standar pertumbuhan bibit normal dan berkualitas. Adapun faktor yang mempengaruhi pertumbuhan tanaman adalah ketersediaan air, ketersediaan unsur

hara yang dapat diserap oleh tanaman, mineral tanah, jenis tanah yang digunakan, iklim pada lingkungan sekitar, intensitas cahaya matahari. Jika salah satu faktor tersebut tidak sesuai dan tidak tersedia dalam jumlah yang dibutuhkan oleh tanaman maka pertumbuhan tanaman akan terhambat

(Salisbury dan Ross, 1995).

(84)

Bobot tanah dalam keberlanjutan media pembibitan juga akan mempengaruhi kepadatan tanah. Berdasarkan penelitian Haridjaja, 2010 menyatakan bahwa semakin padat suatu tanah secara berkelanjutan akan menghambat pertumbuhan tanaman karena akar dipaksa bekerja menembus tanah dengan partikel–partikel padatan yang rapat, mengurangi aerasi tanah dan mengurangi ketersediaan air bagi tanaman. Selain itu Ningsih, 2007 dalam hasil

penelitiannya menyatakan bahwa makin tinggi tingkat kepadatan tanah maka semakin berkurang persentase pori makro dan resistensi terhadap penetrasi akar akan meningkat.

Fungi Mikoriza Arbuskular (FMA)

Fungi Mikoriza Arbuskular (FMA) merupakan asosiasi simbiotik antara akar tanaman dengan jamur. Asosiasi antara akar tanaman dengan jamur ini memberi manfaat yang baik bagi tanah dan tanaman inang sebagai tempat jamur tumbuh dan berkembang biak. Fungi Mikoriza Arbuskular adalah fungi yang secara alamiah bersimbiosis dengan tanaman kelapa sawit bersifat obligat (Rungkat, 2009).

Secara alami jamur ini mengkolonisasi kelapa sawit namun beberapa hasil penelitian menunjukkan bahwa inokulasi FMA terseleksi menyebabkan peningkatan efesiensi pemupukan P. Prinsip kerja FMA ini adalah menginfeksi sistem perakaran tanaman inang, memproduksi jalinan hifa eksternal secara intensif sehingga tanaman yang mengandung mikoriza tersebut akan mampu

(85)

meningkatkan kapasitas dalam penyerapan unsur hara dan kebutuhan air (Iskandar, 2002).

Berdasarkan struktur tubuh dan cara infeksi terhadap tanaman inang, mikoriza dapat digolongkan menjadi 2 kelompok besar (tipe) yaitu ektomikoriza dan endomikoriza. Namun ada juga yang membedakan menjadi 3 kelompok dengan menambahkan jenis ketiga yaitu peralihan dari 2 bentuk tersebut yang disebut ektoendomikoriza. Pola asosiasi antara cendawan dengan akar tanaman inang menyebabkan terjadinya perbedaan morfologi akar antara ektomikoriza dengan endomikoriza. Pada ektomikoriza, jaringan hifa cendawan tidak sampai masuk kedalam sel tetapi berkembang diantara sel kortek akar membentuk jaringan hifa dan mantel dipermukaan akar. Sedangkan endomikoriza, jaringan hifa cendawan masuk ke dalam sel kortek akar dan membentuk struktur yang khas membentuk oval yang disebut vesikula dan simtem percabangan hifa yang disebut arbuskula (Rao, 1998).

Efektivitas Fungi Mikoriza Arbuskular dipengaruhi oleh faktor lingkungan tanah yang meliputi faktor abiotik yakni konsentrasi hara yang terdapat pada media, pH tanah, kadar air, temperatur, pengolahan tanah dan penggunaan pupuk

(86)

lingkungan yang tidak bersahabat, FMA ini dapat membantu logistik tanaman dan perlindungan akar tanaman dari gangguan lingkungan, sehingga tanaman dapat hidup lebih baik di lapangan (Schulzt et al., 2005).

Menurut Pang dan Cheng (1998) akar yang ber Fungi Mikoriza Arbuskular selain aktif menyerap unsur hara seperti N, P, K, Mg, Mn dan Zn, hifa eksternal membantu penyerapan air. Penyerapan air sangat berguna dalam proses fotosintesis, dimana air merupakan salah satu bahan baku fotosintesis (Samah et al., 2001).

Menurut Puryono (1998) secara umum peranan mikoriza terhadap pertumbuhan tanaman adalah sebagai berikut :

1. Adanya mikoriza sangat penting bagi persediaan unsur hara dan pertumbuhan tanaman. simbiosis mikoriza pada akar tanaman akan mengatasi kekurangan unsur hara terutama Phospor (P) yang tersedia dalam tanah. Hal ini disebabkan mikoriza mampu melepaskan ikatan Aluminium fospat (AlPO4) dan Besi fospat (FePO4) pada tanah-tanah yang asam.

2. Mikoriza dapat meningkatkan unsur hara dengan jalan memperkecil jarak antara akar dengan unsur hara tersebut. Hal ini terjadi melalui pembentukan hifa pada pemukaan akar yang befungsi sebagai perpanjangan akar.

3. Dengan perluasan hifanya, mikoriza akan meningkatkan daya serap dari elemen-elemen yang imobil dalam tanah, misalnya : P, Cu, Zn.

(87)

4. Mikoriza dapat membantu memperbaiki dan meningkatkan sifat-sifat struktur agregat tanah.

5. Mikoriza dapat membantu memperbaiki dan meningkatkan pertumbuhan tanaman terutama di daerah yang kondisinya sangat miskin hara, pH rendah, dan kekurangan air.

Menurut penelitian Novriani (2010) di dapatkan bahwa aplikasi mikoriza 10 g / bibit kelapa sawit nyata meningkatkan persen kolonisasi mikoriza, serapan

hara N, serapan hara P, berat kering tajuk, berat kering akar pada bibit kelapa sawit dibandingkan tanpa mikoriza dan menurut penelitian Harahap (2014) telah di dapat bahwa pemberian FMA 10 g / polibek pada pembibitan kelapa sawit berpengaruh nyata terhadap parameter derajat infeksi akar, volume akar dan bobot kering tajuk.

Azotobacter chroococcum

Penambatan nitrogen merupakan proses yang menyebabkan nitrogen bebas digabungkan secara kimia dengan unsur lain (Wedhastri, 2002). Jumlah nitrogen di atmosfer lebih dari 80%, bahkan dengan satuan luas satu acre (0,46 ha)

diperkirakan tanah mengandung kurang lebih 30.000 ton nitrogen bebas (Jeneng, 1998). Dengan banyaknya jumlah nitrogen seperti tidak ada tumbuhan

(88)

pengaruh terhadap sifat fisik dan kimia tanah dalam meningkatkan kesuburan tanah (Supriyadi, 2009). Azotobacter spp. memiliki ukuran dan bentuk yang berbeda-beda. Bentuk sel Azotobacter biasanya berbentuk batang pendek, batang, dan oval serta bentuk yang lain yang bermacam-macam. Dengan bentuk sel yang bermacam-macam seperti ini, bakteri Azotobacter dikenal sebagai dengan bentuk sel pleomorfik. Menurut (Hans, 1994) ada beberapa jenis bakteri Azotobacter penting, diantaranya A.Chroococcum, A.agilis, A.paspali dan A.vinelandi. Untuk dapat menemukannya bakteri Azotobacter ini dapat kita temukan pada tempat dengan jenis tanah yang netral sampai dengan tanah yang basa, air dan beberapa tanaman (Kader, 2002).

Kemampuan Azotobacter chroococcum dalam menambat nitrogen, bakteri ini dikenal sebagai agen penambat nitrogen yang mengkonversi dinitrogen (N2) ke dalam bentuk (NH3) melalui reduksi elektron dan protonisasi gas dinitrogen. Dan dalam kemampuannya menambat nitrogen bakteri Azotobacter termasuk

bakteri yang dapat menambat nitrogen dalam jumlah yang cukup tinggi. Menurut (Hans, 1995) bakteri Azotobacter mampu menambat kurang lebih 20 mg nitrogen/g gula. Ketika menambat nitrogen terdapat enzim yang

bertanggung jawab yaitu nitrogenase. Bakteri Azotobacter memiliki struktur nitrogenase yang unik, karena pada Azotobacter memiliki struktur nitrogenase yang terdiri dari 3 kompleks protein, yaitu nitrogenase I (Molybdenum nitrogenase), nitrogenase II (Vanidium nitrogenase), dan nitrogenase III (Ferrum

nitrogenase) (Tjahjadi, 2007). Pada umumnya bakteri itu memiliki struktur

(89)

nitrogenase yang terdiri 2 kompleks protein. Maka dari itu Azotobacter dikatakan unik pada struktur nitrogenasenya. Faktor-faktor yang mempengaruhi bakteri Azotobacter dalam penambatan nitrogen adalah faktor lingkungan, terutama ciri

kimia dan fisika habitatnya. Faktor-faktor tersebut meliputi ketersediaan senyawa nitrogen, kesediaan nutrien anorganik, pH, dan suhu (Nasahi, 2010).

Azotobacter chroococcum selain dalam menambat nitrogen, bakteri ini juga menghasilkan sejenis hormon yang kurang lebih sama dengan hormon pertumbuhan tanaman dan menghambat pertumbuhan jenis jamur tertentu. Bakteri ini dapat meningkatkan pertumbuhan tanaman melalui pasokan nitrogen udara, pasokan pengatur tumbuh, mengurangi kompetisi dengan mikroba lain dalam menambat nitrogen, atau membuat kondisi tanah lebih menguntungkan untuk pertumbuhan tanaman (Rahmawati, 2005).

Azotobacter spp. memiliki kelebihan dibandingkan dengan bakteri

(90)

mengurangi emisi gas rumah kaca dan meningkatkan serapan karbon (carbon sequestration) sehingga karbon berada dalam bentuk yang lebih stabil

(Murdiyarso, 2003).

Pseudomonas fluorescens

Pseudomonas fluorescens merupakan bakteri berbentuk batang dengan

ukuran sel 0.5 – 1.0 x 1.5 – 5.0 μm, motil dengan satu atau lebih flagella, tergolong dalam bakteri gram negatif, memiliki habitat didalam tanah, air, tanaman. Bakteri ini hidup aerob, tidak membentuk spora dan katalase positif, menggunakan H2 atau karbon sebagai sumber energinya. Bakteri ini menghasilkan pigmen fluorescent yang larut didalam air. Bakteri ini memiliki kemampuan melindungi akar tanaman dari infeksi patogen penyebab penyakit dengan cara

mengkolonisasi permukaan akar, menghasilkan senyawa kimia seperti anti jamur dan antibiotik serta kompetisi dalam penyerapan kation Fe (Patten dan Glick, 2002).

Pseudomonas fluorescens mampu meningkatkan kelarutan hara P didalam

tanah dan termasuk dalam golongan bakteri pelarut fosfat. Bakteri pelarut fosfat merupakan kelompok mikroorganisme tanah yang berkemampuan melarutkan P yang terfiksasi dalam tanah dan mengubahnya menjadi bentuk yang tersedia. Bakteri pelarut fosfat bersifat menguntungkan karena mengeluarkan berbagai macam asam organik seperti asam formiat, asetat, propionat, laktat, glikolat, fumarat, dan suksinat. Asam-asam organik ini dapat membentuk khelat

(kompleks stabil) dengan kation Al, Fe atau Ca yang mengikat P, sehingga ion

(91)

H2P04 menjadi bebas dari ikatannya dan hara P menjadi tersedia bagi tanaman untuk diserap (Dewi, 2007).

Mekanisme mikroorganisme dalam melarutkan P tanah yang terikat dan P yang berasal dari alam diduga karena asam-asam organik yang dihasilkan akan bereaksi dengan AlPO4, FePO4, dan Ca(PO4), dari reaksi tersebut terbentuk khelat organik dari Al, Fe, dan Ca sehingga P terbebaskan dan larut serta tersedia untuk tanaman (Subba rao, 1982b; Illmer et al., 1995). Menurut Illmer dan Schinner (1995) jenis bakteri Pseudomonas spp lebih efektif dalam melarutkan hara P. Menurut Rodriquezz dan Fraga (1999) dari beberapa strain bakteri, ternyata genus Pseudomonas mempunyai kemampuan yang tinggi dalam melarutkan fosfat.

Kecepatan pelarutan P dari mineral P oleh asam organik ditentukan oleh kecepatan difusi asam organik dari larutan tanah, waktu kontak antara asam organik dan permukaan mineral, tingkat dissosiasi asam organik, tipe dan letak gugus fungsi asam organik, affinitas kimia agen pengkhelat terhadap logam dan kadar asam organik dalam larutan tanah (Dubey, 1997).

(92)

sebagai agen biokontrol untuk digunakan secara komersial di rumah kaca maupun di lapangan (Arshad dan Frankenberger, 1993). Kemampuan bakteri ini terutama karena menghasilkan 2,4-diacethylplorogucinol, suatu metabolit sekunder yang dapat menghalangi dumping-off Phytium ultium (frenton et al., 1992). Bakteri Pseudomonas fluorescens ini juga dapat mengontrol perkembangan jamur

Sclerotium roefsii pada tanaman kacang kacangan (Dewi, 2007).

Volume Media Tanam

Metabolisme pertumbuhan tanaman berawal dari pembentukan akar dan pembentukan tunas hingga terbentuk daun yang selanjutnya berfotosintesis dan terus tumbuh. Pada pembibitan kelapa sawit sistem perakaran yang baik akan menopang pertumbuhan bibit yang baik. Volume rooting memegang peranan penting dalam biokontrol pertumbuhan tanaman. (Poorter, et al., 2012) sistem perakaran dalam volume rooting mempengaruhi mekanisme fotosintesis, morfologi dan fisiologi akar, biomassa tanaman, efektifivitas mikroorganisme.

Volume media tanam yang digunakan memberi pengaruh arah pertumbuhan akar dan mekanisme akar dalam penyerapan hara. Volume media tanam berpengaruh pada bobot biomassa tanaman diasumsikan karena keterbatasan media dapat menurunkan pembentukan tajuk tanaman, laju fotosintesis pada tanaman menurun menyebabkan pasokan nitrogen dan fosfor berkurang, ketersedian air, hara dan stres pada tanaman. Penggunaan volume media tanam tidak berlaku sama pada seluruh tanaman. Dilaporkan presentasi

(93)

kenaikan biomassa tanaman menghasilkan rata – rata meningkat 43% dalam massa untuk setiap peningkatan ukuran volume media tanam (Poorter et al, 2012).

Mekanisme penyerapan unsur hara oleh akar dapat dilakukan dengan tiga cara yakni intersepsi akar, pergerakan massa dan difusi. Intersepsi akar pada akhirnya akan dipengaruhi oleh bobot tanah yang tersedia, pada bobot yang lebih kecil akar menggenggam tanah dengan teguh mengakibatkan tingkat kepadatan tanah semakin tinggi. (Suyitno, 2006).

Bedasarkan publikasi dengan faktor pot dan volume media tanam menunjukkan volume media tanam yang digunakan mempengaruhi pertumbuhan tanaman baik pembibitan maupun tanaman menghasilkan. Pada pembibitan kelapa sawit volume media tanam berpengaruh pada nilai ekonomi kebutuhan media pembibitan dan biaya transportasi bibit. Bar Yosef (1988) menyatakan bahwa volume media mendapat perhatian khusus di bidang kehutanan dan hortikultura, dimana perusahaan komersial banyak menggunakan volume kecil dalam meghasilkan pembibitan.

(94)

Komoditas perkebunan merupakan andalan bagi pendapatan nasional dan devisa negara Indonesia, pada tahun 2013 total ekspor perkebunan mencapai US$ 29.476 milyar atau setara dengan Rp. 383.188 triliun (asumsi 1 US$ = Rp.13.000). Kontribusi sub sektor perkebunan terhadap

perekonomian nasional diharapkan dapat memperkokoh pembangunan perkebunan secara merata. Salah satu tanaman yang mempunyai peranan bagi sub sektor perkebunan adalah kelapa sawit. Industri kelapa sawit masuk dalam strategi perekonomian nasional dan fokus kebijakan pemerintah dalam konstribusi besar dalam perekonomian Indonesia (Direktorat Jenderal Perkebunan, 2014).

Pusat Data dan Informasi (PUSDATIN) pertanian tahun 2014 menunjukkan dalam 30 tahun terakhir sektor kelapa sawit Indonesia mengalami peningkatan. Peningkatan ini meliputi tiga aspek yakni luas total lahan yang digunakan, total produksi CPO ( Crude Palm Oil ) maupun tingkat produktivitas.

Luas lahan perkebunan kelapa sawit di Indonesia tahun 2015 adalah 11.444.408 ha dengan produksi 30.984.931 ton CPO meningkat 1.67% dari produksi di tahun 2014. Provinsi Sumatera Utara mengalami peningkatan industri sawit setiap tahunnya, luas areal perkebunan sawit di Sumatera Utara tahun 2014 adalah 1.392.532 ha meningkat menjadi 1.444.687 ha pada tahun 2015 dengan produksi pada tahun 2014 adalah 4.753.488 ton CPO meningkat menjadi 4.959.128 ton CPO pada tahun 2015 (Direktorat Jenderal Perkebunan, 2014).

Perluasan areal kelapa sawit yang pesat memerlukan teknologi pembibitan yang efektif dengan kualitas yang baik namun ramah lingkungan. Pertumbuhan

(95)

awal bibit akan menentukan keberhasilan tanaman dan memegang peranan penting untuk menunjang intensifikasi dan produktivitas. Tantangan dan masalah yang dihadapi pelaku kelapa sawit baik smallholder maupun perusahaan berasal dari penyakit dan iklim. Beberapa perusahaan besar hingga saat ini masih aktif mengembangkan riset untuk mendapatkan benih dan bibit sawit tahan penyakit serta mampu beradaptasi dengan perubahan iklim.

Perusahaan penyedia benih dan dan bibit kelapa sawit dunia, saat ini memproduksi produk perlindungan tanaman berbasis pupuk hayati dengan bahan aktif beberapa jenis mikroorganisme seperti mikoriza, bakteri panambat nitrogen dan bakteri pelarut fosfat. Pupuk hayati mengandung mikroorganisme hidup yang secara lansung dapat memperbaiki dan meningkatkan kesuburan tanah serta tanaman. Pupuk hayati dapat dijadikan alternatif perlindungan tanaman dan penyedia hara masa depan demi terciptanya standar budidaya yang diusung oleh Roundtable on Sustainable Palm Oil (RSPO) yang berimbas pada pengurangan

penggunaan pestisida, serangan penyakit, dan kemampuan adaptasi pada tanaman kelapa sawit.

(96)

Azotobacter spp. mampu menghasilkan zat pengatur tumbuh pada tanaman dan

biokontrol pada perkembangan serta kesehatan akar tanaman (Hasibuan, 2012). Bakteri pelarut fosfat (BPF) bersifat menguntungkan karena mampu mengeluarkan berbagai macam asam organik. Asam - asam organik ini akan membentuk khelat dengan kation Al, Fe atau Ca yang mengikat P, sehingga ion H2Po4- menjadi bebas dari ikatannya dan tersedia bagi tanaman. Menurut Rodriquezz dan Fraga 1999 Pseudomonas spp. merupakan strain bakteri yang mempunyai kemampuan tinggi dalam melarutkan fosfat (Dewi, 2007).

Selain ketersediann hara, bibit yang berkualitas merupakan tahapan pertama dalam pengelolaan tanaman yang dibudidayakan. Upaya lain untuk mendapatkan bibit yang baik adalah dengan pemilihan media tanam berupa volume tanah yang tepat untuk pertumbuhan dan perkembangan bibit. Untuk mengahsilkan bibit yang baik tetapi penggunaan tanah lebih efesien dapat dilakukan dengan mengurangi volume media yang diisikan kedalam polibek pembibitan. Selain efesien, upaya ini dapat memangkas nilai ekomomis kebutuhan tanah sebagai media pembibitan.

Volume media tanam yang digunakan juga menjadi faktor keberhasilan pindah tanam bibit kelapa sawit dari pembibitan awal ke pembibitan utama hingga siap untuk ditanam ke lapangan. Pembentukan dan pertumbuhan akar dalam menyerap air dan mengabsorsi hara erat hubungannya dengan luas areal resapan air dan sediaan sumber daya hara pada media tanam. Berdasakan pernyataan Poorter, et al., 2012 sistem perakaran dalam volume rooting mempengaruhi

(97)

mekanisme fotosintesis pada tanaman, morfologi dan fisiologi akar, biomassa tanaman, efektifivitas mikroorganisme didalam tanah. Berdasarkan pemaparan dan latar belakang diatas penulis tertarik melakukan penelitian dengan judul “Pertumbuhan Bibit Kelapa Sawit Dengan Pupuk Hayati Pada Perbedaan Volume Media Tanam”.

Tujuan Penelitian

Tujuan dari penelitian ini adalah untuk mempelajari pertumbuhan bibit

kelapa sawit dengan pemberian pupuk hayati pada perbedaan volume media tanam.

Hipotesa Penelitian

Terdapat peningkatan pertumbuhan bibit kelapa sawit akibat pemberian pupuk hayati dan volume media tanam yang berbeda serta interaksi dari kedua faktor tersebut.

Kegunaan Penelitian

(98)

Hayati Pada Perbedaan Volume Media Tanam. Dibimbing oleh CHAIRANI HANUM dan JONIS GINTING .

Perluasan perkebunan kelapa sawit yang pesat berbanding lurus dengan kuantitas kebutuhan bibit yang baik namun tetap ramah lingkungan. Pertumbuhan awal bibit memegang peranan penting dalam menunjang intensifikasi dan produktivitas. Tantangan dan masalah yang dihadapi para pelaku sawit baik smallholder dan perusahaan adalah penyakit dan iklim. Penggunaan pupuk hayati diharapkan mampu memperbaiki dan meningkatkan kesuburan tanah dan tanaman, demi terciptanya standar budidaya yang diusung oleh RSPO (Roundtable on Suistainable Palm Oil). Volume media tanam yang digunakan

juga menjadi faktor keberhasilan pindah tanam bibit hingga siap ditanam ke lapangan. Penelitian ini dilaksanakan di lahan percobaan Fakultas Pertanian

Universitas Sumatera Utara dengan ketinggian tempat ± 32 meter dpl dari bulan Mei sampai September 2016, menggunakan Rancangan Acak Kelompok

dengan 2 Faktor perlakuan. Faktor pertama adalah pupuk hayati dengan

3 jenis yaitu tanpa pupuk hayati (H0); FMA + Azotobacter crooccum (H1); FMA + Pseudomonas flourescens (H2) dan faktor kedua yaitu perbedaan volume

media tanam dengan 4 taraf yaitu 0.5 kg/polibek (V1); 1 kg/polibek (V2); 1.5 kg/polibek (V3); 2 kg/polibek (V4). Parameter yang diamati adalah tinggi

bibit, lilit batang, jumlah daun, total luas daun, bobot basah akar, bobot basah tajuk, bobot kering akar, bobot kering tajuk, dan derajat infeksi akar.

Hasil penelitian menunjukkan bahwa perlakuan pupuk hayati berpengaruh

nyata terhadap semua parameter tinggi bibit, lilit batang, jumlah daun, total luas daun, bobot basah akar, bobot basah tajuk, bobot kering akar, bobot

kering tajuk, dan derajat infeksi akar. Interaksi antara perlakuan pupuk hayati dengan perbedaan volume media tanam berpengaruh nyata terhadap lilit batang 14-18 MST, total luas daun, bobot kering akar, dan derajat infeksi akar.

Kata Kunci : pupuk hayati, volume media tanam, kelapa sawit

(99)

ABSTRACT

EKA SETYA WULANDARI: The Growth of Oil Palm Seedlings of Biofertizer on the

Difference of Planting Media Volume . Supervised by CHAIRANI HANUM and

JONIS GINTING.

The expansion of oil palm plantation was equal with the quantity of good seedling need yet it is enviromentally friendly.The early growth held vital role in encouraging intensification and productivity. The challenge and problem that faced by oil palm offender either smallholders and company were disease and climate. The use of biofertilizer is expected to repairing and increase soil and plant fertility in order to create the standart cultivation which carried by RSPO (Roundtable on Suistanable Palm Oil). The volume of planting media which was used also became the factor of success seedling planting switch until it was ready to be planted on the field. This research was conducted in Agriculture Faculty, Sumatera Utara University with altitude ± 32 meters above sea surface began from Mei to September 2016. This research used factorial randomized block design with two factors. The first factor was biofertilizer is without biofertiliizer

(H0);FMA + Azotobacter crooccum (H1); FMA + Pseudomonas flourescens (H2) and the second factor was difference of planting media volume with four degree is 0.5 kg/polybag (V1); 1 kg/polybag (V2);1.5 kg/polybag (V3); 2 kg/polybag (V4). Parameter observed was seddling’s height; steem’s girth;

number of leaf; total leaf area; wet root weight; wet shoot weight; dry root weight; dry shoot weight and degree root infection.

The result of this research showed that biofertilizer were significantly effect to seedling’s height, steem’s girth, number of leaf, total leaf area, wet root weight, wet shoot weight, dry root weight, dry shoot weight and degree root infection. Interaction of biofertilizer and difference of planting media volume significantly effect to steem’s girth 14-18 WAP, total leaf area, dry root weight and degree root infection.

(100)

SKRIPSI

OLEH :

EKA SETYA W. / 120301162

BUDIDAYA PERTANIAN DAN PERKEBUNAN

PROGRAM STUDI AGROEKOTEKNOLOGI FAKULTAS PERTANIAN

UNIVERSITAS SUMATERA UTARA 2016

(101)

PERTUMBUHAN BIBIT KELAPA SAWIT DENGAN PUPUK HAYATI PADA PERBEDAAN VOLUME MEDIA TANAM

SKRIPSI

OLEH :

EKA SETYA W. / 120301162

BUDIDAYA PERTANIAN DAN PERKEBUNAN

Skripsi sebagai salah satu syarat untuk dapat memperoleh gelar sarjana di Fakultas Pertanian

(102)

NIM : 120301162 Program Studi : Agroekoteknologi

Minat : Budidaya Pertanian dan Perkebunan

Disetujui Oleh : Komisi Pembimbing

(Dr. Dra. Ir. Chairani Hanum, M.S.) (Ir. Jonis Ginting, M.S.

Ketua Anggota

)

(103)

ABSTRAK

EKA SETYA WULANDARI : Pertumbuhan Bibit Kelapa Sawit Dengan Pupuk