UJI
IN VITROAKTIVITAS ANTELMINTIK
EKSTRAK ETANOL DAUN PUGUN TANOH
[
Curanga fel-terrae(Lour.) Merr.]
SKRIPSI
OLEH:
GRACE ANASTASIA BR GINTING
NIM 101501150
PROGRAM STUDI SARJANA FARMASI
FAKULTAS FARMASI
UNIVERSITAS SUMATERA UTARA
MEDAN
Diajukan sebagai salah satu syarat untuk memperoleh
gelar Sarjana Farmasi pada Fakultas Farmasi
Universitas Sumatera Utara
UJI
IN VITROAKTIVITAS ANTELMINTIK
EKSTRAK ETANOL DAUN PUGUN TANOH
[
Curanga fel-terrae(Lour.) Merr.]
SKRIPSI
OLEH:
GRACE ANASTASIA BR GINTING
NIM 101501150
PROGRAM STUDI SARJANA FARMASI
FAKULTAS FARMASI
UNIVERSITAS SUMATERA UTARA
MEDAN
PENGESAHAN SKRIPSI
UJI
IN VITROAKTIVITAS ANTELMINTIK
EKSTRAK ETANOL DAUN PUGUN TANOH
[
Curanga fel-terrae(Lour.) Merr.]
OLEH:
GRACE ANASTASIA BR GINTING NIM 101501150
Dipertahankan di Hadapan Panitia Penguji Skripsi Fakultas Farmasi Universitas Sumatera Utara
Pada Tanggal: 11 November 2015 Pembimbing I,
Popi Patilaya, S.Si., M. Sc., Apt. NIP 197812052010121004
Panitia Penguji,
Dr. Masfria, M.S., Apt. NIP 195707231986012001
Pembimbing II,
Dr. Panal Sitorus, M.Si., Apt. NIP 195310301980031002
Popi Patilaya, S.Si., M.Sc., Apt. NIP 197812052010121004
Dra. Herawaty Ginting, M.Si., Apt. NIP 195112231980032002
KATA PENGANTAR
Puji dan syukur kehadirat Tuhan Yang Maha Esa yang telah memberikan karunia yang berlimpah sehingga penulis dapat menyelesaikan penyusunan skripsi yang berjudul Uji In Vitro Aktivitas Antelmintik Ekstrak Etanol Daun Pugun Tanoh [Curanga fel-terrae (Lour.) Merr.]. Skripsi ini diajukan sebagai salah satu syarat untuk memperoleh gelar Sarjana Farmasi di Fakultas Farmasi Universitas Sumatera Utara.
Pada kesempatan ini, dengan segala kerendahan hati penulis mengucapkan terima kasih kepada Ibu Dr. Masfria, M.S., Apt. selaku Pejabat Dekan Fakultas Farmasi yang telah menyediakan fasilitas kepada penulis selama perkuliahan di Fakultas Farmasi. Penulis juga mengucapkan terima kasih kepada Bapak Popi Patilaya, S.Si., M. Sc., Apt., dan Bapak Dr. Panal Sitorus, M.Si., Apt. yang telah meluangkan waktu dan tenaga dalam membimbing penulis dengan penuh kesabaran dan tanggung jawab, memberikan petunjuk dan saran-saran selama penelitian hingga selesainya skripsi ini. Ucapan terima kasih juga penulis sampaikan kepada Ibu Dr. Masfria, M.S., Apt., selaku ketua penguji, Ibu Dra. Herawaty Ginting, M.Si., Apt. dan Ibu Dra. Suwarti Aris, M.Si., Apt. selaku anggota penguji yang telah memberikan saran untuk menyempurnakan skripsi ini, dan Ibu Dra. Nazliniwaty, M.Si., Apt. selaku dosen pembimbing akademik yang telah banyak membimbing penulis selama masa perkuliahan hingga selesai serta Bapak dan Ibu staf pengajar Fakultas Farmasi USU yang telah banyak membimbing penulis selama masa perkuliahan hingga selesai. Ibu Kepala Laboratorium Farmakognosi yang telah memberikan fasilitas selama penelitian.
kepada keluarga tercinta, Bapak Ir, Suara Ginting dan Mamak Dra. Mariani Barus, adik tercinta Brianta Petra Ginting, Karina Kalvari Br Ginting, Hanna Jesika Br Ginting, dan Vania Elisha Br Ginting atas limpahan kasih sayang, doa dan dukungan yang tak ternilai dengan apapun. Penulis menyadari sepenuhnya bahwa penulisan skripsi ini masih belum sempurna, oleh karena itu penulis mengharapkan saran dan kritik yang membangun demi kesempurnaan skripsi ini. Akhir kata penulis berharap semoga skripsi ini bermanfaat bagi ilmu pengetahuan khususnya di bidang farmasi.
Medan, Januari 2016
Penulis,
SURAT PENYATAAN BEBAS PLAGIAT
Saya yang bertanda tangan dibawah ini :
Nama : Grace Anastasia Br Ginting
NIM : 101501150
Departemen : Biologi Fakultas : Farmasi
Judul skripsi : Uji In Vitro Aktivitas Antelmintik Ekstrak Etanol Daun Pugun Tanoh [Curanga fel-terrae (Lour.) Merr.]
Dengan ini menyatakan :
1. Bahwa isi skripsi yang saya tulis tersebut di atas adalah tidak merupakan ciplakan dari skripsi atau karya ilmiah orang lain.
2. Apabila terbukti di kemudian hari skripsi tersebut adalah ciplakan, maka segala akibat hukum yang timbul menjadi tanggung jawab saya.
Demikian pernyataan ini saya buat dengan sebenarnya tanpa ada paksaan atau tekanan dari pihak manapun.
Medan, 11 November 2015
UJI IN VITRO AKTIVITAS ANTELMINTIK EKSTRAK ETANOL DAUN PUGUNTANOH
[Curangafel-terrae(Lour.) Merr.]
ABSTRAK
Latarbelakang: Ekstrak etanol daun puguntanoh yang diperoleh secara maserasi memiliki aktivitas antelmintik terhadap Pheretima Posthuma. Namun aktivitas antelmintik dapat dipengaruhi oleh metode ekstraksi. Sokletasi mampu mengekstraksi komponen kimia tumbuhan lebih banyak dibandingkan metode maserasi.
Tujuan: Untuk mengujiak tivitas antelmintik ekstrak etanol daun pugun tanoh yang diperoleh dengan metode sokletasi secara in vitro terhadap P heretima Posthuma.
Metode: Serbuk simplisia daun pugun tanoh diekstraksi dalam etanol 96% dengan metode sokletasi. Kemudian dilakukan skrining fitokimia dan dikarakterisasi. Aktivitas antelmintik ekstrak etanol daun pugun tanoh ditentukan dengan memaparkan larutan salin (control negatif), etanol 0,5% (control pelarut), suspensi albendazole 20 mg/ml (control positif), ekstrak etanol daun pugun tanoh 5, 10, 20, dan 30 mg/ml masing-masing terhadap Pheretima Posthuma. Aktivitas antelmintik ekstrak daun pugun tanoh ditentukan berdasarkan waktu paralisis dan kematian melalui pengamatan terhadap motilitas dan perubahan morfologi cacing
Pheretima posthuma selama 5 jam. Data dianalisis secara statistika dengan
perangkat lunak SPSS versi 22.0 menggunakan anava satu arah dan dilanjutkan uji Tukey pada taraf kepercayaan 95%.
Hasil: Hasil penelitian menunjukkan ekstrak etanol daun pugun tanoh (EEDPT) mengandung senyawa metabolit sekunder flavonoid, tanin, glikosida, saponin, dan steroid/triterpenoid. Kadar air, kadar sari larut dalam air dan etanol, kadar abu total dan kadar abu tidak larut asam EEDPT adalah 3,99%, 58,67%, 7,98%, 1,77%, 0,32%. EEDPT pada konsentrasi uji menyebabkan paralisis Pheretima
posthuma. Analisis statistika menunjukkan bahwa efek paralisis terhadap
Pheretima posthuma dipengaruhi oleh konsentrasi. Semakin tinggi konsentrasi
EEDPT, waktu paralisis semakin cepat. Hasil penelitian juga menunjukkan bahwa EEDPT menyebabkan kematian Pheretima posthuma. Efek kematian EEDPT tergantung pada konsentrasi. Analisis statistika menunjukkan bahwa efek kematian EEDPT dan albendazole 20 mg/ml berbeda secara signifikan (p < 0,05). Kesimpulan: Ekstrak etanol daun pugun tanoh [Curanga fel-terrae (Lour.) Merr.] yang diperoleh dengan metode sokletasi memiliki aktivitas antelmintik terhadap cacing Pheretima posthuma.
INVITRO STUDY ON THE ANTHELMINTIC ACTIVITY OF THE LEAF ETHANOLIC EXTRACT OF PUGUNTANOH
[Curangafel-terrae(Lour.) Merr.]
ABSTRACT
Background: Ethanolic extract of Curanga fel-terrae (Lour.) Merr. leaves obtained by maceration has anthelmintic activity against Pheretima posthuma. However the anthelmintic activity is affected by extraction method. Soxhletation can extract more chemical compounds of plant than maceration.
Objective: Aim of this study was to evaluate the in vitro anthelmintic activity of leaf ethanolic extract of C. fel-terrae obtained by soxhletation against P.
posthuma.
Methods: Dried material of C. fel-terrae leaves were extracted in ethanol 96% by soxhletation. Anthelmintic activity of the leaf ethanolic extract of C. fel-terrae was determined by exposing saline solution (negative control), ethanol 0.5% (solvent control), albendazole suspension 20 mg/ml (positive control), the ethanolic extract of plant at 5, 10, 20, and 30 mg/ml to P. posthuma, respectively. Determination of the anthelmintic activity of plant extract was based on paralysis and death times by observing motility and morphological changes of P. posthuma for 5 hours. Data were statistically analyzed using SPSS software 22.0 with one way anova and followed by Tukey test at 95% of confidence level.
Results: The results showed that the leaf ethanolic extract of C. fel-terrae (EEDPT) were contained alkaloids, flavonoids, glycosides, saponins, tannins, and terpenoids/steroids. The results showed that water, water-soluble extractive, ethanol-soluble extractive, total ash, and acid-insoluble ash contents of EEDPT were 3.99%, 58.67%, 7.98%, 1.77%, 0.32%. EEDPT at the concentration tested caused P. posthuma paralysis. The paralysis effects of EEDPT against P.
posthuma were affected by the extract concentration. The higher concentration of
EEDPT produced the faster paralysis time of P. posthuma. The results demonstrated that EEDPT also caused P. posthuma death. The death effects of EEDPT were produced in a concentration dependent manner. Statistical analysis indicated that the death effects of EEDPT and albendazole 20 mg/ml significantly different (p < 0.05).
Conclusion: The leaf ethanolic extract of C. fel-terrae obtained by soxhletation has anthelmintic activity against P. posthuma.
DAFTAR ISI
Halaman
JUDUL ... i
LEMBAR PENGESAHAN ... iii
KATA PENGANTAR ... iv
SURAT PERNYATAAN BEBAS PLAGIAT ... vi
ABSTRAK ... vii
ABSTRACT ... viii
DAFTAR ISI ... ix
DAFTAR TABEL ... xiv
DAFTAR GAMBAR ... xv
DAFTAR LAMPIRAN ... xvi
BAB I PENDAHULUAN ... 1
1.1 Latar Belakang ... 1
1.2 Perumusan Masalah ... 4
1.3 Hipotesis ... 4
1.4 Tujuan Penelitian ... 4
1.5 Manfaat Penelitian ... 5
1.6 Kerangka Pikir Penelitian ... 5
BAB II TINJAUAN PUSTAKA ... 6
2.1 Epidemiologi Kecacingan ... 6
2.2 Penyebab Kecacingan ... ... 6
2.2.1 Infeksi nematoda ... 8
2.2.3 Infeksi cestoda ... 11
2.3 Pengobatan Kecacingan ... 13
2.3.1 Antelmintik untuk infeksi nematoda ... 13
2.3.2 Antelmintik untuk infeksi trematoda ... 14
2.3.3 Antelmintik untuk infeksi cestoda ... 14
2.4 Potensi Tumbuhan Sebagai Sumber Antelmintik ... 16
2.5 Golongan Senyawa Kimia Yang Terbukti Berkhasiat Sebagai Antelmitik ... 17
2.6 Pugun Tanoh ... 17
2.6.1 Nama daerah ... 18
2.6.2 Nama asing ... 18
2.6.3 Sinonim ... 18
2.6.4 Sistematika dan morfologi tumbuhan ... 18
2.6.5 Habitat tumbuhan ... 19
2.6.6 Khasiat tumbuhan ... 19
2.6.7 Kandungan kimia ... 20
2.7 Simplisia ... 20
2.8 Ekstraksi ... 21
2.8.1 Ekstraksi cara dingin ... 22
2.8.2 Ekstraksi cara panas ... 22
2.9 Uji Aktivitas Antelmintik ... 23
2.9.1 Uji in vitro ... 23
2.9.2 Uji in vivo ... 24
BAB III METODE PENELITIAN ... 25
3.1.1 Alat-alat ... 25
3.1.2 Bahan-bahan ... 25
3.2 Penyiapan Sampel ... 26
3.2.1 Pengambilan bahan ... 26
3.2.2 Identifikasi sampel ... 26
3.3 Pembuatan Simplisia Daun Pugun Tanoh ... 26
3.4 Pembuatan Pereaksi ... 27
3.4.1 Pereaksi Mayer ... 27
3.4.2 Pereaksi Dragendorff ... 27
3.4.3 Pereaksi Bouchardat ... 27
3.4.4 Pereaksi Liebermann-Burchard ... 27
3.4.5 Pereaksi Molisch ... 28
3.4.6 Pereaksi asam klorida 2N ... 28
3.4.7 Pereaksi asam sulfat 2N ... 28
3.4.8 Pereaksi natrium hidroksida 2N ... 28
3.4.9 Pereaksi timbal (II) asetat 0,4 M ... 28
3.4.10 Pereaksi besi (III) klorida 1 % ... 28
3.5 Karakterisasi Simplisia Daun Pugun Tanoh ... 28
3.5.1 Pemeriksaan organoleptik ... 29
3.5.2 Pemeriksaan mikroskopik ... 29
3.5.3 Penetapan kadar air ... 29
3.5.4 Penetapan kadar abu total ... 30
3.5.5 Penetapan kadar abu tidak larut dalam asam ... 30
3.5.6 Penetapan kadar sari larut dalam air ... 30
3.6 Skrining Fitokimia Simplisia ... 31
3.6.1 Pemeriksaan alkaloid ... 31
3.6.2 Pemeriksaan flavonoid ... 31
3.6.3 Pemeriksaan tanin ... 32
3.6.4 Pemeriksaan glikosida ... 32
3.6.5 Pemeriksaan saponin ... 33
3.6.6 Pemeriksaan steroid/triterpenoid ... 33
3.7 Pembuatan Ekstrak Etanol Daun Pugun Tanoh ... 33
3.8 Karakterisasi dan Skrining Fitokimia Ekstrak ... 34
3.9 Uji Aktivitas Antelmintik EEDPT ... 34
3.9.1 Hewan percobaan ... 34
3.9.2 Uji pengaruh etanol terhadap P. posthuma ... 34
3.9.3 Penyiapan sampel uji ... 34
3.9.4 Uji aktivitas antelmintik ... 35
3.10 Analisis Statistika ... 36
BAB IV HASIL DAN PEMBAHASAN ... 37
4.1 Identifikasi Sampel ... 37
4.2 Karakteristik Simplisia Daun Pugun Tanoh ... 37
4.3 Karakteristik EEDPT ... 39
4.4 Skrining Fitokimia Serbuk Simplisia dan Ekstrak ... 40
4.5 Aktivitas Antelmintik EEDPT ... 41
4.5.1 Hewan percobaan ... 41
4.5.2 Pengaruh etanol terhadap Pheretima posthuma ... 41
4.5.3 Aktivitas antelmintik ... 42
5.1 Kesimpulan ... 46
5.2 Saran ... 46
DAFTAR PUSTAKA ... 47
DAFTAR TABEL
Tabel Halaman
3.1 Perlakuan uji antelmintik EEDPT ... 35
4.1 Kadar air, kadar sari larut dalam air dan etanol serta kadar abu total dan tidak larut asam simplisia daun pugun tanoh ... 38
4.2 Kadar air, kadar sari larut dalam air dan etanol serta kadar abu total dan tidak larut asam EEDPT ... 40
4.3 Kandungan metabolit sekunder dari simplisia dan EEDPT ... 41
4.4 Pengaruh etanol terhadap Pheretima posthuma ... 42
DAFTAR GAMBAR
Gambar Halaman
DAFTAR LAMPIRAN
Lampiran Halaman
1 Hasil identifikasi tumbuhan ... 55
2 Hasil identifikasi hewan ... 56
3 Surat albendazole ... 57
4 Tanaman pugun tanoh dan simplisia daun pugun tanoh [Curanga fel-terrae (Lour.)Merr] . ... 59
11 Uji aktivitas antelmintik terhadap Pheretima posthuma ... 65
12 Larutan uji aktivitas antelmintik terhadap P. posthuma ... 66
13 Perhitungan kadar air simplisia daun pugun tanoh ... 67
14 Perhitungan kadar sari larut air simplisia daun pugun tanoh ... 68
15 Perhitungan kadar sari larut etanol simplisia daun pugun tanoh ... 69
16 Perhitungan kadar abu total simplisia daun pugun tanoh ... 70
17 Perhitungan kadar abu tidak larut asam simplisia daun pugun tanoh ... 71
18 Perhitungan kadar air EEDPT ... 72
19 Perhitungan kadar sari larut air EEDPT ... 73
20 Perhitungan kadar sari larut etanol EEDPT ... 74
22 Perhitungan kadar abu tidak larut asam EEDPT ... 76
23 Perhitungan pengenceran etanol ... 77
24 Uji aktivitas antelmintik EEDPT ... 78
25 Perhitungan penyiapan ekstrak ... 79
26 Uji Statistik paralisis Pheretima posthuma ... 80
UJI IN VITRO AKTIVITAS ANTELMINTIK EKSTRAK ETANOL DAUN PUGUNTANOH
[Curangafel-terrae(Lour.) Merr.]
ABSTRAK
Latarbelakang: Ekstrak etanol daun puguntanoh yang diperoleh secara maserasi memiliki aktivitas antelmintik terhadap Pheretima Posthuma. Namun aktivitas antelmintik dapat dipengaruhi oleh metode ekstraksi. Sokletasi mampu mengekstraksi komponen kimia tumbuhan lebih banyak dibandingkan metode maserasi.
Tujuan: Untuk mengujiak tivitas antelmintik ekstrak etanol daun pugun tanoh yang diperoleh dengan metode sokletasi secara in vitro terhadap P heretima Posthuma.
Metode: Serbuk simplisia daun pugun tanoh diekstraksi dalam etanol 96% dengan metode sokletasi. Kemudian dilakukan skrining fitokimia dan dikarakterisasi. Aktivitas antelmintik ekstrak etanol daun pugun tanoh ditentukan dengan memaparkan larutan salin (control negatif), etanol 0,5% (control pelarut), suspensi albendazole 20 mg/ml (control positif), ekstrak etanol daun pugun tanoh 5, 10, 20, dan 30 mg/ml masing-masing terhadap Pheretima Posthuma. Aktivitas antelmintik ekstrak daun pugun tanoh ditentukan berdasarkan waktu paralisis dan kematian melalui pengamatan terhadap motilitas dan perubahan morfologi cacing
Pheretima posthuma selama 5 jam. Data dianalisis secara statistika dengan
perangkat lunak SPSS versi 22.0 menggunakan anava satu arah dan dilanjutkan uji Tukey pada taraf kepercayaan 95%.
Hasil: Hasil penelitian menunjukkan ekstrak etanol daun pugun tanoh (EEDPT) mengandung senyawa metabolit sekunder flavonoid, tanin, glikosida, saponin, dan steroid/triterpenoid. Kadar air, kadar sari larut dalam air dan etanol, kadar abu total dan kadar abu tidak larut asam EEDPT adalah 3,99%, 58,67%, 7,98%, 1,77%, 0,32%. EEDPT pada konsentrasi uji menyebabkan paralisis Pheretima
posthuma. Analisis statistika menunjukkan bahwa efek paralisis terhadap
Pheretima posthuma dipengaruhi oleh konsentrasi. Semakin tinggi konsentrasi
EEDPT, waktu paralisis semakin cepat. Hasil penelitian juga menunjukkan bahwa EEDPT menyebabkan kematian Pheretima posthuma. Efek kematian EEDPT tergantung pada konsentrasi. Analisis statistika menunjukkan bahwa efek kematian EEDPT dan albendazole 20 mg/ml berbeda secara signifikan (p < 0,05). Kesimpulan: Ekstrak etanol daun pugun tanoh [Curanga fel-terrae (Lour.) Merr.] yang diperoleh dengan metode sokletasi memiliki aktivitas antelmintik terhadap cacing Pheretima posthuma.
INVITRO STUDY ON THE ANTHELMINTIC ACTIVITY OF THE LEAF ETHANOLIC EXTRACT OF PUGUNTANOH
[Curangafel-terrae(Lour.) Merr.]
ABSTRACT
Background: Ethanolic extract of Curanga fel-terrae (Lour.) Merr. leaves obtained by maceration has anthelmintic activity against Pheretima posthuma. However the anthelmintic activity is affected by extraction method. Soxhletation can extract more chemical compounds of plant than maceration.
Objective: Aim of this study was to evaluate the in vitro anthelmintic activity of leaf ethanolic extract of C. fel-terrae obtained by soxhletation against P.
posthuma.
Methods: Dried material of C. fel-terrae leaves were extracted in ethanol 96% by soxhletation. Anthelmintic activity of the leaf ethanolic extract of C. fel-terrae was determined by exposing saline solution (negative control), ethanol 0.5% (solvent control), albendazole suspension 20 mg/ml (positive control), the ethanolic extract of plant at 5, 10, 20, and 30 mg/ml to P. posthuma, respectively. Determination of the anthelmintic activity of plant extract was based on paralysis and death times by observing motility and morphological changes of P. posthuma for 5 hours. Data were statistically analyzed using SPSS software 22.0 with one way anova and followed by Tukey test at 95% of confidence level.
Results: The results showed that the leaf ethanolic extract of C. fel-terrae (EEDPT) were contained alkaloids, flavonoids, glycosides, saponins, tannins, and terpenoids/steroids. The results showed that water, water-soluble extractive, ethanol-soluble extractive, total ash, and acid-insoluble ash contents of EEDPT were 3.99%, 58.67%, 7.98%, 1.77%, 0.32%. EEDPT at the concentration tested caused P. posthuma paralysis. The paralysis effects of EEDPT against P.
posthuma were affected by the extract concentration. The higher concentration of
EEDPT produced the faster paralysis time of P. posthuma. The results demonstrated that EEDPT also caused P. posthuma death. The death effects of EEDPT were produced in a concentration dependent manner. Statistical analysis indicated that the death effects of EEDPT and albendazole 20 mg/ml significantly different (p < 0.05).
Conclusion: The leaf ethanolic extract of C. fel-terrae obtained by soxhletation has anthelmintic activity against P. posthuma.
BAB I
PENDAHULUAN
1.1Latar Belakang
Infeksi cacing merupakan salah satu penyakit umum di dunia. Tidak hanya terbatas di negara tropis dan subtropis tetapi juga terdapat di berbagai daerah yang tingkat kebersihan lingkungannya rendah (Pagariya, et al., 2013). Badan kesehatan dunia memperkirakan lebih dari 1,5 miliar (24%) dari penduduk dunia terinfeksi cacing parasit dengan jumlah terbesar di wilayah Afrika, Amerika, Cina dan Asia Tenggara (WHO., 2015). Angka kecacingan sebesar 28% (Kemenkes., 2015) dan diperkirakan lebih dari 60% anak-anak menderita infeksi cacing di Indonesia (Tjay dan Rahardja, 2002).
Prevalensi infeksi cacing yang tinggi berdampak buruk bagi kesehatan, walaupun jarang menyebabkan kematian, namun infeksi cacing menyebabkan penderita khususnya anak-anak mengalami kekurangan gizi, kemunduran pertumbuhan fisik, mental, kognitif dan intelektual (Tiwow, dkk., 2013). Pada orang dewasa menyebabkan menurunnya produktivitas kerja. Dalam jangka panjang, kecacingan mengakibatkan menurunnya kualitas sumber daya manusia (Zulkoni, 2010).
oleh para petani sehingga menyebabkan resistensi, infeksi cacing dari hewan ternak dapat berlanjut terjadi pada manusia dan keadaan resistensi kemungkinan kedepannya dapat terjadi pada manusia (Vercruysse, et al., 2011; Sutherland dan Leathwick, 2011; Wolstenholme, et al., 2004). Dilaporkan juga terjadinya kegagalan dan penurunan efektivitas obat antelmintik dosis tunggal seperti pirantel terhadap cacing tambang Ancylostoma duodenale yang telah mengalami kegagalan (Reynoldson, et al., 1997), pada mebendazol dan levamisol telah terjado penurunan efikasi terhadap cacing tambang dan nematoda pada saluran pencernaan (Flohr, et al., 2007; Albonico, et al., 2003), menurunnya efikasi albendazol terhadap cacing tambang (Humphries, et al., 2011) dan terjadinya kegagalan tiabendazol terhadap Haemochus contortus (Kotze, et al., 2009). Kegagalan dan penurunan efektivitas obat-obat antelmintik tersebut merupakan petanda telah terjadinya resistensi pada manusia (Lalchhandama, K., 2010; Prichard, R.K., 2007). Menggunakan dosis berganda atau dosis berulang merupakan solusi terbaik, tetapi hal tersebut sulit diaplikasikan oleh masyarakat karena bermasalah pada ketersediaan masyarakat untuk melakukan pengobatan kembali dan tidak terpantaunya pengobatan tersebut setiap harinya sehingga dapat menyebabkan resistensi dan tidak tuntasnya pengobatan (Vercruysse, et al., 2011), oleh karena itu pengembangan antelmintik baru dari tumbuh-tumbuhan perlu dilakukan (Borah, et al., 2013).
pada saluran pencernaan dan jaringan tertentu pada manusia (Padal, et al., 2014; Ranjani, et al., 2013). Pugun tanoh telah digunakan sebagai obat cacing secara tradisional oleh masyarakat (Agung dan Tinton, 2008), di Maluku dan di Filipina tanaman ini digunakan sebagai obat cacing untuk anak-anak (Prohati, 2015).
Tanaman ini mengandung zat pahit (Agung dan Tinton, 2008), flavonoid, saponin, tanin, glikosida serta steroid/terpenoid (Harahap, dkk., 2013). Berdasarkan penelitian-penelitian sebelumnya senyawa-senyawa aktif seperti flavonoid, saponin, tanin, glikosida serta steroid/terpenoida mempunyai aktivitas antelmintik (Asih, 2014; Nitave, et al., 2014; Tiwow, dkk., 2013). Kandungan metabolit sekunder dalam daun pugun tanoh diperkirakan dapat menjadi antelmintik.
Menurut Patilaya dan Husori (2015), ekstrak etanol daun pugun tanoh yang diekstraksi dengan cara maserasi memiliki aktivitas antelmintik terhadap cacing tanah (Pheretima posthuma). Banyak faktor yang dapat mempengaruhi kandungan senyawa hasil ekstraksi dalam proses ekstraksi suatu bahan tanaman, diantaranya: jenis pelarut, konsentrasi pelarut, metode ekstraksi dan suhu yang digunakan untuk ekstraksi (Senja et al., 2014). Pada penelitian ini metode ekstraksi yang dilakukan adalah sokletasi, karena pemanasan dapat meningkatkan kemampuan untuk mengekstraksi senyawa-senyawa yang tidak larut dalam suhu kamar, sehingga aktivitas penarikan senyawa lebih maksimal dengan waktu ekstraksi yang lebih singkat dibandingkan dengan beberapa metode ekstraksi lainnya (Mokoginta, dkk., 2013).
1.2Perumusan Masalah
Berdasarkan latar belakang diatas, maka masalah penelitian ini adalah: a. Apakah hasil karakteristik simplisia dan ekstrak etanol daun tanaman pugun
tanoh?
b. Apa sajakah golongan senyawa kimia yang terdapat pada serbuk simplisia dan ekstrak etanol daun tanaman pugun tanoh?
c. Apakah ekstrak etanol daun pugun tanoh memiliki aktivitas antelmintik terhadap Pheretima posthuma secara in vitro?
1.3Hipotesis
Berdasarkan perumusan masalah di atas, maka hipotesis pada penelitian ini adalah:
a. Karakteristik simplisia dan ekstrak etanol daun pugun tanoh sesuai dengan persyaratan umum simplisia dan ekstrak.
b. Golongan senyawa kimia smplisia dan ekstrak etanol daun pugun tanoh adalah flavonoid, tanin, glikosida, saponin dan steroid/triterpenoid.
c. Ekstrak etanol daun pugun tanoh memiliki aktivitas antelmintik terhadap
Pheretima posthuma secara in vitro.
1.4Tujuan Penelitian
Tujuan penelitian ini adalah untuk:
a. Mengetahui karakteristik simplisia dan ekstrak etanol daun pugun tanoh. b. Mengetahui golongan senyawa kimia yang terkandung dalam simplisia dan
c. Menguji aktivitas antelmintik ekstrak etanol daun pugun tanoh secara in vitro terhadap Pheretima posthuma.
1.5Manfaat Penelitian
Manfaat penelitian ini adalah:
a. Memberikan informasi tentang aktivitas antelmintik ekstrak etanol pugun tanoh.
b. Memberikan informasi tentang karakteristik dan golongan senyawa kimia yang terdapat dalam daun tanaman pugun tanoh.
1.6Kerangka Pikir
Kerangka pikir dalam penelitian ini dapat dilihat pada Gambar 1.1. : Variabel bebas Variabel terikat Parameter
Gambar 1.1. Kerangka pikir penelitian Karakterisasi
BAB II
TINJAUAN PUSTAKA
2.1 Epidemiologi Kecacingan
Kecacingan merupakan penyakit endemik dan kronik yang diakibatkan oleh cacing parasit (Zulkoni, 2009). Infeksi cacing tidak hanya terjadi di negara tropis dan subtropis tetapi juga di berbagai daerah yang tingkat kebersihan lingkungannya rendah (Pagariya, et al., 2013). Badan Kesehatan Dunia memperkirakan lebih dari 1,5 miliar (24%) dari penduduk dunia terinfeksi cacing parasit dengan jumlah terbesar di wilayah Afrika, Amerika, Cina dan Asia Tenggara (WHO., 2015). Angka kecacingan mencapai 28% (Kemenkes., 2015) dan diperkirakan lebih dari 60% anak-anak terinfeksi cacing parasit di Indonesia (Tjay dan Rahardja, 2002).
Prevalensi infeksi cacing yang tinggi berdampak buruk bagi kesehatan, walaupun jarang menyebabkan kematian, namun infeksi cacing menyebabkan penderita khususnya anak-anak mengalami kekurangan gizi, kemunduran pertumbuhan fisik, mental, kognitif dan intelektual (Tiwow, dkk., 2013), pada orang dewasa menyebabkan menurunnya produktivitas kerja. Kecacingan dapat mengakibatkan menurunnya kualitas sumber daya manusia dalam jangka panjang (Zulkoni, 2010).
2.2 Penyebab Kecacingan
yang penting adalah kelas Nematoda (Soedarto, 2008). Nematoda atau cacing bundar berbentuk bulat, tidak bersegmen, memiliki rongga tubuh dengan saluran pencernaan dan kelamin terpisah (Zulkoni, 2010). Nematoda menyebabkan infeksi pada usus, darah dan jaringan. Trematoda atau cacing pipih berbentuk seperti daun dan bersifat hermaphrodit kecuali cacing hati (Zulkoni, 2010). Cestoda atau cacing pita secara khas berbentuk pita yang besegmen, bersifat
hermaphrodit, tidak memiliki saluran pencernaan (Zulkoni, 2010) dan menempel
pada usus (Tjahyanto dan Salim, 2013).
Infeksi cacing umumnya masuk melalui mulut atau luka di kulit atau lewat telur (kista) atau larvanya yang ada di atas tanah dan pembuangan kotoran yang dilakukan dengan sembarangan yang tidak memenuhi syarat kebersihan (Zulkoni, 2010; Tjay dan Rahardja, 2002). Kebiasaan penggunaan kotoran sebagai pupuk tanaman menyebabkan semakin luasnya pengotoran tanah. Persediaan air rumah tangga dan makanan tertentu, misalnya sayuran yang tidak dicuci bersih, kebiasaan makan masyarakat mengkonsumsi makanan mentah atau setengah matang sepeti ikan, kerang, daging atau sayuran akan meningkatkan penderita kecacingan, bila dalam makanan tersebut terdapat kista atau larva cacing maka dapat mengakibatkan kecacingan pada manusia (Entjang, 2003).
penting bagi tubuh. Sering kali gejala tidak begitu nyata dan hanya berupa gangguan lambung-usus, seperti mual, muntah, mulas, kejang-kejang dan diare berkala dengan hilangnya nafsu makan. Tuan rumah dapat menderita kekurangan darah akibat terinfeksi sejumlah cacing yang menghisap darah, misalnya disebabkan oleh cacing tambang, pita dan cambuk (Tjay dan Rahardja, 2002). 2.2.1 Infeksi nematoda
Infeksi nematoda yang sering dijumpai adalah: a. Onkoserkiasis (river blindness)
Penyakit ini disebabkan oleh Onchocerca volvulus yang ditandai dengan adanya benjolan dibawah kulit, ruam kulit yang terasa gatal dan lesi okular yang sering menyebabkan kebutaan (Tjahyanto dan Salim, 2013).
b. Enterobiasis (penyakit cacing kremi)
Penyebab penyakit ini adalah infeksi dari Enterobius vermicularis (Tjahyanto dan Salim, 2013). Cacing kremi biasanya menimbulkan gatal di sekitar dubur (anus) dan kejang hebat pada anak-anak. Infeksi ini dapat menyebabkan radang umbai-usus buntu akut (Tjay dan Rahardja, 2002). Gejala penyakit cacing kremi yaitu gatal disekitar dubur terutama pada malam hari pada saat cacing betina meletakkan telurnya, gelisah dan sukar tidur (Irianto, 2013).
c. Askariasis (penyakit cacing gelang)
d. Trikuriasis (penyakit cacing cambuk)
Agen penyebab penyakit ini adalah Trichuris trichiura. Umumnya terdapat di negara beriklim panas dan lembab. Cacing cambuk bermukim di mukosa usus halus dan usus besar dalam tubuh manusia, biasanya dengan menimbulkan kerusakan dan peradangan (Tjay dan Rahardja, 2002). Gejala penyakit cacing cambuk yaitu nyeri di ulu hati, kehilangan nafsu makan, diare dan anemia (Irianto, 2013).
e. Ankilostomiasis (penyakit cacing tambang)
Penyakit ini disebabkan oleh infeksi Ancylostoma duodenale dan Necator
americanus. Cacing ini disebut cacing tambang atau cacing terowongan karena
terdapat di daerah tambang dan terowongan di gunung. Penularannya terjadi oleh larva yang memasuki kulit kaki yang terluka. Setelah memasuki vena, larva menuju ke paru-paru dan bronki, akhirnya masuk ke saluran cerna (Tjay dan Rahardja, 2002). Cacing menempel pada mukosa usus dan menyebabkan anoreksia dengan gejala adanya luka mengakibatkan pendarahan usus kronis yang menyebabkan anemia, selain itu gejala penyakit ini adalah gangguan pencernaan berupa mual, muntah, diare, nyeri ulu hati, pusing, nyeri kepala, lemas, lelah dan gatal di daerah masuknya cacing (Irianto, 2013).
f. Trikinosis (cacing rambut)
Agen penyebab penyakit ini adalah Trichinella spiralis, biasanya disebabkan oleh konsumsi daging yang tidak cukup matang, khususnya babi (Tjahyanto dan Salim, 2013).
g. Strongiloidiasis (penyakit cacing benang)
Cacing dapat bertahan puluhan tahun lamanya di mukosa bagian atas usus halus, ditempat ini cacing merusak jaringan dan menimbulkan reaksi radang (Tjay dan Rahardja, 2002).
2.2.2 Infeksi trematoda
Infeksi trematoda yang sering dijumpai adalah: a. Skistosomiasis
Penyakit ini disebabkan oleh Schistosoma mansoni dan Schistosoma japonicum yang merupakan cacing pipih. Penyakit ini ditularkan melalui sejenis keong sebagai pembawa larva. Parasit ini menembus kulit manusia dan memasuki peredaran darah. Skistosomiasis merupakan masalah kesehatan masyarakat yang disebarkan melalui air yang terinfeksi di beberapa bagian dunia (Tjay dan Rahardja, 2002). Lokasi infeksi utama adalah traktus gastrointestinal. Kerusakan pada dinding usus disebabkan oleh respons inflamasi terhadap telur-telur yang disimpan dalam daerah tersebut. Telur-telur tersebut juga mensekresikan enzim proteolitik yang menambah kerusakan jaringan. Gambaran klinis berupa pendarahan GI, diare dan kerusakan hati (Tjahyanto dan Salim, 2013). Penyakit ini juga disebabkan oleh Schistosoma haematobium, lokasi infeksi utama adalah vena kandung kemih. Penyakit ini ditularkan melalui penetrasi pada kulit secara langsung. Bentuk skistomiasis ini didiagnosa dengan menemukan telur yang khas dalam urin atau dinding kantung kemih (Tjahyanto dan Salim, 2013).
b. Paragonimiasis
kerusakan utama. Infeksi dapat menimbulkan batuk yang menghasilkan sputum dengan darah. Penyakit ini ditularkan dengan memakan daging kepiting yang mentah. Parogonimiasis didiagnosa dengan menemukan telur dalam sputum dan feses (Tjahyanto dan Salim, 2013).
c. Klonorkiasis
Penyakit ini disebabkan oleh Clonorchis sinensis. Lokasi infeksi utama adalah saluran empedu, responnya berupa inflamasi yang dapat menyebabkan fibrosis dan hiperplasia. Penyakit ini ditularkan dengan memakan ikan air tawar yang mentah. Klonorkiasis didiagnosis dengan menemukan telur dalam feses (Tjahyanto dan Salim, 2013).
2.2.3 Infeksi cestoda
Infeksi cestoda yang sering dijumpai adalah: a. Ekinokokkosis
Penyakit ini juga disebut sebagai penyakit hidatid yang disebabkan oleh
Echinococcus granulosis (cacing pita anjing). Infeksi menyebabkan kista hidatid
yang besar di dalam hati, paru dan otak. Reaksi anafilaktik terhadap antigen cacing dapat terjadi bila terjadi ruptur kista. Penyakit timbul sesudah tercernanya telur dalam feses anjing. Domba sering berperan sebagai perantara. Einokokkosis didiagnosa melalui CT-scan atau biopsi jaringan yang terinfeksi dan diterapi dengan eksisi kista melalui pembedahan (Tjahyanto dan Salim, 2013).
b. Taeniasis
ini ditularkan melalui larva dalam daging babi yang kurang matang atau melalui penelanan telur cacing pita. Taeniasis didiagnosa melalui deteksi proglotid di dalam feses (Tjahyanto dan Salim, 2013). Penyakit ini juga disebabkan oleh larva dari Taenia saginata (cacing pita sapi). Organisme ini terutama menginfeksi usus. Penyakit ini ditularkan oleh larva dalam daging sapi yang kurang matang atau mentah. Taeniasis didiagnosa melalui deteksi proglotid dalam feses (Tjahyanto dan Salim, 2013).
Taenia sukar sekali dibasmi karena kepalanya (scolex) yang relatif kecil dibenamkan ke dalam selaput lendir usus hingga tidak bersentuhan dengan obat. Bagian cacing yang bersentuhan dengan obat telah dimatikan dan kemudian
scolex dilepaskan dan terbentuk kembali menjadi segmen-segmen baru (Tjay dan
Rahardja, 2002). c. Sistiserkosis
Penyakit ini disebabkan oleh larva Taenia solium. Infeksi menghasilkan sitiserki dalam otak (menimbulkan kejang, sakit kepala dan muntah) dan di mata. Penyakit ini terjadi sesudah penelanan telur dari feses manusia. Sistiserkosis didiagnosa melalui CT-scan atau biopsi (Tjahyanto dan Salim, 2013).
d. Difilobotriasis
2.3 Pengobatan Kecacingan
Antelmintik adalah obat yang digunakan untuk memberantas atau mengurangi cacing dalam lumen usus atau jaringan tubuh (Gunawan dan Sulistia, 2011).
2.3.1 Antelmintik untuk infeksi nematoda
a. Tiabendazol
Tiabendazol merupakan benzimidazol sintetik berspektrum luas terhadap nematoda. Obat ini efektif mengobati strongiloidiasis yang disebabkan oleh cacing benang, larva migran kutaneus dan stadium awal trikinosis. Thiabendazol bekerja dengan mempengaruhi agregasi mikrotubulus (Tjahyanto dan Salim, 2013; Gunawan dan Sulistia, 2011).
b. Ivermektin
Ivermektin merupakan hasil fementasi dari jamur Streptomyces avermitilis (Tjay dan Rahardja, 2002). Ivermektin adalah antelmintik pilihan untuk pengobatan onkoserkiasis yang disebabkan oleh Onchocerca volvulus, larva migran kutaneus dan strongiloidosis. Ivermektin membidik reseptor kanal Cl- yang bergerbang glutamat pada parasit. Aliran masuk klorida meningkat dan terjadi hiperpolarisasi, menyebabkan paralisis cacing (Tjahyanto dan Salim, 2013).
c. Mebendazol
mikrotubulus parasit serta menurunkan ambilan glukosa (Tjahyanto dan Salim, 2013; Tjay dan Rahardja, 2002).
d. Pirantel pamoat
Pirantel pamoat bersama dengan mebendazol, efektif pada pengobatan infeksi cacing gelang, cacing kremi dan cacing tambang. Obat ini bekerja sebagai agen penghambat neuromuskular dan depolarisasi, menyebabkan aktivasi permanen pada reseptor nikotinik parasit. Cacing yang terparalisis kemudian dikeluarkan dari saluran cerna (Tjahyanto dan Salim, 2013).
e. Dietilkarbamasin
Dietilkarbamasin digunakan pada pengobatan filiarisis karena kemampuannya melumpuhkan mikrofilaria dan membuat mikrofilaria rentan terhadap mekanisme pertahanan (Tjahyanto dan Salim, 2013).
2.3.2 Antelmintik untuk infeksi trematoda
Infeksi trematoda, secara umum diobati dengan praziquantel. Obat ini adalah agen pilihan untuk pengobatan seluruh bentuk skistosomiasis dan infeksi trematoda lainnya, serta infeksi cestoda seperti sistiserkosis. Permeabilitas membran sel terhadap kalsium meningkat, meyebabkan kontraktur dan paralisis parasit (Tjahyanto dan Salim, 2013).
2.3.3 Antelmintik untuk infeksi cestoda
a. Albendazol
Albendazol adalah suatu benzimidazol berspektrum lebar yang dapat diberikan peroral (Gunawan dan Sulistia, 2011). Obat ini bekerja dengan cara berikatan dengan β-tubulin parasit sehingga menghambat sintesis mikrotubulus dan ambilan
terapeutik utamanya adalah pengobatan infeksi cacing kremi, cacing tambang, cacing gelang, penyakit neuro-sistiserkosis dan penyakit hidatid (Tjahyanto dan Salim, 2013; Gunawan dan Sulistia, 2011).
b. Niklosamid
Niklosamid adalah obat pilihan untuk sebagian besar infeksi cestoda (cacing pita). Kerjanya dianggap menghambat fosforalisasi adenosin difosfat mitokondria parasit, yang menghasilkan energi yang dapat digunakan dalam bentuk adenosin trifosfat dan metabolisme anaerobik juga dapat dihambat (Tjahyanto dan Salim, 2013).
Kebanyakan obat cacing efektif terhadap satu macam cacing, hanya beberapa obat yang memiliki khasiat terhadap lebih jenis cacing (broad
spectrum), misalnya mebendazol. Diagnosis tepat diperlukan sebelum
menggunakan obat cacing. Kebanyakan obat cacing diberikan secara oral, pada saat makan atau sesudah makan. Beberapa obat cacing perlu diberikan bersama obat pencahar seperti praziquantel dan niklosamid. Posmedikasi banyak antelmintik dalam dosis terapi hanya bersifat melumpuhkan cacing, jadi tidak mematikannya (Gunawan dan Sulistia, 2011; Tjay dan Rahardja, 2002).
manusia (Vercruysse, et al., 2011; Sutherland dan Leathwick, 2011; Wolstenholme, et al., 2004). Dilaporkan juga terjadinya kegagalan dan penurunan efektivitas obat antelmintik dosis tunggal seperti kegagalan pirantel terhadap cacing tambang Ancylostoma duodenale (Reynoldson, et al., 1997), menurunnya efikasi mebendazol dan levamisol terhadap cacing tambang dan nematoda pada saluran pencernaan (Flohr, et al., 2007; Albonico, et al., 2003), menurunnya efikasi albendazol terhadap cacing tambang (Humphries, et al., 2011) dan terjadinya kegagalan tiabendazol terhadap Haemochus contortus (Kotze, et al., 2009). Kegagalan dan penurunan efektivitas obat-obat antelmintik tersebut merupakan petanda telah terjadinya resistensi pada manusia (Lalchhandama, K., 2010; Prichard, R.K., 2007). Menggunakan dosis berganda atau dosis berulang merupakan solusi terbaik, tetapi hal tersebut sulit diaplikasikan oleh masyarakat karena bermasalah pada waktu penggunaan sehingga dapat menyebabkan resistensi dan tidak tuntasnya pengobatan (Vercruysse, et al., 2011).
2.4 Potensi Tumbuhan Sebagai Sumber Antelmintik
Telah banyak diketahui tanaman obat yang berkhasiat sebagai antelmintik yang pernah dan masih digunakan hingga saat ini. Dari beberapa penelitian yang telah dilakukan, diperoleh tanaman yang mempunyai khasiat antelmintik diantaranya daun pepaya, pare, temu giring, temu hitam, biji pinang (Tiwow, dkk., 2013), putri malu (Ratnawati, 2013) dan andong (Asih, 2014).
Studi in vitro menunjukkan bahwa beberapa spesies tumbuhan dari famili
Amaranthaceae, Arecaceae, Asteraceae, Crassulaceae, Dryopteridaceae,
Euphorbiaceae, Fabaceae, Lythraceae, Moraceae, Myrisnaceae, Polygonaceae,
Rutaceae, Zingiberaceae, Apiaceae (Wink, 2012), Ranunculaceae,
Cucurbitaceae, Dryopteridaceae, Araliaceae, Junglandaceae, Valeria naceae (Urban, et al., 2015), Lythraceae (Bairagi, et al., 2011), Moraceae (Mughal, et al., 2013) dan Schropulariaceae (Padal, et al., 2014; Ranjani, et al., 2013) mampu membunuh cacing pasrasit penyebab infeksi pada manusia.
2.5 Golongan Senyawa Kimia yang Terbukti Berkhasiat Sebagai Antelmintik
Senyawa kimia tumbuhan yang mempunyai aktivitas antelmintik adalah tanin, flavonoid, terpenoid (Vincent, et al., 2011), alkaloid, saponin (Bidkar, et al., 2011), glikosida (Bhawan, et al., 2011), leutin, kaempherol, kumarin, steroid (Tekeshwar, et al., 2011), di-terpenoid (Daked, et al., 2011), geraniol (Katikia, et al., 2011), ketodiol dan karpenoil ester (Shri, et al., 2011).
2.6 Pugun Tanoh
Salah satu tumbuhan yang berkhasiat obat adalah pugun tanoh. Studi in
membunuh cacing pasrasit penyebab infeksi (Padal, et al., 2014; Ranjani, et al., 2013).
2.6.1 Nama daerah
Nama daerah dari tumbuhan ini adalah empedu taneh (Karo), pugun tanoh, pugun tana, pagon tanoh (Dairi), tamah raheut (Sunda), kukurang (Maluku) dan papaita (Ternate) (Prohati, 2015).
2.6.2 Nama asing
Nama asing dari tumbuhan ini adalah beremi, gelumak susu, empedu tanah, rumput kerak nasi (Malaysia), sagai-uak (Filipina), ku xuan shen, kum ta tjao (Cina), longritong (india) (Quattrocchi, 2012), kong saden (Laos) dan thanh (Vietnam) (Globinmed, 2015).
2.6.3 Sinonim
Curanga amara, Curanga amara Juss. dan Picria fel-terrae (Lansdown,
R.V., 2011)
2.6.4 Sistematika dan morfologi tumbuhan
Menurut Lansdown, R.V. (2011) Sistematika tumbuhan pugun tanoh adalah sebagai berikut:
Kingdom : Plantae Divisi : Spermatophyta Subdivisi : Angiospermae Kelas : Dicotyledoneae Ordo : Scrophulariales Famili : Scrophulariaceae Genus : Curanga
Pugun tanoh merupakan tanaman berbatang basah dan berbaring (Agung dan Tinton, 2008). Pugun tanoh tumbuh merambat. Tumbuhan pugun tanoh memiliki tinggi 40 sampai 60 cm. Batangnya dengan cabang-cabang yang ramping, jarang, tegak atau melata, berakar dibuku-buku dan berbulu halus (Prohati, 2015). Tangkai daun tumbuh berhadapan, permukaan tidak berbulu, rata dan tipis. Tandan bunga bewarna merah (Agung dan Tinton, 2008), bunga berupa tandan di ujung atau di batang, jumlah bunga 2-16, mahkota bunga bentuk tabung dan berbibir rangkap. Daunnya berbulu halus, berbentuk bundar telur dengan panjang 3-6 cm dan lebar 2-3 cm, ujung daun agak melancip dan tepi daun beringgit (Prohati, 2015).
2.6.5 Habitat tumbuhan
Pugun Tanoh terdapat di lereng hutan atau pinggiran hutan (Prohati, 2015), ladang, daerah lembab dan daerah dataran rendah (Lansdown, R.V., 2011). 2.6.6 Khasiat tumbuhan
(Harahap, dkk., 2013), obat luka bakar ( Fithra, 2013), antiasma (Ramadhani, 2014) dan antiinflamasi (Juwita, 2009).
2.6.7 Kandungan kimia
Pugun tanoh mengandung curangin dan zat pahit (Agung dan Tinton, 2008), flavonoid (Huang, et al., 1999), saponin (Fang, et al., 2009), tanin, glikosida (Jie, et al., 2005; Zou, et al., 2005; Zou, et al., 2004; Huang, et al., 1998) serta steroid/terpenoid (Wang, et al., 2006).
2.7 Simplisia
Simplisia adalah bahan alamiah yang dipergunakan sebagai obat yang belum mengalami pengolahan apapun juga dan kecuali dinyatakan lain, berupa bahan alam yang telah dikeringkan. Simplisia dibedakan atas simplisia nabati, simplisia hewani dan simplisia mineral. Simplisia nabati adalah simplisia yang berupa tumbuhan utuh, bagian tumbuhan atau eksudat tumbuhan. Eksudat tumbuhan ialah isi sel yang secara spontan keluar dari tumbuhan atau isi sel yang dengan cara tertentu dikeluarkan dari selnya. Simplisia hewani adalah simplisia yang berupa hewan utuh, bagian hewan atau zat-zat berguna yang dihasilkan oleh hewan dan belum berupa zat kimia murni. Simplisia pelikan adalah simplisia yang berupa bahan pelikan yang belum diolah dengan cara sederhana atau belum berupa zat kimia murni (Depkes RI., 2000).
panen tumbuhan obat disebabkan oleh beberapa aspek sebagai berikut (Depkes RI., 2000):
a. Genetik (bibit)
b. Lingkungan (tempat tumbuh, iklim)
c. Rekayasa agronomi (fertilizer, perlakuan selama masa tumbuh) d. Panen (waktu dan pasca panen)
Proses pemanenan dan preparasi simplisia merupakan proses yang dapat menentukan mutu simplisia dalam artian, yaitu komposisi senyawa kandungan kontaminasi dan stabilitas bahan (Depkes RI., 2000).
2.8 Ekstraksi
Ekstraksi adalah kegiatan penarikan kandungan kimia yang dapat larut sehingga terpisah dari bahan yang tidak dapat larut dengan pelarut cair (Depkes RI., 2000). Hasil dari ekstraksi disebut dengan ekstrak yaitu sediaan pekat yang diperoleh dengan mengekstraksi zat aktif dari simplisia nabati atau simplisia hewani menggunakan pelarut yang sesuai, kemudian semua atau hampir semua pelarut diuapkan dan massa atau serbuk yang tersisa diperlakukan sedemikian hingga memenuhi baku yang telah ditetapkan (Depkes RI., 2000).
kekerasan dan kekeringan bahan, pelarut yang digunakan dalam ekstraksi, kandungan logam berat dan kandungan pestisida) (Depkes RI., 2000).
Beberapa metode ekstraksi dengan menggunakan pelarut dibagi menjadi dua cara, yaitu cara panas dan cara dingin (Depkes RI., 2000).
2.8.1 Ekstraksi cara dingin
a. Maserasi
Maserasi adalah proses pengekstrakan simplisia dengan menggunakan pelarut dengan beberapa kali pengadukan pada temperatur ruangan.
b. Perkolasi
Perkolasi adalah ekstraksi dengan pelarut yang selalu baru sampai sempurna yang umumnya dilakukan pada temperatur ruangan.
2.8.2 Ekstraksi cara panas
a. Refluks
Refluks adalah ekstraksi dengan pelarut pada temperatur titik didihnya, selama waktu tertentu dan jumlah pelarut terbatas yang relatif konstan dengan adanya pendingin balik.
b. Sokletasi
Sokletasi adalah ekstraksi menggunakan pelarut yang selalu baru yang umumnya dilakukan dengan alat khusus sehingga terjadi ekstraksi kontinu dengan jumlah pelarut relatif konstan dengan adanya pendingin balik.
c. Infundasi
d. Digesti
Digesti adalah maserasi kinetik (dengan pengadukan kontinu) pada temperatur yang lebih tinggi dari temperatur kamar (40-50oC).
e. Dekoktasi
Dekoktasi adalah infus pada waktu yang lebih lama (30 menit) dan temperatur sampai titik didih air.
2.9 Uji Aktivitas Antelmintik
Secara umum, uji aktivitas antelmintik dapat dilakukan dengan 2 metode, yaitu metode in vitro dan metode invivo. Penelitian secara in vitro adalah suatu proses yang dilakukan untuk menunjukkan gejala yang diteliti dari luar tubuh makhluk hidup dalam kondisi laboratorium (Djatmiko, 2009). Uji invivo adalah uji yang dilakukan di dalam tubuh makhluk hidup (Dorland, 2012).
2.9.1 Uji in vitro
Uji in vitro dapat dilakukan dengan metode perendaman. Pengujian ini dilakukan
dengan cara merendam cacing ke dalam ekstrak tanaman yang memiliki aktivitas antelmintik dengan berbagai konsentrasi dengan parameter yang diperhatikan yaitu waktu paralisis dan waktu kematian. Perendaman bertujuan agar terjadi kontak antara larutan antelmintik dengan tubuh cacing, baik melalui kulit maupun saluran pencernaan, sehingga diharapkan menimbulkan reaksi yang menyebabkan cacing paralisis dan kemudian mati (Patilaya dan Husori, 2015).
suum (Budiyanti, 2010) dan dapat menggunakan cacing tanah (Pheretima
posthuma). Pheretima posthuma dapat digunakan karena memiliki kemiripan
struktur anatomi dan fisiologis dengan cacing yang menginfeksi saluran cerna manusia (Vennila, et al., 2015; Nitave, et al, 2014; Borah, et al., 2013; Subash, et al., 2012; Sharma, et al., 2011; Sharma, 2010).
2.9.2 Uji in vivo
Uji in vivo dapat dilakukan dengan menggunakan hewan sebagai percobaan
BAB III
METODE PENELITIAN
Penelitian ini merupakan penelitian eksperimental untuk mengamati efek ekstrak etanol daun pugun tanoh dalam berbagai konsentrasi terhadap waktu paralisis dan waktu kematian cacing Pheretima posthuma. Penelitian dilakukan dalam beberapa tahap meliputi penyiapan sampel, penyiapan hewan percobaan, pembuatan simplisia dan ekstrak etanol daun pugun tanoh beserta karakterisasi dan skrining fitokimia, uji aktivitas antelmintik ekstrak etanol daun pugun tanoh dan analisis data.
3.1 Alat dan Bahan
3.1.1 Alat-alat
Alat-alat yang digunakan dalam penelitian ini meliputi blender (Panasonik), timbangan (Vibra AJ), mikroskop (Olympus), cawan datar (Coors), erlenmeyer, beaker glass, corong, alat destil, alat soklet, labu tentukur (Pyrex), tabung reaksi, pipet ukur (Iwaki Pyrex), oven (Dynamica), heating mentle (Boeco), labu alas bulat 500 ml (Duran), rotary evaporator (Stuart), cawan petri (CMSI), stopwatch (Croos), desikator (Iaswerk werti), bola karet (D&N), lumpang dan alu, lemari pengering, penangas air, krus porselin, spatula dan cawan alas bulat.
3.1.2 Bahan-bahan
0,5 N, kalium iodida, α-naftol, asam sulfat pekat (Merck), kristal natrium
hidroksida (Univar), timbal (II) asetat, besi (III) klorida, asam asetat anhidrida, toluen, kloroform, asam klorida 2 N, asam klorida pekat, asam klorida encer, serbuk magnesium, serbuk seng, iodium, metanol, etil asetat, kloroform, isopropanol, eter, kloralhidrat, air suling, Tween 80, natrium klorida 0,9% (Widatarabakti) dan baku albendazole (PT. Indofarma).
3.2 Penyiapan Sampel
Penyiapan sampel meliputi pengambilan sampel dan identifikasi sampel. 3.2.1 Pengambilan sampel
Pengambilan sampel dilakukan secara purposif, yaitu tanpa membandingkan dengan bahan yang sama dari daerah lain. Tumbuhan pugun tanoh diambil dari Pajak Pancur Batu, Deli Serdang, Provinsi Sumatera Utara Bagian tanaman yang digunakan adalah daun. Hewan percobaan (cacing tanah) diambil dari Taman Obat Tradisional, Fakultas Farmasi, Jl. Tri Dharma, Pintu 4 Kampus USU, Medan, Provinsi Sumatera Utara.
3.2.2 Identifikasi sampel
Identifikasi tumbuhan dilakukan di Herbarium Bogoriense Bidang Botani Pusat Penelitian Biologi LIPI Bogor (Ramadhani, 2014). Spesimen hewan percobaan diidentifikasi oleh Laboratorium Taksonomi Hewan Departemen Biologi Fakultas Matematika dan Ilmu Pengetahuan Alam USU.
3.3 Pembuatan Simplisia Daun Pugun Tanoh
pada suhu 30-35ºC untuk memperoleh simplisia. Simplisia yang telah kering ditimbang kemudian diblender menjadi serbuk hingga agak halus lalu dimasukkan ke dalam wadah tertutup dan disimpan pada suhu kamar.
3.4 Pembuatan Pereaksi
3.4.1 Pereaksi Mayer
Sebanyak 1,4 g raksa (II) klorida dilarutkan dalam air suling hingga 60 ml. Pada wadah lain ditimbang sebanyak 5 g kalium iodida lalu dilarutkan dalam 10lml air suling. Kedua larutan dicampurkan dan ditambahkan air suling hingga 100 ml (Ditjen POM., 1995).
3.4.2 Pereaksi Dragendorff
Sebanyak 0,8 g bismut (III) dilarutkan dalam 20 ml asam nitrat pekat. Pada wadah lain, sebanyak 27,2 g kalium iodida dilarutkan dalam 50 ml air suling. Kedua larutan kemudian dicampurkan dan didiamkan sampai memisah sempurna. Larutan yang jernih diambil dan diencerkan dengan air suling hingga volume larutan 100 ml (Ditjen POM., 1995).
3.4.3 Pereaksi Bouchardat
Sebanyak 4 g kalium iodida dilarutkan dalam air suling secukupnya, lalu ditambahkan 2 g iodium kemudian ditambahkan air suling hingga larutan 100 ml (Ditjen POM., 1995).
3.4.4 Pereaksi Liebermann-Burchard
3.4.5 Pereaksi Molisch
Sebanyak 3 g α-naftol dilarutkan dalam asam nitrat 0,5 N dan dicukupkan hingga 100 ml (Ditjen POM, 1995).
3.4.6 Pereaksi asam klorida 2 N
Sebanyak 17 ml larutan asam klorida pekat diencerkan dengan air suling hingga 100 ml (Ditjen POM., 1995).
3.4.7 Pereaksi asam sulfat 2 N
Sebanyak 5,4 ml larutan asam sulfat pekat diencerkan dengan air suling sampai 100 ml (Ditjen POM., 1995).
3.4.8 Pereaksi natrium hidroksida 2 N
Sebanyak 8 g kristal natrium hidroksida dilarutkan dengan air suling sebanyak 100 ml (Ditjen POM., 1995).
3.4.9 Pereaksi timbal (II) asetat 0,4 M
Sebanyak 15,17 g timbal (II) asetat dilarutkan dalam air suling bebas karbon dioksida sebanyak 100 ml (Ditjen POM., 1995).
3.4.10 Pereaksi besi (III) klorida 1% (b/v)
Sebanyak 1 g besi (III) klorida dilarutkan dalam air secukupnya dan diencerkan hingga 100 ml (Ditjen POM., 1995).
3.5 Karakterisasi Simplisia Daun Pugun Tanoh
3.5.1 Pemeriksaan organoleptik
Pemeriksaan organoleptik dilakukan dengan mengamati bentuk luar dari simplisia dan ekstrak etanol daun pugun tanoh, yaitu warna, bau, bentuk dan rasa. 3.5.2 Pemeriksaan mikroskopik
Pemeriksaan mikroskopik dilakukan terhadap serbuk simplisia daun pugun tanoh. Serbuk simplisia daun pugun tanoh ditaburkan diatas kaca objek yang telah ditetesi dengan larutan kloralhidrat dan ditutup dengan kaca penutup, kemudian diamati di bawah mikroskop.
3.5.3 Penetapan kadar air
Sebanyak 200 ml toluen dimasukkan ke dalam labu alas bulat, lalu ditambahkan 2 ml air suling, setelah alat dipasang, kemudian didestilasi selama 2 jam. Destilasi dihentikan dan dibiarkan dingin selama ± 30 menit, kemudian volume air dalam tabung penerima dibaca dengan ketelitian 0,05 ml.
Labu berisi toluen tersebut dimasukkan 5 g serbuk simplisia yang telah ditimbang seksama lalu dipanaskan hati-hati selama 15 menit kemudian setelah toluen mendidih, kecepatan toluen diatur 2 tetes per detik sampai sebagian besar air terdestilasi, kemudian kecepatan destilasi dinaikkan sampai 4 tetes per detik. Air terdestilasi seluruhnya, bagian dalam pendingin dibilas dengan toluen.
3.5.4 Penetapan kadar abu total
Sebanyak 2 g serbuk yang telah digerus dimasukkan ke dalam krus porselin yang telah dipijar dan ditara, kemudian diratakan. Krus porselin dipijar perlahan-lahan sampai arang habis, pemijaran dilakukan pada suhu 500-600°C selama 3 jam kemudian didinginkan dan ditimbang sampai diperoleh bobot tetap. Kadar abu dihitung terhadap bahan yang telah dikeringkan (WHO., 2011).
3.5.5 Penetapan kadar abu tidak larut dalam asam
Abu yang telah diperoleh dalam penetapan kadar abu dididihkan dalam 25lml asam klorida encer selama 5 menit. Bagian yang tidak larut asam dikumpulkan, disaring melalui kertas saring dan dipijar sampai bobot tetap, kemudian didinginkan dan ditimbang. Kadar abu yang tidak larut dalam asam dihitung terhadap bahan yang dikeringkan (WHO., 2011).
3.5.6 Penetapan kadar sari larut dalam air
Sebanyak 5 g serbuk simplisia daun pugun tanoh, dimaserasi selama 24 jam dalam 100 ml air-kloroform (2,5 ml kloroform dilarutkan di dalam 1 L air suling) dalam labu tersumbat sambil sesekali dikocok selama 6 jam pertama, kemudian dibiarkan selama 18 jam, lalu disaring. Sejumlah 20 ml filtrat pertama diuapkan sampai kering dalam cawan penguap berdasar rata yang telah dipanaskan dan ditara. Sisa dipanaskan pada suhu 105°C sampai bobot tetap. Kadar sari yang larut dalam air dihitung terhadap bahan yang telah dikeringkan (Depkes RI., 1995).
3.5.7 Penetapan kadar sari larut dalam etanol
selama 6 jam pertama dan kemudian dibiarkan selama 18 jam dan disaring. Sejumlah 20 ml filtrat pertama diuapkan sampai kering dalam cawan dangkal berdasar rata yang telah ditara. Sisa dipanaskan dalam oven pada suhu 105oC sampai diperoleh bobot konstan. Kadar sari yang larut dalam etanol dihitung terhadap bahan yang telah dikeringkan di udara (Ditjen POM., 1995).
3.6 Skrining Fitokimia Simplisia Daun Pugun Tanoh
Skrining fitokimia serbuk simplisia meliputi pemeriksaan senyawa golongan alkaloid, flavonoid, tanin, glikosida, saponin dan steroid/triterpenoid. 3.6.1 Pemeriksaan alkaloida
Sebanyak 0,5 g serbuk simplisia ditambahkan 1 ml asam klorida 2 N dan
9oml air suling, dipanaskan di atas penangas air selama 2 menit. Setelah dingin lalu disaring dan filtrat digunakan untuk percobaan berikut:
a. filtrat sebanyak 3 tetes ditambahkan 2 tetes larutan pereaksi Mayer akan terbentuk endapan berwarna putih atau kuning menunjukkan reaksi positif; b. filtrat sebanyak 3 tetes ditambahkan 2 tetes larutan pereksi Bouchardat akan
terbentuk endapan berwarna coklat-hitam menunjukkan reaksi positif;
c. filtrat sebanyak 3 tetes ditambahkan 2 tetes larutan pereksi Dragendorff akan terbentuk endapan berwarna merah atau jingga menunjukkan reaksi positif.
Alkaloida dinyatakan positif jika terjadi endapan atau paling sedikit dua atau tiga dari percobaan di atas (Ditjen POM., 1995).
3.6.2 Pemeriksaan flavonoida
Larutan Percobaan:
filtrat diencerkan dengan 10 ml air suling. Setelah dingin ditambah 5 ml eter minyak tanah, dikocok hati-hati, didiamkan. Lapisan metanol diambil, diuapkan pada temperatur 40oC. Sisa dilarutkan dalam 5 ml etil asetat, disaring.
Cara Percobaan :
a. 1 ml larutan percobaan diuapkan hingga kering, sisanya dilarutkan dalam 1-2 ml etanol 96%, ditambahkan 0,5 g serbuk seng dan 2 ml asam klorida 2 N, didiamkan selama satu menit. Ditambahkan 10 ml asam klorida pekat, jika dalam waktu 2-5 menit terjadi warna merah intensif menunjukkan adanya flavonoida (glikosida-3-flavonol).
b. 1 ml larutan percobaan diuapkan hingga kering, sisanya dilarutkan dalam 1lml etanol 96%, ditambahkan 0,1 g magnesium dan 10 ml asam klorida pekat, terjadi warna merah jingga sampai merah ungu menunjukkan adanya flavonoida (Ditjen POM., 1995).
3.6.3 Pemeriksaan tanin
Sebanyak 0,5 g serbuk simplisia disari dengan 10 ml air suling lalu disaring. Filtratnya diencerkan dengan air suling sampai tidak berwarna. Ke dalam 2 ml filtrat ditambahkan 1-2 tetes larutan besi (III) klorida. Jika terjadi warna biru atau hijau kehitaman menunjukkan adanya tanin (Farnsworth, 1966).
3.6.4 Pemeriksaan glikosida
isopropanol. Lapisan air diambil kemudian ditambahkan 2 ml air dan 5 tetes pereaksi Molisch, ditambahkan hati-hati 2 ml asam sulfat pekat. Jika terbentuk cincin warna ungu pada batas kedua cairan menunjukkan adanya ikatan gula (Ditjen POM., 1995).
3.6.5 Pemeriksaan saponin
Sebanyak 0,5 g serbuk simplisia dimasukkan ke dalam tabung reaksi dan ditambahkan 10 ml air suling panas, didinginkan kemudian dikocok kuat-kuat selama 10 detik. Timbulnya busa yang mantap setinggi 1-10 cm tidak kurang dari 10 menit yang tidak hilang dengan penambahan 1 tetes larutan asam klorida 2 N menunjukkan adanya saponin (Ditjen POM., 1995).
3.6.6 Pemeriksaan steroida/ triterpenoida
Sebanyak 1 g serbuk simplisia dimaserasi dengan 20 ml eter selama 2 jam, lalu disaring. Filtrat diuapkan dalam cawan penguap. Sisa dalam cawan penguap ditambahkan 2 tetes asam asetat anhidrida dan 1 tetes asam sulfat pekat. Timbulnya warna ungu atau merah kemudian berubah menjadi hijau biru menunjukkan adanya steroida/triterpenoida (Harborne, 1987).
3.7 Pembuatan Ekstrak Etanol Daun Pugun Tanoh
diuapkan dengan penangas air kemudian dimasukkan ke dalam pendingin sehingga diperoleh ekstrak etanol daun pugun tanoh.
3.8 Karakterisasi dan Skrining Fitokimia Ekstrak
Karakterisasi dan skrining fitokimia ekstrak dilakukan dengan prosedur yang sama dengan karakterisasi dan skrining fitokimia pada simplisia daun pugun tanoh.
3.9 Uji Aktivitas Antelmintik Ekstrak Etanol Daun Pugun Tanoh
3.9.1 Hewan percobaan
Hewan percobaan yang digunakan dalam penelitian ini adalah cacing tanah dewasa (Pheretima posthuma) dengan ukuran seragam (panjang 14 – 14,5 cm dan lebar 0,1 – 0,2 cm). Pheretima posthuma dikumpulkan dari tanah yang lembab, dicuci dengan air suling untuk menghilangkan pengotor dan diaklimasi dalam larutan salin selama 60 menit (Joseph, et al., 2013).
3.9.2 Uji pengaruh etanol terhadap Pheretima posthuma
Larutan etanol 96% diencerkan dengan salin hingga 20 ml untuk memperoleh larutan etanol 0,5; 1; 2; 4; 6; 8 dan 10%. Perhitungan pengenceran larutan etanol dapat dilihat pada Lampiran 20 halaman 59. Pheretima posthuma dimasukkan secara terpisah ke dalam cawan petri yang masing-masing berisi larutan etanol dengan konsentrasi berbeda tersebut. Efek etanol terhadap
Pheretima posthuma diamati selama 5 jam.
3.9.3 Penyiapan sampel uji
ml. Ekstrak dilarutkan dengan etanol 0,5% dan diencerkan sampai garis tanda. Albendazole disiapkan dengan mensuspensikan 1200 mg serbuk albendazole dalam lumpang yang berisi sejumlah larutan salin, lalu digerus. Sebanyak 0,3 ml Tween 80 ditambahkan ke dalam lumpang, kemudian digerus sampai terbentuk suspensi merata. Suspensi dipindahkan ke dalam labu erlenmeyer yang sudah ditara, kemudian dicukupkan dengan larutan salin sampai 60 ml sehingga diperoleh suspensi albendazole dengan konsentrasi 20 mg/ml. Perhitungan penyiapan suspensi ekstrak dan albendazole dapat dilihat pada Lampiran 22 halaman 61.
3.9.4 Uji aktivitas antelmintik
Uji aktivitas antelmintik dilakukan berdasarkan prosedur Patilaya dan Husori (2015). Hewan percobaan dibagi menjadi 7 kelompok yang masing-masing terdiri dari 3 ekor cacing Pheretima posthuma dengan perlakuan seperti pada Tabel 3.1.
Tabel 3.1. Perlakuan uji antelmintik ekstrak etanol daun pugun tanoh terhadap Pheretima posthuma
Keterangan: EEDPT = ekstrak etanol daun pugun tanoh
Seluruh perlakuan dilakukan dalam cawan petri steril pada suhu kamar. Aktivitas antelmintik ekstrak daun pugun tanoh ditentukan berdasarkan waktu paralisis dan kematian melalui pengamatan terhadap motilitas dan morfologi cacing Pheretima posthuma selama 5 jam. Cacing Pheretima posthuma
Kelompok Perlakuan
I Pemaparan dalam 20 ml larutan salin steril (kontrol negatif) II Pemaparan dalam 20 ml larutan etanol 0,5% (kontrol pelarut) III Pemaparan dalam 20 ml suspensi albendazole 20 mg/ml (kontrol
positif)
dipindahkan ke dalam cawan petri berisi larutan salin bersuhu 40-50 ºC untuk memastikan hewan percobaan telah mati,.
3.10 Analisis Statistika
BAB IV
HASIL DAN PEMBAHASAN
4.1 Identifikasi Tumbuhan
Hasil identifikasi tumbuhan yang dilakukan oleh Herbarium Bogoriense Bidang Botani, Pusat Penelitian Biologi LIPI Bogor menyebutkan bahwa tumbuhan yang digunakan adalah pugun tanoh [Curanga fel-terrae (Lour.) Merr.] suku Scrophulariaceae (Lampiran 1 halaman 56).
Pada penelitian ini bagian tumbuhan pugun tanoh yang digunakan adalah daun. Lampiran 4 halaman 62 menunjukkan bahwa secara visual daun pugun tanoh yang segar berwarna hijau muda sampai hijau tua, berbentuk bulat telur dengan tinggi 2-7 cm dan lebar 2-4 cm, ujung daun agak melancip, tepi daun beringgit dan permukaan daun bertekstur kasar. Daun terasa sangat pahit di lidah dan bila diremas daunnya tidak mengeluarkan bau. Hasil yang sama juga dilaporkan oleh Patilaya dan Husori (2015), Ramadhani (2014), Harahap, dkk. (2013), Fithra (2013) dan Juwita (2009).
4.2 Karakteristik Simplisia Daun Pugun tanoh
Hasil penelitian menunjukkan bahwa secara organoleptik simplisia daun pugun tanoh berwarna hijau (Lampiran 5 halaman 61). Simplisia daun pugun tanoh berasa pahit dan tidak berbau. Hasil yang sama juga dilaporkan oleh Patilaya dan Husori (2015), Ramadhani (2014), Fithra (2013) dan Juwita (2009).
kalsium oksalat bentuk prisma dan stomata dengan dua tipe yaitu diasitik dan anomositik. Hasil yang sama juga dilaporkan oleh Ramadhani (2014), Fithra (2013) dan Juwita (2009).
Pada penelitian ini simplisia daun pugun tanoh yang diperoleh memiliki nilai rendemen 27,82%. Menurut hasil penelitian Patilaya dan Husori (2015), rendemen simplisia daun pugun tanoh adalah 25,53%.
Hasil pemeriksaan kadar air, kadar sari larut dalam air dan etanol serta kadar abu dari simplisia daun pugun tanoh dapat dilihat pada Tabel 4.1. dan Lampiran 12–16 halaman 72-76. Kadar air simplisia daun pugun tanoh adalah 5,93%. Hal ini sesuai dengan persyaratan umum simplisia yaitu tidak lebih dari 10% (Depkes., 1995). Menurut Ramadhani (2014), kadar air simplisia daun pugun tanoh adalah 5,96% sedangkan menurut Fithra (2013), kadar air simplisia daun pugun tanoh mencapai 7,97%.
Tabel 4.1. Kadar air, kadar sari larut dalam air dan etanol serta kadar abu total dan tidak larut asam
Kadar sari larut air simplisia daun pugun tanoh mencapai 16,90%. Menurut Ramadhani (2014) dan Fithra (2013), kadar sari larut dalam air simplisia daun pugun tanoh masing-masing adalah 16,36% dan 16,18%.
Kadar sari larut dalam etanol simplisia daun pugun tanoh dalam penelitian ini adalah 21,58%, lebih tinggi dibandingkan hasil yang diperoleh oleh Ramadhani (2014) dan Fithra (2013) yaitu masing-masing 13,65% dan 14,54%.
No Parameter Hasil persentase (%)
1 Kadar air 5,93
2 Kadar sari larut air 16,90
3 Kadar sari larut etanol 21,58
4 Kadar abu total 2,71
